细胞生物学实验报告
细胞生物学实验实验报告
细胞生物学实验班级：生科142姓名：旷江学号：10143131组号： 2小组成员：旷江、韦立尧、莫霞指导老师：范立强、李鹏飞华东理工大学应用生物学系摘要本次细胞生物学实验通过细胞形态与结构的观察技术，细胞化学，细胞生理，细胞培养与分析，细胞周期分析，细胞成分分离与分析，细胞增殖与染色等技术对动植物细胞进行细胞形态结构的观察、细胞生理过程的研究、细胞培养与细胞分析、细胞冻存与复苏等，以此来研究动植物细胞的结构、功能和各种生命规律。
关键词：细胞增殖、细胞染色、冻存复苏、生理过程、形态结构AbstractThe cell biology experiment was carried out by cell morphology and structure observation technique, cytochemistry, cell physiology, cell culture and analysis, cell cycle analysis, cell fractionation and analysis, cell proliferation and staining. Observation of cell physiological processes, cell culture and cell analysis, cell cryopreservation and resuscitation, in order to study the structure of animals and plants, functions and a variety of laws of life.Key words: cell proliferation, cell staining, cryopreservation, physiological processes, morphological structur目录第一章综述 (1)1.1实验目的 (1)第二章实验原理 (2)2.1实验流程和应用实验方法 (2)2.2细胞器活体染色与显微观察 (2)2.3细胞骨架的观察 (3)2.4细胞冻存复苏 (3)2.5细胞冻存复苏活力检测 (3)2.6哺乳动物细胞的基因转染 (4)2.7细胞凋亡诱导和分析 (4)第三章实验仪器及试剂 (6)3.1实验仪器 (6)3.2实验试剂 (6)第四章实验步骤............ 错误！未定义书签。
细胞生物学实验报告
细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告篇一实验教师：xxx所在学校：xxx中学目的要求：1练习徒手切片2认识叶片的结构3画叶片的表皮细胞和保卫细胞材料用具：新鲜叶片（如菠菜、槐树、蚕豆的叶片），显微镜，双面刀片（两片、并在一起、一侧用胶布粘牢）、镊子、载玻片、盖玻片、叶片的永久切片、盛有清水的培养皿、滴管、吸水纸、碘液、纱布、毛笔、小木板。
方法步骤方法与步骤要点注意事项（一）练习徒手切片，制作叶片横切片的临时切片1将新鲜的叶片平放在小木板上。
2右手捏紧并排的两片刀片，沿着图中虚线的方向，迅速切割。
3把刀片夹缝中存在的切下的薄片放入盛有清水培养皿中。
要多切几次（每切一次，刀片要蘸一下水）。
4用毛笔蘸出较薄的一片，制成临时切片。
叶片下面要垫上小块木板，以防损坏桌面。
刀片要捏紧，切割速度要快，注意安全。
为了便于观察，载玻片的水滴中可以同时放几片叶的横切片，选择切得较薄的一片用来观察。
（二）观察叶片的结构1．用显微镜先观察叶片横切面的临时切片，再观察叶片的永久横切片。
2．观察时注意分清时的表皮、叶肉和叶脉。
仔细观察上、下表皮细胞的`区别（三）观察叶片的下表皮1．用镊子撕下一小块叶片的下表皮，制成临时装片。
2．用显微镜进行观察，下表皮细胞的形态是什么样子的，下表皮上有没有气孔？撕取下表皮时，一定要薄，否则影响观察效果。
注意观察气孔的结构。
（四）画图在下面空白处画出下表皮上一对保卫细胞及周围的几个表皮细胞，这一对保卫细胞要详细画，周围的细胞只需勾出轮廓。
画图时，要真实、实事求是。
讨论与交流1．保卫细胞的结构特点对植物的蒸腾作用有什么意义？2．从结构上看，叶片有哪些方面是适于接受阳光的？细胞生物学实验报告篇二一、实验目的1. 初步学会观察植物细胞质壁分离和复原的方法。
2. 理解植物细胞发生渗透作用的原理。
二、实验原理当细胞液的浓度小于外界溶液的浓度时，细胞液中的水分就透过原生质层进入外界溶液中，使细胞壁和原生质层都出现一定的收缩。
细胞生物学实验报告
细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告细胞生物学实验报告动物细胞融合【实验目的】⒈了解动物细胞融合的常用方法。
⒉学习化学融合的基本操作过程。
⒊观察动物细胞融合过程中细胞的行为和变化。
【实验原理】细胞融合是指在自发或者诱导条件下，两个或两个以上细胞合并为双核或者多核细胞的过程。
目前人们已经发现有很多方法可以诱导细胞融合，包括病毒诱导融合、化学诱导融合和电激诱导融合。
⒈病毒诱导融合仙台病毒、牛痘病毒、新城鸡瘟病毒和疱疹病毒等可以介导细胞的融合。
这类病毒的被膜中含有融合蛋白，可介导病毒和宿主细胞融合，同时也可介导细胞与细胞的融合。
用紫外线灭活后，这些病毒即可诱导细胞发生融合。
⒉化学诱导融合很多化学试剂能够诱导细胞融合，如聚乙二醇(PEG)、二甲基亚砜、山梨醇、甘油、溶血性卵磷脂、磷脂酰丝氨酸等。
这些物质能够改变细胞膜脂质分子的排列，在去除这些物质之后，细胞膜趋向于恢复原有的有序结构。
在恢复过程中相接触的细胞由于接口处脂质双分子层的相互亲和与表面张力，细胞膜融合，胞质流通，发生融合。
化学诱导方法，操作方便，诱导融合的概率比较高，效果稳定，适用于动、植物细胞，但对细胞具有一定的毒性。
PEG是被广泛使用的化学融合剂。
⒊电激诱导融合包括电诱导、激光诱导等。
其中，电诱导是先使细胞在电场中极化成为偶极子，沿电力线排布成串，再利用高强度、短时程的电脉冲击破细胞膜，细胞膜的脂质分子发生重排，由于表面张力的作用，两细胞发生融合。
电诱导方法具有融合过程易控制、融合概率高、无毒性、作用机制明确、可重复性高等优点。
【实验用品】⒈材料鸡血红细胞。
⒉试剂50%PEG、Hank’s溶液(pH7.4)、Alsever’s细胞保存液、0.85%氯化钠溶液。
⒊器材正置显微镜、离心机、离心管、载玻片、盖玻片、滴管、注射器等。
【实验步骤】⒈鸡血红细胞的制备和保存用无菌注射器先吸入Alsevers溶液1ml，再从鸡翼下静脉取血0.5~1ml，取出后放入刻度离心管中，再加入2~3mlAlsevers溶液，使总量为4~5ml，混匀并封口，置于4℃冰箱内。
细胞生物学研究实验报告
细胞生物学研究实验报告1. 引言在细胞生物学领域，研究细胞的结构和功能对于理解生命的基本原理至关重要。
本实验旨在利用细胞培养技术，观察并探究不同条件下细胞的生长和变化，以及细胞代谢的影响因素。
2. 实验材料与方法2.1 细胞培养物准备：选择合适的培养基，并根据说明书的指导进行配制，确保培养基的pH值及其他参数的准确性。
2.2 细胞处理：将细胞培养物均匀接种于含有培养基的培养皿中，根据实验设计设置不同的处理组和对照组。
2.3 细胞观察：在指定时间点，使用显微镜观察细胞的形态和数量，并记录相关数据。
2.4 细胞计数：利用细胞计数板或自动细胞计数器，对处理组和对照组的细胞数量进行计数，并进行统计学分析。
3. 实验结果在本实验中，我们观察了不同培养条件对细胞生长的影响以及细胞数量的变化。
3.1 培养基成分对细胞生长的影响：将细胞分别培养于不同成分的培养基中，并观察其生长情况。
结果显示，不同成分的培养基对细胞生长产生了明显的影响。
例如，在含有特定营养因子的培养基中，细胞的生长速率显著提高。
3.2 不同培养温度对细胞生长的影响：将细胞在不同的温度条件下培养，并在一定时间内观察其生长情况。
实验结果显示，细胞的生长速率在适宜温度范围内最高，而过低或过高的温度均对细胞生长产生了抑制作用。
3.3 细胞代谢产物对细胞生长的影响：添加不同浓度的代谢产物（如乙醛、乙酸等）到培养基中，观察其对细胞生长的影响。
实验结果显示，过高或过低的代谢产物浓度均对细胞生长产生了不利影响，而适宜浓度范围内则促进了细胞的繁殖能力。
4. 讨论与结论本实验结果表明，细胞的生长和变化受到多种因素的影响，包括培养基成分、培养温度以及代谢产物浓度等。
细胞在适宜的培养条件下能够更好地进行增殖和发育，而不利因素则会抑制细胞的生长。
因此，在细胞生物学研究中，合理控制和优化培养条件对于获得准确可靠的实验结果至关重要。
总结：通过本次实验，我们深入了解了细胞生物学领域中的相关实验技术和细胞生长的条件调控。
细胞生物学实验报告_2
细胞生物学实验报告细胞凝集反应【实验目的】⒈了解细胞膜的表面结构。
⒉掌握凝集素促使细胞凝集的原理。
⒊学习研究细胞凝集反应的方法。
【实验原理】⒈细胞膜是双层脂镶嵌蛋白质结构, 脂和蛋白质又能和糖分子结合为细胞表面的分枝状糖外被。
目前认为: 细胞间的联系, 细胞的生长和分化, 免疫反应和肿瘤发生都和细胞表面的分枝状糖外被有关。
⒉凝集素（lectin）是一类含糖（少数例外）并能与糖专一结合的蛋白质, 它具有凝集细胞和刺激细胞分裂的作用。
凝集素使细胞凝集是由于它与细胞外被中的糖分子连接, 在细胞间形成“桥”的结果, 加入与凝集素互补的糖可以抑制细胞的凝集。
【实验用品】⒈材料土豆块茎、家兔。
⒉试剂⑴PBS缓冲液称取NaCl 7.2g、Na2HPO4 1.48g、KH2PO4 0.43g, 加蒸馏水, 定容至1L, 调pH至7.2。
⑵1％肝素溶液0.1g肝素溶解于10mL0.9％氯化钠溶液中。
⒊器材5mL注射器、酒精棉球、双凹片、普通光学显微镜、托盘天平、滴管、离心管。
【实验程序】⒈以无菌方法抽取兔耳缘静脉血液（5mL注射器先吸取3mL1％肝素溶液）1mL, 用0.9％氯化钠溶液洗5次, 每次3000r/min离心5min, 最后按沉淀的红细胞体积用0.9％氯化钠溶液配成1％红细胞悬液。
⒉称取去皮土豆块茎2g, 切成薄片, 加10mLPBS缓冲溶液, 浸泡2h, 浸出的粗提取液中含有可溶性土豆凝集素。
⒊用滴管吸取土豆凝集素和PBS缓冲液各一滴, 置于双凹片的左右两孔内, 再分别滴入一滴1％红细胞悬液, 振荡10min。
4.待红细胞液发生明显凝集反应后, 将双凹片置于显微镜下观察。
【实验结果】⒈结果细胞凝集反应实验现象⒉图像加土豆凝集素加PBS缓冲液【分析与讨论】⒈结果分析实验过程中可以观察到: 在双凹片上, 加有土豆凝集素的一侧, 震荡过程中, 红细胞液先变浑浊, 随后又变澄清, 同时发生凝集反应, 且凝集后的块状物聚集在液滴中央；而加有PBS缓冲液的一侧, 震荡过程中, 红细胞不发生明显变化, 静置后, 后细胞逐渐集中于液滴中间部位, 而四周表现为澄清。
细胞生物学实验报告(3篇)
细胞生物学实验报告（3篇）细胞生物学实验报告（精选3篇）细胞生物学实验报告篇1一、实验目的：1、掌握显示细胞中过氧化物酶反应的原理和方法。
2.了解细胞凋亡的生物学意义3、掌握凋亡细胞的形态学检测方法二、实验原理：1、细胞内的过氧化物酶能把许多胺类氧化为有色化合物，用联苯胺处理标本，细胞内的过氧化物酶能把联苯胺氧化为蓝色的联苯胺蓝，进而变为棕色产物，因而可以根据颜色反应来判定过氧化物酶的有无或多少。
中间产物蓝色联苯胺是不稳定的，无需酶的参加即可氧化为棕色化合物。
2、细胞凋亡是指细胞在生理或病理条件下，遵循自身的程序，自己结束其生命的过程。
它是一个主动的、高度有序的，基因控制的，一系列酶参与的过程。
3、凋亡细胞形态学特征是:体积变小,细胞质浓缩;细胞核发生染色质凝聚和聚集于核膜周围(边缘化);细胞膜有小泡状形成;晚期细胞膜内陷形成大小不同的凋亡小体;根据细胞凋亡形态学特征进行显微观察是检测细胞凋亡的一种直观、可靠的方法。
三、实验步骤：细胞中过氧化物酶的显示1、在载片上滴一滴PBS缓冲液；2、取骨髓细胞：用断颈法处死小鼠，立即剪取后肢，去除肌肉，剥出后肢股骨，剪开股骨一端，用牙签尖的一端插入剪开的小孔中，抠取少许骨髓细胞置滴有PBS的载片上；3、涂片：用另一玻片将骨髓细胞沿一个方向涂布推开，室温晾干；4、媒染：在涂片上滴0.5％硫酸铜液，以盖满涂片为宜，处理30秒-1分钟。
5、倾去硫酸铜液，直接滴入联苯胺混合液反应6分钟（以盖满涂片为宜）6、清水冲洗，番红复染2min。
7、镜检：清水冲洗，室温晾干，先低倍镜下观察，后换高倍镜下观察（油镜100_）细胞凋亡的形态学检测与观察吉姆萨染色:1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞3、95%乙醇固定5min4、PBS缓冲液洗2次5、吉姆萨染色液染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液7、普通光学显微镜下观察。
吖啶橙染色:1、取细胞爬片置于小培养皿中(有细胞面朝上)2、生理盐水轻轻漂洗细胞3、甲醇：冰醋酸（3：1）固定5min4、PBS缓冲液洗2次每次1min5、0.01%吖啶橙染色液在避光环境下染色5min6、蒸馏水轻轻洗去染液6、选用蓝光激发滤片在荧光显微镜下观察。
细胞生物学实验报告
细胞生物学实验报告实验名称：细胞培养实验实验目的：1. 了解细胞培养的基本原理和过程2. 观察细胞生长和分化的现象3. 掌握细胞培养的实验技术和方法实验原理：细胞培养是一种将生物体细胞从其原始生存环境中分离出来，在体外条件下进行培养的技术。
这种技术对于研究细胞生物学、发育生物学、药物筛选等学科具有重要意义。
本实验将通过观察细胞生长和分化的现象，加深对细胞培养技术的理解。
实验材料：1. 人体皮肤细胞2. 培养基（包含血清、抗生素、氨基酸、维生素等）3. 塑料瓶（培养皿）4. 显微镜5. 记录表实验步骤：1. 取适量人体皮肤细胞，用胰蛋白酶消化，使其从组织中分离出来。
2. 将细胞接种到塑料瓶（培养皿）中，加入适当浓度的培养基。
3. 将塑料瓶（培养皿）放入恒温培养箱中，定期观察并记录细胞生长和分化的现象。
4. 在合适的时间点，使用显微镜拍照记录细胞生长和分化的过程。
5. 实验结束后，整理数据和图片，撰写实验报告。
实验结果：经过一段时间的培养，我们观察到皮肤细胞在培养基中开始贴壁，并逐渐生长。
随着时间的推移，部分细胞开始出现分裂，形成相互连接的细胞团。
一些细胞逐渐伸展成梭形或扁平形，呈现出典型的贴壁生长形态。
在某些区域，我们观察到细胞开始分化为两种不同形态的细胞群，一种呈圆形或椭圆形，另一种呈多角形。
这些现象表明细胞已经开始分化。
实验分析：根据实验结果，我们可以得出以下结论：1. 细胞确实可以在体外条件下贴壁生长并增殖。
这证明了细胞培养技术的可行性。
2. 细胞分化是一个自然的过程，在本实验中得到了证实。
这说明细胞具有自我更新和多向分化的潜能。
3. 实验过程中需要注意无菌操作和适宜的培养条件，以确保细胞的存活和正常生长。
此外，不同种类的细胞可能需要不同的培养条件，因此在实际操作中需要针对具体细胞类型进行实验。
实验结论：通过本次实验，我们了解了细胞培养的基本原理和过程，观察了细胞生长和分化的现象，并掌握了细胞培养的实验技术和方法。
细胞生物学实验报告
细胞生物学实验报告实验目的，通过观察细胞在不同环境条件下的变化，了解细胞的结构和功能。
实验材料，显微镜、玻璃片、盐水、葡萄糖水溶液、洋葱、细胞培养基、显微镜玻璃片、移液管、显微镜盖玻片、细胞标本。
实验步骤：1. 取一片洋葱表皮，放入盐水中浸泡5分钟，然后用移液管将洋葱表皮移至显微镜玻璃片上，加一滴盐水，用显微镜盖玻片盖好，放入显微镜下观察。
2. 取一片洋葱表皮，放入葡萄糖水溶液中浸泡5分钟，然后用移液管将洋葱表皮移至显微镜玻璃片上，加一滴葡萄糖水溶液，用显微镜盖玻片盖好，放入显微镜下观察。
3. 取一片洋葱表皮，直接放入显微镜玻璃片上，加一滴蒸馏水，用显微镜盖玻片盖好，放入显微镜下观察。
实验结果：在盐水中浸泡的洋葱表皮细胞，细胞质内部出现了空泡，并且细胞质收缩，细胞膜离细胞壁。
在葡萄糖水溶液中浸泡的洋葱表皮细胞，细胞质内部没有出现空泡，细胞质没有收缩，细胞膜紧贴细胞壁。
直接放入蒸馏水中的洋葱表皮细胞，细胞质内部也没有出现空泡，细胞质没有收缩，细胞膜紧贴细胞壁。
实验分析：盐水中的高渗环境导致了细胞失水和质内空泡的形成，细胞质收缩，细胞膜离细胞壁。
而葡萄糖水溶液中的低渗环境对细胞没有明显的影响，细胞质没有收缩，细胞膜紧贴细胞壁。
蒸馏水中的等渗环境对细胞也没有明显的影响，细胞质没有收缩，细胞膜紧贴细胞壁。
结论：细胞在不同渗透压环境下会出现不同的变化，高渗环境会导致细胞失水、质内空泡形成和细胞质收缩，而低渗环境对细胞没有明显的影响，等渗环境也不会对细胞产生明显的影响。
这些结果说明了渗透压对细胞的影响，也说明了细胞对外界环境的敏感性。
实验的意义：通过这个实验，我们更深入地了解了细胞在不同环境条件下的变化，也更加深入地了解了细胞的结构和功能。
这对于我们进一步研究细胞生物学，了解生命的奥秘，具有重要的意义。
实验存在的不足：本实验只是对细胞在不同渗透压环境下的变化进行了初步的观察和分析，还需要进一步的研究和探讨，以便更加全面地了解细胞的生物学特性。
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细胞生物学实验报告
脂类细胞化学
【实验目的】
熟悉苏丹Ⅲ染色技术，了解脂肪在脂肪细胞中的分布。
【实验原理】
脂肪是体内储存能量和供给能量的重要物质，根据其性质可分为中性脂肪、脂肪酸、胆固醇、鞘磷脂等。
很多细胞都含有脂肪，游离状态的脂肪呈小滴状悬浮于细胞质内，比较显著的如肝细胞。
脂肪小滴可以集合，将细胞质及细胞核挤到一旁，如脂肪细胞。
脂肪不溶于水，易溶于浓酒精、苯、氯仿和乙醚等，因此制作脂类标本一般不用石蜡切片，而用冰冻切片或铺片法以保存脂类。
固定多用甲醛类固定剂。
其染色方法有脂溶性染料显示法、化学显示法和特异染色法等。
脂溶性染料显示法，即采用苏丹染料中的苏丹Ⅲ、苏丹Ⅳ或苏丹黑等溶于脂类使脂类显色的原理显示脂类，使用时，注意选择溶剂，要求既要溶解苏丹染料，又不溶掉脂肪。
苏丹染料染脂类是一种简单的物理变化，即苏丹染料是一种脂溶性染料，易溶于酒精但更易溶于脂肪，所以当含有脂肪的标本与苏丹染料接触时，苏丹染料即脱离酒精而溶于该含脂结构中而被染色。
苏丹Ⅲ是可溶于脂肪的染料，用于冰冻切片中显示甘油三酸酯，但是也可用于染色石蜡切片中与蛋白质结合的脂类。
苏丹Ⅲ的70%酒精饱和液或丙酮和70%酒精等量饱和液，可将脂肪染为橙红色。
苏丹Ⅲ化学结构
1-[4-(苯基偶氮)苯基偶氮]-2-萘酚
【实验用品】
⒈材料
小白鼠
⒉试剂
甲醛钙溶液，70％乙醇，苏丹Ⅲ染液，蒸馏水
⒊器材
解剖刀、镊子、载玻片、盖玻片、解剖盘等
【实验步骤】
⒈断头法处死小鼠，置于解剖盘中，剪开腹腔，用镊子提起小肠将盖玻片紧贴于肠系膜，用剪连同盖玻片和其上粘的肠系膜取下，反扣于已滴加甲醛钙的载玻片上，固定 20 分钟。
⒉吸蒸馏水滴入载玻片与盖玻片之间冲洗，用滴管不断吸去液体以去除固定液。
⒊用 70%乙醇溶液代替蒸馏水重复步骤2的操作，再进行一次冲洗。
⒋用苏丹Ⅲ染色30分钟
⒌吸去溢出染液，擦净盖玻片表面及周边，用显微镜观察。
【实验结果】
⒈结果
从显微镜下观察得，脂肪细胞呈圆球形，内充满橘黄色（理想状态下为橘红色）脂类物质，细胞外也有散开的为橘黄色（理想状态下为橘红色）圆脂肪滴。
⒉图像
【分析与讨论】
⒈结果分析
⑴观察：从显微镜下观察发现，视野中的脂肪细胞呈现重叠和挤压的状况，而非透明度较高、排列有序的单层状。
同时，视野中脂肪细胞的颜色为橘黄色而非橘红色。
这两种情况对于观察效果有一定的影响。
此外，血管也呈微红色而非无色透明。
⑵可能原因：
①制片的时候，未将小鼠肠系膜充分展开或者已经扯破，使之有一定程度的皱褶，造成脂肪细胞的重叠和挤压。
②染色时，固定液没被蒸馏水冲洗干净。
③用 70％乙醇溶液形成乙醇环境时，没有将剩余的蒸馏水和固定液去除干净。
④由于盖玻片盖得太紧，苏丹Ⅲ染液未能完全将肠系膜覆盖，造成染色不充分。
⑤染色过程中没有及时补充染液，使得苏丹Ⅲ染液因挥发而造成不足，最终影响染色效果。
⑥染色时间不足。
⑦制片前，未把小鼠的血放干净。
⒉注意事项
在选取肠系膜时，要尽量选取带有血管的膜，因为在血管的周围一般都附有脂肪组织给以保护。