间接免疫荧光

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细胞表面间接免疫荧光染色

细胞表面间接免疫荧光染色

细胞表面间接免疫荧光染色细胞表面间接免疫荧光染色是一种常用的细胞学实验技术,用于研究细胞表面蛋白的分布和表达。

该技术通过标记特定抗体,利用荧光染料对其进行可视化,从而在显微镜下观察和定位特定抗原在细胞表面的分布情况。

本文将详细介绍细胞表面间接免疫荧光染色的原理、步骤和应用。

一、原理细胞表面间接免疫荧光染色的原理基于免疫反应。

首先,需要选择与目标抗原特异性结合的一对抗体,其中一种抗体被称为一抗,另一种抗体被称为二抗。

一抗是直接与目标抗原结合的抗体,而二抗则与一抗结合。

一般情况下,一抗是小鼠或兔子产生的,而二抗是针对小鼠或兔子IgG的抗体。

二、步骤1. 细胞固定:将待染色的细胞固定在载玻片上,常用的固定剂包括甲醛、乙醛和冰乙酸。

2. 渗透:为了提高染色抗体的进入细胞的能力,需要对固定的细胞进行渗透处理。

一般使用0.1% Triton X-100或0.5% Tween 20进行渗透。

3. 阻断:为了防止非特异性结合,需要对细胞进行阻断处理。

常用的阻断剂包括牛血清白蛋白(BSA)和羊血清。

4. 一抗孵育:将合适浓度的一抗溶液加到载玻片上,与细胞孵育。

一抗与目标抗原结合后,可以利用荧光标记的二抗进行可视化。

5. 二抗孵育:将荧光标记的二抗溶液加到载玻片上,与一抗结合。

常用的荧光标记物有荧光素(FITC)、罗丹明(Rhodamine)和碳氰菲(Cy5)等。

6. 洗涤:将载玻片进行洗涤,去除未结合的抗体。

7. 封片:将载玻片倒置在抗褪色剂中,然后用封片胶封住玻片边缘,使样品不受空气氧化。

三、应用细胞表面间接免疫荧光染色广泛应用于生命科学领域,尤其在细胞生物学和免疫学研究中发挥重要作用。

具体应用包括:1. 细胞表面蛋白定位:通过荧光染色,可以观察和定位特定蛋白在细胞表面的分布情况,如受体、通道蛋白等。

2. 细胞凋亡检测:细胞表面间接免疫荧光染色可以用于检测细胞凋亡相关标志物,如细胞色素C和半胱天冬酶-3等。

3. 免疫细胞分型:通过特定抗体的染色,可以对免疫细胞进行分型,如T细胞、B细胞、巨噬细胞等。

间接免疫荧光检测

间接免疫荧光检测
出乳白色的单个核细胞,加 入另一支已含有 2-5mlHank’s 液的离心管中, 混匀。 5、室温下,1500rpm离心10min。
6、弃上清,重复洗涤一次。 用完全RPMI-1640 1ml定容,计数细胞,调整细 胞浓度。 一般每ml血可分离出1-2×106个单个核细胞。 7、细胞活力检查 取 1滴细胞悬液加 1滴 2%台盼蓝染液,作湿片高 倍镜检,计算活细胞百分率。活细胞不着色,死 细胞染成蓝色。一般活性应在95%以上。
材 料
1. Ag PBMC 2. Ab1 兔抗人白细胞血清 (Ab1) 3. Ab2 FITC-抗兔单克隆抗体 (Ab2) 4. 洗涤液 5. 荧光显微镜
方 法
1.制备抗原片: 吸管取1滴PBMC液体(约10ul)滴加到标本片 黑色圈圈背面中央, 静止5-10分钟,待PBMC干 燥。
2. 15 ul Ab1 加入玻片上37℃孵育30 min。 PBS洗3 次(3min/次)。
3. 玻片上加15 ml 荧光二抗 (Ab2) 湿盒内37℃孵育 30 min。PBS洗3次(同上,避光操作) 4. 用吸水纸印干玻片,滴油,荧光镜显微镜下观察。
原 理
间接免疫荧光法是用荧光素标记Ab2以检测 Ag或Ab的一种实验技术。其原理是Ag首先与 Ab1结合,然后Ab1再与荧光素标记的Ab2结合, 形成一个Ag- Ab1-荧光素标记Ab2的三分子复合 物,在荧光显微镜下呈现荧光。
外周血单个核细胞分离 ------ 葡蔗糖-泛影葡胺密度梯度离心法
[原理]
外周血单个核细胞(PBMC)包括淋巴细胞、单 核细胞,其体积、形状和比重与其他细胞不同。红 细胞和多核细胞比重较大,为 1.092 左右,而淋巴细 胞和单核细胞比重为 1.075左右。利用比重为 1.077左 右的分层液作密度梯度离心,使一定比重的细胞按 密度梯度分布,从而将各种血细胞加以分离。

《间接免疫荧光实验》课件

《间接免疫荧光实验》课件
的准确性和可靠性。
培训与技能 提升
为提高实验结果的可靠性,应进行重复实验,并对结 果进行统计分析,以确定结果的稳定性和可重复性。
06
CATALOGUE
实验应用与拓展
在生物学研究中的应用
细胞生物学
用于标记和观察细胞表面 的抗原,研究细胞结构和 功能。
微生物学
用于检测和鉴别病原体, 如细菌、病毒和寄生虫。
03
解读结果的意义
解释实验结果的生物学意义,并 将其与实验目的和预期结果进行 比较。
结果分析的注意事项
排除非特异性荧光
01
在解释荧光信号时,需排除非特异性荧光的干扰,确保结果的
准确性。
重复实验验证
02
为确保结果的可靠性,需进行重复实验验证,并对结果进行统
计学分析。
结果解读的局限性
03
了解实验结果的局限性,避免过度解读或误导性解读。
免疫学
用于研究免疫系统的抗原 和抗体反应,探索免疫疾 病的发病机制。
在医学诊断中的应用
感染性疾病诊断
用于检测和鉴别各种感染性疾病的病原体,如病毒、细菌和寄生 虫。
自身免疫性疾病诊断
用于检测自身抗体,辅助诊断和治疗自身免疫性疾病。
肿瘤诊断
用于检测肿瘤标志物和癌细胞表面抗原,辅助肿瘤的诊断和分类 。
实验方法的改进与拓展
其他试剂设备
其他试剂和设备包括洗涤液、 封片剂、显微镜、荧光显微镜
等。
洗涤液用于清洗细胞或组织样 本,去除未结合的抗体和荧光
标记物。
封片剂用于固定细胞或组织样 本,防止荧光标记物的脱落。
显微镜和荧光显微镜用于观察 和检测荧光标记物,提高实验 的准确性和可靠性。
03
CATALOGUE

临床免疫实验 间接免疫荧光法测抗核抗体实验报告

临床免疫实验 间接免疫荧光法测抗核抗体实验报告

实验三、间接免疫荧光法检测血清中抗核抗体一、实验目的:1、掌握免疫荧光法的原理。

2、掌握免疫荧光法检测过程中避免非特异荧光干扰的方法。

二、实验原理:间接免疫荧光技术是利用荧光抗体标记第二抗体检测未知抗原或未知抗体(第一抗体)的方法。

以检测人血清抗核抗体(ANA)为例。

病人血清中ANA(Ab)能与各种系细胞核成分(Ag)特异性结合,此种结合的Ab(IgG型)能与荧光标记的羊抗人IgG(二抗)结合,在荧光显微镜下,细胞核显示荧光,提示血清中ANA的存在。

三、试验材料:0.1M,pH6.8PBS;小白鼠,待测血清,对照血清(阴性血清),羊抗人IgG荧光抗体、滴管、试管、孵箱、荧光显微镜等。

四、实验步骤:1、小鼠断颈处死取肝,NS漂洗,剪取肝横断面印片于玻片上,左右各一处,自然干燥;滴加无水乙醇固定,室温凉干;2、左右印片处分别盖上一片小纸片,分别滴加阳性血清和阴性血清各1滴,37℃30′;3、去除纸片,PBS冲洗1min×3次,吸干水分;4、左右印片处分别盖上一片小纸片,并滴加荧光标记羊抗人IgG(二抗)各1滴,37℃305、去除纸片,PBS漂洗1min×3次,吸干水分;6、荧光显微镜镜检。

五、实验结果:荧光显微镜下观察:细胞核发黄绿色荧光为阳性染色细胞,不发荧光为阴性;抗原片中出现阳性染色细胞为ANA 阳性,否则为阴性;阳性待检血清可作进一步稀释后测定效价。

(均质型)细胞核呈均匀一致的荧光(斑点型)细胞核内呈现斑点状荧光六、实验讨论:1、注意事项:1)制作核抗原片(印片)不宜太厚;2)滴加的血清或荧光抗体要充分盖满抗原片;3)荧光抗体孵育时要注意避光;4)染色后的片子应及时镜检,不宜放置过久。

5)注意各步骤的漂洗要充分。

2、临床意义:1)总的ANA检测在临床诊断与鉴别诊断中是一个极为重要的筛选试验。

绝大多数自身免疫性疾病均可呈阳性。

ANA阳性者进一步检测各亚类ANA抗体对明确诊断、临床分型、病情观察、预后及治疗评价有重要意义。

《间接免疫荧光法》课件

《间接免疫荧光法》课件

06
问题与展望
常见问题及解决方案
荧光染色不均
可能是由于抗体浓度过高或孵育 时间不足,解决方案是调整抗体
浓度和孵育时间。
非特异性染色
可能是由于血清内源性荧光物质干 扰,解决方案是使用去内源性荧光 物质处理。
荧光淬灭
可能是由于荧光物质不稳定,解决 方案是使用更稳定的荧光物质或采 用避光染色技术。
研究展望
01
02
03
04
医学诊断
用于检测和诊断各种疾病,如 自身免疫性疾病、感染性疾病
等。
生物学研究
用于研究细胞表面抗原、细胞 内抗原等,以及探索细胞与细
胞之间的相互作用。
农业科研
用于检测植物病毒、细菌和真 菌等病原微生物,以及研究植
物抗病性等。
环境监测
用于检测环境中的有害物质和 污染物,如重金属、农药等。
优化抗体标记技术
探索更高效、特异性和稳定的抗体标记技术 ,提高荧光染色的敏感度和特异性。
深入研究荧光物质
研究荧光物质的性质和作用机制,为提高染 色效果提供理论支持。
拓展应用领域
将间接免疫荧光法应用于更多疾病的研究和 诊断,如肿瘤、感染性疾病等。
建立标准化操作流程
制定标准化的操作流程和质控标准,提高实 验结果的可靠性和可比性。
通过使用针对特定抗原的抗体 ,间接免疫荧光法能够特异地 识别和标记目标抗原。
定位准确
间接免疫荧光法能够准确地定 位抗原的位置,有助于了解抗 原在细胞或组织中的分布情况 。
可视化结果
通过荧光显微镜观察,间接免 疫荧光法能够直观地展示抗原 的存在和分布,便于结果的解
读和分析。
局限性
抗体依赖
间接免疫荧光法依赖于针对特定抗原的抗体,如果抗体不适用或不可 获得,该方法可能无法应用。

间接免疫荧光法

间接免疫荧光法

间接免疫荧光法间接免疫荧光法(Indirect Immunofluorescence Assay,IFA)是一种常用的特异性检测技术,也是最常见的检测技术之一,可以用于检测抗原分子的特异性结合。

一、IFA的原理:在IFA技术中,使用两种不同的抗体,分别与检测抗原结合,以形成双重抗原抗体复合物,再用夹带抗体获得体外的特异性检测反应;其中,一种抗体称作抗体,另一种抗体称作夹带抗体,具有特定免疫能力,可以将抗原抗体复合物与另外特定抗原进行特异性结合,获得所需的检测反应,而后将夹带抗体对抗原抗体复合物设定与荧光探针结合,从而实现特异性检测。

二、IFA的操作步骤:1、样品处理:将抗原进行均质处理,获得悬浮液。

2、抗体处理:将样哮抗体在恒温下进行稀释,然后添加到抗原悬浮液中,放置回温处理反应,补充抗体,使抗原与抗体完全结合形成复合物。

3、夹带抗体处理:将夹带抗体加入复合物,在恒温下进行反应,以获得抗原/夹带抗体复合物,从而实现特异性检测。

4、荧光标记:将荧光探针与夹带抗体完全结合,使抗原/夹带抗体复合物呈现特定的荧光,从而实现特异性检测。

5、检测:利用适当的仪器检测复合物的活性,并完成IFA的检测。

三、IFA的应用:IFA可以直接用于病毒、细菌、植物、动物等微生物抗原的检测,也可以用于检测抗原蛋白、血清病原体等,具有一定的临床实用价值。

1、应用于病原体鉴定:通过将IFA进行优化,可以对人体和动植物病原体进行识别、诊断和鉴定,给临床实践带来重要的参考价值;2、应用于鉴定疾病:IFA还可以用于检测某种疾病的免疫检测,例如常见的疾病,如流感病毒、登革热病毒、结核分枝杆菌、沙眼衣原体、病毒性肝炎慢性病毒、HIV/AIDS等;3、应用于临床诊断:IFA可以用于对各种疾病进行鉴别诊断和检测,例如:癫痫、睑缝螨虫病、先天性心脏病、脑外膜炎、肺炎、病毒性心肌炎等疾病;4、应用于药物开发:可以在药物研究和开发中应用此技术,以研究对病原生物体或抗原分子的特异性作用,使药物开发进程更加准确、可靠;五、IFA技术优势:1、IFA是一种精确度高、特异性能强的检测技术,可实现灵敏性检测,快速和实时检测,有效提高疾病的检测效率;2、IFA有较强的合并性,可以同时结合不同的抗体,能够更好地检测抗原分子特异性反应;3、IFA具有较低的污染风险,实验中没有生物体的接触,可以有效地控。

间接免疫荧光法原理

间接免疫荧光法原理

间接免疫荧光法原理
间接免疫荧光法是一种常用的免疫学实验技术,用于检测目标物质在样品中的表达和定位。

它基于特定抗体与目标物质结合的原理,利用荧光标记的二抗来识别和定位特定抗体的位置。

该方法的步骤如下:
1. 准备样品:收集需要检测的样品,如细胞、组织或体液。

如果是组织样品,需要进行固定和切片处理;如果是细胞样品,需要将其培养在培养皿中。

2. 孵育样品:将样品与特定抗体共孵育,使特定抗体与目标物质结合。

这一步骤被称为一抗孵育,加强了对目标物质的识别和特异性。

3. 孵育引导二抗:将荧光标记的二抗与一抗结合。

这个二抗能够识别并结合到一抗上,从而引导荧光标记的二抗定位到目标物质附近。

4. 洗涤:洗涤样品,去除未结合的抗体和二抗,以减少背景噪音。

5. 荧光显微镜观察:将样品放置在荧光显微镜下观察,荧光显微镜可以激发荧光标记的二抗,使其发出可见光。

通过观察荧光信号的位置和强度,可以确定目标物质的存在和定位。

间接免疫荧光法的优点是灵敏度高、特异性好、可以同时检测
多个目标物质等。

它被广泛应用于生命科学研究和临床诊断中,如检测蛋白质、抗体、细胞标记和组织定位等。

间接免疫荧光试验

间接免疫荧光试验

六、操作步骤
1、病毒吸附:5%cpv同步接毒,3d 2、丙酮固定:80%丙酮,4 ℃,1h 3、洗涤:用 PBS 洗涤3遍 ∕ 3min 4、加入一抗:加入抗 CPV 阳性血清(1:100倍稀 释),200μL/孔,37℃湿盒中作用 3h 5、洗涤 6、加入二抗:加入 FITC 标记羊抗鼠 IgG 二抗 (1:300倍稀释)50μL,37℃闭光作用 1h; 7、洗涤 8、镜检:荧光显微镜观察,拍照,有绿色荧光者判 为阳性,无荧光者判为阴性。
二、常见荧光素特性

1)FITC:黄色结晶粉末,吸收光:490~495nm,发射 光:520~530nm,明亮的黄绿色荧光。 2)RB200:橘红色粉末,吸收光570nm,发射光 595~600nm,橘红色荧光。 3)TRITC:紫红色粉末,吸收550nm,发射光620nm, 橙红色荧光。 4)镧系:Eu、Tb 5)PE:吸收光490~560nm,发射光595nm,红色荧光。 6)其它:酶作用后产生荧光物质。

七、图示
三、分类
直接免疫荧光法
间接免疫荧光法
四、应用
将病毒接到敏感细胞上进行增殖复制, 待病价最高的时候进行间接荧光免疫实 验 用于分毒时,确定有无病毒的存在 测抗体

五、优缺点及注意事项
优点:特异性高、敏感性高、速度快 缺点:非特异性染色 注意事项:


1、每次试验应设阳性和阴性对照 2、应注意荧光抗体的质量 3、标本应避光保存
间接荧光免疫实验
2013307341 叶ห้องสมุดไป่ตู้苹
一、原理

根据抗原抗体反应的原理,先将已知的抗原 或抗体标记上荧光素制成荧光标记物,再用 这种荧光抗体(或抗原)作为分子探针检查 细胞或组织内的相应抗原(或抗体)。在细 胞或组织中形成的抗原抗体复合物上含有荧 光素,利用荧光显微镜观察标本,荧光素受 激发光的照射而发出明亮的荧光(黄绿色或 桔红色),可以看见荧光所在的细胞或组织, 从而确定抗原或抗体的性质、定位,以及利 用定量技术测定含量。
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间接免疫荧光法检测Ad-LMP2表达EBV-LMP2蛋白的活性
1 材料和仪器
293细胞
大鼠抗LMP2单克隆抗体
FITC标记山羊抗大鼠IgG抗体
荧光显微镜
2 检测方法
2.1 293细胞接种到24孔板中, 1.5~2.0×105个细胞/孔,37℃,5% CO2培养箱培养过夜,细胞生长成片。

2.2 每个细胞孔感染2.0×106VP供试品重组腺病毒,同时设置293细胞阴性对照孔。

37℃,5% CO2培养箱培养两天,细胞完全病变。

2.3 收集293细胞。

用PBS洗涤两次,重悬到100µlPBS缓冲液中,每孔10µl 涂于细胞片上,室温自然晾干。

2.4 将细胞片置于4℃丙酮中固定15分钟,PBS洗两次,室温晾干。

2.5 PBS浸泡10min,用PBS(含0.05%Triton-X100)浸泡通透25min。

2.6 用10%胎牛血清室温封闭40min。

2.6 细胞孔使用1:20 PBS稀释抗体,置于湿盒中,37℃孵育1小时。

PBS洗8~9遍,保持湿润。

2.7 覆盖1:40稀释的FITC标记(PBS稀释)的羊抗大鼠IgG,置于湿盒中,37℃孵育30分钟。

PBS洗8~9遍,室温晾干。

(如用PBS有颗粒沉淀)
2.8 伊文氏蓝负染5分钟。

超纯H2O洗3遍,室温晾干。

2.9 50%甘油封片。

2.10 显微镜下观察照相。

3 结果判定
显微镜下观察阴性对照孔细胞呈红色,供试品孔细胞可以看到明显的绿色荧光,即判定为阳性。

检测结果应为阳性。

注:1、每一步均需晾干,细胞浓度可以比较高。

2、水洗效果要好,无盐粒子颗粒。

3、丙酮固定过夜效果较好。

PBS稀释。

当然最好用封闭液直接稀释,再加一点TritonX100效果好。

培养液成分太多了。

而且固定之后细胞都死了,用培养液没什么意义,只要保证其pH等条件适合就好了。

抗体说明书上都会有推荐的稀释倍数。

上网查一下,有很多protocol。

一般一比几百到一万都有,依抗体而定。

可以4度过夜,这样染色效果好。

二抗一般较便宜,一般1:50到1:200多。

Jdzhangwenjun525@
1. 直接免疫荧光法测抗原
(1)基本原理
将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。

其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少。

缺点是敏感性偏低;而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。

此法常用于细菌、病毒等微生物的快速检查和肾炎活检、皮肤活检的免疫病理检查。

(2)试剂与仪器
λ磷酸盐缓冲盐水(PBS):0.01mol/L,pH7.4
λ荧光标记的抗体溶液:以0.01mol/L,pH7.4的PBS进行稀释
λ缓冲甘油:分析纯无荧光的甘油9份+ pH9.2 0.2M碳酸盐缓冲液1份配制
λ搪瓷桶三只(内有0.01mol/L,pH7.4的PBS 1500ml)
λ有盖搪瓷盒一只(内铺一层浸湿的纱布垫)
λ荧光显微镜
λ玻片架
λ滤纸
λ37℃温箱等。

(3)实验步骤
①滴加0.01mol/L,pH7.4的PBS于待检标本片上,10min后弃去,使标本保持一定湿度。

②滴加适当稀释的荧光标记的抗体溶液,使其完全覆盖标本,置于有盖搪瓷盒内,保温一定时间(参考:30min)。

③取出玻片,置玻片架上,先用0.01mol/L,pH7.4的PBS冲洗后,再按顺序过0.01mol/ L,pH7.4的PBS三缸浸泡,每缸3-5 min,不时振荡。

④取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,加一滴缓冲甘油,以盖玻片覆盖。

⑤立即用荧光显微镜观察。

观察标本的特异性荧光强度,一般可用“+”表示:
(-)无荧光;(±)极弱的可疑荧光;(+)荧光较弱,但清楚可见;(++)荧光明亮;(+ ++ ++++)荧光闪亮。

待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上,而各种对照显示为(±)或(-),即可判定为阳性。

(4)注意事项
1)对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。

2)染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从10 min到数小时,一般30 min已足够。

染色温度多采用室温(25℃左右),高于37℃可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2℃的低温,延长染色时间。

低温染色过夜较37℃30 min效果好的多。

3)为了保证荧光染色的正确性,首次试验时需设置下述对照,以排除某些非特异性荧光染色的干扰。

①标本自发荧光对照:标本加1-2滴0.01mol/L,pH7.4的PBS。

②特异性对照(抑制试验):标本加未标记的特异性抗体,再加荧光标记的特异性抗体。

③阳性对照:已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体。

如果标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光,阳性对照和待检标本呈强荧光,则为特异性阳性染色。

4)一般标本在高压汞灯下照射超过3min,就有荧光减弱现象,经荧光染色的标本最好在当天观察,随着时间的延长,荧光强度会逐渐下降。

2.间接免疫荧光法测抗体
(1)基本原理
染色程序分为两步,第一步,用未知未标记的抗体(待检标本)加到已知抗原标本上,在湿盒中37℃保温30min,使抗原抗体充分结合,然后洗涤,除去未结合的抗体。

第二步,加上荧光标记的抗球蛋白抗体或抗IgG抗体。

如果第一步发生了抗原抗体反应,标记的抗球蛋白抗体就会和已结合抗原的抗体进一步结合,从而可鉴定未知抗体。

(2)试剂与仪器
λ磷酸盐缓冲盐水(PBS):0.01mol/L,pH7.4
λ缓冲甘油:分析纯无荧光的甘油9份+ pH9.2 0.2M碳酸盐缓冲液1份配制。

λ荧光标记的抗人球蛋白抗体:以0.01mol/L,pH7.4的PBS进行稀释。

λ搪瓷桶三只(内有0.01mol/L,pH7.4的PBS 1500ml)
λ有盖搪瓷盒一只(内铺一层浸湿的纱布垫)
λ荧光显微镜
λ玻片架
λ滤纸
λ37℃温箱等。

(3)实验步骤
1)滴加0.01mol/L,pH7.4的PBS于已知抗原标本片,10min后弃去,使标本片保持一定湿度。

2)滴加以0.01mol/L,pH7.4的PBS适当稀释的待检抗体标本,覆盖已知抗原标本片。

将玻片置于有盖搪瓷盒内,37℃保温30min。

3)取出玻片,置于玻片架上,先用0.01mol/L,pH7.4的PBS冲洗1-2次,然后按顺序过0. 01mol/L,pH7.4的PBS三缸浸泡,每缸5min,不时振荡。

4)取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,滴加一滴一定稀释度的荧光标记的抗人球蛋白抗体。

5)将玻片平放在有盖搪瓷盒内,37℃保温30min。

6)重复操作3。

7)取出玻片,用滤纸吸去多余水分,滴加一滴缓冲甘油,再覆以盖玻片。

8)荧光显微镜高倍视野下观察,结果判定同直接法。

(4)注意事项
1)荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,时间过长,会使荧光减弱。

2)每次试验时,需设置以下三种对照:
①阳性对照:阳性血清+荧光标记物
②阴性对照:阴性血清+荧光标记物
③荧光标记物对照:PBS+荧光标记物
3. 已知抗原标本片需在操作的各个步骤中,始终保持湿润,避免干燥。

4. 所滴加的待检抗体标本或荧光标记物,应始终保持在已知抗原标本片上,避免因放置不平使液体流失,从而造成非特异性荧光染色。

For immunof luorescence analysis, cells were grown on coverslips, fixed in 4% paraformaldehyde for 20 min, and permeabilized with 0.5% Triton X-100 (Sigma) in PBS for 15 min, both at room temperature.。

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