兔子血压测量实验报告
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告实验目的，通过实验测定家兔的动脉血压，了解家兔的心血管系统功能及血压水平。
实验材料和方法，我们选取了10只健康的家兔进行实验。
首先，我们给家兔注射了一定剂量的麻醉药物，使其处于麻醉状态。
然后，我们在家兔的股动脉处植入了一根导管，通过导管连接到血压测量仪器。
在实验过程中，我们记录了家兔在不同时间点的动脉血压值，并进行了分析和比较。
实验结果，经过实验测定，我们得到了家兔在不同时间点的动脉血压值。
在麻醉状态下，家兔的收缩压约为90-130mmHg，舒张压约为60-90mmHg。
在恢复清醒状态下，家兔的血压值有所上升，收缩压约为100-150mmHg，舒张压约为70-100mmHg。
通过对比分析，我们发现家兔的动脉血压值受到麻醉状态和清醒状态的影响，同时也受到外界因素的影响。
实验讨论，家兔的动脉血压值受到多种因素的影响，包括麻醉状态、清醒状态、体位变化、环境温度等。
在实验过程中，我们还观察到家兔在不同状态下的心率和呼吸率有所变化，这些生理指标与动脉血压值密切相关。
通过本次实验，我们对家兔的心血管系统功能及血压水平有了更深入的了解，也为进一步研究动物的心血管系统提供了参考数据。
实验结论，家兔的动脉血压值受到多种因素的影响，需要综合考虑多个因素才能准确评估其血压水平。
在进行实验时，需要严格控制实验条件，避免外界因素对实验结果的影响。
通过本次实验，我们对家兔的动脉血压有了更深入的了解，也为进一步研究家兔的心血管系统功能提供了参考依据。
实验感想，本次实验不仅增加了我们对家兔心血管系统的了解，也提高了我们的实验操作能力和数据处理能力。
在未来的研究工作中，我们将进一步深入探讨家兔的心血管系统功能及血压调节机制，为人类疾病的预防和治疗提供更多的参考依据。
通过本次实验，我们对家兔的动脉血压进行了测定，并对实验结果进行了分析和讨论。
实验结果表明，家兔的动脉血压值受到多种因素的影响，需要综合考虑多个因素才能准确评估其血压水平。
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告家兔动脉血压实验报告概述：本实验旨在研究家兔的动脉血压变化规律及其与心脏功能之间的关系。
通过测量家兔在不同状态下的动脉血压，我们可以了解到动脉血压的变化对心脏功能的影响，为进一步研究心血管疾病提供参考。
实验方法：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，分为两组。
第一组是安静组，将家兔放置在安静的环境中，记录其静息状态下的动脉血压。
第二组是运动组，将家兔进行适度的运动，如跳跃、奔跑等，记录其运动状态下的动脉血压。
实验结果：在安静组中，我们发现家兔的动脉血压维持在一个相对稳定的水平。
在运动组中，家兔的动脉血压明显升高，这是因为运动时心脏需要更多的血液供应，从而增加了动脉血压。
此外，我们还观察到运动后动脉血压在一定时间内逐渐恢复到静息水平，这表明家兔的心脏具有较好的代偿能力。
讨论与分析：通过这次实验，我们可以得出以下结论：1. 运动对动脉血压有显著影响：运动会导致动脉血压升高，这是因为心脏需要更多的氧气和养分供应，从而增加了心脏的收缩力和心排血量。
2. 动脉血压的变化与心脏功能密切相关：动脉血压的升高反映了心脏的负荷增加，而动脉血压的恢复则表明心脏具有较好的代偿能力。
3. 家兔的心血管系统具有一定的调节能力：运动后动脉血压能够在一定时间内逐渐恢复到静息水平，这说明家兔的心血管系统具有一定的调节能力，能够适应不同的生理状态。
结论：通过本次实验，我们对家兔的动脉血压变化规律及其与心脏功能之间的关系有了初步的了解。
家兔的动脉血压在不同状态下呈现出不同的变化趋势，这与心脏的功能密切相关。
进一步研究家兔动脉血压的变化规律，有助于我们更好地理解心血管系统的功能及其与心血管疾病的关系。
兔子血压生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解兔子血压的生理变化规律。
2. 掌握血压测量方法和技巧。
3. 研究不同生理因素对兔子血压的影响。
二、实验原理血压是指血液在血管内流动时对血管壁产生的侧压力。
血压是心血管系统功能的重要指标，对维持机体组织器官的正常生理功能具有重要意义。
血压受多种因素影响，包括心脏功能、血管阻力、血容量等。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：兔子、血压计、生理盐水、麻醉剂、注射器、手术器械等。
2. 实验仪器：血压换能器、生物信号采集系统、手术显微镜、电子刺激器等。
四、实验方法1. 麻醉与固定：将兔子用麻醉剂麻醉，固定在手术台上。
2. 颈部手术：切开兔子颈部皮肤，暴露出两侧颈总动脉和迷走神经，分别穿线备用。
3. 血压测量：将血压换能器与生物信号采集系统连接，将血压换能器夹在兔子的颈总动脉上，通过生物信号采集系统实时监测血压变化。
4. 生理因素影响实验：a. 心率影响：用电子刺激器刺激兔子心脏，观察血压变化。
b. 血管阻力影响：夹闭兔子一侧颈总动脉，观察血压变化。
c. 血容量影响：给兔子注射生理盐水，观察血压变化。
五、实验步骤1. 麻醉与固定：将兔子用麻醉剂麻醉，固定在手术台上。
2. 颈部手术：切开兔子颈部皮肤，暴露出两侧颈总动脉和迷走神经，分别穿线备用。
3. 血压测量：将血压换能器与生物信号采集系统连接，将血压换能器夹在兔子的颈总动脉上，通过生物信号采集系统实时监测血压变化。
4. 心率影响实验：a. 使用电子刺激器刺激兔子心脏，观察血压变化。
b. 记录刺激前后血压变化情况。
5. 血管阻力影响实验：a. 夹闭兔子一侧颈总动脉，观察血压变化。
b. 记录夹闭前后血压变化情况。
6. 血容量影响实验：a. 给兔子注射生理盐水，观察血压变化。
b. 记录注射前后血压变化情况。
六、实验结果与分析1. 心率影响实验：刺激兔子心脏后，血压升高，心率加快。
2. 血管阻力影响实验：夹闭兔子一侧颈总动脉后，血压升高。
3. 血容量影响实验：给兔子注射生理盐水后，血压升高。
家兔血压实验报告
家兔血压实验报告家兔血压实验报告一、引言血压是衡量人体健康状况的重要指标之一，它反映了心血管系统的功能状态。
为了深入了解家兔的血压变化规律，我们进行了一系列的实验研究。
本报告将详细介绍实验的目的、方法、结果和讨论，以期对家兔血压的研究提供一定的参考。
二、实验目的本次实验的目的是通过测量家兔的血压，了解其血压的变化规律，并探讨可能的影响因素。
通过这些研究，我们希望能够更好地理解家兔的心血管系统功能，并为相关疾病的预防和治疗提供一定的依据。
三、实验方法1. 实验动物选择：选择健康的家兔作为实验对象，确保其无任何心血管疾病等潜在问题。
2. 实验仪器准备：准备好家兔血压测量仪、家兔固定器等实验设备，并进行必要的校准和消毒。
3. 实验操作步骤：a. 家兔适应：将家兔置于实验环境中，让其适应一段时间，保证其相对稳定的状态。
b. 家兔固定：使用家兔固定器将家兔固定在实验台上，保证其身体不动。
c. 血压测量：使用家兔血压测量仪，按照操作说明进行测量，记录家兔的收缩压和舒张压。
d. 数据记录：将测量得到的数据记录下来，并进行整理和分析。
四、实验结果经过一系列的实验操作和数据记录，我们得到了一组家兔的血压数据。
在实验过程中，我们发现家兔的血压存在一定的变化规律。
在安静状态下，家兔的血压相对稳定，收缩压和舒张压的数值较为接近。
然而，当家兔处于运动或紧张状态下，其血压会有明显的升高。
此外，我们还观察到家兔的血压受到环境温度、饮食等因素的影响。
五、讨论通过对家兔血压的实验研究，我们得出了一些初步的结论。
首先，家兔的血压受到多种因素的影响，包括运动、紧张、环境温度和饮食等。
这些因素的变化会引起家兔血压的波动，从而反映了家兔心血管系统的功能状态。
其次，家兔的血压在安静状态下相对稳定，但在运动或紧张状态下会明显升高，这与人类的血压变化规律有一定的相似性。
最后，家兔血压的测量需要一定的专业设备和技术，以保证测量的准确性和可靠性。
兔子血压测试实验报告
一、实验目的1. 了解兔子血压测量的基本原理和方法。
2. 掌握血压计的使用技巧。
3. 分析兔子血压的变化规律。
二、实验原理血压是指血液在血管内流动时对血管壁产生的侧压力。
兔子的血压可以通过测量动脉血压来评估。
本实验采用无创血压测量方法，通过连接血压计和兔子动脉，利用脉搏波传导原理，测量兔子动脉血压。
三、实验材料1. 实验动物：兔子1只（体重约2kg）。
2. 无创血压计1台。
3. 动脉夹2个。
4. 动脉导管1根。
5. 水平仪1个。
6. 记录本1本。
四、实验步骤1. 将兔子放入实验箱中，适应环境。
2. 将兔子固定在实验台上，确保兔子处于安静状态。
3. 使用动脉夹夹住兔子前肢的动脉，选择合适的位置插入动脉导管。
4. 将动脉导管连接到无创血压计上，确保连接牢固。
5. 将兔子后肢放在水平仪上，调整血压计，使其与水平仪平行。
6. 打开血压计，开始测量兔子血压。
7. 观察血压计显示屏，记录兔子血压数值。
8. 改变兔子体位，重复测量血压，观察血压变化。
9. 实验结束后，将兔子放回实验箱中。
五、实验结果1. 兔子血压测量结果如下：- 平躺时：收缩压100mmHg，舒张压60mmHg。
- 侧卧时：收缩压110mmHg，舒张压65mmHg。
- 站立时：收缩压120mmHg，舒张压70mmHg。
2. 观察到兔子血压在不同体位下有所变化，平躺时血压最低，站立时血压最高。
六、实验分析1. 无创血压测量方法简单、方便，适用于兔子血压的快速检测。
2. 兔子血压受体位影响较大，站立时血压较高，平躺时血压较低。
3. 实验过程中，血压计读数稳定，操作简便，重复性好。
七、实验结论本实验成功测量了兔子的血压，并分析了兔子血压在不同体位下的变化规律。
无创血压测量方法在兔子血压检测中具有较好的应用价值。
八、实验注意事项1. 在实验过程中，确保兔子处于安静状态，避免血压测量误差。
2. 动脉导管插入过程中，动作要轻柔，避免损伤动脉。
3. 实验结束后，将兔子放回实验箱中，确保兔子安全。
血压综合实验报告家兔(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解家兔动脉血压的生理调节机制。
2. 掌握血压测量的基本方法和技术。
3. 分析神经体液因素对家兔动脉血压的影响。
4. 研究不同药物对家兔动脉血压的调节作用。
二、实验原理动脉血压是心血管功能活动的综合指标，其稳定依赖于神经和体液等调节机制。
正常情况下，动脉血压在神经体液因素的调节下保持相对恒定，这对于维持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢至关重要。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL、1mL）等3. 实验试剂：3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品四、实验方法1. 家兔的麻醉与固定：采用3%戊巴比妥钠进行静脉麻醉，将家兔固定于兔手术台上。
2. 颈部手术：分离颈部血管与神经，暴露两侧颈总动脉和迷走神经并穿线备用，左侧颈动脉穿双线，远心端打死结。
3. 气管插管术：进行气管插管，确保家兔呼吸通畅。
4. 颈总动脉插管术：将充满肝素生理盐水的动脉导管从切口向心脏方向插入颈总动脉直至动脉夹处。
用手术丝线将动脉导管连同颈总动脉一起扎紧。
移除动脉导管近心端的动脉夹，观察显示器波形变化。
5. 观察基础血压：记录家兔的基础血压。
6. 观察颈动脉窦反射：夹闭右侧颈总动脉，观察血压变化。
7. 观察迷走神经反射：电刺激向心端迷走神经15秒，观察血压和心率变化。
8. 观察药物作用：分别注射1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品，观察血压变化。
五、实验结果1. 基础血压：家兔的基础血压为XX mmHg。
2. 颈动脉窦反射：夹闭右侧颈总动脉后，血压升高至XX mmHg。
家兔动脉血压实验报告
家兔动脉血压实验报告实验目的，通过实验测量家兔的动脉血压，探究家兔的血压变化规律，为临床研究提供参考数据。
实验材料与方法，选取健康的家兔进行实验，使用生理记录仪和动脉压传感器进行实验测量。
首先，将家兔固定在实验台上，使其处于安静状态。
然后，通过手术在家兔的颈部暴露出颈总动脉，将动脉压传感器插入颈总动脉中，记录家兔的动脉血压值。
实验过程中需注意保持家兔的体温和呼吸正常，避免干扰因素对实验结果的影响。
实验结果，经过实验测量，得出家兔的动脉血压值随着时间的变化曲线图。
实验结果显示，家兔的动脉血压值在静息状态下呈现出稳定的状态，平均动脉压约为80-100mmHg。
而在运动或受到外界刺激时，家兔的动脉血压值会出现短暂的上升，随后迅速恢复到静息状态下的水平。
实验分析，通过对家兔的动脉血压实验结果进行分析，可以得出以下结论，家兔的动脉血压值受到外界刺激和运动状态的影响，呈现出短期的波动。
而在静息状态下，家兔的动脉血压值保持相对稳定的水平。
这一结论对于研究家兔的生理特征和临床诊断具有重要意义。
实验结论，家兔的动脉血压值在不同状态下呈现出不同的变化规律，静息状态下的动脉血压值相对稳定。
这一结论为临床研究提供了重要的参考数据，对于研究家兔的生理特征和疾病诊断具有一定的指导意义。
实验意义，本实验通过测量家兔的动脉血压值，探究了家兔的血压变化规律，为临床研究提供了重要的参考数据。
这一实验结果对于研究家兔的生理特征和疾病诊断具有一定的指导意义，为进一步的研究提供了重要的基础。
实验中的注意事项，在进行家兔动脉血压实验时，需要注意保持家兔的体温和呼吸正常，避免干扰因素对实验结果的影响。
同时，对家兔进行手术操作时需要谨慎，确保实验过程中家兔的生命安全和健康。
总结，家兔的动脉血压实验结果显示，家兔的动脉血压值在不同状态下呈现出不同的变化规律，这一实验结果对于研究家兔的生理特征和疾病诊断具有重要意义。
希望本实验结果能够为相关研究提供有益的参考，为家兔的生理特征和疾病诊断领域的进一步研究提供重要的基础。
兔子血压测量实验报告
北京师范大学生命科学学院实验报告课程：人体及动物生理学实验Lab 10 Autonomic Control of CardiovascularSystem指导教师：孙颖郁实验人员：李元新（200911202909）王红霞（200911202910）郑蕾（200911202953）王鑫（0810200010）实验日期：2011年05月23日一、摘要：通过刺激兔子的交感神经和副交感神经，观察其对心血管活动的影响。
By stimulating the rabbit sympathetic nerve and parasympathetic nerve, observe the influence of cardiovascular events.二、实验目的：分析交感神经和副交感神经对心血管活动的影响。
三、实验原理：在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。
因而，动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
动脉血压的这种相对稳定时是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦–主动脉弓压力感受性反射尤为重要。
此反射可以是升高的血压下降，有可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。
此外，相关的很多神经递质同样也在动脉压资助调节中扮演着重要的角色。
因而通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
四、实验材料：1、实验动物：健康兔子一只2、实验试剂：20%的氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水，3.8%柠檬酸钠，100ug/ml去甲肾上腺素，100ug/ml乙酰胆碱，500ug/ml阿托品3、实验设备：兔箱，兔台，金属叉，金属环，绳子，毛剪，解剖刀，止血钳，玻璃分针，镊子，气管插管，静脉夹，静脉插管，动脉插管，压力换能器，动脉夹，刺激电极，刺激电极钩，记录电极五、实验方法：1．动物的麻醉：（1）用右手把两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤，提起家兔，然后用左手托住臀部，使呈坐位姿势，切忌提拿双耳。
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北京师范大学生命科学学院实验报告课程：人体及动物生理学实验Lab 10 Autonomic Control of CardiovascularSystem指导教师：孙颖郁实验人员：李元新（200911202909）王红霞（200911202910）郑蕾（200911202953）王鑫（0810200010）实验日期：2011年05月23日一、摘要：通过刺激兔子的交感神经和副交感神经，观察其对心血管活动的影响。
By stimulating the rabbit sympathetic nerve and parasympathetic nerve, observe the influence of cardiovascular events.二、实验目的：分析交感神经和副交感神经对心血管活动的影响。
三、实验原理：在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。
动脉血压的相对恒定对于保持合组织、器官正常的血液供应和物质代谢极为重要，动脉血压的剧烈变化会显著影响各组织、器官的正常活动。
因而，动脉血压是心血管功能活动的综合指标。
动脉血压的这种相对稳定时是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦–主动脉弓压力感受性反射尤为重要。
此反射可以是升高的血压下降，有可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。
此外，相关的很多神经递质同样也在动脉压资助调节中扮演着重要的角色。
因而通过改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，可以间接反映各种因素对心血管功能的自主性调节。
四、实验材料：1、实验动物：健康兔子一只2、实验试剂：20%的氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水，3.8%柠檬酸钠，100ug/ml去甲肾上腺素，100ug/ml乙酰胆碱，500ug/ml阿托品3、实验设备：兔箱，兔台，金属叉，金属环，绳子，毛剪，解剖刀，止血钳，玻璃分针，镊子，气管插管，静脉夹，静脉插管，动脉插管，压力换能器，动脉夹，刺激电极，刺激电极钩，记录电极五、实验方法：1．动物的麻醉：（1）用右手把两耳拿在手心并抓住颈后部皮肤，提起家兔，然后用左手托住臀部，使呈坐位姿势，切忌提拿双耳。
（2）动物（家兔）称重后，固定于兔箱内，按5ml/Kg B.W.的剂量由耳缘静脉（位于动物耳背边缘）注射20%的氨基甲酸乙酯（乌拉坦Urethane）。
动物被麻醉后，身体松软，疼痛感觉消失。
（3）注意事项：1）注射器内气泡排净；2）首先从静脉的较远端（耳末梢处）确定进针位置，而不是耳朵根部，否则，注射失败后没有弥补的余地；3）将进针处及附近的毛拔净，使血管清晰暴露，用手指弹血管（或用酒精棉擦），使血管充分膨胀；4）针头开口朝上进针（注射器刻度方向与针头开口方向保持一致，以便掌握注射剂量），扎入血管后，针头往前送一些，以确保在血管内（如果在血管内，则阻力很小），避免拔除；5）注药要慢，并密切注意动物反应，如果角膜反射消失，药即使没有注完，也应停止注射（麻醉药注射太快和过多，都容易导致动物死亡）。
2．动物的固定（1）将动物背位（腹面朝上）固定于手术台（兔台）上，保持颈部挺起，身体正直、舒展。
（2）动物头部固定于兔头夹上，金属叉固定颈部，嘴部套入金属环。
（3）前肢背交叉（向后向下交叉，为使动物胸部挺起）、后肢伸展，用绳固定在兔台上。
3．手术（1) 剪毛：用毛剪平贴皮肤剪去颈部被毛，剪毛范围尽量大一些。
（2）暴露气管、颈总动脉、迷走神经与减压神经：a. 用手术刀沿颈部正中纵向切开皮肤3-4cm。
注意避开喉头，喉头处有甲状腺，血液丰富，如伤及，则出血不止，易造成动物死亡。
b. 用止血钳紧贴气管分离肌肉。
此为钝性分离方法，不会造成出血：止血钳顶住肌肉，撑开，反复几次，出现创口，双手食指伸进，纵向扩大创口。
注意不要用手术剪。
（如果发生出血现象，用干棉花或沾生理盐水按压出血部位1-2分钟；也可用止血钳夹住出血部位止血。
）c. 肌肉分离后，暴露出气管。
用手指将气管两侧的肌肉向外翻开，可见到纵向走行的颈总动脉以及伴行的三根神经：最粗的迷走神经，最细的减压神经，以及介于之间的交感神经。
（3）气管插管：在动物麻醉实验中，需进行气管插管，避免分泌物堵塞致死。
a. 将玻璃分针从气管下穿过，顶起气管，在气管下穿双线。
用镊子清除气管表面的结缔组织，选择合适位置（避开喉头），用解剖刀在软骨环上横向切开（不要在肌肉上切口，容易出血），开口要大，约气管直径的1/2（不要切断气管），再向下纵向切开0.5cm，形成“T”型切口。
b. 用小镊子缠上干棉花或用棉签伸进气管中，清除血和粘液，反复几次，务必清除干净，避免动物发生窒息。
c. 将气管插管插入，结扎紧，避免脱出。
将玻璃分针取出。
（4）分离左右颈总动脉、左右迷走神经和右侧减压神经：将气管旁肌肉翻开，内面朝上，暴露血管和神经。
用玻璃分针分别沿动脉、神经纵向划开附着的结缔组织膜，游离出一段。
动脉尽量游离得长一些。
分别穿双线备用，先不结扎。
（5）右侧颈静脉插管：由静脉插管向体内注射药物。
在右侧颈部肌肉浅层找到粗大的颈静脉。
用小镊子将颈静脉一段与周围组织分离，穿入双线，准备插管。
a. 首先在近心端夹静脉夹（夹致静脉夹的根部，以保证夹紧），阻止静脉回流。
b. 然后将双线剪开成两根，一根在远心端结扎静脉（尽量远端，保证有足够的血管长度来插管），一定要扎紧。
血管中间这段充盈血液，便于插管。
c. 拎起结扎线，将血管提拉起，在靠近结扎处用小剪在血管上向下剪一开口，将静脉插管（针头样，中间插有铁芯）插入（插入之前应确保其通畅，注意：插管时不要把铁芯拔出，避免血液将管口堵塞）。
整个针头部分都插进血管，如果静脉夹阻挡住，可以将其去掉。
d. 用另一根线将静脉插管与血管壁结扎紧。
e. 拔出铁芯，按1ml/kg B.W. 注入肝素（500 单位/ml，体内抗凝剂，防止血液凝固）。
再补充1ml 生理盐水。
插入铁芯（避免血液流出）（6）左侧颈动脉插管：动脉插管与压力换能器相连，直接检测血压值。
在此之前，必须将压力换能器以及动脉插管中充满3.8%柠檬酸钠（体外抗凝剂），并确保有良好的气密性（示范内容）压力换能器已经与仪器连接，各项参数都已设置好，处于工作状态。
a. 首先在远心端结扎血管（尽量远端，保证有足够的血管长度来插管）。
b. 然后在近心端夹动脉夹（尽量近端，用动脉夹根部夹住血管，确保夹紧否则剪开血管后，由于动脉压力很大，血液会喷出）。
血管中间这段鼓起。
c. 拎起结扎线，将血管提拉起，在靠近结扎处用小剪在血管上向下剪一开口，在小镊子的辅助下，将动脉插管插入，尽量插入长一些，避免插管滑脱。
在结扎好动脉插管前，一定不能轻易放开动脉夹d. 将动脉插管与血管结扎紧，结扎处应靠近血管开口处，不要太靠下，否则管子容易滑出。
e. 慢慢松开动脉夹，观察动脉插管没有出现异常情况，计算机屏幕上也显示出正常的血压波后，再将动脉夹撤掉。
4.实验程序1）装置连接：RM6240B 通道1 接压力换能器，采集血压信号。
2）参数设置：打开信号采集软件，关闭通道2，3 和4，保留通道1，对应血压信号。
示波状态下修改参数设置：采集频率800Hz；通道1：通道模式血压mmHg，扫描速度1s/div，灵敏度90mmHg，放大器时间常数设为直流，滤波频率100Hz。
实验连续记录，不要间断，每一次处理都应做好标记。
每注射完一种药物，都要补加1ml 生理盐水。
将测量数据记入Lab #10 Data Sheet。
3）操作步骤：⑴封闭右侧颈总动脉30秒⑵压迫双侧颈动脉窦15秒⑶刺激右侧减压神经：刺激输出导线接刺激电极，刺激电极钩住神经。
刺激参数：连续单刺激，强度3V，波宽5ms，刺激频率50Hz.⑷剪断右侧减压神经，分别刺激其中枢端和外周端（刺激参数同⑶）⑸去甲肾上腺素(0.2ml of 100ug/ml).⑹剪断双侧迷走神经⑺封闭右侧颈总动脉30 秒⑻去甲肾上腺素(0.2ml of 100ug/ml).⑼刺激右侧迷走神经外周端（刺激参数同⑶）⑽乙酰胆碱(0.2ml of 100ug/ml)⑾阿托品(0.2ml of 500ug/ml——SLOWLY over 30-40 seconds). 等待10分钟⑿刺激右侧迷走神经外周端（刺激参数同⑶）六、实验结果与分析：（参数：刺激强度：3V；连续单刺激；波宽5ms；刺激频率50Hz）图一：各组操作后动脉压测量的均值图二：各组操作后舒张压测量的均值 正常 封闭右侧颈总动脉 压迫双侧颈动脉窦 刺激右侧减压神经 刺激减压神经中枢端 刺激减压神经外周端 刺激右侧迷走神经外周端加NE 加入 Ach 缓慢加入阿托品 刺激右侧迷走神经外周端 平均动脉压mmHg114.1 128.9 84.3 94.97 95.1 100.9 110.36 116.52 77.6 123.12 131.58 舒张压93.65 109.04 63.75 74.96 73.86 78.48 78.48 96.07 53.20 101.12 111.46 收缩压134.54 148.83 104.86 114.97 116.29 123.33 142.23 136.96 102.00 145.09 151.69 心率 282255 240 255 273 267 226 300 240 273 189图三：各组操作后收缩压测量的均值图四：各组操作后的心率的均值1、实验发现，封闭右侧颈总动脉，通过图像可以观察到家兔血压升高，心率降低。
实验中得到血压水平在128.9mmhg，其中舒张压在109.04，收缩压148.83，心率255。
这是由于夹闭上行动脉阻碍了血液流通，增加了外周阻力，导致右侧颈动脉内颈动脉窦血流量减少，减小了窦神经传入冲动，延髓心血管中心交感中枢兴奋，其相互拮抗的迷走神经中枢的兴奋性降低。
机体通过心血管神经调节系统支配交感神经（减压神经）、交感缩血管神经共同作用，使得心肌收缩力增强，心输出量增加；血管的紧张性增强，血管口径减小，外周阻力增大，使得血压升高，血压曲线上移。
当放开动脉夹后，由于颈动脉窦中血流与压力恢复正常，颈动脉窦神经传入冲动回升，迷走神经兴奋使得血压回降，血压下降到正常状态的水平，与此同时迷走神经末梢释放Ach，使窦房结细胞超极化，自动去极化时间加长，导致心率下降至正常水平。
2、按压家兔双侧颈动脉窦，通过观察图像我们可以观察到家兔血压和心率均降低，实验中得到血压水平在84.3mmhg，其中舒张压在63.75，收缩压104.86，心率240。
此现象的发生由于颈动脉窦存在压力感受器能感受血压的升高而产生减压反射，从而改变到中枢的神经冲动，引起一系列的生理反应。
减压神经或主动脉弓神经是主动脉区的主动脉弓压力感受器的传入神经在颈部单独成一束形成，减压神经具有稳定动脉血压的作用。