实验食品中游离氨基酸的测定
实验一离氨基酸含量的测定(实验报告用)

实验一 食品中游离氨基酸含量的测定实验原理:电位滴定法测定酱油中氨基酸态氮的含量。
氨基酸有氨基及羧基两性基团,它们相互作用形成中性内盐,利用氨基酸的两性作用,加入甲醛以固定氨基的碱性,使羧基显示出来酸性,用氢氧化钠标准溶液滴定后定量,根据酸度计指示pH 值,控制终点。
实验试剂:1、甲醛(36%):应不含有聚合物。
2、氢氧化钠标准滴定溶液[c(NaOH )=0.050mol/L] 实验仪器:1、酸度计;2、20mL 移液管;3、10mL 微量滴定管;4、100mL 容量瓶;5、250mL 烧杯;6、磁力搅拌器; 实验步骤:1、吸取5mL 试样,置于100mL 容量瓶中,加水至刻度,混匀,备用。
2、吸取上述稀释液20.00mL V 3置于200mL 烧杯中,加水60mL 水,插入电极,开动磁力搅拌器,用氢氧化钠标准滴定溶液[c(NaOH)=0.050mol/L]滴定至酸度计指示pH8.2,记录消耗氢氧化钠标准滴定溶液[c(NaOH )=0.050mol/L]的毫升数,(可计算总酸含量)。
(使中性内盐分离成为氨基酸)3、向上述溶液中准确加入10.0mL 甲醛溶液,混匀。
再用氢氧化钠标准滴定溶液[c(NaOH )=0.050mol/L]继续滴定至pH9.2,记录加入甲醛后滴定所消耗氢氧化钠标准滴定溶液[c(NaOH )=0.050mol/L]的毫升数V 1。
重复做3组平行样。
4、取80mL 水,先用氢氧化钠标准滴定溶液滴定至酸度计指示pH8.2,再加入10.0mL 甲醛溶液,混匀,再用氢氧化钠标准滴定溶液滴定至pH9.2,记录加入甲醛后滴定所消耗氢氧化钠标准滴定溶液的毫升数V 2。
重复做3组平行样。
数据记录与计算(一)数据记录:见下表项目样品 空白 加入甲醛后滴定所消耗 氢氧化钠标准滴定溶液的毫升数标准氢氧化钠溶液浓度(mol/L )(二)结果计算试样中氨基酸态氮的含量为:()1001005014.0321⨯⨯⨯⨯-=V C V V X式中:X —试样中氨基酸态氮的含量,g/100 mL ;V 1—测定用试样稀释液加入甲醛后消耗标准碱液的体积,mL ; V 2—测定空白试验加入甲醛后消耗标准碱液的体积,mL ; C —氢氧化钠标准溶液的浓度,mol/L ; V 3—试样稀释液取用量,mL ;0.014—与1.00 mL氢氧化钠标准滴定溶液相当的氮的质量。
游离氨基酸的测定实验报告

游离氨基酸的测定实验报告背景游离氨基酸是构成蛋白质的基本组成单位,对人体的生理功能起着重要作用。
因此,准确测定游离氨基酸的含量对于研究和分析蛋白质代谢、营养摄入以及疾病发展等方面具有重要意义。
本实验旨在通过一系列分析方法测定样品中游离氨基酸的浓度。
分析实验设备和试剂•恒温水浴器•离心机•分光光度计•超纯水系统•氨基酸标准品•Ninhydrin标准溶液•稀盐酸(6 mol/L)•无水乙醇(95%)•氨水(25%,体积分数)•Na2CO3溶液(3%,取6 g Na2CO3溶于200 mL水)实验步骤1. 样品制备将待测样品(例如食品、体液等)取适量加入10 mL离心管中,并加入适量稀盐酸溶液,使样品pH降至酸性,以保证游离氨基酸不会发生气化。
利用离心机对样品进行离心,取上层液保存。
2. 氨基酸含量测定2.1 Ninhydrin法准备一系列浓度已知的氨基酸标准品溶液,分别为0、2、4、6、8和10 μmol/mL。
取6个离心管,分别加入1 mL样品上层液或相应浓度的标准品溶液。
然后,对每个离心管加入1 mL Ninhydrin标准溶液,混匀后放入恒温水浴器中,温度设定为80°C,加热15分钟使其反应完成。
在背景相对较深的条件下使用分光光度计,设置波长为570 nm进行吸光度测定,记录吸光度值。
2.2 紫外分光光度法准备一系列浓度已知的氨基酸标准品溶液,分别为0、2、4、6、8和10 μmol/mL。
在离心管中分别加入1 mL样品上层液或相应浓度的标准品溶液,然后加入1 mLNa2CO3溶液,混匀后放入分光光度计进行紫外吸光度测定,设置波长为280 nm,并记录吸光度值。
3. 结果和分析根据实验步骤2中的测定结果,计算出标准曲线的方程和相关系数,并根据标准曲线对待测样品中的游离氨基酸含量进行定量分析。
结果下表为实验测定获得的标准曲线数据:氨基酸浓度(μmol/mL)Ninhydrin反应吸光度值紫外吸光度值0 0 02 0.3 0.14 0.7 0.26 1.2 0.38 1.6 0.410 2.1 0.5根据上述数据,可得到标准曲线的方程为:•Ninhydrin法:吸光度 = 0.2[氨基酸浓度(μmol/mL)] + 0.1,相关系数r = 0.99;•紫外分光光度法:吸光度 = 0.05[氨基酸浓度(μmol/mL)] + 0.1,相关系数 r = 0.98。
食物中氨基酸的测定方法

食物中氨基酸的测定方法测定食物中的胱氨酸使用过甲酸氧化-氨基酸自动分析仪法,测定色氨酸使用荧光分光光度法,测定其它氨基酸使用氨基酸自动分析仪法。
一、氨基酸自动分析仪法1.原理食物蛋白质经盐酸水解成为游离氨基酸,经氨基酸分析仪的离子交换柱分离后,与茚三酮溶液产生颜色反应,再通过分光光度计比色测定氨基酸含量。
一份水解液可同时测定天冬,苏,丝,谷,脯,甘,丙,缬,蛋,异亮,亮,酪,苯丙,组,赖和精氨酸等16种氨基酸,其最低检出限为10pmol。
2.适用范围GB/T14965-1994食物中氨基酸的测定方法。
本法适用于食物中的16种氨基酸的测定。
其最低检出限为10pmol。
本方法不适用于蛋白质含量低的水果、蔬菜、饮料和淀粉类食物的测定3.仪器和设备3.1真空泵3.2恒温干燥箱3.3水解管:耐压螺盖玻璃管或硬质玻璃管,体积20~30ml。
用去离子水冲洗干净并烘干。
3.4真空干燥器(温度可调节)3.5氨基酸自动分析仪。
4.试剂全部试剂除注明外均为分析纯,实验用水为去离子水。
4.1浓盐酸:优级纯4.26mol/L盐酸:浓盐酸与水1:1混合而成。
4.3苯酚:需重蒸馏。
4.4混合氨基酸标准液(仪器制造公司出售):0.0025mol/L4.5缓冲液:4.5.1 pH2.2的柠檬酸钠缓冲液:称取19.6g柠檬酸钠(Na3C6H5O7.2H2O)和16.5ml浓盐酸加水稀释到1000ml,用浓盐酸或50%的氢氧化钠溶液调节pH至2.24.5.2 pH3.3的柠檬酸钠缓冲液:称取19.6g柠檬酸钠和12ml浓盐酸加水稀释到1000ml,用浓盐酸或50%的氢氧化钠溶液调节至pH至3.3。
4.5.3 pH4.0的柠檬酸钠缓冲液:称取19.6g柠檬酸钠和9ml浓盐酸加水稀释到1000ml,用浓盐酸或50%的氢氧化钠溶液调节pH至4.0。
4.5.4 pH6.4的柠檬酸钠缓冲液:称取19.6g柠檬酸钠和46.8g氯化钠(优级纯)加水稀释到1000ml,用浓盐酸或50%的氢氧化钠溶液调节pH至6.4。
高效液相色谱法测定大豆中游离氨基酸含量

高效液相色谱法测定大豆中游离氨基酸含量一、本文概述本文旨在探讨高效液相色谱法(HPLC)在大豆中游离氨基酸含量测定中的应用。
作为一种重要的植物蛋白来源,大豆中的氨基酸组成对于其营养价值及食品工业应用具有重要意义。
游离氨基酸作为大豆蛋白质水解的产物,其含量直接反映了大豆的蛋白质质量和营养价值。
因此,准确测定大豆中游离氨基酸的含量对于评估大豆品质及开发高附加值产品至关重要。
高效液相色谱法作为一种高效、准确的分离分析技术,在氨基酸分析领域具有广泛应用。
本文将详细介绍高效液相色谱法的基本原理、样品处理方法、色谱条件优化以及结果计算与分析等方面的内容,并通过实验验证该方法的可行性和准确性。
本文还将讨论高效液相色谱法在大豆游离氨基酸含量测定中的优势及局限性,以期为相关领域的研究和实践提供有益的参考。
二、实验材料与方法(1)大豆样品:选择新鲜、无病虫害、无杂质的大豆作为实验材料,经过清洗、烘干、破碎后备用。
(2)试剂:实验所需试剂包括高效液相色谱仪用流动相(如乙腈、甲醇等)、衍生化试剂(如OPA、FMOC等)、标准品氨基酸等,均为分析纯或更高纯度。
(3)仪器:高效液相色谱仪(配备紫外检测器或荧光检测器)、离心机、涡旋混合器、水浴锅、移液枪等。
(1)样品处理:称取适量大豆样品,加入适量的水或缓冲液,进行匀浆处理。
然后,将匀浆液进行离心,取上清液作为游离氨基酸提取液。
(2)衍生化处理:取一定体积的游离氨基酸提取液,加入适量的衍生化试剂,进行衍生化反应。
衍生化反应的目的是将氨基酸转化为易于检测的衍生物,提高检测灵敏度和准确性。
(3)高效液相色谱分析:将衍生化后的样品进行高效液相色谱分析。
选择合适的流动相和色谱柱,设置合适的检测波长或激发/发射波长,记录色谱图和峰面积。
(4)数据处理:根据标准品氨基酸的色谱图和峰面积,绘制标准曲线。
然后,根据样品的色谱图和峰面积,结合标准曲线,计算样品中游离氨基酸的含量。
本实验采用高效液相色谱法测定大豆中游离氨基酸的含量,通过样品处理、衍生化处理、高效液相色谱分析和数据处理等步骤,实现对大豆中游离氨基酸的快速、准确测定。
游离氨基酸测定

①将对应封口袋中根茎放入研钵内加5ml10%乙酸研磨至匀浆,用10ml去离子水冲洗干净,一并将匀浆和冲洗水转入10ml对应编号离心管中,定容至9ml。
根同样加5ml10%乙酸研磨至匀浆,用少量水洗研钵,一并转入10ml对应编号离心管去离子水定容至8ml。
②将离心管充分震荡混匀,将根茎叶浆液10ml离心管放入高速离心机9000r/min 离心10min,取叶上清液0.2ml,放入对应编号10ml离心管中待测。
取茎上清液0.2ml,放入对应编号10ml离心管中待测。
取根上清液0.2ml,放入对应编号10ml 离心管中待测。
③在取茎叶上清液中加入相应去离子水、3ml茚三酮、0.2ml抗坏血酸,置沸水中加热10min,观察颜色淡黄色变为蓝紫色,加入乙醇定容到9ml。
在570nm处测定吸光度。
试剂:①水合茚三酮:称取0.6g再结晶的茚三酮与烧杯中,加入15ml正丙醇,搅拌使其溶解。
再加入30ml正丁醇及60ml乙二醇,最后加入9ml PH=5.4乙酸钠缓冲液,混匀,于棕色瓶中,置于4℃下保存备用,10天有效。
需要432ml 材料:[200ml烧杯(1个)、100ml量筒(1个)、5ml移液器(1个)、500ml棕色瓶(1个)]②乙酸钠缓冲液③标准氨基酸:称取亮氨酸46.8mg,溶于少量10%异丙醇中,用10%异丙醇定容至100ml。
取该溶液5ml,用蒸馏水稀释到50ml,即含氨基氮5μg/ml标液。
材料:[小烧杯(1个)、100ml容量瓶(1个)、50ml容量瓶(1个)]④0.2%抗坏血酸:称取100mg抗坏血酸,溶于50ml蒸馏水中,随配随用。
材料:[50ml容量瓶(1个)]⑤10%乙酸。
需要720ml材料:[100ml容量瓶(1个)] 1000ml容量瓶总材料:水浴锅、大口径烧杯、研钵(3个)、50ml离心管(96个)、10ml离心管(144个)、15ml离心管(144个)、5ml移液器、1ml移液器。
茚三酮比色法测定牛肉中游离氨基酸的试验研究

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材料和方法
"$ & 仪器与试剂 由上海精密科学仪器有限公司提 )"(D 型分光光度计, ./K-(X 型精密酸度计,由上海雷磁精密科学仪器有限 供; 公司提供; 甘氨酸标准试剂, 购于美国 K1>0: 公司; 甘氨酸
加热时间 - (78
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不同加热时间的吸光值
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游离氨基酸测定(完整版)

总游离氨基酸测定(完整版)实验原理:游离氨基酸的游离氨基可与水合茚三酮作用,产生蓝紫色的化合物二酮茚-二酮茚胺,产物的颜色深浅与游离氨基酸含量成正比,用分光光度计在570nm下测其含量。
因蛋白质中的游离氨基酸也会产生同样反应,在测定前必须用蛋白质沉淀剂将其除掉.仪器与用具:100ml容量瓶;漏斗;三角瓶研钵;刻度吸管:0.1ml×1、1ml×2、2ml×2、5ml×1;沸水浴;具塞刻度试管20ml×10;分光光度计.一、试剂1.水合茚三铜:称重结晶的茚三铜0.6g,装入烧杯,加入正丙醇15ml,使其溶解加入正丁醇30 ml、乙二醇60 ml、乙酸-乙酸钠缓冲液(pH=5.4)9 ml,混匀,棕色瓶冰箱保存,10天内有效。
2.乙酸-乙酸钠缓冲液(pH5.4):称取化学纯乙酸钠54.4g,加入无氨蒸馏水100 ml,电炉加热至沸,使其体积减半,冷却后加冰乙酸30 ml,加蒸馏水定容至100 ml。
3.氨基酸标准溶液:精确称取80℃烘干至恒重的亮氨酸0.0234g溶于10%异丙醇并定容至50ml。
取此液5ml蒸馏水稀释到50ml,即为5μg/ml氨基酸标液。
4.0.1%抗坏血酸:称取0.050g抗坏血酸,溶于50 ml蒸馏水中,即配即用。
5.10%乙酸二、标准曲线制备加塞子密封于沸水中加热15分钟,取出后用冷水迅速冷却并不时摇动使加热时形成的红色被空气逐渐氧化褪去,待呈现兰紫色时,用60%乙醇定容至20ml,摇匀于570nm波长下比色。
以吸光度为纵坐标,氨基氮ug数为横坐标,绘标准曲线三、实验步骤:1.烟末0.5g于研钵中加入5 ml10%乙酸,研磨匀浆后用蒸馏水定容100 ml,用滤纸过滤到三角瓶中备用。
2.1ml滤液加入到20ml 干燥试管中,加1 ml蒸馏水,水合茚三铜3ml, 0.1%抗坏血酸0.1ml, 加塞子密封于沸水中加热15分钟,取出后用冷水迅速冷却并不时摇动使加热时形成的红色被空气逐渐氧化褪去,待呈现兰紫色时,用60%乙醇定容至20ml,摇匀于570nm波长下比色。
游离氨基酸的测定方法

游离氨基酸的测定方法
游离氨基酸咋测定呢?其实有不少方法呢!比如说茚三酮比色法。
先准备好样品,把它处理成合适的状态。
然后加入茚三酮试剂,经过一系列反应后,通过比色来确定游离氨基酸的含量。
这过程中可得小心操作,要是弄错了一步,那结果可就不靠谱啦!那安全性咋样呢?只要按照正确的步骤来,一般没啥大问题。
稳定性嘛,只要试剂没问题,操作规范,结果还是挺稳定的。
这方法能用到好多地方呢!像食品检测领域,你想想,要是不知道食品里的游离氨基酸含量,咋能保证食品的质量和营养呢?优势也不少呢!操作相对简单,成本也不高。
咱举个实际案例哈。
有个食品加工厂,用这个方法检测产品中的游离氨基酸含量,及时调整了生产工艺,提高了产品质量。
这效果多棒啊!
游离氨基酸的测定方法真的超实用,能帮我们了解各种物质中的氨基酸情况,为我们的生活和生产带来很多好处。
咱可得好好利用这些方法,让它们发挥更大的作用。
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4.结果计算
氨基酸(g/100mL)=
C×K ×100
V×106
式中: C——从标准曲线上查得的氨基酸含量,μg K——稀释倍数 V——测定时取样量,mL
5. 注意事项 (1)脯氨酸和羟脯氨酸与茚三酮反应呈黄 色,最大吸收波长在440nm处。 (2)有颜色的样品必需经脱色处理至无色 后方可使用。
(3)样品测定
管号
8
9 10 11
样品溶液/mL
0 0.5 0.5 0.5
水/mL 磷酸盐缓冲液/mL
1.6 1.1 1.1 1.1 0.4 0.4 0.4 0.4
茚三酮/mL
0.4 0.4 0.4 0.4
按上表加样后混匀,按标准曲线的步骤进行实验,在相同条件下测 定样品的吸光度,并在标准曲线上查出氨基酸含量微克数。
水/mL
1.6 1.1 1.0 0.9 0.8 0.7 0.6
Hale Waihona Puke 磷酸盐缓冲液/mL 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4
茚三酮/mL
0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4 0.4
氨基酸含量/μg 0 100 120 140 160 180 200
各种试剂加到比色管后混匀,于电炉上沸水浴15min,取出冷却至 室温后加水至10mL刻度线,静置15min后,在570nm处测定吸光度 ,以氨基酸含量(μg)为横坐标,吸光度为纵坐标绘制标准曲线。
3. 实验步骤 (1)样品的处理:准确吸取0.5mL酱油于 100mL烧杯中,加入5g活性炭和50mL蒸馏 水,置于80℃水浴锅中,保持半小时后过滤 ,用蒸馏水将滤渣清洗数遍,收集滤液于 100mL容量瓶中,定容至刻线,摇匀备用。
(2)标准曲线的绘制
管号
1 2 3 4 56 7
氨基酸标准溶液/mL 0 0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 1.0
实验十一:食品中游离氨基酸的测定 (茚三酮法)
1.实验原理 凡含有自由氨基的化合物,如蛋白质、多肽
、氨基酸(脯氨酸除外)在碱性溶液中与水合茚 三酮共热时,产生紫色化合物,最大吸收波长在 570nm处,在一定浓度范围内,颜色深浅与氨基 酸含量成正比,可用比色法进行测定。
氨基酸与茚三酮的反应分两个步骤:
2. 实验材料、仪器与试剂 材料:酱油 仪器:可见分光光度计,分析天平,容量瓶,
移液管,具塞刻度试管。 试剂:茚三酮、氯化亚锡、磷酸二氢钾、磷酸
氢二钠、标准氨基酸(异亮氨酸)。
试剂配制:(P64) (1)2%茚三酮溶液 (2)pH8.04的磷酸缓冲液 (3)氨基酸标准溶液:200μg/mL异亮
氨酸标准溶液。