标本采集与运送ppt课件
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检验标本采集与运送PPT课件

黄色
3.8%枸橼酸钠 2ml
EDTA—K2 2ml
肝素钠
3ml
3.8%枸橼酸钠 2ml
无抗凝剂
4ml
无抗凝剂
4ml
凝血检查
血常规、血型 血液流变学
血沉
生化类、PCR定 量等 免疫类
条码的使用
条码统一张贴样式: 名字向上、管盖平行、张贴平整、打印清楚、一管一码
条码的使用
条码统一张贴样式:尿液、大便、分泌物、CSF、血沉等条码统一张贴在医 技单,血气分析张贴在外包装管体;
条码的使用
错误张贴条码引发的标本不合格、作废条码应重新打印
痰标本
❖ 痰液常规+找真菌 ❖ 痰找抗酸杆菌(抗酸染色) ❖ 痰革兰氏染色 ❖ 痰细胞学检查 ❖ 痰细菌培养+真菌培养+药敏分析 ❖ 痰结核杆菌DNA检测
痰标本采集
能自理的患者:
—晨起后用清水漱口 —以清晨第一口痰为宜 —深吸气后用力咳出气管深处的痰液 —不可混入漱口液、唾液、鼻涕等
无法咳痰或不合作者:
—用吸痰法收集(集痰器)
痰标本采集注意事项
1、如查癌细胞,应立即送检或用95%乙醇或用 10%甲醛固定后送检;
2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中;
标本采集的原则
❖ 遵照医嘱: ❖ 充分准备:患者准备、用物准备、护士自身
准备 ❖ 严格查对:检查项目、患者姓名、床号、住
院号等(查对制度) ❖ 正确采集:方法、时间、量、容器(标本采
集手册) ❖ 及时送检:
注:
❖ 明确检验项目、检验目的及注意事项; ❖ 标本的容器贴好条码(唯一标识),附上申
请单:患者的姓名、科室、床号、住院号、 送检目的、送检日期和时间等,详细进行“查 对制度”; ❖ 每次采集血标本时应做到“三个一”:一患 者、一化验单、一容器
3.8%枸橼酸钠 2ml
EDTA—K2 2ml
肝素钠
3ml
3.8%枸橼酸钠 2ml
无抗凝剂
4ml
无抗凝剂
4ml
凝血检查
血常规、血型 血液流变学
血沉
生化类、PCR定 量等 免疫类
条码的使用
条码统一张贴样式: 名字向上、管盖平行、张贴平整、打印清楚、一管一码
条码的使用
条码统一张贴样式:尿液、大便、分泌物、CSF、血沉等条码统一张贴在医 技单,血气分析张贴在外包装管体;
条码的使用
错误张贴条码引发的标本不合格、作废条码应重新打印
痰标本
❖ 痰液常规+找真菌 ❖ 痰找抗酸杆菌(抗酸染色) ❖ 痰革兰氏染色 ❖ 痰细胞学检查 ❖ 痰细菌培养+真菌培养+药敏分析 ❖ 痰结核杆菌DNA检测
痰标本采集
能自理的患者:
—晨起后用清水漱口 —以清晨第一口痰为宜 —深吸气后用力咳出气管深处的痰液 —不可混入漱口液、唾液、鼻涕等
无法咳痰或不合作者:
—用吸痰法收集(集痰器)
痰标本采集注意事项
1、如查癌细胞,应立即送检或用95%乙醇或用 10%甲醛固定后送检;
2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中;
标本采集的原则
❖ 遵照医嘱: ❖ 充分准备:患者准备、用物准备、护士自身
准备 ❖ 严格查对:检查项目、患者姓名、床号、住
院号等(查对制度) ❖ 正确采集:方法、时间、量、容器(标本采
集手册) ❖ 及时送检:
注:
❖ 明确检验项目、检验目的及注意事项; ❖ 标本的容器贴好条码(唯一标识),附上申
请单:患者的姓名、科室、床号、住院号、 送检目的、送检日期和时间等,详细进行“查 对制度”; ❖ 每次采集血标本时应做到“三个一”:一患 者、一化验单、一容器
临床微生物标本采集与运送课件

留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集,不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液。
采样端口用酒精消毒;必要时,可先夹住导尿管但不能超过30分钟;将注射器针头插入采样
端口,抽吸出尿液;注入无菌杯或试管中
尿标本的运送
•
•
收集中段尿液5-10ml,及时送检。
室温保存下不得超过2小时,否则应置于4℃冰箱保存,保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖,因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏,
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征:
•
•
•
•
•
•
•
当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养:
1.粪便涂片白细胞>5个/HP;
2.体温>38℃;
3.重症腹泻;
4.脓血便;
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人;
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。
•
脑脊液标本采集与运送
•
•
•
•
•
采集:
按脊椎穿刺操作规程,采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中,每支试管至少1-2ml,然后马
上将第2支(或第1支)送至实验室。
做脑脊液培养时,建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送:
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性,则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套,连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性,则继续采集2套血培养。
应该采多少血量?
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶(需氧+厌氧),每瓶8-10ml,共20ml;要求至少采两份标本,即
采样端口用酒精消毒;必要时,可先夹住导尿管但不能超过30分钟;将注射器针头插入采样
端口,抽吸出尿液;注入无菌杯或试管中
尿标本的运送
•
•
收集中段尿液5-10ml,及时送检。
室温保存下不得超过2小时,否则应置于4℃冰箱保存,保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖,因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏,
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征:
•
•
•
•
•
•
•
当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养:
1.粪便涂片白细胞>5个/HP;
2.体温>38℃;
3.重症腹泻;
4.脓血便;
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人;
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。
•
脑脊液标本采集与运送
•
•
•
•
•
采集:
按脊椎穿刺操作规程,采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中,每支试管至少1-2ml,然后马
上将第2支(或第1支)送至实验室。
做脑脊液培养时,建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送:
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性,则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套,连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性,则继续采集2套血培养。
应该采多少血量?
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶(需氧+厌氧),每瓶8-10ml,共20ml;要求至少采两份标本,即
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件

4
采集原则与要求
01
02
03
04
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则,避免污染标本。
正确选择采集部位
根据不同感染类型选择相应的 采集部位,如呼吸道、泌尿道
、伤口等。
采集足量标本
确保采集到足够数量的微生物 ,以满足后续实验需求。
及时送检
标本采集后应尽快送至实验室 进行检测,避免延误诊断和治
疗。
确保采集顺利进行。
PART 02
微生物标本采集方法
REPORTING
2024/1/28
7
空气微生物采集
采样时间选择
通常在清洁后和消毒前进 行空气采样,避免人为因 素干扰。
2024/1/28
采样高度
距离地面1.5米左右的高度 进行采样,以反映室内空 气污染情况。
采样方法
使用空气微生物采样器, 设置合适的采样流量和时 间,进行空气微生物的收 集。
2024/1/28
5
采集前准备工作
了解患者病情
熟悉患者病史、症状、 体征等,以便选择合适
的采集部位和方法。
2024/1/28
准备采集用品
根据采集部位和需要准 备相应的采集用品,如 无菌棉签、试管、培养
基等。
消毒处理
与患者沟通
对患者采集部位及周围 皮肤进行消毒处理,减
少污染可能性。
6
向患者解释采集目的和 过程,取得患者配合,
标本处理
标本保存
根据标本类型选择合适的处理方法,如涂 片、培养、药敏试验等。
按照相关规定妥善保存标本,确保标本在有 效期内可用于复检或质量控制。
2024/1/28
17
常用检测方法介绍
采集原则与要求
01
02
03
04
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则,避免污染标本。
正确选择采集部位
根据不同感染类型选择相应的 采集部位,如呼吸道、泌尿道
、伤口等。
采集足量标本
确保采集到足够数量的微生物 ,以满足后续实验需求。
及时送检
标本采集后应尽快送至实验室 进行检测,避免延误诊断和治
疗。
确保采集顺利进行。
PART 02
微生物标本采集方法
REPORTING
2024/1/28
7
空气微生物采集
采样时间选择
通常在清洁后和消毒前进 行空气采样,避免人为因 素干扰。
2024/1/28
采样高度
距离地面1.5米左右的高度 进行采样,以反映室内空 气污染情况。
采样方法
使用空气微生物采样器, 设置合适的采样流量和时 间,进行空气微生物的收 集。
2024/1/28
5
采集前准备工作
了解患者病情
熟悉患者病史、症状、 体征等,以便选择合适
的采集部位和方法。
2024/1/28
准备采集用品
根据采集部位和需要准 备相应的采集用品,如 无菌棉签、试管、培养
基等。
消毒处理
与患者沟通
对患者采集部位及周围 皮肤进行消毒处理,减
少污染可能性。
6
向患者解释采集目的和 过程,取得患者配合,
标本处理
标本保存
根据标本类型选择合适的处理方法,如涂 片、培养、药敏试验等。
按照相关规定妥善保存标本,确保标本在有 效期内可用于复检或质量控制。
2024/1/28
17
常用检测方法介绍
《标本采集和送检》课件

05 案例分析
案例一:血液标本采集不当引发的误诊
总结词
血液标本采集是临床诊断中常见的检验项目,采集过程中需注意避免交叉感染 、防止溶血等。
详细描述
某患者因发热就诊,医生采集血液标本进行血常规检查,结果提示贫血、白细 胞升高。但重新审视采血过程,发现采血器消毒不彻底,导致交叉感染。最终 诊断为败血症,与初步诊断大相径庭。
粪便标本
粪便标本应保存在适当的 容器中,并避免污染和交 叉污染。在送检前应将粪 便中的水份适当干燥。
04
注意事项与问题处理
采集过程中的注意事项
采集时间
01
需在规定时间内完成采集,确保样本的有效性 。
采集方法
02
按照规定的操作流程进行采集,避免样本被污 染或破坏。
样本标识
03
确保每个样本都有唯一的标识,便于后续识别 和管理。
异常结果的处理与报告异常结果,需进行核 实,确认是否为操作误差或
真实异常。
01
02
根据复检结果撰写报告,详 细说明异常情况及处理建议
。
03
04
复检与确认
如为真实异常,需进行复检 和确认,以保障结果的准确
性。
反馈与改进
将异常结果反馈给相关人员 ,并针对问题进行分析和改
进,提高检测质量。
02
常见标本采集方法
血液标本采集
静脉血液标本采集
从肘静脉或手背静脉采集,常用真空 采血管。
末梢血液标本采集
严格消毒,防止交叉感染;确保采血 量足够;避免溶血和凝血。
动脉血液标本采集
用于血气分析,常用股动脉、肱动脉 或桡动脉。
注意事项
用于快速血糖检测,从手指或耳垂采 集。
尿液标本采集
检验标本的采集及运送ppt课件

4、检验人员:必须等收到临床医生书面或电子打印的检验申请单
时,才可接收标本进行检验。
5、检验申请单及检验结果记录:保存2年。
5/22/2024
4
四、标本采集方法:
收取检验申请单——审核合格后,检查真空管标识和检验 申请单一致——做好患者准备工作——找好采血静脉并消毒—— 采集致标本容器——送至检验科。
2:血液标本的运送应由患者(除血交叉标本外) 或临床卫生员运送。运送过程中必须保证安全, 防止容器破裂、遗漏等现象。
5/22/2024
3
三、检验的申请:
1、临床医生:应完整填写申请单各项内容,字迹必须清楚,包
括患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序
号、标本类型、临床诊断、采集标本日期和时间、申请检查的实验
3.5 溶血标本拒收 3.6 血糖标本 3.6.1 要注意:患者的饮食,高糖饮食、剧烈运动、情
绪激动等,都会引起血糖生理性增高。 血清管抽血后,尽快送检验科检测,因为葡萄糖
在空气中,在血细胞的作用下,很容易孝解。 全血标本室温放置1小时,血糖值下降。3-6% 全血标本室温放置4小时,血糖值下降。10-30%
↓
阻断葡萄糖的分解
5/22/2024
2
二、采集血液标本的职责:
1:住院病人血液由临床医护人员采集。临床医 护人员必须明确告知病人标本采集前的准备条 件,要求及注意事项(如禁食、禁水、特殊标 本采集前的准备等);医护人员有义雾向患者 解释标本采集中的各种问题,标本采集的类型、 血量、保存条件、注意事项、生物参考区间、 临床意义等,指导患者进行正确的准备。
介绍
检验标本的采集及运送是保证检验结果 准确与否首要的、重要环节。包括适当的患 者准备、检验申请,适当的标本收集、标记、 保存、运送和处理。
临床样本的采集、运输和保存及核酸提取PPT课件

将含有核酸分子复杂复合物中,将核酸与其
他物质分离 非核酸的大分子污染物(蛋白质、多糖和脂 类分子)、非需要的核酸分子、试剂和溶液
3、核酸的浓缩、沉淀与洗涤
沉淀可去除部分杂质与某些盐离子
加入一定的盐类(醋酸钠、氯化钠等)后 使用有机溶剂(如乙醇、异丙醇等) 少数盐类可使用70-75%的乙醇洗涤
4. 核酸的鉴定
在260nm和280nm处测定DAN溶液的光吸收,纯的DNA A260与A280之比
应在1.80 (1.60~1.80),低于此值表明制备物中留有蛋白质成份。高 于此值表明有RNA的残留量
纯的RNA A260与A280之比应在2.0(1.80~2.00), Ratio<1.8 : 蛋白质
污染; Ratio>2.2 : RNA可能已经水解成单核苷酸
地贫检测样品采集:
外周血: ≥5mL 脐带血: 0.5~1mL 羊 绒 唾 组 水:20~30mL 毛:≥15mg 液 织
标本采集的注意事项
所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作,防止污染的原则
下进行
已采集标本都应置于防漏、密封的无菌容器中运送 采集足够量标本
每份标本都应标记患者姓名、送检号码、标本来源、具体部位、 日期、时间及相关临床信息
研究背景
二、核酸的提取
核酸提取的重要性
核酸提取是临床PCR检验最为关键的部分, 亦是手式操作的主要部分 核酸提取的成败关系到临床PCR检验的正确 与否
临床PCR检验操作中最易出问题的环节
(一)、提取核酸总的原则
保证核酸一级结构的完整性;
其他生物大分子如蛋白质、多糖和脂类 分子的污染应
2024版标本采集PPT课件

定期对质量管理体系进行内部审 核和外部评审,确保其有效性。
加强人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训, 包括理论知识、操作技能、安全
防护等方面。
定期对标本采集人员进行考核, 评估其操作技能水平和理论知识
掌握程度。
建立奖惩机制,对表现优秀的标 本采集人员给予表彰和奖励,对 操作不规范或造成质量问题的进
穿刺与采血
穿刺静脉,使血液自然流入采 血管。
止血与后处理
用无菌棉球按压穿刺点止血, 嘱患者保持穿刺部位干燥、清
洁。
尿液标本采集
01
02
03
采集前准备
核对患者信息,指导患者 正确留取尿液。
采集方法
留取清晨第一次尿或随机 尿,避免污染。
标本保存与运输
及时送检,避免光照和高 温。
粪便标本采集
采集前准备
保持低温环境
01
对于需要低温保存的标本,要确保在运输过程中维持适当的低
温环境,防止标本变质。
避免剧烈震动
02
在运输过程中要避免剧烈震动和碰撞,以免对标本造成损坏。
防止污染和泄漏
03
要确保容器密封性良好,防止标本在运输过程中发生泄漏或污
染。
到达后接收与登记流程
接收核对
在接收标本时,要仔细核对标本信息、容器完整性以及运输文件 等,确保无误。
生殖道分泌物标本采集
根据不同部位选择合适的采集方法,注意无 菌操作。
04
标本处理与保存
标本处理流程
接收标本
核对患者信息、标本类型及数量, 确保准确无误。
标本前处理
根据检测项目要求,对标本进行 离心、分离血清或血浆等处理。
标本检测
按照实验室标准操作程序进行标 本检测,确保结果准确可靠。
标本的采集和运送PPT课件

标本的采集和运送
正确规范的采集和运送标本, 通过实验室检查,结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中,不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理,立即送往实验 室;对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤:应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物,以碘酒、酒精消毒皮肤, 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿:用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿:以无菌干燥注射器穿刺抽取;疑为厌 氧菌感染者,取脓液后立即排净注射器内空气,针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱,不耐 冷,容易死亡,故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少,宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本:性传播疾病-尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液;生殖道疱疹-穿刺疱疹液;盆腔脓 肿-于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外,所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中,自然凝固、 血块收缩后吸取血清,56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于-20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检,排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率(如霍乱)。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在,对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
正确规范的采集和运送标本, 通过实验室检查,结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中,不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理,立即送往实验 室;对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤:应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物,以碘酒、酒精消毒皮肤, 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿:用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿:以无菌干燥注射器穿刺抽取;疑为厌 氧菌感染者,取脓液后立即排净注射器内空气,针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱,不耐 冷,容易死亡,故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少,宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本:性传播疾病-尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液;生殖道疱疹-穿刺疱疹液;盆腔脓 肿-于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外,所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中,自然凝固、 血块收缩后吸取血清,56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于-20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检,排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率(如霍乱)。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在,对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
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湖南省肿瘤医院
HUNAN PROVINCIAL TUMOR HOSPITAL
标本的采集与运送
检验科 黄宏君
.
1
主要内容
➢ 如何看待检验工作 ➢ 标本采集前准备 ➢ 标本采集
➢ 意义和原则 ➢ 常见检验项目试管选择 ➢ 常用标本采集方法和注意事项
➢ 标本的运送与拒收 ➢ 常见问题反馈和处理 ➢ 小结
.
19
血常规管
• 适用于血常规、血型鉴定、交叉 配血试验及临床血液学检查等
• 抗凝剂:EDTA-K2、 EDTA-K3
• 血液标本量不小于1ml
• 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
.
20
血沉管
• 适用于血沉(ESR)检测 • 抗凝剂:柠檬酸0.129mol/L • 抗凝剂与血样的体积比(1:4 ) • 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
• 必须空腹的项目 – 1.肝功能 – 2.血糖 – 3.血脂 – 4.真菌 D葡聚糖(血脂高患者) – 5.凝血功能(血脂高患者) – 6.血液流变的检查如全血粘度、血清粘度 、血浆粘度等 – 7.甲胎蛋白、血清免疫球蛋白、粘蛋白
.
12
标本采集
.
13
明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
.
观察病情
.
21
血凝管
• 适用于PT、APTT、PT、D-二聚体 、凝血因子检测等。
• 2. 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动,采血当 日早晨应避免剧烈运动和劳动,采血前应有10分钟 的休息。采血时,患者要保持相对安静和情绪稳定 。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅 并休息10分钟后采血。
.
7
血液样品采集前患者的准备
• 3.一般采血前24小时要素食。 – 避免食用或少食用高脂类食物,同时停止饮用咖 啡∕咖啡类饮料、浓茶类饮料及酒类(血浆乳酸、 甘油三酯、尿酸增加)。因此,最好是空腹8-12 小时采血,尤其是早晨空腹采血。 – 尿、便检查也需要注意饮食影响,如进食富含葡 萄糖的食物,可引起一过性尿糖阳性,进食动物 血、肉、内脏及富含铁质的蔬菜时,可引起化学 法检测大便隐血的假阳性。
.
10
血液样品采集前患者的准备
• 11.糖耐量试验(WHO标准化的OGTT)
– 试验前3天,患者可正常饮食(如果患者食量少,试验前2 天每天要进食碳水化合物250-300g),每日食物中糖含量 应不低于150g,且维持正常运动。
– 影响试验的药物需在3天前停用,如停用胰岛素和肾上腺皮 质素等药物;
• 黑色帽(枸橼酸钠抗凝管):血沉ESR,抗凝剂与血比 例为1:4,管子上有刻度。
• 蓝色帽(枸橼酸钠抗凝管):凝血功能,抗凝剂与血比 例为1:9,管子上由刻度。
• 红色帽(普通长管):传染病类、结核抗体、激素类均 可使用。
• 红色帽(短管):真菌β-D葡聚糖可使用。(在检验科 7号窗口)
.
18
常见检验项目试管选择
.
3
标本采集前准备
.
4
医生申请
• 由于临床检验样品对结果的影响因素较 多,医生在详细了解患者的基本病情后 ,根据病情需要开具相应的检验申请单 ,向患者告知检验目的、样品采集时的 注意事项及要点和采集时间。
.
5
护士采集标本
1.采集标本前应先评估患者的病情、心理反应与合作 程度。
2.向患者解释采集标本的目的方法、 以消除顾虑,取 得合作。
– 受试前应空腹10-12小时,次晨空腹采血。 – 坐位采血,根据医生要求5分钟内饮入250ml含75g无水葡
萄糖的糖水或100g的馒头。服糖或吃馒头后,于30分钟、 1小时、2小时、3小时各采血一次,前后共五次。 – 整个试验过程中不可吸烟、喝咖啡、喝茶或水及进食。
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血液样品采集前患者的准备
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2
如何看待检验工作
• 检验科的工作就像法医,法医是为公安提供 证据,而检验科是为临床医生诊断、治疗提 供依据。数据直接影响医生的诊断,所以检 验结果是否准确的中重要性不言而喻。
• 俗话说“巧妇难为无米之炊”,如果送检的 标本本身就有问题,再先进的设备、再高的 检测技术,结果可谓“差之毫厘,谬之千里 ”。由此可见,检验结果的质量控制从医生 开具医嘱就已经开始了。
3.采集时认真核对床号、姓名、检验项目等 4.根据检验目的选择相应的标本容器 5.在容器外贴上标本检验条码
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血液样品采集前患者的准备
• 1.采血前应向患者做适当的解释,以消除患者的疑 惑及恐慌。由医护人员告知患者需要静脉或动脉采 血及采血时间。做糖耐量试验,还需向患者解释该 试验可能需要多次采血。
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遵照医嘱 充分准备
严格查对
正确采集
及时送检
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掌握正确的标本采集方法
为保证标本的检验质量,应合理地选 择标本采集方法、采样容器(如采血管 、培养管等)、采样部位、采样时机和 频次、及采集量并应尽快送检。
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常见检验项目试管
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常见检验项目试管选择
• 紫色帽(EDTA-K2抗凝管):血常规、糖化血红蛋白 、全淋巴细胞亚群检测标本需要全血。
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血液样品采集前患者的准备
• 4.一般采血前要避免吸烟或少吸烟。 • 5.某些用药患者根据具体情况,尽量避免药物干扰
。一般要求病人停用药物2天后采血。放化疗患者要 求在放化疗前采集样品,以保证结果的准确性。 • 6.体位影响血液循环,门诊一般采用坐位采血,采 血前应让病人有10分钟的时间稳定自己的体位;住 院病人可选取卧位采血,对某些医嘱要求卧位采血 的项目谨遵医嘱执行。(由于血浆和组织间液因体位不同
• 黄色帽(促凝管):生化类项目可使用。 • 绿色帽(肝素钠抗凝管):结核感染T细胞、
骨髓标本(淋巴瘤/浆细胞瘤免疫分型)。 • 灰色帽(EDTA抗凝管):肝炎病毒、EB病毒
核酸检测
• 检验血需要的标本类型:全血、末梢血 、血浆、血清。
• 抗凝剂:EDTA-K2、EDTA-Na2、枸橼 酸钠、草酸盐、肝素钠等。
而平衡改变,尤其细胞成分和大分子物质的改变较为明显。)
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血液样品采集前患者的准备
• 8. 血脂检测:血脂分析采血前3天禁止食用高脂肪食 物,应在禁食12小时后采血检测。并于前3天至采血 前禁饮咖啡或酒类。患者若服用降血脂类药,需在 检查前24小时内停止服用,以保证结果的准确性。
• 9.血气分析:采血前及采血时,患者应消除恐惧心 理。患者应处于安静呼吸稳定的状态,静坐或静卧 30分钟。
HUNAN PROVINCIAL TUMOR HOSPITAL
标本的采集与运送
检验科 黄宏君
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主要内容
➢ 如何看待检验工作 ➢ 标本采集前准备 ➢ 标本采集
➢ 意义和原则 ➢ 常见检验项目试管选择 ➢ 常用标本采集方法和注意事项
➢ 标本的运送与拒收 ➢ 常见问题反馈和处理 ➢ 小结
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血常规管
• 适用于血常规、血型鉴定、交叉 配血试验及临床血液学检查等
• 抗凝剂:EDTA-K2、 EDTA-K3
• 血液标本量不小于1ml
• 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
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血沉管
• 适用于血沉(ESR)检测 • 抗凝剂:柠檬酸0.129mol/L • 抗凝剂与血样的体积比(1:4 ) • 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
• 必须空腹的项目 – 1.肝功能 – 2.血糖 – 3.血脂 – 4.真菌 D葡聚糖(血脂高患者) – 5.凝血功能(血脂高患者) – 6.血液流变的检查如全血粘度、血清粘度 、血浆粘度等 – 7.甲胎蛋白、血清免疫球蛋白、粘蛋白
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标本采集
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明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
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观察病情
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血凝管
• 适用于PT、APTT、PT、D-二聚体 、凝血因子检测等。
• 2. 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动,采血当 日早晨应避免剧烈运动和劳动,采血前应有10分钟 的休息。采血时,患者要保持相对安静和情绪稳定 。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅 并休息10分钟后采血。
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血液样品采集前患者的准备
• 3.一般采血前24小时要素食。 – 避免食用或少食用高脂类食物,同时停止饮用咖 啡∕咖啡类饮料、浓茶类饮料及酒类(血浆乳酸、 甘油三酯、尿酸增加)。因此,最好是空腹8-12 小时采血,尤其是早晨空腹采血。 – 尿、便检查也需要注意饮食影响,如进食富含葡 萄糖的食物,可引起一过性尿糖阳性,进食动物 血、肉、内脏及富含铁质的蔬菜时,可引起化学 法检测大便隐血的假阳性。
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血液样品采集前患者的准备
• 11.糖耐量试验(WHO标准化的OGTT)
– 试验前3天,患者可正常饮食(如果患者食量少,试验前2 天每天要进食碳水化合物250-300g),每日食物中糖含量 应不低于150g,且维持正常运动。
– 影响试验的药物需在3天前停用,如停用胰岛素和肾上腺皮 质素等药物;
• 黑色帽(枸橼酸钠抗凝管):血沉ESR,抗凝剂与血比 例为1:4,管子上有刻度。
• 蓝色帽(枸橼酸钠抗凝管):凝血功能,抗凝剂与血比 例为1:9,管子上由刻度。
• 红色帽(普通长管):传染病类、结核抗体、激素类均 可使用。
• 红色帽(短管):真菌β-D葡聚糖可使用。(在检验科 7号窗口)
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常见检验项目试管选择
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标本采集前准备
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医生申请
• 由于临床检验样品对结果的影响因素较 多,医生在详细了解患者的基本病情后 ,根据病情需要开具相应的检验申请单 ,向患者告知检验目的、样品采集时的 注意事项及要点和采集时间。
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护士采集标本
1.采集标本前应先评估患者的病情、心理反应与合作 程度。
2.向患者解释采集标本的目的方法、 以消除顾虑,取 得合作。
– 受试前应空腹10-12小时,次晨空腹采血。 – 坐位采血,根据医生要求5分钟内饮入250ml含75g无水葡
萄糖的糖水或100g的馒头。服糖或吃馒头后,于30分钟、 1小时、2小时、3小时各采血一次,前后共五次。 – 整个试验过程中不可吸烟、喝咖啡、喝茶或水及进食。
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血液样品采集前患者的准备
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如何看待检验工作
• 检验科的工作就像法医,法医是为公安提供 证据,而检验科是为临床医生诊断、治疗提 供依据。数据直接影响医生的诊断,所以检 验结果是否准确的中重要性不言而喻。
• 俗话说“巧妇难为无米之炊”,如果送检的 标本本身就有问题,再先进的设备、再高的 检测技术,结果可谓“差之毫厘,谬之千里 ”。由此可见,检验结果的质量控制从医生 开具医嘱就已经开始了。
3.采集时认真核对床号、姓名、检验项目等 4.根据检验目的选择相应的标本容器 5.在容器外贴上标本检验条码
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血液样品采集前患者的准备
• 1.采血前应向患者做适当的解释,以消除患者的疑 惑及恐慌。由医护人员告知患者需要静脉或动脉采 血及采血时间。做糖耐量试验,还需向患者解释该 试验可能需要多次采血。
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遵照医嘱 充分准备
严格查对
正确采集
及时送检
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掌握正确的标本采集方法
为保证标本的检验质量,应合理地选 择标本采集方法、采样容器(如采血管 、培养管等)、采样部位、采样时机和 频次、及采集量并应尽快送检。
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常见检验项目试管
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常见检验项目试管选择
• 紫色帽(EDTA-K2抗凝管):血常规、糖化血红蛋白 、全淋巴细胞亚群检测标本需要全血。
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血液样品采集前患者的准备
• 4.一般采血前要避免吸烟或少吸烟。 • 5.某些用药患者根据具体情况,尽量避免药物干扰
。一般要求病人停用药物2天后采血。放化疗患者要 求在放化疗前采集样品,以保证结果的准确性。 • 6.体位影响血液循环,门诊一般采用坐位采血,采 血前应让病人有10分钟的时间稳定自己的体位;住 院病人可选取卧位采血,对某些医嘱要求卧位采血 的项目谨遵医嘱执行。(由于血浆和组织间液因体位不同
• 黄色帽(促凝管):生化类项目可使用。 • 绿色帽(肝素钠抗凝管):结核感染T细胞、
骨髓标本(淋巴瘤/浆细胞瘤免疫分型)。 • 灰色帽(EDTA抗凝管):肝炎病毒、EB病毒
核酸检测
• 检验血需要的标本类型:全血、末梢血 、血浆、血清。
• 抗凝剂:EDTA-K2、EDTA-Na2、枸橼 酸钠、草酸盐、肝素钠等。
而平衡改变,尤其细胞成分和大分子物质的改变较为明显。)
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血液样品采集前患者的准备
• 8. 血脂检测:血脂分析采血前3天禁止食用高脂肪食 物,应在禁食12小时后采血检测。并于前3天至采血 前禁饮咖啡或酒类。患者若服用降血脂类药,需在 检查前24小时内停止服用,以保证结果的准确性。
• 9.血气分析:采血前及采血时,患者应消除恐惧心 理。患者应处于安静呼吸稳定的状态,静坐或静卧 30分钟。