蓝莓组织培养与快速繁育技术分析

蓝莓组织培养与快速繁育技术分析
发表时间:2019-06-21T16:40:22.097Z 来源:《工程管理前沿》2019年第06期作者:孙丰
[导读] 采用改进的MW培养基+适量植物激素的组合成功概率最高;生根阶段采用半营养MW培养基+NAA的组合,生根状况最佳。

大兴安岭地区农林科学院 165000
【摘要】本文以栽种于四川的蓝莓无性繁殖品系为外植体来源、对比试验为手法,测试了一系列培养基配方、植物激素种类与用量对蓝莓组织培养的影响,并最终得出结论:在蓝莓的启动与分化培养阶段,采用改进的MW培养基+适量植物激素的组合成功概率最高;生根阶段采用半营养MW培养基+NAA的组合,生根状况最佳。

【关键词】蓝莓;组织培养;对比实验
蓝莓(Blueberry)又名越橘, 属于杜鹃花科乌饭属 (Vaccinum)多年生落叶或常绿果树, 呈灌木状生长。

因为果实外表呈深蓝色,故而得名。

蓝莓原产于北美,但是实际上在北半球均有分布。

我国的蓝莓多生长在华东、华中及东北地区,多为海拔在400至1400米的丘陵或山地地区。

其果实为蓝色近圆形浆果,单果重0.5~2.5克,最大可达3.5~5.0克。

蓝莓果实具有酸甜适中、香气宜人、果核极小等优点,既可作为水果生食,又可以作为加工果汁、果酒、果干的原料。

蓝莓的营养相当丰富,每百克蓝莓鲜果中含有约550毫克蛋白质、500毫克左右脂肪、大约14克碳水化合物;而维生素含量也普遍高于其他水果。

蓝莓对气候、土壤的要求很低,适应能力极强,而且病虫害很少,故种植过程中一般无需考虑施用农药。

同时,蓝莓果实中含有大量花青素、鞣酸等物质,对于人体细胞抗氧化、减缓衰老有很好的保健作用,故被誉为“水果之王”。

本文对蓝莓茎段组织培养技术作了详细的探讨,现展示如下。

1、材料与方法
1.1蓝莓品系
本次实验采用的是日本佐贺县上场营农中心引进的南、北高丛杂交无性后代种苗中,适应四川生长环境最佳的18A、18B、18C三个品系。

1.2无菌材料的制取
将外植体表面用洗衣粉洗净,置于流水下冲洗30min,然后于超净工作台上用70%乙醇进行表面灭菌。

1min后采用0.1%氯化亚汞溶液继续浸泡10min,浸泡完毕后用无菌水冲洗5次。

冲洗完毕的外植体在解剖镜下去掉芽鳞,再用0.1%氯化亚汞溶液消毒4min,无菌水冲洗5次,最后将枝条切成0.5~1.0cm长的、带腋芽的茎段即可。

1.3实验方法
本次实验采取的培养基是在MS培养基和WPS培养基基础上改良的MW培养基,分别加入不同浓度的BA和NAA制成。

本文的目的之一便是从上述不同植物激素配比的培养基中选出最适合蓝莓组织培养的配比。

培养基制成之后,调节pH至4.0~5.0,在121摄氏度、131kPa的条件下灭菌20min。

植株培养温度(24±2)摄氏度,每日光照16个小时,亮度控制在(1600±200)lx。

2结果与分析
2.1培养基与外植体形式对初始分化的影响
本节分别取MS、WPS、MW三种培养基与休眠芽、嫩芽两种外植体形式进行了六组实验。

实验结果证明,使用MW培养基作培养环境、嫩芽为外植体的组合具有最高的生长分化率(~86%),而且采用新抽嫩茎作为外植体的消毒过程十分简便、污染率低,是最佳的培养基与外植体方案。

2.2激素的种类对蓝莓芽组织培养的影响
以改良的MW培养基为基础,加入不同类型、不同浓度的植物激素以及其组合(其中第一组试验是对照组,不额外添加任何植物激素),对蓝莓芽分化情况作对比。

具体搭配如下表:
B组合中只添加了低浓度的生长素NAA,未添加细胞分裂素,导致只有个别南亚完成了分化,没有形成植株;C组合只添加了细胞分裂素BA,未添加生长素,也只有少量的个体完成了分化,形成的苗数量很少。

D组合只添加少量细胞分裂素KT,结果和C组类似。

而结合使用了细胞分裂素与生长素的E、F组合,其分化生长的状况明显更好。

所以,在培养基中同时加入适量的细胞分裂素和生长素,对植株的生长分化有明显的促进作用。

2.3激素的浓度对蓝莓芽组织培养的影响
本节将蓝莓嫩芽培养瓶分为12个批次,平均分配给2个对照组:甲组6个批次全部添加浓度为0.05的NAA,然后向其中添加不等量的BA,浓度分别为0/0.1/0.3/0.5/0.8/1.0 ;乙组6个批次的处理方式与甲组类似,所有培养瓶中均添加浓度为0.5的BA,然后按照。

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蓝莓组培与快繁技术研究

蓝莓组培与快繁技术研究

蓝莓组培与快繁技术研究房小晶;李永霞;文光琴;聂飞【摘要】为建立有效的蓝莓快繁体系,以蓝莓茎段为外植体,研究了不同消毒时间和不同配比激素对蓝莓茎段愈伤组织诱导的影响.结果表明:先用75%酒精消毒15 s,再用0.1%氯化汞消毒8 min,蓝莓茎段成活率最高,达到85.7%.以MS和WPM为基本培养基,通过添加不同配比的6-BA、NAA、ZT植物激素,探讨外植体愈伤组织的诱导.结果表明:愈伤组织诱导的最佳培养基为WPM+ ZT 1.5 mg/L(以上培养基中均加入蔗糖2.0%,琼脂0.8%,pH值为5.6),其诱导率高达88%,此研究结果可为蓝莓组培快繁体系的建立提供依据.【期刊名称】《种子》【年(卷),期】2014(033)009【总页数】3页(P118-120)【关键词】蓝莓;组织培养;快速繁殖【作者】房小晶;李永霞;文光琴;聂飞【作者单位】贵州省植物园,贵阳 550004;贵州省植物园,贵阳 550004;贵州省植物园,贵阳 550004;贵州省生物研究所,贵阳 550009【正文语种】中文【中图分类】S663.1蓝莓(Blueberry)属杜鹃花科,越橘属植物,多年生灌木小浆果果树。

蓝莓果实营养成分丰富,具有防止脑神经老化、抗癌软化血管、增强人机体免疫等功能[1]。

目前蓝莓苗的市场需求大,而传统的种子和扦插繁殖法繁殖率低,时间长,还可能退化[2];随着植物组织培养技术的日益完善,其应用越来越广泛。

利用快速繁殖技术可以快速、高效地进行蓝莓的繁殖[3]。

本研究通过组织培养的方法,研究蓝莓组培快繁中的关键技术[4,5],为蓝莓规模化快繁提供科技支撑。

1.1 试验材料蓝莓的茎段,来源于贵州麻江县蓝莓基地,采集时间是7月份。

1.2 试验设计与方法1.2.1 培养条件pH值为5.6,培养室温度为(23±1)℃,光照强度1 000~2 000 lx, 光照时间为12 h/d,不定期紫外线消毒。

《蓝莓快繁及诱导加倍技术的研究》

《蓝莓快繁及诱导加倍技术的研究》

《蓝莓快繁及诱导加倍技术的研究》一、引言蓝莓作为一种营养丰富、口感独特的水果,深受消费者喜爱。

然而,由于蓝莓的繁殖周期长、种植成本高,导致其市场价格较高,影响了蓝莓的普及程度。

因此,开展蓝莓快繁及诱导加倍技术的研究具有重要的实际意义。

本文旨在研究蓝莓快繁和诱导加倍技术的关键技术,为蓝莓的高效种植和大规模推广提供理论依据。

二、蓝莓快繁技术研究1. 材料与方法本研究采用组织培养法进行蓝莓快繁。

选取生长健壮、无病虫害的蓝莓母株作为外植体,通过消毒处理后,将其切割成适当大小的茎段或叶片,接种于含有适宜培养基的组培瓶中。

2. 培养条件培养室温度控制在(25±2)℃,光照强度为2000 lx,光照时间为16小时/天。

每隔一段时间进行移栽换瓶处理,同时进行常规的营养元素添加。

3. 结果与讨论(1)经过不断试验优化,我们发现以MS培养基为基础的培养基配方能够有效地促进蓝莓的外植体生长和繁殖。

同时,适宜的生长环境对蓝莓的快繁也有重要影响。

(2)通过观察和记录蓝莓植株的生长情况,我们发现快繁技术可以显著缩短蓝莓的繁殖周期,提高繁殖效率。

此外,通过多次继代培养,可以实现蓝莓植株的遗传稳定性。

三、蓝莓诱导加倍技术研究1. 材料与方法本研究采用植物生长调节剂进行蓝莓诱导加倍。

选取生长旺盛的蓝莓组培苗作为实验材料,通过施加适宜浓度的植物生长调节剂进行诱导处理。

2. 诱导条件诱导处理后,将组培苗放置在适宜的生长环境下进行培养。

定期观察并记录组培苗的生长情况及染色体加倍情况。

3. 结果与讨论(1)通过实验发现,适宜浓度的植物生长调节剂能够有效地诱导蓝莓组培苗的染色体加倍。

在适宜的温度、光照等条件下,能够促进加倍细胞的分裂和生长。

(2)在诱导过程中,我们观察到加倍后的蓝莓植株具有更强的生长势和抗病性。

此外,经过多次实验和筛选,我们可以确定最佳的植物生长调节剂浓度和处理时间。

四、结论与展望本文研究了蓝莓快繁及诱导加倍技术的关键技术,通过组织培养法和植物生长调节剂的应用,实现了蓝莓的高效繁殖和染色体加倍。

浅析蓝莓盛世组培快繁技术

浅析蓝莓盛世组培快繁技术

园艺园林浅析蓝莓盛世组培快繁技术孙淼淼(庄河市农业技术推广中心, 辽宁 庄河 116400)摘要:本文以盛世茎段作为外植体试验材料,研究了不同培养基对诱导率、增殖倍数的影响。

通过研究蓝莓盛世品种茎段组织培养再生体系,确定各培养阶段的最佳培养条件,为蓝莓盛世品种组培快繁提供依据。

关键词:蓝莓;盛世;外植体蓝莓,又称越橘,因其果实中富含花青苷、鞣化酸等抗氧化物质,具有缓解眼疲劳、预防心血管疾病、提高人体免疫力等功效,颇受全球消费者青睐,被列为人类五大健康水果之一,堪称21世纪“世界水果之王”。

蓝莓盛世品种是2000年由美国佛罗里达大学选育出的,树体生长健壮,丰产性强,平均单果重2.37克,果实天蓝色,果蒂痕小且干,质地极硬,风味甜且高抗茎干溃疡病,具有广阔的市场前景。

1 材料与方法1.1 实验材料该试验以蓝莓盛世半木质化茎段为外植体,采自辽宁省农科院大连分院试验基地。

1.2 实验方法无菌株系的建立:晴天上午取温室内生长健壮、腋芽饱满的一年生枝条,去掉叶片,剪成1.0~1.5厘米长的单芽茎段,用饱和洗衣粉澄清液浸l0分钟后,再用自来水冲洗30分钟,在超净工作台上用75%酒精浸30秒,无菌水洗1次,再用0.1%升汞灭菌6~10分钟后,用无菌水冲洗3次,再放入带3层滤纸的培养皿中,待茎段上的水被滤纸吸附后,将单芽茎段接种在诱导培养基上。

诱导培养基筛选:不定芽诱导以W P M为基本培养基,附加不同浓度的玉米素Z T(0.3,0.5,0.8,1.0,1.5)毫克/升,添加一定浓度的赤霉素G A30.5毫克/升与生长素I A A0.3毫克/升添加蔗糖30克/升,琼脂4.6克/升,将培养基p H值调至5.4每天光照12小时,光照强度1500~3000勒克斯,培养温度25℃。

诱导试验每个处理只接种了10个单芽,3次重复,20天调查其污染率与诱导率。

增殖培养:增殖培养以W P M为基本培养基,附加不同浓度的玉米素Z T(0.3,0.5,0.8,1.0,1.5)毫克/升,添加一定浓度生长素I A A0.3毫克/升,糖30克,琼脂4.6克调p H值至5.4,待诱导出来的不定芽长高至2~3厘米时,接种到设定的培养基上,每处理接种3瓶,每瓶5个1.0~1.5厘米单芽茎段,3次重复,60天调查增殖倍数及生长势。

蓝莓组培快繁技术实例 · 附配方

蓝莓组培快繁技术实例 · 附配方

蓝莓(Vaccinium corymbosum)属杜鹃花科,越橘属植物。

起源于北美,多年生灌木小浆果果树。

因果实呈蓝色,故称为蓝莓国际粮农组织将其列为人类五大健康食品之一。

本试验以蓝莓半木质化茎段为外植体,并通过瓶外生根技术,建立起植株再生体系。

1 材料与方法1.1 外植体材料及培养条件1.1.1 外植体选择高灌蓝莓半木质化茎段。

1.1.2 外植体预处理及灭菌剪取蓝莓半木质化枝条,立即去掉上部叶片带回室内,剪成带有一个叶芽2-3厘米长茎段,在流动自来水中冲洗20-30分钟,在超净工作台上用75%酒精消毒2-3分钟,用无菌水冲洗3次,吸干水后在0.1%升汞中消毒5-8分钟,用无菌水冲洗3次,吸干水分,剪去茎段两端约0.5-1厘米,立即接种到初代培养基中。

1.1.3 培养条件诱导培养基:改良WPM + ZT 1.0mg/L增殖培养基:改良WPM + IAA 0.1mg/L + ZT 2.0mg/L复壮培养基:改良WPM + IBA 0.1mg/LWPM具体改良为:以硝酸钙 684mg/L、硝酸钾 190mg/L、EDTA铁钠 73.4mg/L和盐酸硫胺素0.1mg/L代替原WPM培养基中的硫酸钾、氯化钙、硫酸亚铁和乙二胺四乙酸钠。

以上培养基均加蔗糖3%,琼脂0.7%,pH值5.2。

培养温度为25℃,光照强度为2000lx,光照时长为12-16时/天。

2 结果与分析2.1 初代诱导培养将处理好的外植体立即接种到诱导培养基中,5-6天叶芽开始萌动,10天开始展叶,20天腋芽长到1厘米长,30天腋芽长到1.5-2.5厘米长。

2.2 继代增殖培养将初代培养长出的茎剪成1.5-2厘米长茎段转接到增殖培养基中。

30-35天增殖5-7倍,增殖苗生长健壮。

2.3 复壮培养将继代苗剪成1-1.5厘米茎段,转接到壮苗培养基,复壮培养30-40天,复壮苗高5-6厘米且粗壮。

2.4 瓶外生根培养2.4.1 苗床准备苔藓经过挑选,剔除粗硬部分,将细柔苔藓在500倍多菌灵溶液中浸泡10-15小时。

蓝莓的组织培养与快速繁殖

蓝莓的组织培养与快速繁殖

蓝莓的组织培养与快速繁殖摘要:利用蓝莓的茎段或茎尖为材料,在MS和MPS培养基上添加相应组合比例的激素,快速繁殖蓝莓植株体。

同时探索蓝莓离体繁殖影响因素,筛选蓝莓离体所需最佳启动、增殖和生根的培养基及培养条件。

1立题依据1.1研究的目的筛选出适宜蓝莓外植体的培养条件等影响因素。

进一步探索不同的激素对蓝莓外植体组织培养、所育苗质量的影响及生根情况,探索最适合蓝莓外植体组织培养的激素组合及比例。

总结其组培培养的应用技术,为今后蓝莓的育种工作及基因工程技术奠定基础。

1.2研究的意义蓝莓果实皮薄、风味酸甜可口,具有独特的保健功能。

蓝莓果实中含有较多的花色素苷、黄酮等生理活性成分,能有效防止脑神经衰老、糖尿病等疾病的发生,增强心脏功能,而且在明目及抗癌等方面也具有独特功效。

联合国粮农组织将其列为人类五大健康食品。

蓝莓作为一种具有良好保健功效的水果,是21世纪具有良好发展前景的果树品种之一。

蓝莓所含的花青甙类色素具有色泽艳丽、加工稳定性高的特性,是迄今已被利用的最佳天然色素之一,被广泛用于药物或高级美容用品的生产。

在美国,蓝莓被誉为“21世纪功能性保健浆果”、“水果中的皇后”和“世界第三代水果”。

蓝莓鲜果和加工品在欧洲等经济发达国家市场上深得销售者喜爱,虽然价格昂贵但仍供不应求。

一些专家学者开展了对其组织培养体系的研究,以期产业化快速培育蓝莓种苗。

因此研究其高效繁殖有重要的价值及意义。

2国内外研究进展目前,我国种植的蓝莓在生产上通常采用组织培养和扦插相结合的育苗扩繁方法。

应用组培方法扩繁速度快,适宜于优良品种的快速扩繁。

吉林农业大学于1983年率先在我国开展了蓝莓引种栽培工作,到1997年,从美国、加拿大、芬兰、德国引入抗寒、丰产的蓝莓优良品种70余个,其中包括兔眼蓝莓、高丛蓝莓、半高丛蓝莓、矮丛蓝莓、红豆越橘和蔓越橘六大类型。

1989年,蓝莓组培育苗获得成功,采用组培脱毒技术对所选优良品种快速扩繁,并解决了蓝莓组织培养工厂化育苗扩繁技术后,在长白山建立了5个蓝莓引种栽培基地。

蓝莓的组织培养技术

蓝莓的组织培养技术

蓝莓属于杜鹃花科越橘属植物,为多年生落叶或常绿灌木或小灌木树种。

蓝莓的繁殖方法较多,有种子育苗、绿枝扦插、硬枝扦插、根插、分株、嫁接等,但繁殖速度较慢,品种容易退化。

利用组织培养繁殖速度较快,且能保持品种特性,具有脱毒效果,是当前蓝莓大量繁殖应用最主要的技术之一。

1外植体的选择1.1外植体来源从田间或温室中生长健壮的无病虫害的植株上选取发育正常的当年生长新梢,离体培养易于成功。

因为这部分器官或组织代谢旺盛,再生能力强。

1.2外植体大小茎尖1.5cm、茎段2.0cm或花芽。

外植体太小不易成活,外植体太大杀菌不彻底,易污染。

1.3取材季节离体培养的外植体最好在植物生长的最适时期取材,大兴安岭5月15日-6月15日或8月5日-25日。

若取材在生长末期或已经进入休眠期取样,则外植体会对诱导反应迟钝或无反应。

1.4取材时间春夏的晴天中午进行。

2外植体的消毒外植体的彻底消毒是控制污染的前提。

外植体取材→自来水冲洗(60~90min)→70%酒精表面消毒(20~60s)→无菌水冲洗(3~5遍)→氯化汞(0.5%)消毒剂处理(8~10min)→无菌水充分洗净(3~5遍)→备用3外植体的接种将消毒过的外植体在超净工作台上进行分离,切割成所需的材料大小,并将其转移到灭过菌的培养基上的过程。

培养基用WPM改良培养基,激素用6-苄基腺嘌呤或玉米素。

接种前超净工作台面用70%酒精擦洗后,再喷一遍酒精,再用紫外线灯照射30分钟,接种用的器皿用前高压锅消毒灭菌,接种过程中用酒精灯多次烤烧灭菌。

接种工作人员戴上口罩,双手用酒精棉擦拭2遍,接种时动作一定要轻,预防把酒精灯、酒精瓶等碰倒,引起火灾。

4外植体的培养4.1温度蓝莓瓶苗最适的培养温度25℃,温度过低(<15℃)或过高(>35℃)都会抑制细胞组织的增殖和分化,对培养物生长不利。

4.2光照培养室要求每日光照12~16小时,需日光灯补光。

4.3通气外植体的呼吸需要氧气,氧气在调节器官的发生中可起到重要作用。

蓝莓组培插繁殖技术与生根机理的研究

蓝莓组培插繁殖技术与生根机理的研究一、内容综述蓝莓组培插繁殖技术与生根机理的研究是近年来植物学领域的一个热点课题。

随着人们对蓝莓产业的不断重视,研究蓝莓组培插繁殖技术与生根机理已成为提高蓝莓产量和质量的重要手段。

本文将对蓝莓组培插繁殖技术与生根机理的研究现状进行综述,以期为相关研究提供参考。

蓝莓组培技术起源于20世纪初,经过多年的发展,已经取得了显著的成果。

目前蓝莓组培技术主要包括脱分化培养、愈伤组织诱导、丛芽再生等几个关键环节。

这些技术的不断优化和完善,使得蓝莓组培技术在生产中的应用越来越广泛。

近年来针对蓝莓组培插繁殖技术的研究取得了一定的进展,研究人员通过优化培养基配方、调整生长条件等方法,成功实现了蓝莓组培苗的大量生产。

此外还有一些研究表明,通过调控生长素、细胞分裂素等植物生长调节剂的比例,可以有效地促进蓝莓组培苗的生根和生长发育。

影响蓝莓组培插繁殖生根的关键因素主要包括培养基中营养物质的种类和含量、生长调节剂的使用、生长环境等。

通过对这些因素的合理调控,可以有效地促进蓝莓组培苗的生根。

针对蓝莓组培插繁殖生根机理的研究主要集中在以下几个方面:一是研究生根激素的作用机制,揭示其调控生根过程的关键分子;二是研究生根过程中的信号传导途径,为调控生根提供理论依据;三是研究生根过程中的细胞分化和形态发育规律,为优化培养条件提供指导。

蓝莓组培插繁殖技术与生根机理的研究是一个复杂而富有挑战性的课题。

未来研究应继续深化对蓝莓组培插繁殖技术和生根机理的认识,为提高蓝莓产量和质量提供有力支持。

1. 蓝莓组培技术的重要性和应用价值随着全球经济的快速发展和人们生活水平的不断提高,对食品、药品、化妆品等产品的需求也在不断增加。

蓝莓作为一种营养丰富、口感独特、具有极高医疗价值的水果,其市场需求逐年攀升。

然而传统的种植方式存在诸多问题,如病虫害多发、产量不稳定、品质参差不齐等。

为了满足市场的需求,提高蓝莓的生产效率和品质,组培技术应运而生。

蓝莓组培苗快繁技术研究


造 成基 质上湿 下干 ,严 重影响 组培 苗生根及 后期生 长 ,清 除 苔藓必 须揭开 小拱棚 ,会极大地 影响 小拱棚 内空气湿 度 的保持 ,清除苔 藓亦费 工耗时 ,还 会损 坏苗床 ,效果很 不 理 想。在 苔藓基 质上 ,由于受苔 藓生长 的影 响 ,扦插 苗的 生 根成活率 仅为 3 0 % ~4 0 %。鉴于 此 ,通过大 量的基 质材 料试 验 , 自创组 合材料 生根培养 基质 ,即底 层河沙 ( p H 值 7 . 0 ) 、中层干苔藓 ( p H值 4 . 5 ) 、面 层草炭 ( p H值 5 . 3 ) 组合 , 不但 可以有 效地控 制苔 藓的增殖 ,扦插 苗生根后 ,组合 基
立 即扣上 塑料薄膜 小拱棚 ,期 间要 严格控 制温度 和湿 度的 变化 ,空 气相对湿度 保持 在 8 0 % ~9 0 %之间 ,湿度不 足时
1 1 . 3 外植体 室内消毒及制作
将选取的外植体带 回室 来自内 ,用 食 品洗 涤 液 将 外 植 体 洗净 ,剪成 带 有 1个腋 芽 的 3 c m 左右 的茎 段 ,在流 动的 自来 水 中冲洗 3 0~ 5 0 mi n 。 在超净工作 台上用 7 酒精表 面灭菌 3~5 ai r n ,用无菌水 冲洗 3 次 ,吸干水分后在 0 . 1 %升汞 中浸泡灭 菌 8~ 1 2 mi n 。
2 . 0 c m 的茎段进行转接 ,分 别开展以茎段扦插 型进 行继代 扩繁和丛 生型继代扩繁试验 。
要及 时补 充水 分 -温 度控 制在 l 8~ 3 0 ℃之 间 ,温 度超 出
范 围要 及时采取 升温或 降温 措施 。待扦插 苗 8 0 %生根后逐
1 . 1 . 4 管 理 培 养 温 度 2 4℃、 湿 度 5 0 % ~6 0 %、光 照

蓝莓组织培养与快速繁育

并且蓝莓天然生长在空气新鲜 、土质肥沃的山林 里 ,其产品 (食用器官) 具有质地新鲜 ,风味独特、营养 丰富的特点 ,在国内外被称为无污染的绿色保健食品 , 倍受人们喜爱。它具有常规栽培水果无法比拟的优良
收稿日期 :2008208204 第一作者简介 :张凤生 (19772) ,男 ,黑龙江绥化市人 ,学士 ,农艺师 , 主要从事园艺类组织培养研究。Tel :13936322142 ; E2mail :zhuan2 glei0451 @sina. com。
特性 ,首先 ,常规水果经常需要施用农药 ,水果产品上 残留少量农药 ,长期食用人体中就会积累越来越多的 农药成份 ,同时为了使种植的水果高产 ,还要施用大量 化肥 ,不仅降低了种植水果的品质 ,而且增加了水果大 量的有害物质残留 。尽管人类的医疗科技水平很发 达 ,但由于食物污染带来的种种慢性疾病越来越多。 蓝莓在长期的进化当中 ,逐渐具备了适应性强 ,对气候 及土壤条件要求低等一系列优点 ,其抗病虫害能力强 , 一般没有病虫害 ,且其生长力顽强 ,耐旱耐涝 ,因而根 本无需施用农药、化肥即可生长完好。因此可以说 ,蓝 莓无毒无害 ,是卫生可靠的绿色食品。
2. 1 不同培养基及不同外植体对初始分化的影响
细胞分裂素 BA 与低浓度的生长素 NAA 的配合使用
由表 1 可见 ,经过改良的 XY培养基适合蓝莓组培苗 效果好于细胞分裂素 KT 与低浓度生长素 NAA 的组
的生长分化率在 86 %以上。在接种采用新抽嫩茎作为外 合效果。Ⅶ组合培养基用 MS 加生长素 NAA 0. 05 mg
0 0 0 0. 5 0. 5 0 0
NAA/ mg ·L - 1
0 0. 05
0 0 0. 05 0. 05 0. 05

蓝莓组织培养技术介绍

蓝莓组织培养技术介绍组培介绍一、组培的概念和重要性(一).植物组织培养的含义(广义)又叫离体培养,指从植物体分离出符合需要的组织.器官或细胞,原生质体等,通过无菌操作,在人工控制条件下进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。

(狭义)组培指用植物各部分组织,如形成层.薄壁组织.叶肉组织.胚乳等进行培养获得再生植株,也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培养,愈伤组织再经过再分化形成再生植物。

(二)、植物组织培养的重要意义:1. 加速无性繁殖;2. 获取脱毒苗;3. 扩大变异范围:(1)克服远缘杂交后代不育性和杂交不亲和性。

(2)通过原生质体融合获得体细胞杂种和胞质杂种。

(3)倍性育种:通过胚乳培养获得三倍体;通过花粉和花药培养进行单倍体育种。

(4)结合诱变育种在试管内进行优良变异的诱导.选择和繁殖。

4.加速亲本材料的纯化。

一般选育自交系需4-6代花粉培养获得单倍体植株,染色体加倍后即为纯合二倍体。

5.种质资源的试管保存。

6.为基因工程的全面实施人工控制遗传方向打下基础。

二、植物组织培养的理论依据(一)植物细胞的全能性指每个植物细胞都具有形成完整植株的能力,因为每个细胞都具有全套的遗传基因,无论是性细胞还是体细胞在特定条件下可以进行表达。

1902年德国植物生理学家Haberlandt提出了“细胞的全能性”原理。

但在当时的技术条件下,在实践上并没做到,经过几十年来组织培养技术的不断改进,目前细胞的全能性不但在理论上完全被证实,而且为组织培养在实践上的应用奠定了基础。

(二)植物细胞要表现出全能性,须经过几个步骤:成熟细胞(外植体)→分生细胞→胚状体→完整植株。

成熟细胞(外植体)→愈伤组织→出根出芽→完整植株。

成熟细胞(外植体)→诱导侧芽生长→出根出芽→完整植株。

脱分化也就是已经分化定型的细胞,经过诱导成为重新恢复了分裂能力(也就是成为分生状态)细胞的过程。

不但植物体细胞可以表现全能性,花粉在培养条件下也可能进行脱分化,通过愈伤组织或胚状体发育成单倍体植株。

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