中国医学高校创新性机能实验设计大赛一等奖作品_神经干动作电位不应期的定量分析_沈建新江玲20170719
神经干动作电位、传导速度以及不应期的测定

不应期
S1
S2
t t1
t2
方法和步骤
➢ 急性动物实验制备蟾蜍 坐骨神经干标本 ▪ 分离坐骨神经干标本, 任氏液保持标本湿润
观察项目
• 记录随刺激强度增强而改变的双向复合动作电位。 • 测量动作电位的传导速度。 • 交换神经干两端的方向,观察复合动作电位变化,原理? • 夹伤神经干观察复合动作电位变化。 • 不应期观测。
区域测量 刺激伪迹
观察项目:动作电位传导的双向性
• 将神经干标本放置方向倒换 • 记录数据 :双相动作电位波形有无变化
双相动作电位幅度有无变化
观察项目:动作电位传导的速度
最大刺 激强度
观察项目:不应期
• 刺激器参数设置 • 细电压 • 双刺激 • 间隔减小 • 程控
实验目的
❖分离蟾蜍的坐骨神经,细胞外记录坐骨神 经干的单相和双相复合动作电位;
❖测定动作电位在神经干上的传导速度 ❖不应期的观察
实验原理-1
❖ 神经细胞(纤维)受到有效刺激(阈刺激,阈上刺激) 后,产生了动作电位,即兴奋,它是“全或无”的;
❖ 神经干由许多不同的神经细胞组成,众多神经细胞动作 电位的组合即形成复合动作电位;
• 动作电位传导速度=( r1-r2 )/ (t2 - t1)
0
实验原理-3
• 在两记录电极间夹伤神经干,双相动作电位变单相动作电 位;在两记录电极前夹伤神经干,动作电位消失;
0
实验原理——4
• 神经干动作电位不应期的观察 • 条件刺激(S1):引起神经兴奋。 • 测试刺激(S2):在前一兴奋过程的不同时相
❖ 复合动作电位能在神经干表面传导,顺序通过两根引导 电极,被记录到双向复合动作电位。
【实验报告】骨骼肌的单收缩与复合收缩及神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定

实验二:骨骼肌的单收缩与复合收缩及神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定实验人:同组人:【实验目的】✧了解肌肉收缩过程的时相变化✧观察刺激强度和频率对骨骼肌收缩形式的影响✧掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。
✧掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法。
【实验原理】✧骨骼肌的单收缩与复合收缩肌肉兴奋的外在表现是收缩。
当其受到一个阈上强度的刺激时,爆发一次动作电位,迅速发生一次收缩反应,叫单收缩。
单收缩曲线分为潜伏期、收缩期、舒张期三个时期。
在一定范围内,肌肉收缩的幅度随刺激强度的增加而增大。
当相继受到两个以上同等强度的阈上刺激时,因频率不同,下一次刺激可能落在前一刺激所引起的单收缩的不同时期内,造成:✓几个分离的单收缩:频率低于单收缩频率,间隔大于单收缩时间✓收缩的总和(强直收缩):不完全强直收缩:后一收缩发生在前一收缩的舒张期完全强直收缩:后一收缩发生在前一收缩的收缩期内,各收缩不能分开,肌肉维持稳定的收缩状态。
✧神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定⏹神经干是由许多神经纤维组成的,神经兴奋的标志是动作电位。
在一定范围内神经干动作电位的幅度随刺激强度的增加而增大,这是由于各神经纤维兴奋性的不同,虽然每条纤维动作电位产生都遵守“全或无”的方式,但神经干动作电位记录到的是多个兴奋阈值、传导速度和振幅各不相同的动作电位的总和,为一个复合动作电位,所以不存在阈强度,也不表现为“全或无”的特征。
根据引导方法的不同(双极引导或单极引导),可分别得到双相、单相动作电位。
⏹动作电位在神经纤维上的传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维其传导速度各不相同,主要取决于神经纤维的直径、有无髓鞘、环境温度等因素。
蛙类坐骨神经干传导是速度约为35-40 m/S, 神经纤维在一次兴奋过程中,其兴奋性可发生周期性变化,包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。
⏹为了测定神经一次兴奋之后兴奋性的变化,可先给神经施加一个条件性刺激,引起神经兴奋,然后再用一个检验性刺激在前一兴奋过程的不同时相给予刺激,检查神经对检验性刺激反应的兴奋阈值,以及所引起的动作电位的幅度变化,来判断神经组织兴奋性的变化。
神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定

正 常 水
峰电后位去极后化超极化
平
兴 奋 性
0 ab c d
e
时间
阈电位
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
AP的记录方法——细胞膜内记录法
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
AP的记录方法——细胞膜外记录法
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
3.系统调试与项目观察
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
(1)神经干双相动作电位的引导
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
阈刺激
最大刺激
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
潜 伏 期
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
神经干动作电位是一种复合动作电位,幅 度在一定阈范刺围激内可随最刺大激刺强激度的增加而增大。
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
实验7.2 神经干动作电位的引导、传 导速度及不应期的测定
【实验目的】
观察蟾蜍坐骨神经干的动作电位,比较神经干与单根神 经纤维动作电位的区别;
了解神经干动作电位的特点。
制备坐骨神经干标本实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt141破坏脑脊髓实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt152剪除躯干上部及内脏实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt163后肢剥皮实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt174清洗5分离左右后肢实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt186游离坐骨神经实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt197制备坐骨神经干标本实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt208清理标本实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt21实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt22实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt231神经干双相动作电位的引导实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt24阈刺激最大刺激实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt25实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt26实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt273神经干不应期的测定实验72神经干动作电位的引导传导速度及不应期的测定医学课件ppt28实验结果将保存过的文件依次打开将理想的图形剪辑至剪贴板整理并打印输出并粘贴于实验报告
实验一 神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定

实验一神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定神经干动作电位、传导速度及不应期的测定【目的和原理】神经纤维的兴奋表现为动作电位的产生和传导,神经纤维上传导的动作电位通常称为神经冲动。
在神经细胞外表面,已兴奋部位带“负电”,未兴奋部位带“正电”,用引导电极引导出此电位差,输入到示波器,则可记录到动作电位的波形。
本实验用细胞外记录法,可引导出坐骨神经的复合动作电位。
神经纤维兴奋的标志是产生一个可以传导的动作电位,它依局部电流或跳跃传导的方式沿神经纤维传导。
其传导速度取决于神经纤维的直径、内阻、有无髓鞘等因素,可用电生理学方法来记录和测量。
神经纤维在一次兴奋过程中,其兴奋性可发生周期性变化,包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。
本实验主要目的是学习电生理仪器的使用方法,掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。
掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法,通过调整条件刺激和测试刺激之间的时间间隔,来测定坐骨神经干的绝对不应期。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验器材和药品】蛙类手术器械一套、电子刺激器、示波器(或计算机实时分析系统)、神经屏蔽盒、任氏液。
【实验步骤】1(制备坐骨神经——胫、腓神经标本操作方法详见3(8。
2(连接装置(见图8-1-1)。
3(准备仪器:(1)刺激器:调节刺激器各项参数:刺激方式连续刺激,频率16Hz,刺激强度0.5v,波宽0.1ms。
调节延迟使动作电位的图像位于示波器荧光屏的中央。
(2)示波器:灵敏度:1,2mv/cm,扫描速度:1,2ms/cm,引导电极输入到示波器的“AC”端,双边输入,刺激器的“同步输出”接示波器“外触发输入”,触发选择设置为“同步触发”。
4(观察项目:屏蔽盒S1 S2 R1 R2 R3 R4N输出上线下线刺示激波器器图8-1-1 神经干动作电位引导装置图(1)测量单、双相动作电位的潜伏期、时程和振幅,填入下表:时程振幅潜伏期动作电位格毫秒格毫伏格毫秒第一相双相动作电位第二相(2)测算动作电位的传导速度:V=S/?t (米/秒)式中:S为R1到R3的神经干长度,以米为单位。
【实验报告】骨骼肌的单收缩与复合收缩及神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定

实验二:骨骼肌的单收缩与复合收缩及神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定实验人:同组人:【实验目的】✧了解肌肉收缩过程的时相变化✧观察刺激强度和频率对骨骼肌收缩形式的影响✧掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。
✧掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法。
【实验原理】✧骨骼肌的单收缩与复合收缩肌肉兴奋的外在表现是收缩。
当其受到一个阈上强度的刺激时,爆发一次动作电位,迅速发生一次收缩反应,叫单收缩。
单收缩曲线分为潜伏期、收缩期、舒张期三个时期。
在一定范围内,肌肉收缩的幅度随刺激强度的增加而增大。
当相继受到两个以上同等强度的阈上刺激时,因频率不同,下一次刺激可能落在前一刺激所引起的单收缩的不同时期内,造成:✓几个分离的单收缩:频率低于单收缩频率,间隔大于单收缩时间✓收缩的总和(强直收缩):不完全强直收缩:后一收缩发生在前一收缩的舒张期完全强直收缩:后一收缩发生在前一收缩的收缩期内,各收缩不能分开,肌肉维持稳定的收缩状态。
✧神经干动作电位、神经冲动传导速度、神经干不应期的测定⏹神经干是由许多神经纤维组成的,神经兴奋的标志是动作电位。
在一定范围内神经干动作电位的幅度随刺激强度的增加而增大,这是由于各神经纤维兴奋性的不同,虽然每条纤维动作电位产生都遵守“全或无”的方式,但神经干动作电位记录到的是多个兴奋阈值、传导速度和振幅各不相同的动作电位的总和,为一个复合动作电位,所以不存在阈强度,也不表现为“全或无”的特征。
根据引导方法的不同(双极引导或单极引导),可分别得到双相、单相动作电位。
⏹动作电位在神经纤维上的传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维其传导速度各不相同,主要取决于神经纤维的直径、有无髓鞘、环境温度等因素。
蛙类坐骨神经干传导是速度约为35-40 m/S, 神经纤维在一次兴奋过程中,其兴奋性可发生周期性变化,包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。
⏹为了测定神经一次兴奋之后兴奋性的变化,可先给神经施加一个条件性刺激,引起神经兴奋,然后再用一个检验性刺激在前一兴奋过程的不同时相给予刺激,检查神经对检验性刺激反应的兴奋阈值,以及所引起的动作电位的幅度变化,来判断神经组织兴奋性的变化。
3.神经干动作电位与不应期的测定2013-09 (2)

神经干动作电位与不应期的测定实验人:张优学号:13941202 实验日期:2013年9月25日一.实验目的1. 记录与观察蛙坐骨神经干动作电位,了解其产生机制。
2. 测定神经干不应期和阈值。
二.实验原理1.刺激是指能引起细胞兴奋的内外环境理化因素的改变。
这种变化一般应是相当快的,能被细胞所感受的,才能构成所谓的刺激。
刺激条件包括刺激的强度、强度的变化率和刺激持续的时间,常称为刺激的三要素。
2.刺激强度、刺激持继时间和刺激的强度-时间变化率,量化后均应达到某一临界值,才能成为有效的刺激而引起组织细胞兴奋,产生功能活动。
构成有效刺激的三个条件又具有“此消彼长”的相互关系。
3.阈值:刺激持续时间和(强度-时间)变化率固定时,引起组织兴奋所需的最小刺激强度。
(三要素组合构成的有效刺激的最小值)阈刺激:强度等于阈值的刺激。
阈下刺激:强度小于阈值的刺激。
阈上刺激:强度大于阈值的刺激。
4.在峰电位期间,由于大多数钠通道处于失活状态,不可能再接受任何新的刺激而出现新的峰电位,这一时期称为绝对不应期。
绝对不应期之后为相对不应期,标志着一些失活的钠通道已开始恢复,这时只有那些较正常更强的刺激才能引起新的兴奋。
5.实验仪器及试剂刺激伪迹主要由于刺激电极与引导电极之间的电阻性与电容性成分的联系而形成。
电阻性成分包括两条途径,一是刺激电极与放大器的引导电极都有一个公共接地点,刺激电极间的电流也可分流一部分经引导电极进入地线,因而在引导电极与地线之间增加了一个额外的电压降,形成刺激伪迹。
三.实验仪器与试剂1.实验仪器实验台、剪刀、探针、培养皿、吸管、蛙板、玻璃针、细线、RM6240多道生理信号采集系统2.试剂任氏液四.实验材料活青蛙一只五.方法与步骤1.解剖获得青蛙坐骨神经(1)处死青蛙将蛙抓在手中,用食指将其头部压向下方,使其头部与躯干约40°角。
将探针在枕骨大孔处垂直插入,先是左右摆动探针以横断脑和脊髓的联系,再将探针向前方插入颅腔,旋转并摆动探针以捣毁蟾蜍的脑组织。
实验一神经干不应期及神经冲动传导

两对引导电 极间距离应 尽可能大。
用刚能使神 经干产生最 大动作电位 的最大刺激 强度刺激神 经。
01
02
03
04
05
06
1
盖上神经盒的盒盖,并接 地,防止干扰。
2
在观察双相动作电位时, 如果第二相动作电位波幅 太小,可将两个刺激电极 的距离保持在最小,但不 能碰在一起,引导电极2 与 刺激电极的距离保持 在2 cm左右,逐渐加大 引导电极2与正负极之间 的距离,则第二相动作电 位的振幅可逐渐增大。
神经细胞的动作电位是以“全或无”方式发生的。坐骨神经 干是由很多不同类型的神经纤维组成的,所以,神经干的动 作电位是复合动作电位。复合动作电位的幅值在一定刺激强 度下是随刺激强度的变化而变化的。
神经干不应期的测定原理 神经在一次兴奋的过程中,其兴奋性也发生一个周期性的变化, 而后才恢复正常。兴奋性的周期变化,依次包括绝对不应期、相 对不应期、超常期和低常期4个时期。为了测定坐骨神经在一次 兴奋后兴奋性的周期变化,首先要给神经施加一个条件刺激(S1) 引起神经兴奋,然后再用一个测试性刺激(S2),在前一兴奋过 程的不同时相给以刺激,用以检查神经阈值以及所引起的动作电 位的幅值,以判定神经兴奋性的变化。当刺激间隔时间长于 25ms时,S1和S2分别所引起动作电位的幅值大小基本形同。当 S2距离S1接近20ms左右时,发现S2 所引起的第二个动作电位 幅值开始减小。在逐渐使S2 向S1 靠近,第二个动作电位的幅值 则继续减小。最后可因S2落在第一个动作电位的绝对不应期内而 完全消失。
08
蒸馏水加至(ml) 1000
成份
浓度(%) 任氏溶液 乐氏溶液 台氏溶液
氯化钠(NaCl) 20 32.5毫升 45.6毫升 40.0毫升
实验一_神经干动作电位的引导及其传导速度和不应期的测定

一目的要求:1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握蛙类坐骨神经干标本的制备方法。
3.学习电生理学实验方法。
4.观察蟾蜍坐骨神经干复合动作电位的波形,了解其产生的基本原理。
二基本原理:神经干在受到有效刺激后,可以产生动作电位,标志着神经发生兴奋。
如果在神经干另一端引导传来的兴奋冲动,可以引导出双相的动作电位,如在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏,则引导出的动作电位即为单相向动作电位。
神经细胞的动作位是以”全或无”方式发生的。
坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的,所以,神经干的动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的变化而变化的。
三动物与器材:蟾蜍、常用手术器械(手术剪、手术镊、金冠剪、眼科剪、毁髓针和玻璃分针)、蛙板、固定针、不锈钢盘、污物缸、粗棉线、任氏液、计算机生理信号处理系统、神经屏蔽盒。
四方法步骤:1.蟾蜍的单毁髓与双毁髓一手握住蛙或蟾蜍(可用纱布包裹蟾蜍躯干部),背部向上。
用拇指压住蛙或蟾蜍的背部,食指按压其头部前端,使头端向下低垂; 另一手持毁髄针,由两眼之间沿中线向后触划,当触及到两耳中间的凹陷处(此处与两眼的联机成等边三角形)时,持针手即感觉针尖下陷,此处即是枕骨大孔的位置。
将毁髄针由凹陷处垂直刺入,即可进入枕骨大孔(图t-1)。
然后将针尖向前刺入颅腔,在颅腔内搅动,以捣毁脑组织。
如毁髄针确在颅腔内,实验者可感到针尖触及颅骨。
此时的动物为单毁髓动物。
再将毁髓针退至枕骨大孔,针尖转冋后方,与脊柱平行刺入椎管,以捣毁脊髓。
彻底捣毁脊髓时,可看到动物的后肢突然蹬直,而后瘫痪如棉(图t-2),此时的动物为双毁髓动物。
如动物仍表现肢肌肉紧张或活动自如,必须重新毁髓。
操作过程中应注意使蟾蜍头部向外侧(不要挤压耳后腺),防止耳后腺分泌物射入实验者眼内(如被射入,则需立即手生理盐水冲洗眼睛)。
2.坐骨神经干标本制备(1) 剥制后肢标本(图t-3)(2) 分离两后肢(图t-4)(3) 分离坐骨神经(图t-5)3.测定:阈刺激、最大刺激,打印不同刺激引起的动作电位重叠显示波形。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
●实验题目神经干动作电位不应期的定量分析●实验目的1、熟练掌握常规坐骨神经干标本的制备2、理解并掌握确定神经干动作电位最适刺激强度的方法3、理解并掌握神经干动作电位不应期定量分析的实验设计原理4、理解并掌握神经干动作电位不应期定量分析的数据采集方案及数据的处理分析流程5、较准确获得神经干动作电位不应期的真正定量分析结果●实验仪器1、蛙类常用手术器械和相关物品一套:包括大方盘,蛙板,粗剪刀,眼科剪,止血钳,小镊子,有齿镊子,毁髓针,玻璃分针,锌铜弓;肾形盘,培养皿,滴管,槽钉,尺子,丝线;小饭盆,小烧杯;任氏液,手套等。
(图1 和图2)图1. 神经干动作电位不应期的定量分析实验场景全景图图2. 神经干动作电位不应期的定量分析之手术器械和相关物品实物图2、神经干标本屏蔽盒:至少包括5根电极,具体为刺激电极两根S1(+)和S2(-),接地电极一根E, 记录电极两根R1(记录电极)和R2 (参比电极)。
(图3)图3. 神经干标本屏蔽盒电极连接示意图(左)和实物图(右):S1为刺激电极正极,S2为刺激电极负极,E为接地电极,R1为记录电极,R2为参比电极,Ch1表示信号输入的第一通道。
3、多媒体电脑一套:普通配置即可4、生物机能实验系统一套(本实验设计使用的是BL-420F):包括软件系统和输入输出盒,前者安装于电脑中,后者含电源线、与电脑连接的USB线、与神经标本盒的信号连接线(一端可与生物机能实验系统的输入通道孔相接;另一端与神经标本盒的电极相接, 共有三个接头:外包屏蔽网和地线接头(黑色接头),中间是信号输入的正负极两根导线和两个接头(白色和红色接头),分别与两根记录电极R1和R2相接)和刺激线(一端可与生物机能实验系统的刺激输出孔相接;另一端共有两个接头,分正负极,可与神经标本盒的刺激电极S1和S2相接,靠近记录电极一侧为负极)各一根。
(图4)图4. 神经标本盒与生物机能实验系统的连接实物图5、Office软件一套: 2003版或更高版本,其中的EXCEL可启用宏编程功能。
实验动物(描述手术过程)青蛙(或蟾蜍)一只,按常规方法制备坐骨神经干标本,简要过程如下:1、动物抓拿与清洗(在水龙头下进行清洗,可用纱布包裹上肢以下躯干部位,有利于抓拿时防滑);2、找准枕骨大孔(图5)并将毁髓探针刺入椎管(可用食指控制毁髓探针刺入深度,防止穿过椎骨);图5. 蛙枕骨大孔位置示意图3、横断脑和脊髓连接处(探针尖端轻贴椎管腔腹侧,左右划几下即可);4、捣毁脑(探针在椎管内向头端伸入颅腔反复搅动几下即可);5、捣毁脊髓(探针在椎管内向尾端伸入椎管腔反复搅动几下即可;一般可见蛙的两个后肢突然完全绷直,之后完全松软,此为毁髓成功的典型标志);6、髂关节以上约1cm处剪断脊柱(抓握两个后肢,用粗剪刀适当用力剪断);7、去除上部躯干和内脏(抓握两个后肢,利用重力使上部躯干和内脏自然下垂,用粗剪刀剪去,注意不要伤到腹腔段的坐骨神经);8、剥去下肢皮肤(一手用止血钳避开皮肤横向夹住脊柱断端边缘;另一手则用有齿镊或纱布辅助抓住皮肤断端;双手上下反向适当用力,可褪去下肢皮肤);9、剪去尾杆骨(用粗剪刀贴着骨头剪,方便下一步一分为二的操作);10、将余下的标本分成左右两半(用粗剪刀中间剪开,可分成左右两半,后续可制备成两个坐骨神经干标本);11、腹腔段神经束的游离(用玻璃分针顺着神经的走向划开筋膜和结缔组织,并使神经与血管及结缔组织分开)和结扎(用丝线和镊子在离神经干发出的根部约0.3cm处将坐骨神经干的主干结扎在一起,只保留两个小线头便于后续可用镊子夹取神经干标本即可);12、大腿段神经束的游离并与腹腔段贯通(用玻璃分针顺着神经干的走向分离,用眼科剪小心剪去神经干的无用分支及横在神经干上方的筋膜和小肌肉如梨状肌等);13、膝关节处神经束的结扎(本实验的神经干标本有5-6cm长即够用,可不用分离至踝关节处);14、在两个结外侧剪断神经干,完成标本制备;15、完成的神经干标本放任氏液中浸泡约20分钟后可进行实验记录。
实验操作步骤包括1实验仪器装置的连接,2实验数据的采集和储存,3实验数据的处理分析,4典型实验结果的呈现,共四部分,分述如下:1、实验仪器装置的连接:参见上述图1、3和4及其说明。
其中,S1接刺激输出正极;S2接刺激输出负极;E接生物机能实验系统第一通道输入线地线;R1和R2接生物机能实验系统第一通道输入线的记录电极(白色)和参比电极(红色)。
2、实验数据采集和储存:(1)实验1:刺激强度与坐骨神经干动作电位的关系记录系统基本设置建议为:程控单刺激,波宽0.05ms,刺激强度从0V开始,逐次增加刺激幅度0.05V;实验中观察到神经干动作电位波形保持稳定,不再随刺激强度的增大而变化时即可停止实验记录。
反演所记录的实验数据(实验1的结果可称为“结果1”,其原始记录文件可命名为“1_20170615_01.tme”;表示“2017年6月15日所记录到的第1套实验结果中的第01个文件”),通过刺激强度和双相动作电位负波(向上的波)幅度的关系,可大概确定该标本的最适刺激强度(如1.6V)(参见下文和图9)。
(2)实验2:单刺激所触发的神经干动作电位波形(AP1) 记录以“实验1”的结果为依据,可确定后续实验的刺激强度(如为2V,保证神经干中所有能兴奋的神经纤维都被激活)。
系统基本设置建议为:程控单刺激,波宽0.05ms,单刺激的强度固定于最适强度以上刺激(如2V),重复10次或10次以上。
实验2的结果可称为“结果2”,其原始数据文件命名与实验1统一(如“结果2”的原始记录文件可命名为“1_20170615_02.tme”;表示“2017年6月15日所记录到的第1套实验结果中的第02个文件”)。
结果的处理和分析参见下文,由此可得到单刺激所触发的神经干动作电位平均波形(AP1)。
(3)实验3:不同时间间隔的双刺激所触发的系列神经干动作电位波形(APall)记录每一次双刺激触发的两个动作电位波形称为一个APall波形。
系统基本设置建议为:程控双刺激,双刺激的两个刺激强度及持续时间均与实验2的单刺激的强度及持续时间相同(如强度均为2V,波宽均为0.05ms);双刺激的两个刺激之间的时间间隔从较大逐次减小到0ms,由程序自动控制;建议起始间隔20ms 或更长, 逐次减小0.5ms (或更小,如0.2 ms;减量越小,最终得到的结果越越精确,但数据的处理和分析的工作量也成倍增加),最终减小到0ms。
实验3的结果可称为“结果3”,其原始数据文件命名与实验1和2统一(如“结果3”的原始记录文件可命名为“1_20170615_03.tme”;表示“2017年6月15日所记录到的第1套实验结果中的第03个文件”)。
APall波形的处理分析详见下文。
注:上述原始数据文件均存于指定目录中,如“\01OriData\control\”中。
3、实验数据的处理分析:这是本实验设计的重要特色、难点和关键所在。
此部分已专门采用EXCEL VBA编程辅助形成实用的操作流程,大致可按如下步骤进行:(1)有效数据的截取:在生物机能实验系统中反演所获得的结果数据,截取其中的有效数据,并重新命名。
如“1_20170615_02.tme”经截取后的有效数据可命名为“1_20170615_02cut.tme”;1_20170615_03.tme”经截取后的有效数据可命名为“1_20170615_03cut.tme”。
上述截取后的有效数据文件均存于指定目录(如“\01OriData\control\”)中。
(2)数据的简单测量和记录:在生物机能实验系统中反演所截取的有效数据,粗略测出第一个动作电位起点所对应的时间点并记录于预先设计好的EXCEL表格中(图6~8)。
图6. 结果2(“1_20170615_02cut.tme”)数据的简单测量图7. 结果3(“1_20170615_03cut.tme”)数据的简单测量图8. 简单测量的数据分别记录于预先设计好的EXCEL表格的相应单元格中(如图中虚线框所示单元格)。
为处理本实验项目的数据,需设计一系列的复杂表格。
上图只是其中的一个小局部。
(3)数据的导出:将截取后的有效数据从生物机能实验系统中分别导出为文本文件(*.txt),如“1_20170615_02cut.tme”可导出为“1_20170615_02cut.txt”,“1_20170615_03cut.tme”可导出为“1_20170615_03cut.txt”。
导出的文件存于指定目录(如“\02Txt\control\”)中。
(4)数据的导入和截分:将*.txt文件分别导入预先设计好的EXCEL表格中,以上述简单测量的数据和神经干动作电位的波形特点为基础,设计相应算法,编制相应程序,对连续记录的神经干动作电位数据按刺激开始的时间对齐并进行截分,使各次刺激所获得的动作电位波形数据相对独立且在时间上一一对应,从而便于后续对动作电位数据进行各种运算。
(从这一步开始的数据处理和分析都可由预先编好的EXCEL VBA程序自动完成)(5)AP1波形和数据的重构:单刺激所触发的神经干动作电位平均波形(AP1)可由多次记录的由单刺激所触发的神经干动作电位波形(结果2数据)叠加平均而得到(参见下文图10C)。
(6)APall波形和数据的重构:APall为不同时间间隔的双刺激所触发的系列神经干动作电位波形(结果3)(原始记录图如图11所示),导入截分后重构的系列波形如图12左列所示。
(7)APall波形和数据的拆分并获得AP2波形:APall波形和数据的拆分是指从APall中去除双刺激中第一个刺激所触发的第一个动作电位波形AP1(图12中列)得到双刺激中第二个刺激所触发的第二个动作电位波形AP2的过程。
在上述(1)到(6)操作的基础上,逐一将每一个APall的数据减去AP1数据,即可得到双刺激中第二个刺激所触发的第二个动作电位的系列波形AP2数据,并在EXCEL表格中重构出所有AP2波形(图12右列)。
(8)AP2数据的处理及神经干动作位不应期的定量分析结果:测出AP1和所有AP2波形的幅度,计算AP2/AP1的系列比值,并作第二个动作电位幅度(AP2)与第一个动作电位幅度(AP1)的比值(AP2/AP1)和对应的双刺激间隔时间(t interval)的关系曲线(可简称为“AP2/AP1- t interval”曲线),通过曲线(该曲线呈长尾S型)可求得较准确的临界双刺激时间间隔(所谓“相对不应期”和“绝对不应期”)。
(图13)上述实验数据的处理和分析过程中,除(1)到(3)三步需手工完成外,其余各步可利用EXCEL中的VBA编程功能自动完成。