膜片钳原理PPT课件
膜片钳技术讲座幻灯

1. 膜片钳技术简介
1976 年 德 国 马 普 生 物 物 理 化 学 研 究 所 Neher 和 Sakmann首次在青蛙肌细胞上用双电极钳制膜电 位的同时,记录到乙酰胆碱(Acetylcholine, ACh) 激活的单通道离子电流,从而产生了膜片钳技术 (patch clamp techniques)。 1980 年 Sigworth 等 获 得 10-100GΩ 的 高 阻 封 接 (Giga-seal),1981年Hamill和Neher等对该技术 进行了改进,引进了全细胞记录技术,从而使该 技 术 更 趋 完 善 , 1983 年 10 月 , 《Single-Channel Recording》一书的问世,奠定了膜片钳技术的里 程碑。
内向电流(Inward current) 从细胞外进入细胞内的正离子(如Na+ )电流或从
细胞内流向细胞外的负离子(如Cl-)电流。
外向电流(Outward current)
从细胞内流向细胞外的正离子(如K+)电流或从细
胞外流向细胞内的负离子(如Cl-)电流。
3. 膜片钳系统中的电阻
膜电阻(Membrane resistance, Rm) 指脂质双分子层的跨膜电阻,反映离子是否容易 穿透细胞膜。在细胞膜离子通道关闭时, Rm很大, 可达几百MΩ。不同于膜电容, 各种细胞的Rm 变异 较大。 膜输入阻抗(Membrane input resistance, Rin) 对 Rm 的测量是通过对膜输入阻抗的测量间接得到 的。给细胞膜施加一系列刺激方波,测定跨膜电流, 根据欧姆定律即可求出Rin 。注意要在形成全细胞记 录时测定,在形成高阻封接时, Rin =Rseal。
膜片钳patch-clampppt课件

心肌钠通道,激活所需要的电压高、失活速度快、 引起动作电位(action potential, AP)的0期去极化 。
三、离子通道的分子结构及门控机制
1.电压门控离子通道的分子结构 钠、钙和钾电压门控通道在分子结构上有许多相似之处,离
子通道蛋白是多亚基(subunits)构成的复合体。其中,构成孔道部 分的是α亚基。各种电压依赖的离子通道的α亚基均在膜上形成四个 跨膜区(D1-D4),钠、钙通道的四个跨膜区由共价键连接成四倍体 位于同一肽链,整个亚基只有一个N-末端和一个C-末端。钾通道的 α亚基只有一个跨膜区,功能性钾通道是四个α亚基由非共价键连接 而成的四聚体。每个跨膜区由6个呈α螺旋式的跨膜片段 (transmembrane segmants, S1-S6)及其间的连结肽链所组成。连接 S5-S6的肽链部分贯穿于膜内,是形成亲水性孔道而有选择性地让离 子通过的部分,称为孔道区(pore region)或P区。另一个重要的肽 段是S4 , S4共带4~8个正电荷,当膜电位变化时,S4螺旋构型即发 生变化,通道开放,故S4被称为电压门控性离子通道的电压感受器 (voltage sensor)。
2.内向整流钾通道的分子结构
具有内向整流性钾通道,主要指KIR,KACh, KATP等,他们与Kv通道一样由4个α亚单位对称 排列而成,但每个α亚单位只有2个跨膜螺旋片 段(M1和M2),两者由H5连接。
3.离子通道的门控机制
电压依赖性钠通道受膜电位的影响,在 不同电压影响下,通道蛋白发生构象变 化而使通道不断转换于静息态(resting state)、开放状态(open state)和失活 状态(inactive state)。
膜片钳与ltp-ppt课件

LTP原理
电生理记录上反映为EPSP 或EPSC幅度的增加,即 LTP。
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记录电极
~
海马脑片LTP
海马脑片上电极的放置
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大鼠体重:180-240g
在体LTP
刺激电极: 采用针灸针,多为 双极电极 定位坐标(mm):AP 8,LM 4, DV 3.2-3.5 记录电极:采用针灸针,为 单极电极 定位坐标(mm): AP 4,LM 2, DV 3.2-3.5
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膜片钳技术的应用
细胞特性的研究 离子通道的鉴别 电压门控性离子通道的动力学特性研究 突触联系、突触传递的研究 疾病机制研究 药物筛选 其他
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突触可塑、学习记忆及其机制的研究
长时程增强(LTP)是评价学习记忆及其突触可塑的常用的电 生理指标。目前,海马脑片离体实验己经广泛用于学习记忆方面 的研究,利用膜片钳技术记录脑片LTP,可在细胞水平研究学习 记忆的机制。 当今从不同方面对突触LTP与学习记忆的关系进行了大量的研 究,其结果大致可概括为: 影响LTP的因素确实对学习研究过程产生明显的影响 影响学习过程的因素也影响LTP形成 诱导海马脑区的LTP形成可提高学习记忆活动,学习过程中伴 有海马脑区LTP的形成。
(1)一般电学性质:通过I-V关系计算单通道电导,观察通道有无整流。通过离子选 择性、翻转电位或其它通道激活条件初步确定通道类型。 (2)动力学:开放时间、开放概率、关闭时间、通道的时间依赖性失活、开放与关闭 类型(簇状猝发样开放与闪动样短暂关闭),化学门控性通道的开、关速率常数等。 (3)通过对全细胞激活曲线或失活曲线的分析,可得到半数激活或失活电压Vh及斜率 因子K。 (4)药理学:阻断剂、激动剂或其它调制因素对通道活动的影响。 (5)综合分析得到最后结论。
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膜片钳的放大器
膜片钳放大器是膜片钳技术的核心仪器,放大器主 要有差分放大器、频率提升部分、加法器、瞬时补偿和 钳位放大器等部件组成。放大器的核心部分是差分放大 器,此差分放大器是一电流-电压转换器,可将记录到的 电流以电位差的形式输出。到目前为止放大器的发展已 经经历了三代的发展过程。目前普遍应用的膜片钳放大 器有德国HEKA公司的EPC系列(最新的产品是EPC-9)和 美国Axon公司生产的Axon Patch 系列(最新产品是Axon200B),日本NIHONKOHDEN公司的CEZ系列。国产放 大器有华中理共大学的PC-Ⅰ和 PC-Ⅱ系列(最新的产品 是PC-ⅡB),上海生理所的IP-Ⅰ型等。
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电极内液可更换为药物或毒素等非生理 性成分,研究药物对电压依赖性通道的影响, 从而对通道开关动力学的作用达到从微观水 平上研究药物作用的功能机制。也可任意改 变膜片内外液的浓度组分,研究各组分对膜 通 透 性 的 影 响 , 值 得 注 意 的 是 H+ 、 Ca2+ 浓 度要适宜。也可用相应的激动剂作用于膜受 体,在监测离子通道电流流动过程中,了解 经G蛋白介导的第二信使作用,研究跨膜信 息转导的途径。
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膜片钳技术的原理
膜片钳技术是用微管电极接触细胞膜,以千兆欧 姆(gigaohm seal GΩ)以上的阻抗使之封接,使于电 极尖开口处相接的细胞膜的小区域(膜片patch)与其 周围在电学学上分隔,在此基础上固定电位,对此膜 片上的离子通道的离子电流(pA级最小可达0.06pA) 进行检测记录的方法。
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膜片钳的四种工作模式
1.细胞贴附式(cell-attached) 2.全细胞模式(whole -cell recording) 3.内面向外式(inside-out) 4.外面向外式(outside-out)
膜片钳实验技术入门---基本原理与操作

膜片钳实验技术入门------基本原理与操作关兵才 李国华 刘理望按:本文乃于2003年根据较旧型号的仪器写成,后被《机能实验科学》 (郑先科主编,北大医学版,2006)收入。
因新旧仪器基本原理和操作步骤大同小异,现对原文略作修改和标注,供同学们参考。
【实验目的】1. 了解膜片钳技术的基本原理和操作。
2. 初步学习电压依赖性离子通道电流的基本记录方法。
【实验原理】一、膜片钳技术原理简介膜片钳(patch clamp)是一种主要用于检测细胞膜离子通道活动的电生理技术,按工作方式可区分为电压钳(voltage clamp)和电流钳是最基本的工作方式,即对细胞膜电位进行人为控制,如将膜电位钳制于某一固定水平,或在此基础上再施以阶跃(step)式或斜坡式(ramp)电压刺激,同时记录跨膜电流,从而分析细胞膜通道的活动。
电流钳即人为控制经微电极对细胞进行注射的电流(等于离子通道电流与细胞膜电容电流之和),同时记录膜电位及其变化。
若注射电流为零即常用的零位钳流,用于测量细胞膜静息电位,若注射方波脉冲刺激电流,用于诱发、观测动作电位。
另外,膜片钳技术还常用于观测细胞膜电容, 从而推测分泌细胞的活动情况。
下面主要介绍其电压钳工作方式的基本原理。
(注:在电生理资料中,因通常将细胞外液和记录系统的“地”点相连作为参考点即零电位点,所以电位和电压两个概念经常混用。
)根据膜片钳实验中受检细胞膜的型式(configuration)不同,又可将膜片钳分为全细胞式(whole-cell)、细胞贴附式(cell-attached 或on-cell)、内面朝外式(inside-out)、外面朝外式(outside-out)等四种模式。
(一)全细胞式1.电压钳制和电流记录的实现图9-9为全细胞式膜片钳工作原理示意图。
图9-9 全细胞膜片钳实验原理示意图A1:运算放大器;A2:单倍增益差动放大器;R f:反馈电阻;V p:电极电位(A1反向输入端电位);V c:A1同向输入端电位;C in:输入端杂散电容;C p:电极电容;Rs:串联电阻;C m:细胞膜电容;R m:细胞膜电阻;E m:细胞膜内在电位(指钳压时的细胞膜诸通道状态决定的内在Goldman-Hodgkin-Katz平衡电位);V o:A2输出端电位;V-offset:偏移电位补偿电位;C c:用于电容补偿的电容;V c(app):表观钳制电压即欲施加于受试膜片的电压;图中⊕和表示求和电路将充有电解质溶液的玻璃微电极(glass microelectrode或 recording pipette)利用负压紧密吸附于细胞表面,形成吉欧即千兆欧(109Ω)级高阻封接,进一步对微电极内施加负压、将放大器(以下简称运放)A1在深度负反馈工作状态下的“虚短路(virtual short circuit)”原理实现,即只要A1工作于线性范围内,其反向输入端的电位V p总是等于同向输入端的电位V c,这两个输入端之间虽非短路却类似于短路。
膜片钳技术原理及相关基本知识ppt课件

冲动,最终形成嗅觉或味觉。
• 机械门控通道
一类是牵拉活化或失活的离子通道,另一类是剪切力敏 感的离子通道,前者几乎存在于所有的细胞膜,研究较多 的有血管内皮细胞、心肌细胞以及内耳中的毛细胞等,后
者仅发现于内皮细胞和心肌细胞
• 水通道
2003年诺贝尔化学奖:
Pete Agre、 Roderick MacKinnon
失活 状态
Inactive
state
复活
recovery 静息 状态
resting state
二、门控特性(Gating):
失活状态不仅是通道处于关闭状态, 而且只有在经过一个额外刺激使通道从 失活关闭状态进入静息关闭状态后,通 道才能再度接受外界刺激而激活开放。
失活
inactivation
开放 状态
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History of Ion Channel Study
• 1955年,Hodgkin和Keens应用电压钳(Voltage
clamp)在研究神经轴突膜对钾离子通透性时发现, 放射性钾跨轴突膜的运动很像是通过许多狭窄空洞 的运动,并提出了“通道”的概念。
• 1963年,描述电压门控动力学的Hodgkin-Huxley模
善,真正开始了定量研究,建立了H-H模型(
膜离子学说),是近代兴奋学说的基石。
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• 1948年,Katz利用细胞内微电极技术记录到了
终板电位;1969年,又证实N-M接触后的Ach 以“量子式”释放,获1976年Nobel奖。
• 1976年 ,德国 的Neher 和Sakmann 发明Patch
激活
activation
open state
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(二) 受体:细胞膜或细胞内能与某些化学物质(递质、调质、激素) 特
异性结合并产生生物效应的特殊分子。细胞膜上涉及到离子通道的主要受体:
Glu能离子型受体
激动剂
拮抗剂
AMPA
GluR1 Glu
CNQX
GluR2 AMPA
GluR3
GluR4
Kainate
GluR5 Glu
CNQX
GluR6 KA
• 配制切片液及灌流液ACSF,冻存切片液至冰水混合态 • 二元气饱和ACSF • 动物麻醉、断头、取脑、切片 • ACSF中孵育脑片至少30min • 拉制玻璃电极 • 脑片入记录槽,持续ACSF灌流1-3ml/min • 低倍镜定位,IR-DIC镜选择靶细胞
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• 玻璃微电极充灌电极内液(预配),并固定于电极夹持器 • 维持电极正压,入液,补偿液接电位 • 操纵电极尖端至靶细胞上方,压之有凹痕(快) • 撤正压,予负压,予半量钳制电压,GΩ(1min 内)封接
1. 结构研究:生化确定蛋白质氨基酸序列+X线衍 射确定结构+……
2.功能研究:电生理技术(膜片钳) +……
3.结构和功能相结合:电生理技术(膜片钳) +转 基因技术+……
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电流钳----测电压
向细胞内注入恒定或变化的电流,记录相应膜电位变化
电压钳----测电流
为负反馈系统。注入电流,同时钳制电压于固定的某值,此时注入电流恰 好与离子通道开放产生的离子流大小相等,方向相反,以此得知该离子流大 小及方向。
后予全量钳制电压
• 补偿C-fast,破膜 • 补偿C-slow,稳定10-15min
【医学PPT课件】1991年诺贝尔生理医学奖-膜片钳技术

• 应用膜片钳技术可证明受体的存在并进行受体分 型,即通过快速换液装置加相应的激动剂、拮抗 剂及变构性调制剂,记录膜单通道的离子电流, 并根据受体的动力学及其它特性来证明所要检测 的受体。
• 膜片钳技术扩展了电生理技术的应用范围,如以 往因技术缘故难以研究哺乳动物的小细胞或脆性 很大的细胞,而今用膜片钳技术则可进行研究。
膜片钳技术原理图
Electrophysiology-Apparatus
Faraday cage
Microscope
CCD Camera
Vibration Isolation Table
Micro-Manipulators Remote Controller
Amplifiers
Electrophysiology-Apparatus
DAD-VC system
MicroManipulators
CCD Camera
Patch clamp
膜片钳法的各种模式
• 首先建立的单通道记录法(single channel recording)是细胞吸附式(cell-attached mode),其 后又建立了膜内面向外模式(inside-out)和膜外面 向外(outside-out)的模式。后来,又分别建立了开 放细胞吸附内面向外模式(open cell-attached insideout mode)和穿孔囊泡外面向外模式(perforated cell-attached inside-out mode)。全细胞记录法是指 在常规的方法的基础上,附加穿孔膜片(perforated patch)的模式。
1991年诺贝尔生理医学奖
膜片钳技术
主讲人:唐国奎
获奖者简介
Neher出生于1944年,德 国人
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全细胞模式中,电极内液与细胞内液扩 散混合会改变胞内液成分而影响细胞的电变 化,还使得全细胞记录经常发生run down现 象。用穿孔膜片钳法(perforated patch)做 成全细胞模式记录即即可避免此情况,即把 制 霉 菌 素 ( nystatin ) 和 二 性 霉 素 (amphotericns)充灌到微电极中,与细胞膜 的类固醇作用后,形成只允许一价离子通过 而较大颗粒成分不能通过的小孔,这些小孔 为导电性孔道,不会影响所记录的电流。相 比之下制霉菌素效果较好。
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前言
一般认为,电生理学研究起于1791年,基本上随 电学仪器的进步而发展的,主要经历了微电极技术、 电压钳技术和膜片钳技术。微电极技术由来以久,在 此基础之上发展起来 的电压钳技术为阐明细胞兴奋 性的生理机制作出了巨大贡献。在电压钳的基础上, 1976年德国马普所的E.Neher和B.Sakman在电压钳的基 础上建立了膜片钳技术(patch clamp recording technique),并首次报道了用膜片钳技术记录到的细胞 膜离子通道电流, 但是实验记录的背景噪声仍然很大。
膜片钳技术包括细胞的分离和膜处理技术,膜片钳放 大器等试验仪器的安装和调试,微电极的制作,数据 的采集和处理技术等。
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膜片钳实验的构成
膜片钳实验仪器设备主要有放大器、微 型操纵器(微超)、倒置显微镜、防震台、 屏蔽笼、灌流槽和数据采集和处理设(计算 机 ) 。 其 中 膜 片 钳 放 大 器 ( amplifier ) 、 微 型操纵器(微操micromanipulator)、倒置显 微镜(inverted microscope)是膜片钳实验区别 于一般电生理实验所需要的仪器。
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合格的微电极是成功封接细胞膜的基本条件
膜片钳实验要成功的封接,一是设法造成 干净的细胞表面,二是制成合格的电极。电极 采用两步拉制工艺。电极的充灌是利用毛细管 由尖端通过虹吸作用吸入溶液,再用注射器连 接的微细塑料管,由电极粗端插入电极尖端作 反向充灌,避免有气泡留在电极尖端。每一种 标本的制备方法各不相同,在此不详细介绍。
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膜片钳的四种工作模式
1.细胞贴附式(cell-attached) 2.全细胞模式(whole -cell recording) 3.内面向外式(inside-out) 4.外面向外式(outside-out)
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以全细胞模式为例对膜片钳作一简要介绍
在倒置显微镜下,使微电极逐渐靠近细胞,在微 电极接触细胞的同时给与微电极一个小的负压,形成 当吉欧封接,再向微电极管内加入一个小的负压,使 电极覆盖下的细胞膜破裂(rupture),形成电极内液 和胞内液相通,但与浴池内的溶液绝缘,形成全细胞 模式。全细胞模式是记录全细胞面积的而不是小片膜 的离子电流,虽然电极内的膜片被吸破,但微电极与 细胞的封接阻抗很高(100兆欧),这是保持全细胞 记录的重要条件。
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膜片钳的放大器
膜片钳放大器是膜片钳技术的核心仪器,放大器主 要有差分放大器、频率提升部分、加法器、瞬时补偿和 钳位放大器等部件组成。放大器的核心部分是差分放大 器,此差分放大器是一电流-电压转换器,可将记录到的 电流以电位差的形式输出。到目前为止放大器的发展已 经经历了三代的发展过程。目前普遍应用的膜片钳放大 器有德国HEKA公司的EPC系列(最新的产品是EPC-9)和 美国Axon公司生产的Axon Patch 系列(最新产品是Axon200B),日本NIHONKOHDEN公司的CEZ系列。国产放 大器有华中理共大学的PC-Ⅰ和 PC-Ⅱ系列(最新的产品 是PC-ⅡB),上海生理所的IP-Ⅰ型等。
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电极内液可更换为药物或毒素等非生理 性成分,研究药物对电压依赖性通道的影响, 从而对通道开关动力学的作用达到从微观水 平上研究药物作用的功能机制。也可任意改 变膜片内外液的浓度组分,研究各组分对膜 通 透 性 的 影 响 , 值 得 注 意 的 是 H+ 、 Ca2+ 浓 度要适宜。也可用相应的激动剂作用于膜受 体,在监测离子通道电流流动过程中,了解 经G蛋白介导的第二信使作用,研究跨膜信 息转导的途径。
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膜片钳实验中几个常用术语
吉欧封接(gigant seal) 指玻璃微电极与细胞 表面接触紧密,在电学上与细胞膜的其它部分相 分离。
破膜(rupture) 是指达到吉欧封接后,再 施加一个小的负压,使细胞膜破裂,从而形成全 细胞模式。
run-down 在全细胞模式中破膜后,细胞 浆在负压的作用下进入微电极中,细胞很快就萎 缩。正常情况下,全细胞模式可以维持1个小时 左右。
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因为膜片钳实验所用的标本多为急性分离 的细胞或是培养的细胞,故需要倒置显微镜放 置标本。目前性能最好的倒置显微镜是德国产 的Zeiss显微镜。
在膜片钳实验中,微操起着十分重要的作 用,微操的性能的优劣主要体现在稳定性上。 现在使用的微操主要有机械操纵性、三维液压 操纵性、压电操纵性3种,其中以压电微超的 稳定性最佳。其它相关设备在此不一一介术是用微管电极接触细胞膜,以千兆欧 姆(gigaohm seal GΩ)以上的阻抗使之封接,使于电 极尖开口处相接的细胞膜的小区域(膜片patch)与其 周围在电学学上分隔,在此基础上固定电位,对此膜 片上的离子通道的离子电流(pA级最小可达0.06pA) 进行检测记录的方法。
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1980年Neher于在一次实验中偶然的向微电极 内施加一点负压(20-30cmH2O),封接电阻骤然增 大了两个数量级,达到10-100GΩ,且背景噪声显 著减低,后来将这种电阻大于gigaΩ(109 Ω)的封接 称为giga-seal。1981年,Hamill等在实现giga-seal 的基础上建立了膜片钳记录的4种基本模式,在此 基础上,以后有发展了许多新的记录模式,从而大 大扩展了它的应用领域。Neher 和Sakman 也因此获 得1991年度的诺贝尔医学和生理学奖。当今全世界 每年有1000篇以上采用膜片钳技术的研究论文发表。