稳定碳同位素在滨海湿地碳生物地球化学循环中的应用
稳定同位素技术在生态科学研究中的应用

稳定同位素技术在生态科学研究中的应用稳定同位素技术是一种先进的分析技术,其应用范围非常广泛,包括医学、环境科学、生态学等。
其中,生态学是一个非常热门的研究领域,稳定同位素技术在其中的应用越来越受到重视。
本文将介绍稳定同位素技术在生态科学研究中的应用。
一、稳定同位素技术的基本原理稳定同位素技术的原理是利用同位素的物理性质进行对比分析。
同种元素的不同同位素具有不同的质量数,因此在化学反应中其代表的物理参数也会有所不同。
在这里,我们以碳同位素为例进行介绍。
碳元素的三种同位素分别是12C、13C、14C,其中12C和14C 为稳定同位素,而13C为非稳定同位素。
在自然界中,12C的比例最高,13C的比例稍低,而14C的比例非常低。
当有机物质参与化学反应时,不同碳同位素的比例也会随之变化。
利用稳定同位素技术,我们可以通过测量不同碳同位素的比例来推断有机物质的来源、代谢途径等信息。
二、 1. 食物链研究稳定同位素技术可以用来研究食物链的物质传递。
不同生物体之间的碳同位素比例存在差异,因此可以通过测量同一食物链中不同生物体中碳同位素比例的变化来揭示物质传递的规律。
例如,通过测量草地生态系统中不同植物、土壤、昆虫、鸟类等生物体的碳同位素比例,可以了解不同生物体的食物释放源、食物选择行为等信息。
2. 水循环研究稳定同位素技术可以用来研究水循环的过程。
水分子中的氢原子存在两种同位素,分别是普通氢(1H)和重氢(2H)。
稳定同位素技术可以通过测量水中两种氢同位素的比例来揭示水循环的过程。
例如,在气候变化研究中,可以通过测量降水中重氢的含量来了解水循环的速度、路径等信息。
3. 氮循环研究稳定同位素技术可以用来研究氮循环的过程。
氮分子中存在两种同位素,分别是14N和15N。
在自然界中,14N的比例远高于15N。
稳定同位素技术可以通过测量不同生物体或环境中14N和15N的比例来揭示氮循环的过程。
例如,在土壤氮循环研究中,可以通过测量不同生物体、土壤、水体中15N的比例来了解氮转化的速度、途径等信息。
同位素示踪技术在环境科学中的碳循环解析

同位素示踪技术在环境科学中的碳循环解析随着全球环境问题的日益突出,环境科学的发展成为当今最重要的研究领域之一。
其中,碳循环作为全球气候变化研究的核心,对了解地球系统的动态变化具有重要意义。
同位素示踪技术作为一种精确而灵敏的分析工具,日益被应用于环境科学中的碳循环解析,为我们深入了解碳循环机制和评估人类活动对环境影响提供了重要的手段。
首先,我们需要了解碳循环在环境科学中的重要性。
碳循环是指地球上碳元素在不同环境介质(如大气、水体、土壤等)之间的相互转化与平衡过程。
这种平衡是复杂而脆弱的,任何外界因素的干扰都会对地球系统产生重大影响。
例如,二氧化碳是温室气体的主要成分之一,其排放和吸收的不平衡将导致全球气候变化。
因此,准确地了解碳循环的机制和过程,对于评估和预测气候变化以及环境管理具有重要意义。
同位素示踪技术作为一种用来标记物质的方法,已经被广泛应用于环境科学领域。
其中,碳同位素示踪技术是研究碳循环的重要手段之一。
碳元素有两种主要的同位素:碳-12和碳-13。
这两种同位素在自然界中的丰度比例是稳定的,但由于环境变化和生物过程的影响,不同介质中同位素丰度的比例会发生变化。
通过测量碳同位素的丰度变化,我们可以推断出碳元素的来源和转化过程。
具体来说,同位素示踪技术将标记同位素(如放射性同位素碳-14)引入环境介质中,然后测量标记同位素与自然同位素的丰度比例变化。
通过对比不同介质中同位素丰度的差异,我们可以推断出碳的运动路径和转化过程。
例如,通过测量大气中二氧化碳中碳-14的丰度,可以估算出大气中二氧化碳的存活时间和源头,从而了解大气中二氧化碳的增长机制。
类似地,同位素示踪技术还可以揭示碳元素在土壤中的储存和释放过程,以及海洋中的碳沉积和迁移等。
同位素示踪技术在环境科学中的应用具有广泛的研究领域。
首先,它可以帮助我们了解全球碳循环过程。
通过对不同环境介质中同位素丰度的测量,可以追踪碳元素在大气、水体和陆地之间的相互转化和平衡过程。
滨海不同生境湿地土壤有机碳官能团特征与其影响因子

《应用与环境生物学报》Chin J Appl Environ Biol Doi: 10.19675/ki.1006-687x.2020.11047滨海不同生境湿地土壤有机碳官能团特征及其影响因子李召阳刘晟刘嘉元李德生刘福德**天津理工大学环境科学与安全工程学院天津300384摘要近年来,围填海等滨海湿地的开发和利用活动较为频繁,造成滨海湿地土壤有机碳储量和分布格局不断发生变化,这对正确评估滨海湿地应对人为干扰的能力及制定合理的可持续发展对策是一种挑战。
以天津、东营和昌邑滨海地区的潮上带和潮间带湿地为研究对象,采用傅里叶红外光谱法研究不同生境滨海湿地土壤有机碳官能团的组成与数量特征,并结合理化性质的变化揭示土壤有机碳官能团的影响因子。
结果显示,东营、天津和昌邑湿地土壤有机碳官能团类型大致相同,其中糖类、脂肪类、氨基酸和酚类占比较大,芳香烃、苯类和酮类占比较小。
虽然不同地点滨海湿地的土壤有机碳官能团结构大致相同,但东营与天津湿地土壤各吸收峰强度显著大于昌邑湿地(P < 0.05)。
主成分分析结果表明前2轴累计解释了79.6%的土壤有机碳官能团的变化,表明上述官能团能够反映滨海湿地土壤有机碳的分布特征。
研究同时发现东营和昌邑滨海潮间带与潮上带湿地的土壤样品区分度较高,潮上带湿地土壤中属于疏水基团的烯烃类、酮类、苯系物和芳香化合物的吸收峰强度与相对峰面积显著大于潮间带,但天津采样点距离河口较近,淡咸水的交替作用使潮间带与潮上带区分并不明显。
蒙特卡洛检验结果表明土壤总磷(P = 0.002)、有机碳(P = 0.002)、总碳(P = 0.002)、总氮(P = 0.004)、pH(P = 0.006)和盐度(P= 0.03)对土壤有机碳官能团的数量分布均有显著影响,但土壤总磷含量的解释量最高,达到了39.7%。
综上,滨海湿地土壤有机碳官能团结构不随地点和生境发生变化,但其数量特征受植被生长和土壤理化性质影响显著,各理化性质中土壤总磷含量是影响滨海湿地土壤有机碳官能团数量分布最大的驱动因子,该发现对于氮磷输入比例日益增加的河口海岸湿地及近海水域富营养化的修复与治理尤为重要。
黄河三角洲滩涂—湿地—旱地土壤团聚体有机质组分变化规律

黄河三角洲滩涂—湿地—旱地土壤团聚体有机质组分变化规律刘兴华;章海波;李远;代振飞;付传城;骆永明【摘要】土壤团聚体有机质是具有生物、化学活性的土壤有机质组分,在土壤碳库周转过程中起重要作用.以黄河三角洲滨海土壤为研究对象,分析土壤团聚体有机质组分含量及稳定性碳同位素,探讨研究区由潮滩到内陆依次分布的无植被荒地、盐生植被湿地和旱地土壤团聚体有机质分配特征、碳库稳定性及来源.结果表明:在无植被荒地—湿地—旱地过渡区,土壤有机质含量呈先增加后降低的趋势,且与大团聚体含量呈显著正相关关系.土壤团聚体有机质可以分为大(微)团聚体表面游离颗粒态有机质(fPOM)、大(微)团聚体内部结合的颗粒态有机质(iPOM)和矿物结合态有机质(mSOM).无植被荒地fPOM、iPOM(250~2000μm)和mSOM的有机碳含量较低;随着盐生植被的生长,湿地土壤中此3种颗粒态有机质的有机碳含量明显增加,最高分别达到410.0 g·kg-1、98.8 g·kg-1和18.8 g·kg-1;湿地过渡为旱地后,3种颗粒态有机质的含量逐渐趋于稳定.无植被荒地土壤颗粒态有机质(包含fPOM和iPOM)中有机碳的分配比均低于20%,盐生植被湿地中该组分分配比在41.8%~75.2%,而农业开垦后相同组分分配比均低于54%.不同土壤有机质组分的δ13C值呈fPOM<iPOM<mSOM,且具有盐生植被湿地<旱地<无植被荒地的趋势.综上,黄河三角洲无植被荒地土壤有机质总量较低,主要是以矿物结合态有机质为主的稳定碳库,且受海源有机碳影响较大;湿地植被的生长增加了有机质总量,但同时增加了活性碳库的相对比例,对环境条件的改变更为敏感;玉米和小麦耕作降低活性碳库的相对比例,增加了土壤库的稳定性.【期刊名称】《土壤学报》【年(卷),期】2019(056)002【总页数】12页(P374-385)【关键词】黄河三角洲;滨海土壤;土壤团聚体;颗粒态有机质;碳稳定性;碳源【作者】刘兴华;章海波;李远;代振飞;付传城;骆永明【作者单位】中国科学院海岸带环境过程与生态修复重点实验室(烟台海岸带研究所),山东烟台 264003;中国科学院大学,北京 100049;浙江农林大学环境与资源学院,土壤污染与生物修复重点实验室,浙江临安 311300;中国科学院海岸带环境过程与生态修复重点实验室(烟台海岸带研究所),山东烟台 264003;中国科学院海岸带环境过程与生态修复重点实验室(烟台海岸带研究所),山东烟台 264003;中国科学院大学,北京 100049;中国科学院海岸带环境过程与生态修复重点实验室(烟台海岸带研究所),山东烟台 264003;中国科学院大学,北京 100049;中国科学院海岸带环境过程与生态修复重点实验室(烟台海岸带研究所),山东烟台 264003;中国科学院大学,北京100049;中国科学院土壤环境与污染修复重点实验室(南京土壤研究所),南京210008【正文语种】中文【中图分类】S153全球土壤碳库储量约为2 500 Pg,是大气碳库的3倍,同时也是陆地生态系统最大且周转最慢的碳库[1]。
人工湿地的碳氮磷循环过程及其环境效应

人工湿地的碳氮磷循环过程及其环境效应人工湿地的碳氮磷循环过程及其环境效应引言近年来,人工湿地作为一种重要的生态工程技术,被广泛应用于水污染治理中。
人工湿地通过模拟天然湿地的生态功能,可有效去除水中的有机物质和营养盐,具有净化水体、恢复生态系统功能的重要作用。
对于人工湿地而言,碳、氮和磷元素是其中最重要的循环物质。
本文将详细介绍人工湿地的碳、氮和磷元素的循环过程和环境效应。
一、碳元素的循环过程及环境效应人工湿地中的碳元素主要来自水体中的有机物质、湿地植物的生物质和沉积物。
碳元素在湿地中会经历多环境过程,包括植物吸收、微生物分解和有机物质沉积。
首先,湿地植物通过光合作用吸收二氧化碳,并将其转化为氧气和有机物质。
这些有机物质可以被湿地植物部分利用,同时也有一部分被分泌到根际区域。
其中一部分被微生物分解为二氧化碳释放到大气中,完成碳元素的释放循环。
其次,湿地植物生物质中的有机碳会在植物死亡后沉积到沉积物中,进而形成湿地的土壤有机质。
土壤中的有机质可以通过微生物分解释放为二氧化碳,也可以沉积到更深层次的土壤中形成长期储存的碳库。
这部分碳元素的储存和释放过程会影响湿地的碳平衡和碳循环速率。
另外,湿地植物的根系和根系泌物也能促进土壤中的碳储存,从而提高湿地的碳汇能力。
对于环境效应而言,人工湿地在碳循环过程中具有显著的碳吸收和固定能力,有助于减缓全球气候变化。
此外,湿地植物的根系和沉积物中的有机质能够有效地渗透和吸附水中的有机物质和重金属,从而减少水体中碳污染物的浓度,改善水质环境。
二、氮元素的循环过程及环境效应氮元素在人工湿地中的循环过程主要包括氮固定、生物转化和氮淋洗等环境过程。
湿地植物的根系和根系附近的微生物是主要的氮转化参与者。
首先,湿地植物中的根结瘤菌能够与植物共生,通过固定大气中的氮气,将其转化为植物可吸收的氨氮。
这部分固定氮能够提供给湿地植物的生长和发育,同时也能够降低湿地中氮的浓度,减少氮的排放,达到保护水质的目的。
_15_N示踪技术在湿地氮素生物地球化学过程研究中的应用进展

收稿日期:2004-08-10;修订日期:2004-12-15基金项目:中国科学院知识创新工程重要方向项目(KZCX3-S W -332)、国家自然科学基金项目(90211003)资助。
作者简介:孙志高(1979-),男,山东烟台人,博士研究生,主要从事环境生态与生物地球化学研究。
E -mail:zhigaosun@yahoo .com.cn15N 示踪技术在湿地氮素生物地球化学过程研究中的应用进展孙志高1,2,刘景双1,于君宝1,王金达1(1.中国科学院东北地理与农业生态研究所,吉林长春13001;2.中国科学院研究生院,北京100039)摘要:稳定性同位素技术是现代生态学研究中的一门应用技术,它几乎在生态学研究的各个领域都有着广泛的应用。
其中15N 技术由于具有示踪和区分氮素物质的源与去向等优越性而在生态系统氮循环研究中发挥了极为重要的作用。
文章主要从湿地氮素的输入过程、转化过程以及归趋过程三方面综述了该技术在当前国内外湿地氮素生物地球化学过程研究中的应用进展,特别指出当前基于该技术的湿地氮素生物地球化学过程研究尚缺乏一定的系统性、深入性和广泛性。
最后,文章就该技术在湿地氮素生物地球化学过程研究中的应用前景进行了展望研究。
关 键 词:生物地球化学过程;同位素分馏;15N 示踪技术;湿地中图分类号:X142 文献标识码:A 文章编号:1000-0690(2005)06-0762-07 湿地氮素生物地球化学过程是指氮素在湿地环境中进行的各种迁移转化和能量交换过程。
它以生物过程、化学过程和物理过程为主线,主要研究湿地系统内(湿地中各种沉积物以及湿地内生物新陈代谢所进行的氮素物质交换和转化过程)和系统外(湿地与毗邻生态系统之间进行的氮素物质交换过程)两种过程[1]。
U rey 关于同位素物质热力学性质的深入研究和N ier 研制的比值质谱计为稳定同位素地球化学奠定了基础[2]。
McKin 2ney [3]等对N ier 型质谱计的改进最终使稳定性同位素成为一种行之有效的分析方法。
稳定同位素在地球科学研究中的应用

稳定同位素在地球科学研究中的应用稳定同位素是指具有相同原子序数但不同中子数的同位素,其核外电子结构和化学性质相同,但物理和化学性质不同。
稳定同位素的应用已经广泛用于地球科学研究。
下面本文将介绍稳定同位素在地球科学研究中的应用以及其作用。
1. 碳同位素的地球科学应用稳定碳同位素研究可以帮助我们了解全球碳循环和碳贮存情况。
通过研究碳在不同业界中的分布和分异,科学家可以了解到生物碳和非生物碳的来源及其分布。
这样在研究地球的气候变化、环境污染及全球碳排放等方面就有巨大的作用。
例如,元素碳存在的三种形态是有机碳、无机碳和二氧化碳。
而地球上的有机和无机碳同位素的含量差异,可以通过稳定碳同位素比对,对碳循环过程的了解卓有成效。
同时,稳定碳同位素还可以被用来区分不同种类的碳质输出物,例如煤、石油和生物质等。
2. 氢同位素的研究稳定氢同位素被应用到气液固各领域的研究中。
例如,在全球水循环中,氢同位素可以追踪、区分和分析如同位素分布与水分布之类的关系,帮助地质学家研究出水文地质学和水文地球化学领域的一些重要问题。
其次,氢同位素也可以在农业和环境科学领域中应用。
例如,氢同位素可以追踪植物生长季节中的降水量。
还可以用于跟踪农药和肥料等土地污染物质的迁移。
3. 氮同位素的应用稳定氮同位素也是地球科学研究中经常使用的技术之一。
稳定氮同位素的分布常常会影响到自然界的物种结构,如合成有机物质的生物作用、水的化学性质等。
具体来说,稳定氮同位素是用于了解地球氮循环的东西。
通过比较样本中的氮同位素,科学家可以了解氮的化学和生物过程。
氮的自然变异通常与生物和自然过程相关。
最后,通过对稳定同位素研究的整理和分析,我们可以了解到,这是与地球科学研究密切相关的研究领域。
只有充分利用稳定同位素技术,我们才有可能更好地研究地球的环境问题、了解地球上生命的演变过程,以及科学预测自然灾害等,才能够更好更全面地了解地球生存的方式和方法。
同位素示踪技术在环境科学中的碳循环解析

同位素示踪技术在环境科学中的碳循环解析概述碳循环是指在地球上,碳元素在不同的生物圈、大气圈、水圈和地球圈之间的交换过程。
了解碳循环对于全球气候变化和环境健康至关重要。
同位素示踪技术是一种广泛应用于环境科学领域的方法,通过分析特定同位素在不同环境中的含量与分布,揭示了碳循环的运动和转化机制。
本文将以同位素示踪技术在环境科学中的碳循环解析为话题,探讨其原理、应用和未来发展方向。
原理同位素是指具有相同质子数但中子数不同的元素,根据同位素在自然界中存在的丰度差异,可以利用同位素比值变化揭示碳循环过程中的运动和转化。
其中,碳同位素主要分为^12C和^13C两种,其丰度差异可通过质谱仪进行精确测定。
同时,同位素示踪技术还可以利用放射性同位素如^14C,在环境中追踪碳元素的动态变化。
应用1. 碳源解析:通过分析环境中不同来源的碳同位素比值,可以确定不同碳源在碳循环中的相对贡献,进而了解碳的来源与汇的关系。
例如,利用同位素示踪技术,研究人类活动对大气中CO2浓度的影响,识别化石燃料燃烧和生态系统呼吸等自然过程的贡献,可以提供准确的碳排放评估。
2. 消失过程解析:利用同位素示踪技术可以示踪有机碳的生物降解和无机碳的催化转化等过程。
例如,通过分析^13C同位素在土壤中的分布,研究土壤有机质的分解速率和机制,可以深入了解土壤呼吸作用对全球碳循环的影响。
3. 季节性变化研究:同位素示踪技术可以帮助科学家揭示季节性碳循环的特征和机制。
通过对季节性的植物生长和呼吸过程进行同位素分析,可以确定不同季节中植物对大气中CO2的吸收和释放情况,为气候模型提供可靠的参数。
未来发展同位素示踪技术在环境科学中的应用已取得了令人瞩目的成果,但仍有一些挑战和未解之谜需要进一步研究和探索。
以下是一些可能的未来发展方向:1. 多同位素组合:同时使用多种碳同位素进行示踪分析,可以提供更全面的碳循环信息。
比如,将^13C同位素与氧同位素(^18O和^16O)组合应用于水体中的碳循环研究,可以揭示陆地-海洋碳交换的机制。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
稳定碳同位素在滨海湿地碳生物地球化学循环中的应用*陈 菀 郗 敏 李 悦** 孔范龙 孔凡亭(青岛大学化学化工与环境学院,山东青岛266071)摘 要 碳作为滨海湿地中重要的生命元素,其生物地球化学循环过程是滨海湿地研究的核心内容之一㊂稳定同位素技术越来越多地被应用到滨海湿地碳生物地球化学循环过程的研究中,提高了其研究水平,并推动了其研究的进程㊂本文从有机物质生产㊁土壤有机质来源㊁食物链传递㊁温室气体排放以及可溶性有机碳输出5个方面,综述了滨海湿地碳生物地球化学循环过程的稳定同位素研究进展㊂通过植物及土壤δ13C 值的测定进行有机质的生产机理研究及外源追溯,通过对比各生物种群的δ13C 值分析碳在生态系统中的流动过程,通过湿地排放温室气体及可溶性有机碳δ13C 值的测定揭示影响碳输出的环境因子㊂最后,文章总结了当前研究中存在的问题,并对其研究前景进行了展望㊂关键词 生物地球化学;稳定同位素;滨海湿地;碳循环中图分类号 P597;X142 文献标识码 A 文章编号 1000-4890(2013)6-1613-07Applications of stable carbon isotope to the studies of carbon biogeochemical cycle in coast⁃al wetland :A review.CHEN Wan,XI Min,LI Yue **,KONG Fan⁃long,KONG Fan⁃ting (College of Chemical and Environmental Engineering ,Qingdao University ,Qingdao 266071,Shandong ,China ).Chinese Journal of Ecology ,2013,32(6):1613-1619.Abstract :Carbon is an important element of life,and its biogeochemical cycle is one of the core contents in the study of coastal wetland.Stable isotope technique is more and more applied in this domain,having improved the research level and promoted the research progress.This paper sum⁃marized the advances in the stable isotope research on the carbon biogeochemical cycle in coastal wetland from the aspects of organic matter production,soil organic matter traceability,transfer⁃ring process of food chain,greenhouse gases emission,and dissolved organic carbon output.The mechanisms and extraneous sources of organic matter production are investigated by the measure⁃ment of plant⁃and soil δ13C values,the carbon flow in the wetland ecosystem is analyzed through the comparison of the δ13C values of various species,and the environmental factors affecting the carbon output of wetland ecosystem are revealed via the measurement of the δ13C values of emit⁃ted greenhouse gases and dissolved organic carbon.By the end of this paper,the existing prob⁃lems and the future directions of related studies were discussed and prospected.Key words :biogeochemistry;stable isotope;coastal wetland;carbon cycle.*国家自然科学基金项目(41101080)㊁山东省自然科学基金项目(ZR2011QD009)㊁山东省高等学校科技计划项目(J12LC04)和青岛市公共领域科技支撑计划项目(12⁃1⁃3⁃71⁃nsh)资助㊂**通讯作者E⁃mail:qdenv@收稿日期:2012⁃09⁃06 接受日期:2013⁃02⁃07 生物地球化学循环是指各种化学元素在不同层次㊁不同大小的生态系统内,乃至生物圈里,沿着特定的途径从环境到生物体,又从生物体再回到环境,不断地进行着流动和循环的过程(熊汉锋和王运华,2005)㊂碳元素在湿地中的生物地球化学循环过程可以简单地描述为初级生产者进行有机物质的生产,形成生物量的积累,然后通过食物链,经微生物分解排放到大气中(王红晋等,2006)㊂通常,自然湿地分为内陆湿地和滨海湿地两大类,滨海湿地作为海陆过渡带,是一个多功能的复杂生态系统,与周边生态系统间物质交换频繁,从而滨海湿地碳生物地球化学循环过程的研究工作存在许多困难(张生态学杂志Chinese Journal of Ecology 2013,32(6):1613-1619晓龙等,2005;周俊丽,2005)㊂稳定同位素技术作为一项日渐成熟的新兴技术,在很大程度上推动了滨海湿地碳生物地球化学循环过程的研究进程㊂稳定同位素技术的应用包括两个方面:自然丰度测定和同位素示踪㊂稳定同位素在自然界中各种生物地球化学过程中产生的丰度变化是由分馏效应造成的,从而导致不同物质或同一物质内部不同部分的同位素分布不均匀,通过自然丰度的测定可以判别这种差异;稳定同位素示踪法是把富集或贫化的稳定性同位素制成所需的标记化合物作示踪剂,将其施入待检测对象,追踪标记物在生命活动中的变化规律(曹芳和毛治超,2010;林光辉,2010)㊂随着稳定同位素技术的逐步完善,稳定同位素在滨海湿地碳生物地球化学循环过程中的应用也越来越广泛(Yakir&Sternberg,2000;董子为等,2009;Sun et al.,2011)㊂本文主要从有机物质生产㊁土壤有机质来源㊁食物链传递㊁温室气体排放以及可溶性有机碳输出5个方面,概述了滨海湿地碳生物地球化学循环过程的稳定同位素研究进展,提出了研究中需考虑的几个问题,为滨海湿地碳生物地球化学循环的进一步研究提供参考㊂1 有机物质生产和土壤有机质来源的稳定同位素1.1 有机物质生产滨海湿地进行有机物质生产的初级生产者即具有光合作用能力的植物㊂CO2通过植物光合作用转化为自身的生物量而进入滨海湿地生态系统中,最终达到固碳的目的(Bondavalli et al.,2000;郭雪莲等,2007)㊂滨海湿地有机质生产的稳定同位素研究主要集中于植物光合作用过程中的稳定碳同位素分馏效应的研究㊂不同光合作用类型植物的稳定碳同位素分馏效应不同,从而植物体内δ13C值不同㊂由于不同的光合途径,C4植物吸收的CO2效率较高,所以其体内13C同位素含量较C3植物更高一些(沙晨燕等, 2011)㊂一般陆生C3植物的δ13C值范围在-23‰~ -34‰,C4植物的δ13C值范围在-9‰~-17‰,CAM 植物的δ13C值处于二者之间(郑永飞和陈江峰, 2000)㊂滨海湿地植物的δ13C值基本在上述范围之内㊂王伟伟(2011)对长江口潮滩湿地植物调查发现,该区C3植物的δ13C值范围是-24.3‰~ -30.0‰,C4植物的δ13C值范围是-12.3‰~-14.6‰,包括浮游植物与底栖藻类在内的藻类植物的δ13C值范围是-15.7%~-22.8‰㊂Cloern等(2002)对旧金山海湾盐沼湿地的868种水生和陆生植物进行了调查,发现C4盐沼植物的δ13C值为-12.8‰~-17.7‰,C3盐沼植物的δ13C值为-22.1‰~-31.3‰㊂滨海湿地生态系统具有高度多样性,不同种类的植物交替生长,测定植物的δ13C 值有助于调查滨海湿地中的植被类型,这对于研究滨海湿地区域碳输入及生态系统的碳库组成具有重要的意义㊂丁喜贵等(2011)在2006 2009年对黄河三角洲的植被进行了稳定碳同位素调查,发现该研究区生态系统以喜湿的C3植被类型为主,同时也生长少量的C4植物㊂薛博(2007)对漳江口红树林湿地的主要优势植物进行了δ13C值测定,结果显示,该湿地内3种主要红树林植物秋茄㊁白骨壤和桐花树叶片δ13C平均值分别为-29.50‰㊁-29.97‰和-29.98‰,是典型的C3植物㊂植物光合作用的稳定碳同位素分馏除了受光合作用类型的影响外,还直接或间接地受到生长环境的影响(韩兴国等,2000)㊂杨盛昌等(1996)对红树林光合作用的研究发现,红树植物的光合作用受盐分㊁光照㊁季节变化等环境因子的影响㊂不同生长环境能够影响滨海湿地有机物质的生产,调查研究不同环境条件下植物δ13C值的差异可以更好地了解植物光合作用进行有机质生产过程中对外界环境要素的响应机制㊂由于滨海湿地是受海洋影响产生的特殊生态环境,盐分胁迫是滨海湿地区别于内陆淡水湿地及其他生态系统的特殊环境因子㊂对许多植物的研究结果显示其δ13C值与盐分梯度显著正相关(Winter&Holtum,2005;Jiang et al.,2006),同时在滨海湿地红树林物种中也观察到了δ13C值随盐分的增加而变重的现象(Kao et al.,2001;Sobrado, 2005;Wei et al.,2008)㊂如,Sobrado(2005)对不同盐度下红树植物Laguncularia racemosa叶片δ13C值的研究结果显示,盐分从15‰增加到30‰,植物δ13C值明显变重,Kao等(2001)对秋茄的研究也发现植物叶片的δ13C值随盐度的增加而变重㊂这可能是由于盐分胁迫诱导了某些C3植物光合途径转换为C4代谢或CAM代谢,从而使植物的δ13C值增大(韦莉莉等,2008)㊂此外,盐分环境对植物δ13C 值影响的另一个方面是:盐分胁迫通过抑制植物叶片的气孔导度㊁光合作用㊁蒸腾效率等一系列生理反应而对13C产生歧视,使植物组织的13C含量降低,4161 生态学杂志 第32卷 第6期 滨海湿地处于陆地和海洋相互作用的界面,大量陆源相㊁海源相和自生相有机质在滨海湿地土壤混合堆积㊂不同来源有机质的稳定同位素组成特征存在着显著差异,因而能够通过分析沉积物及陆源相㊁海源相和自生相等有机质的δ13C值来推断滨海湿地土壤有机质的来源㊂高建华等(2005)对苏北潮滩湿地表层沉积物以及不同生态带柱状沉积物与植被中的δ13C值进行分析,发现光滩以及光滩和互花米草滩过渡带内表层沉积物中的δ13C值和海水中的浮游植物以及藻类的δ13C值比较接近,说明其物源以海源为主㊂余婕(2008)结合地球化学分析测试与同位素示踪等方法,调查研究了长江口潮滩湿地有机质来源,发现南岸边滩沉积有机质的δ13C 值从淡水区到咸水区逐渐变重,显示出有机质由混合程度不同的海源和河源输入㊂由于滨海湿地土壤有机质的输入受河流入海径流量和泥沙含量的绝对控制,从而导致其稳定碳同位素明显季节性变化现象㊂例如,余婕(2008)对崇明东滩有机质来源的定量研究发现,有机质中稳定碳同位素表现出冬季陆源输入偏重而夏季海源输入偏重的现象㊂此外,许多研究都发现,人类活动也能对滨海湿地土壤有机质产生影响㊂Wang等(2004)研究了4个美国河口高分子溶解有机质的碳㊁氮同位素组成,发现污水的输入可能使有机质的δ13C值偏小,这是由于污水的δ13C值往往偏负,其输入会使悬浮颗粒有机质的δ13C值降低,从而影响土壤有机质(Sweeney et al.,1980;van Dover et al.,1992)㊂Thien等(2010)对人类活动和气候变化下的哈德逊河潮汐沼泽湿地进行了研究,观察到土壤沉积层δ13C值剧烈的波动,反映了加剧的农业活动对湿地土壤有机质产生了极其复杂的影响㊂2 食物链传递的稳定同位素碳元素通过食物链的传递在生命体中进行流动㊂在滨海湿地生态系统中,各生物种群间的摄食关系㊁食物网及营养级结构是一个难题,而稳定同位素方法为这一难题的研究提供了新的手段(陈玲和的食物来源,并利用IsoSource软件进行分析,发现有机碎屑对尼罗罗非鱼食物组成的贡献比例超过50%,同时红树植物㊁盐沼植物和浮游植物也是尼罗罗非鱼消化食物的组成部分㊂Abrantes等(2008)对一个热带河口湿地水生食物网进行了稳定同位素分析,发现一些鱼类和无脊椎物种的主要食源是红树和盐沼植物㊂可见,植物是滨海湿地食物网中鱼类的主要食源,但许多研究发现,植物并不是滨海湿地底栖动物的主要食源(Page&Lastra,2003;余婕, 2008;Mazumder&Saintilan,2010)㊂余婕(2008)对长江口盐沼湿地食物网进行的δ13C值分析表明,湿地优势植物的活植物体不是大型底栖动物的主要食源,大部分底栖消费者的食物基础是沉积有机质,这与国外学者的研究一致㊂Mazumder和Saintilan (2010)用δ13C值分析确定了澳大利亚红树林的一种蟹类的主要食源不是红树林树叶,而是底栖有机物质㊂Page等(2003)对Ría de Arosa潮间带双壳类进行食源分析也发现其主要食源是底栖生物,如底栖微藻等㊂通过测定滨海湿地生态系统中不同生物的δ13C 值能测定食物网结构和生物营养级,稳定碳同位素法营养级计算公式为:TL=(δ13C consumer-δ13C baseline)/δ13C+2,式中,δ13C consumer为消费者的稳定碳同位素比值,δ13C baseline为该系统的同位素基线值,δ13C为消费者与其食物间的同位素营养富集度(Cabana&Ras⁃mussen,1996)㊂Mazumder等(2011)测定了从澳大利亚新南威尔士州博尼特湾的Towra Point自然保护区红树林㊁盐沼湿地和海草生境收集的不同生态系统组分的δ13C值,在对营养级进行了计算的基础上建立了生境和物种㊁捕食者和被捕食者间营养结构模型㊂在分析食物网及营养级结构时,通常结合碳㊁氮稳定同位素来进行测定和分析㊂Doi等(2005)用碳㊁氮稳定同位素对Kitakami River河口生态系统进行了食物网的研究㊂蔡德陵等(2001, 2005)对崂山湾水体和潮间带食物网结构进行了碳㊁氮稳定同位素研究,并建立了黄东海水体食物网连续营养谱,勾勒出黄东海食物网营养结构图㊂3 温室气体排放和可溶性有机碳输出的稳定碳同位素3.1 温室气体排放碳的输出大部分以CH4㊁CO2等温室气体的形式释放到大气中(杨青和吕宪国,1999;李兆富等, 2003;宋长春等,2003),这是滨海湿地碳排放的主要途径㊂稳定碳同位素法在CO2排放中的作用主要用于区分土壤呼吸各组分贡献率的大小㊂滨海湿地CO2的排放主要来自于土壤呼吸,包括土壤的异氧呼吸和植物根系的自养呼吸,这两个生物呼吸过程的稳定同位素分馏效应很低,各自产生CO2的δ13C 值与各自的呼吸底物几乎相同,由各自呼吸所释放CO2的δ13C含量的差别可区分土壤异氧呼吸和植物根系自养呼吸对生态系统呼吸通量的贡献(Roch⁃ette et al.,1999;刘启明等,2002;沙晨燕等,2011)㊂许多研究表明,土壤呼吸释放的CO2中约30%~ 50%来自植物根系自养呼吸,其余部分主要源于土壤异氧呼吸(郑兴波等,2005;岳保静等,2011)㊂在S含量丰富的滨海湿地,S循环能影响CO2的排放(白军红等,2002),Howes等(1984)发现,S的发酵还原反应能力能促使咸水湿地中的有机碳向CO2转化,Valiela(1984)发现,氧化剂硫酸盐能将CH2氧化为CO2㊂滨海湿地CO2排放的稳定同位素研究比较薄弱,需要进行进一步的探索,尤其是长期升高的大气CO2浓度对滨海湿地CO2排放的影响研究㊂CH4的排放及其影响因子的研究一直是全球气候变化和生物地球化学循环研究的热点领域之一,稳定碳同位素法是重要而有效的研究手段之一㊂CH4是有机质厌氧分解的最终产物,CH4的排放与厌氧性还原菌密切相关,Zhang等(2003)利用生物标识与同位素技术研究了墨西哥湾CH4的厌氧氧化过程,证实了CH4的厌氧氧化过程是在硫酸盐还原菌和古细菌的作用下进行的㊂Chasar等(2000)研究发现,沼泽孔隙水中CH4的浓度及其δ13C值等均受自然植被的影响㊂Chanton等(2002)发现,芦苇孔隙CH4浓度变化与其δ13C值变化趋势一致,都在昼夜尺度上有所不同㊂Avery等(1999)对河口沉积物δ13C-CH4值进行的研究发现,夏季沉积物CO2的δ13C值升高,导致沉积物CH4的δ13C值偏高,从而揭示了CH4的排放因季节变化而存在差异,且该差异受CO2的影响㊂许多滨海湿地受潮汐影响,湿地水文过程控制了湿地中氧化还原能力的大小(熊汉锋和王运华,2005),例如,Moura等(2008)用稳定碳同位素方法对亚马孙流域东部CH4排放进行了研究,发现水位较高时CH4的δ13C值范围较小㊂湿地是向大气输出的温室气体CH4的最大自然源,随着研究的深入,更多的研究涉及到影响滨海湿地CH4排放的人为和自然因素以及受海水影响的滨海湿地CH4的排放㊂3.2 可溶性有机碳输出滨海湿地的碳除了以气体的形式排放到大气圈中以外,可溶性有机碳(DOC)的输出也是湿地碳生物地球化学循环的重要过程(Xi et al.,2007)㊂滨海湿地DOC的输出主要是通过水文过程实现(Holden,2005;仝川和曾从盛,2006),潮汐作用控制着滨海湿地的水位和水流速度,从而影响了滨海湿地DOC的输出㊂Ford等(2005)对Fitzroy河口的有机质δ13C及C/N值与潮水相关动态的研究发现,潮水是影响河口DOC输出的重要因素㊂大量研究发现,盐分也能影响到许多河口的DOC输出(Guo& Santschi,1997;van Heemst et al.,2000;Ford et al., 2005;Guo et al.,2009)㊂例如,van Heemst等(2000)对Ems⁃Dollart河口进行的稳定同位素特征分析发现,DOC的含量与盐分梯度有相反的线性关系㊂此外,在昼夜尺度下,滨海湿地的DOC输出情况也有所不同㊂Maher等(2011)利用δ13C⁃DOC值对Camden Haven河口底部可溶性有机碳动态进行了研究,发现白天比夜晚释放的DOC的δ13C值高,并提出可能是非生物过程和生物过程的联合作用促进了这种DOC的动态变化㊂在滨海湿地碳输出方面,人们目前对经水文过程输出的DOC研究较少,因此利用稳定碳同位素技术进行滨海湿地DOC输出的示踪有重要的科学研究意义㊂4 存在问题及展望稳定同位素技术对于滨海湿地碳生物地球化学循环研究具有重要的指示作用,目前国内外在该方面的研究已经取得了一定的进展,但总体来说还比较薄弱,具体表现为:1)植物光合作用的稳定碳同位素分馏的影响因素很多,但部分因素仍然不明确,如盐分胁迫对滨海湿地植物光合作用分馏效应的影响缺乏深入研究;2)由于滨海湿地土壤有机质来源复杂,稳定同位素技术能够指示有机质的大体来源,6161 生态学杂志 第32卷 第6期 却无法判别具体来源,且结果不够精确;3)滨海湿地温室气体排放的稳定同位素研究比较薄弱,尤其是长期升高的大气CO2浓度对滨海湿地CO2排放的影响研究及受海水影响的滨海湿地CH4排放研究;4)对于通过水文过程输出的可溶性有机碳的研究较少,尤其是潮汐作用与盐分梯度等环境因子对可溶性有机碳输出的影响研究㊂在滨海湿地碳生物地球化学循环过程的稳定同位素研究中对以下几方面的问题仍需要做进一步探讨:1)对滨海湿地植物光合作用稳定碳同位素分馏效应对气候㊁环境变化及人类活动的响应机理,及全球气候变化引起的海水入侵对滨海湿地植物光合作用的影响进行深入研究;2)结合元素及分子生物标记技术与稳定同位素自然丰度及标记技术对多相土壤有机质来源进行分析;3)从分子层次上分析碳在食物链中的传递,进行滨海湿地碳的生物流动过程研究,包括微生物对碳降解的分析,建立滨海湿地碳循环模型;4)加强温室气体排放及可溶性有机质输出的研究,深入探究环境因子特别是潮汐及盐分对碳输出的影响机制等㊂参考文献白军红,邓 伟,朱颜明.2002.湿地生物地球化学过程研究进展.生态学杂志,21(1):53-57.蔡德陵,洪旭光,毛兴华,等.2001.崂山湾潮间带食物网结构的碳稳定同位素初步研究.海洋学报,21(4):41-47.蔡德陵,李红燕,唐启升,等.2005.黄东海生态系统食物网连续营养谱的建立:来自碳氮稳定同位素方法的结果.中国科学:C辑,35(2):123-130.曹 芳,毛治超.2010.稳定碳同位素分析及其在地球化学中的应用.石油天然气学报,32(2):228-231.陈 玲,王中良.2012.碳同位素在湿地碳循环研究中的应用及进展.生态学杂志,31(7):1862-1869.董子为,李建华,杨长民,等.2009.稳定同位素技术在河岸带功能研究中的应用.环境科学与管理,34(7):116 -120.高建华,杨桂山,欧维新.2005.苏北潮滩湿地不同生态带有机质来源的辨析与定量估算.环境科学,26(6):57-63.郭雪莲,吕宪国,郗 敏.2007.植物在湿地养分循环中的作用.生态学杂志,26(10):1628-1633.韩兴国,严昌荣,陈灵芝,等.2000.暖温带地区几种木本植物碳稳定同位素的特点.应用生态学报,11(4):497 -500.李兆富,吕宪国,杨 青,等.2003.三江平原小叶章湿地土壤的CO2通量.南京林业大学学报(自然科学版),27 (3):51-54.林光辉.2010.稳定同位素生态学:先进技术推动的生态学新分支.植物生态学报,34(2):119-122.刘启明,王世杰,朴河春,等.2002.生态转换系统中土壤有机质变化的稳定碳同位素示踪研究进展.生态学杂志,21(2):58-60.沙晨燕,王 敏,王 卿,等.2011.稳定同位素技术在湿地碳循环研究中的应用.环境科学与技术,34(12): 338-404.宋长春,阎百兴,王跃思,等.2003.三江平原沼泽湿地CO2和CH4通量及影响因子.科学通报,48(23):2476-2477.仝 川,曾从盛.2006.湿地生态系统碳循环过程及碳动态模型.亚热带资源与环境学报,1(1):84-92.王红晋,叶思源,杜远生.2006.湿地生态系统的地球化学研究.海洋地质动态,22(11):7-13.王伟伟.2011.长江口潮滩营养动态与稳定同位素指示研究(博士学位论文).上海:华东师范大学.韦莉莉,严重玲,叶彬彬,等.2008.C3植物稳定碳同位素组成与盐分的关系.生态学报,28(3):1270-1278.熊汉锋,王运华.2005.湿地碳氮磷的生物地球化学循环研究进展.土壤通报,36(2):240-243.徐姗楠,陈作志,黄洪辉,等.2010.红树林种植⁃养殖耦合系统中尼罗罗非鱼的食源分析.中山大学学报(自然科学版),49(1):101-106.薛 博.2007.漳江口红树林湿地沉积物有机质来源追溯(博士学位论文).厦门:厦门大学.杨昌盛,林 鹏.1996.红树林的光合作用.植物学通报, 13(增刊):33-38.杨 青,吕宪国.1999.三江平原湿地生态系统土壤呼吸动态变化的初探.土壤通报,30(6):254-256.余 婕,刘 敏,侯立军,等.2008.崇明东滩大型底栖动物食源的稳定同位素示踪.自然资源学报,23(2):319 -326.余 婕.2008.河口潮滩湿地有机质来源㊁组成与食物链传递研究(博士学位论文).上海:华东师范大学.岳保静,张军强,辛 一.2011.滨海湿地碳的生物地球化学循环过程.海洋地质前沿,27(2):72-78.张晓龙,李培英,李 萍,等.2005.中国滨海湿地研究现状与展望.海洋科学进展,23(1):87-75.郑兴波,张 岩,顾广虹.2005.碳同位素技术在森林生态系统碳循环研究中的应用.生态学杂志,24(11):1334 -1338.郑永飞,陈江峰.2000.稳定同位素地球化学.北京:科学出版社.周俊丽.2005.长江口湿地生态系统中有机质的生物地球化学过程研究(博士学位论文).上海:华东师范大学. Abrantes K,Sheaves M.2008.Incorporation of terrestrial wet⁃7161陈 菀等:稳定碳同位素在滨海湿地碳生物地球化学循环中的应用land material into aquatic food webs in a tropical estuarine wetland.Estuarine,Coastal and Shelf Science,80:401-402.Avery GB,Martens CS.1999.Controls on the stable carbon isotopic composition of biogenic methane produced in a tid⁃al freshwater estuarine sediment.Geochimica et Cosmochim⁃ica Acta,63:1075-1082.Bondavalli C,Ulanowicz RE,Bodini A.2000.Insights into the processing of carbon in the South Florida cypress wetlands: A whole⁃ecosystem approach using network analysis.Jour⁃nal of Biogeography,27:697-710. Chanton JP,Arkebauer TJ,Harden HS,et al.2002.Diel vari⁃ation in lacunal CH4and CO2concentration andδ13C in Phragmites australis.Biogeochemistry,59:287-301. Chasar LS,Chanton JP,Glaser PH,et al.2000.Methane con⁃centration and stable isotope distribution as evidence of rhi⁃zospheric processes:Comparison of a fen and bog in the glacial Lake Agassiz peatland complex.Annals of Botany, 86:655-663.Cloern JE,Canuel EA,Harris D.2002.Stable carbon and nitrogen isotope composition of aquatic and terrestrial plants of the San Francisco Bay estuarine system.Limnology and Oceanography,47:713-729.Doi H,Matsumasa M,Toya T,et al.2005.Spatial shifts in food sources for macrozoobenthos in an estuarine ecosys⁃tem:Carbon and nitrogen stable isotope analyses.Estuar⁃ine,Coastal and Shelf Science,64:316-322. Ford P,Tillman P,Robson B,et anic carbon deliveries and their flow related dynamic in the Fitzroy estu⁃ary.Marine Pollution Bulletin,51:119-127.Guo L,Santschi PH.1997.Isotopic and elemental characteriza⁃tion of colloidal organic matter from the Chesapeake Bay and Galveston Bay.Marine Chemistry,59:1-15. Guo LD,White DM,Xu C,et al.2009.Chemical and isotopic composition of high⁃molecular⁃weight dissolved organic mat⁃ter from the Mississippi River plume.Marine Chemistry, 114:63-71.Hokmabadi H,Arzani K,Grierson PF.2005.Growth,chemi⁃cal composition,and carbon isotope discrimination of pista⁃chio(Pistacia vera L.)rootstock seedlings in response to salinity.Australian Journal of Agricultural Research,56: 135-144.Holden J.2005.Peatland hydrology and carbon release:Why small⁃scale process matters.Philosophical Transactions of the Royal Society,363:2891-2913.Howes BL,Dacey JWH,King GM.1984.Carbon flow through oxygen and sulfate reduction pathways in salt marsh sedi⁃ments.Limnology and Oceanography,29:1037-1051. Ish⁃Shalom⁃Gordon N,Lin G,Sternberg LDSL.1992.Isotopicfractionation during cellulose synthesis in two mangrove species:Salinity effects.Phytochemistry,31:2623-2626. Jiang QZ,Roche D,Monaco TA,et al.2006.Gas exchange, chlorophyll fluorescence parameters and carbon isotope dis⁃crimination of14barley genetic lines in response to salini⁃ty.Field Crops Research,96:269-278.Kao WY,Tsai HC,Tsai TT.2001.Effect of NaCl and nitrogen available on growth and photosynthesis of seeding of a man⁃grove species,Kandelia candel(L.)Druce.Journal of Plant Physiology,158:841-846.Maher D,Eyre BD.2011.Insights into estuarine benthic dis⁃solved organic carbon.Geochimica et Cosmochimica Acta, 75:1889-1902.Mazumder D,Saintilan N,Williams RJ,et al.2011.Trophic importance of a temperate intertidal wetland to resident and itinerant taxa:Evidence from multiple stable isotope analy⁃ses.Marine and Freshwater Research,62:11-19. Mazumder D,Saintilan N.2010.Mangrove leaves are not an important source of dietary carbon and nitrogen for crabs in temperate Australian mangroves.Wetlands,30:375-380. Cabana G,Rasmussen paring aquatic food chains nitrogen isotopes.Proceedings of the National Acad⁃emy of Sciences of the United States of America,93:10844-10847.Moura JMS,Marten CS,Moreira MZ,et al.2008.Spatial and seasonal variations in the stable carbon isotopic composition of methane in stream of eastern Amazonia.Chemical and Physical Meteorology,60:21-31.Page HM,Lastra M.2003.Evidence from stable C and N iso⁃tope analysis.Marine Biology,143:519-532. Rozhette P,Flanagan LB,Gregorich EG.1999.Separating soil respiration into plant and soil components using analyses of the natural abundance of carbon⁃13.Soil Science Society of America Journal,63:1207-1213. Sobrado MA.2005.Leaf characteristics and gas exchange of the mangrove Laguncularia racemosa as affected by salinity.Photosynthetica,43:217-221.Sun ZG,Mou XJ,Li XH,et al.2011.Application of stable isotope techniques in studies of carbon and nitrogen biogeo⁃chemical cycles of ecosystem.Chinese Geographical Sci⁃ence,21:129-148.Sweeney RE,Kalil EK,Kaplan IR.1980.Characterization of domestic and industrial sewage in southern California coast⁃al sediments using nitrogen,carbon,sulphur and uranium tracers.Marine Environmental Research,3:225-243. Thien KVN,Dorothy MP.2010.Stable isotope analysis in the Hudson River marshes:Implications for human impact,cli⁃mate change,and trophic activity//Sarah HF,David JY, Helena A.eds.Reports of the Tibor T.Polgar Fellowship8161 生态学杂志 第32卷 第6期 。