免疫学实验教案

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免疫学实验教案

研究生教育实习

潘熙萍(Y20090201)

2011/1/14

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实验一免疫血清的制备

一、实验目的

熟悉免疫血清的制备过程；

了解动物实验的基本知识。

二、实验原理

将抗原物质经适当途径，按照预先制定的免疫方案免疫动物，经过一定时间，可刺激机体产生特异抗体并释放入血液，当血中抗体达到一定效价时采血，分离血清，即为特异性免疫血清（又称为抗血清）。因抗原具有多种表位，可激活多个克隆的B细胞活化产生抗体，因此，这种免疫血清又称为多克隆抗体。

本实验以绵羊红细胞（SRBC）作为免疫原，以家兔为免疫动物，制备兔抗养红细胞免疫血清（也称为溶血素）

三、器材和材料

1.动物健康成年家兔，雄性，体重2-3kg；健康成年绵羊。

2.试剂生理盐水、碘酒、75%酒精。

3.器材剪刀、镊子、无菌注射器、量筒、无菌毛细滴管、无菌试管、离

心管、三角烧瓶（200ml）、动物固定架、手术器械一套、塑料放血管等。

四、实验步骤

1.抗原制备

（1）用碘酒和75% 消毒绵羊皮肤，抽取颈静脉血液，注入含有等量阿氏液的三角烧瓶内，混匀。阿氏液既有抗凝作用，又适于储存SRBC。分装后置4℃冰箱内，可使用3周。

（2）无菌取上述绵羊血于离心管中，用无菌生理盐水洗涤红细胞，2000r/min，离心5min，吸弃上清液和白细胞层，再用无菌生理盐水与SRBC混匀， 2000r/min，离心5min，重复3次。最后一次离心10min，以使血细胞沉积于管底，弃去上清液。

（3）根据红细胞积压，用生理盐水配成20%SRBC悬液。

2.免疫动物

（1）全班分为4组，每组选择健康雄性兔1只，用于免疫。

（2）用全血和SRBC悬液按下述方案免疫兔子。

（3）试血

末次注射后第7天，耳静脉采血1ml ,分离血清，用试管凝集试验滴定效价。（1：2000以上可用）

3、分离血清

（1）颈动脉放血（心脏采血）并收集于无菌三角烧瓶中凝固后4℃冰箱过夜，分离上层血清。然后2500r/min离心10min，收集收集上层血清。

（2）收集的血清经鉴定纯化后，小量分装，-20℃冻存。

五、实验结果

收获的血清应无菌，且无溶血现象。兔抗SRBC免疫血清的溶血效价应高于1：2000；兔抗人IgG免疫血清的效价应高于1：16。

六、注意事项

抗原制备、免疫动物及采集血清等过程应注意菌操作；

免疫的途径、次数、间隔时间因抗原性状不同而异，应合理设计免疫方案，并更具

具体情况加以调整；

再次注射免疫原时，要防治过敏反应发生。

实验二免疫细胞的形态观察

一、实验目的

掌握微量采血及血涂片的制作方法；

学习使用光学显微镜观察免疫细胞

二、实验原理

血涂片是临床化验中最常规的技术，也是血液学研究中的最基本技术。将血液样品制成单层细胞的涂片标本，经瑞氏（Wright）染液染色后，不同免疫细胞中的颗粒可以呈现不同的颜色。根据细胞中颗粒的颜色、大小及多少，再结合细胞的大小及细胞核的形态，就可以将免疫细胞进行分类计数。

三、器材和材料

器材：医用一次性采血针、酒精棉球、镊子、经脱脂洗净的载玻片等

试剂：瑞氏（Wright）染液，瑞特氏染料0.1克溶于60ml甲醇中，过滤。

贮褐色瓶中备用。（配置时，要先将瑞特氏染料置研钵体内边研边滴加甲醇，使染料溶液得更好。）

四、实验步骤

1．采血

动物采血时先将耳部剪毛，酒精消毒后，刺破动物耳部皮肤，挤去第一滴血不要。

2．涂片

挤出第二滴血置于载玻片的一端，再取另一张边缘光滑的载玻片，斜置于血涂片的前缘，先向后稍移动轻轻触及血滴，使血液沿玻片端展开成线状，两玻片的角度以30~40O为宜（角度过大血膜较厚，角度小则血膜薄），轻轻将载玻片向前推进，即涂成血液薄膜（如图），推进时速度要一致，否则血膜成波浪形，厚薄不匀。

3．染色

待涂片在空气中完全干燥后，滴加数滴瑞氏染液盖满血膜为止，染色1~3min。

然后滴加等量的缓冲液（pH6.4）或蒸馏水冲去染液，吸水纸吸干，镜检。

4．封片

经染色的涂片完全干燥后，用中性树胶封片保存。

5．观察

分别用低倍、高倍和油镜观察血涂片，分辨不同的血细胞类型。

五、实验结果

画出血细胞的形态，标出并分析比较各种免疫细胞类型和形态特征。

实验三大鼠外周血单个核细胞的分离

一、实验目的

掌握鼠外周血单个核细胞的分离的原理及操作方法。

二、实验原理

血液中各有形成分的比重存在差异，利用比重为1.077、近于等渗的ficoll-hypaque混合溶液（又称淋巴细胞分层液）作密度梯度离心时，各种血液成分将按密度梯度重新聚集。血浆和血小板由于密度较低，故悬浮于分层液的上部；红细胞与粒细胞由于密度较大，故沉于分层液的底部；

PBMC密度稍低于分层液，故位于分层液界面上，这样就可获得PBMC。三、器材和材料

刻度离心管、吸管、试管、毛细吸管、橡皮乳头、载玻片、盖玻片、离心机等，pH7.2 Hanks液、肝素、生理盐水溶液，淋巴细胞分层液。

四、实验步骤

1．抽取静脉取血2ml，注入含0，1mL肝素溶液的无菌试管中混匀，使血液抗凝。用pH7.2 Hanks液将抗凝血稀释1倍。

2．离心管：3mLficoll-hypaque分离液，加入4mL稀释血液（缓慢）加至分离液上面，应注意保持两者界面清晰。

3．用水平离心机以2000r/min离心20min。

4．吸出单个核细胞转移入另一支离心管中，加4倍以上的Hanks液洗涤,混匀，1500r/min，弃上清，加入Hanks液洗涤细胞2次。

5．最后一次洗涤手,用Hanks溶液将细胞悬液还原至2mL，取样计数。

6．取2滴细胞悬液将2滴0.4%台盼蓝溶液混匀，静止5min后，取样做湿片镜检，活细胞无色，死细胞蓝色。

7. 细胞计数

五、注意事项

1、实验所用玻璃器皿应该洁净。如果制备的单个核细胞悬液用于细胞培养时，上述操作过程都要在无菌条件下进行，所用器材、试剂都应为无菌。

2、实验中的细胞得率与室温及分层液比重等有关。分层液应避光4℃保存。