肠毒性大肠杆菌的绿色荧光蛋白转化及表达研究
荧光蛋白基因在大肠杆菌中的表达与检测
绿色荧光蛋白基因在大肠杆菌中的表达与检测一、背景介绍1．绿色荧光蛋白1955年，Davenport和Nicol 在太平洋海里的一种发光生物—维多利亚水母(Aequorea victoria)中发现并发表了荧光蛋白的生物发光现象，但是对生物发光现象的机理并不了解。
1962年，日本科学家下村修在水母中纯化鉴定出了一种能催化化学发光的蛋白质分子并将其命名为aequorin，aequorin能将化学能转化为光能，从而产生出波长为470nm的蓝色光(lmax=470nm)，但是水母发出的光是独有的绿色，因此水母发光的蛋白质并非aequorin。
与此同时，发现和分离了一个受紫外线激发能发出绿色荧光的蛋白质—绿色荧光蛋白(GFP)。
1971年，Morin和Hastings提出了GFP这个名称。
1985到1992年间，科学家Douglas Prasher 测定完成了aequorin 和GFP的基因和蛋白质序列，并通过蛋白质序列分析和核磁共振分光术(NMR spectroscopy)确定了GFP发光位点。
1994年，美国科学家钱永健开始改造GFP，目前所用的大多数是钱永健实验室改造后的变种，有的荧光更强，有的可激活、变色。
1996年，解析得到了GFP的晶体结构，它的发光过程是也在日后的应用中得到了解答。
纵观整个过程，从1961年到1974年，下村修的研究遥遥领先，却很少有人注意。
在1974年以后，特别是八十年代后，绿色荧光蛋白的研究得到了广泛的重视和发展。
绿色荧光蛋白，分子质量约为28kDa，由238个氨基酸构成，第65～67位氨基酸(Ser-Tyr-Gly)形成发光团，经共价键连接而成对羟苯甲基咪唑烷酮，它可以被光激发产生荧光，是主要发光的位置。
绿色荧光蛋白分子的形状呈圆柱形，就像一个桶，发光的基团位于桶中央，因此，它可形象地比喻成一个装有色素的“油漆桶”。
其发光团的形成不具有物种专一性，发出的荧光稳定，且不需要依赖其他基质而发光。
实验五 用IPTG诱导大肠杆菌表达重组绿色荧光蛋白
实验五用IPTG诱导大肠杆菌表达重组绿色荧光蛋白一、目的要求1.学习和掌握重组蛋白在大肠杆菌中表达的原理和实验技术；2.观察大肠杆菌在诱导过程中的形态。
二、原理pET 系统是有史以来在E.coli 中克隆表达重组蛋白的功能最强大的系统。
目的基因被克隆到pET 质粒载体上，受噬菌体T7强转录及翻译(可选择)信号控制；表达由宿主细胞提供的T7 RNA 聚合酶诱导。
T7 RNA 聚合酶机制十分有效并具选择性：充分诱导时，几乎所有的细胞资源都用于表达目的蛋白；诱导表达后仅几个小时，目的蛋白通常可以占到细胞总蛋白的50%以上。
尽管该系统极为强大，却仍能很容易地通过降低诱导物的浓度来削弱蛋白表达。
降低表达水平可能可以提高某些目的蛋白的可溶部分产量。
该系统的另一个重要优点是在非诱导条件下，可以使目的基因完全处于沉默状态而不转录。
用不含T7 RNA聚合酶的宿主菌克隆目的基因，即可避免因目的蛋白对宿主细胞的可能毒性造成的质粒不稳定 (详见I. F.部分)。
如果用非表达型宿主细胞克隆，可以通过两种方法启动目的蛋白的表达：用带有受λpL 和 pI 启动子控制的T7 RNA 聚合酶的λCE6噬菌体侵染宿主细胞，或者将质粒转入带有受lacUV5 控制的T7 RNA聚合酶基因的表达型细胞。
在第二种情形下，可以通过在细菌培养基中加入IPTG 来启动表达。
尽管有时(例如非毒性目的蛋白) 可以直接将目的基因克隆到表达型宿主细胞中，但这种策略并不是通用做法。
两种T7 启动子以及多种拥有不同抑制本底表达水平的宿主细胞共同构成了一个极为灵活而有效的系统，使各种目的蛋白得以最优化表达。
三、试剂与器材试剂：LB培养基、IPTG、氨苄青霉素、草酸铵结晶紫染色液，路哥氏（Lugol）碘液，95%乙醇，0.5%沙黄染色液。
器材：摇床、显微镜等。
四、操作步骤A、诱导许多研究表明细胞生长速率严重影响外源蛋白的表达，因此必须对接种菌量、诱导前细胞生长时间和诱导后细胞密度进行控制。
绿色荧光蛋白在大肠杆菌中的克隆表达
实验用品
PEGFP -N3模板、菌株E. coli DH5 α、E. coli BL21 、质粒 pET28a 、 限制性内切酶 EcoRⅠ、 Hind Ⅲ、T4 DNA连接酶、1 kb DNA ladder
DNA 凝胶回收试剂盒及质粒小提试剂盒、DNA 纯化试剂盒及 IPTG、 PCR用试剂、卡那霉素、琼脂糖及 PCR 合成引物等、蛋白胨、酵母浸出 粉、琼脂粉等。
转化 筛选及复筛及酶切验证
PCR检测 IPTG诱导表达
SDS-PAGE检测目的蛋白
包涵体检测 分离纯化
电泳检测 酶切
pET28a质粒酶切位点选择
实验用品及方法介绍
方法介绍
研究绿色荧光蛋白在大肠杆菌体内的基因克隆和表达。通过质粒重 组形成所需要的重组质粒pET-28a-GFP，将重组质粒导入大肠杆菌 体内，通过酶切、PCR及用IPTG诱导检测是否在大肠杆菌体内诱导 表达成功。根据电泳结果及荧光现象得出结论，重组质粒在大肠杆
目
1 实验背景
2 实验用品及方法介绍
录
3 实验流程
4 实验原理
5 具体实验步骤
6 实验结果预测
7 参考文献
实验背景
200810月8日，瑞典皇家科学院宣布，2008年诺贝尔化学奖由 日本科学家下村修、美国科学家马丁·沙尔菲和美籍华裔科学 家钱永健获得，他们三人在发现和研究绿色荧光蛋白(GFP)方 面取得了突出成就。
目前应用较多的是GFP的突变体—增强型绿色荧光蛋白（简称EGFP）。 EGFP将GFP的第64位氨基酸苯丙氨酸突变成为亮氨酸，从而发射出的荧光 强度比GFP大6倍以上。
所以，EGFP比GFP更适合作为报告基因来研究基因表达、调控、细胞 分化及蛋白质在生物体内的定位和转运等
EGFP在大肠杆菌Ecoli中的表达与检测
contents
一 二 三 四 五
背景介绍 实验流程 实验步骤 预期结果 参考文献
第几章
一、背景介绍
1、绿色荧光蛋白（GFP） 2、质粒 3、大肠杆菌表达载体及表达系统 4、SDS-PAGE原理及蛋白分离与检测
一 1 - 绿色荧光蛋白
生物学研究
生态学研究
医学研究
一 2 - 质粒
2.1 pEGFP-N3质粒
一 2 - 质粒
2.1.1 pEGFP-N3质粒描述
pEGFP-N3 encodes a red-shifted variant of wild-type GFP (1–3) which has been optimized for brighter fluorescence and higher expression in mammalian cells. (Excitation maximum = 488 nm; emission maximum = 507 nm.) pEGFP-N3 encodes the GFPmut1 variant (4) which contains the double-amino-acid substitution of Phe-64 to Leu and Ser-65 to Thr. The coding sequence of the EGFP gene contains more than 190 silent base changes which correspond to human codon-usage preferences (5). Sequences flanking EGFP have been converted to a Kozak consensus translation initiation site (6) to further increase the translation efficiency in eukaryotic cells. The MCS in pEGFP-N3 is between the immediate early promoter of CMV (PCMV IE) and the EGFP coding sequences. Genes cloned into the MCS will be expressed as fusions to the N terminus of EGFP if they are in the same reading frame as EGFP and there are no intervening stop codons. SV40 polyadenylation signals downstream of the EGFP gene direct proper processing of the 3' end of the EGFP mRNA. The vector backbone also contains an SV40 origin for replication in mammalian cells expressing the SV40 T-antigen. A neomycin resistance cassette (Neor), consisting of the SV40 early promoter, the neomycin/kanamycin resistance gene of Tn5, and polyadenylation signals from the Herpes simplex virus thymidine kinase (HSV TK) gene, allows stably transfected eukaryotic cells to be selected using G418. A bacterial promoter upstream of this cassette expresses kanamycin resistance in E. coli. The pEGFP-N3 backbone also provides a pUC origin of replication for propagation in E. coli and an f1 origin for single-stranded DNA production.
荧光蛋白基因在大肠杆菌中的表达与检测
1μL 1μL 0.2μL
12.3μL 20μL 5min 45s 45s 120s 10min 无限制
}
29次循环
PCR扩增完后可进行琼脂糖凝胶电泳检测看是否有目的基 因。
6.目的基因的诱导表达——IPTG诱导表达
1.取含有重组质粒pET-28a的BL21(DE)菌株的单菌落，接种于 20mL含100μg/mL卡那霉素的LB液体培养基，37℃培养过夜。同 时取只含质粒载体pET-28a的BL21(DE)菌株的单菌落做实验对照。 2.分别取过夜培养物100μL接种于10mL含100μg/mL卡那霉素的 LB液体培养基（实验组转接两瓶），37℃恒温培养1~2h。当细菌 浓度A600达到0.4~0.6时，分别取出样品1mL作为IPTG诱导前的样 品，其余样品中添加100mmol/L的IPTG至终浓度为2mmol/L，其 中一瓶实验组不加IPTG的对照。继续培养，分别在1、2、3h和过 夜培养后各取1mL样品，作为诱导后的样品。
GFP各种突变体
GFP工作原理
• GFP形状呈圆柱形，如一个桶，负责发光的基团位于桶中 央，因此，GFP可形象地比喻成一个装有色素的“油漆桶”。 装在“桶”中的发光基团对蓝色光照特别敏感。当它受到蓝 光照射时，会吸收蓝光的部分能量，然后发射出绿色的荧 光。利用这一性质，生物学家们可以用绿色荧光蛋白来标 记几乎任何生物分子或细胞，然后在蓝光照射下进行显微 镜观察。原本黑暗或透明的视场马上变得星光点点——那 是被标记了的活动目标。
所用器材：
恒温水浴锅、EP管、微量移液器、PCR仪、His-Tag亲 和纯化柱等。
所用培养基：
LB培养基、麦康凯培养基
时间安排：
第一天：PCR获得目的基因，验证； 第二天：目的基因、pET-28a质粒双酶切，连接； E.coliBL21(DE)感受态细胞的制备； 第三天：重组质粒的转化； 第四、五天：重组子的筛选与验证：酶切验证和PCR验 证； 第六天：目的基因诱导表达； 第七天：目的蛋白的检测； 第八天：目的蛋白的纯化。
化学生物学综合创新设计实验——大肠杆菌中表达绿色荧光蛋白
３ 试 剂与 仪 器
３１ 试剂 ． 高保真 Ｔｑ酶 ，Ｎ Ｐ ， Ｔ 卡那霉 素， ａ ｄ Ｔ ｓＩ Ｇ， Ｐ 氯 化钙 ，４Ｄ Ａ连接酶 ， Ｔ Ｎ 限制性内切酶 Ｂｍ 和 Ｈｎ Ｉ ａ ＨＩ ｉｄＩ Ｉ
（ ａ ａ ａ ， 脂糖 ， 乙啶 ，Ｃ 纯化试剂 盒 （ ｍ ｇ ｉ ＴＫ Ｒ ）琼 溴 ＰＲ Ｏ ｅａＢｏ
１８ ６
江
西
农
业
学
报
２ ３卷
显微镜检测表达情况。
ｔ ，Ｎ Ｐ ｔ （ ． ｍ １ ，０ ｕｅ ｘ ｄ Ｔ ｓ Ｌ ２ ０ｍ ｏ） １ Ｂ ｆｒ ， Ｌ ２ｘ Ｘ ｆ２ 普通 Ｔｑ ａ 酶 ０２ （ ． Ｕ ， ． ２５ ）去离子水 １． 。反应条件 同４ １ ３３ ． 中条件。将反应后产物进行琼脂糖凝胶 电泳检测 ， 如果
验步骤。
收稿 日期 ： １ —０ ２ １ ６—２ ０ ５ ‘
笔者在任课教师 以往从事科研 的基础上 一 设计 ，
了该综 合 创 新 实 验 ， 绿 色 荧 光 蛋 白基 因 将 插 入 ｐ Ｔ ８ 表达系统 ， Ｅ ２ａ 进行绿色荧光蛋 白表达 ， 并使用荧光
基金项 目： 国家水体污染控制与治理科技重大专项 （０９ Ｘ ７２ — ０ ） 河南农业大学博士启动项 目（００ １ １ 。 ２０ Ｚ ０ ４３ ０３ ； ３ ３０７ ） 作者简介 ： 赵仲麟（９ Ｏ ）男 ， １ 一 ， 辽宁鞍山人 ， ８ 讲师 ， ， 博士 主要从事化学生物学及分子生物学的科研与教学工作。 通讯作者： 袁超。
江西农 业学报 ２ １ ，３ ８ ：６ ０ １ ２ （ ） １７～１８ ６
ＡｅａＡｇｉｕ ｕａ ｉｎ ｘ ｔ ｒｃ ｈ ｒｅＪａ ｇ ｉ
化 学生 物 学综 合创 新 设计 实验
绿色荧光蛋白(GFP)的基因克隆及表达
绿色荧光蛋白（GFP）的基因克隆及表达摘要绿色荧光蛋白（GFP）是一类存在于包括水母、水螅和珊瑚等腔肠动物体内的生物发光蛋白。
采用PCR技术，对实验室提供的质粒pEGFP-N1中的目的基因进行扩增。
所得PCR产物和质粒pET-28b经过BamH I和Nde I双酶切后，用琼脂糖凝胶电泳法检测酶切产物的酶切情况并回收凝胶，再利用T4DNA连接酶将目的基因与载体连接起来，得到重组质粒。
将重组质粒导入克隆菌E. coli DH5a中培养扩增，提取阳性菌落质粒进行重组子鉴定，进而导入表达菌E. coLi BL-21大肠杆菌感受态细胞中，经IPTG诱导目的基因表达产生绿色荧光蛋白。
关键词：绿色荧光蛋白 PCR 基因克隆表达1.前言1.1绿色荧光蛋白（green fluorescent protein，GFP）绿色荧光蛋白是一类存在于包括水母、水螅和珊瑚等腔肠动物体内的生物发光蛋白。
当受到紫外或蓝光激发时，GFP 发射绿色荧光[1]。
1.2 GFP 的结构GFP中央是一个圆柱形水桶样结构，如图二。
长420 nm，宽240 nm，由11 个围绕中心α螺旋的反平行β折叠组成，荧光基团的形成就是从这个螺旋开始的，桶的顶部由3个短的垂直片段覆盖，底部由一个短的垂直片段覆盖，对荧光活性很重要的生色团则位于大空腔内。
发色团是由其蛋白质内部第65-67位的Ser-Tyr-GLy自身环化和氧化形成。
1.3 GFP的研究应用GFP可标记细胞和蛋白质，具有广泛的应用前景。
GFP及其突变体已被广泛应用于基因表达调控、蛋白质空间定位、生物分子之间相互作用、转基因动物]2[等方面。
基于新型功能荧光蛋白的光学分子成像技术的发展，为在活细胞乃至活体动物内研究基因表达和蛋白质功能提供了更多的选择空间。
GFP还用于观察微生物、发育机理研究、细胞筛选、免疫学等方面。
本实验是利用实验室提供的质粒pEGFP-N1,其结构如图三所示。
其上有所用酶的酶切位点。
绿色荧光蛋白基因在大肠杆菌中的克隆与表达
/view/992207.ht m /view/2261117.h tm 郝福英 周先碗 朱玉贤 主编《基础分子生物 学实验》 北京大学出版社 2010年11月第 一版
实验仪器 实验材料 实验试剂
将pET-28a-GFP重组质粒转化入表达菌株 · 制备BL21（DE3）菌株的感受态细胞
10uL BL21（DE3）菌液接入3mL LB液体培养基，摇床培养过夜
二次活化：1:50比例接入新的试管摇床培养2h
1.5mL冰上10min
4 度，4000r/min离心2min收集细胞
涂平板： a）分别取50、100、150uL加入重组质粒的感 受态细胞悬液涂布于含抗生素的平板 b）抗生素板+IPTG+100uL重组质粒的感受态 细胞悬液 c）对照组感受态细胞100uL+抗生素平板 d）正面向上放置片刻，后37度倒置培养20h
重组阳性克隆菌接至3mL LB（Kan）液体培养基中，37度 培养16h 过夜菌1:50比例接种至4支试管中（每支试管含3mL LB(Kan)），扩大培养2h，测量A600值为0.5，停止 分别使用IPTG（最后总浓度为1mmol/L）诱导 0,2,4h 离心并照相
丝氨酸－酪氨酸－甘氨酸 生色基团 蛋白质折叠，生色基团得以“亲密接触”, 经环化形成咪唑酮,并发生脱水反应。但此 时还不能发射荧光,只有当有分子氧存在的 条件下,发生氧化脱氢,方能导致绿色荧光蛋 白发色团的“成熟”,形成可发射荧光的形 式。
蓝光、绿光与黄光 基因克隆 变体
分子标记 药物筛选 融合抗体 生物传感器 信号传导
标记！
真核细胞表达载体，pEGFP-N3载体上携带 有EGFP蛋白表达基因 很强的复制能力 高效的功能强大的启动子SV40和PCMV 多克隆位点 具有neo基因，可以采用G418来筛选已成 功转染了该载体的靶细胞
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K 88下 游 引 物 序 列 :5′-AA TTG CTACG TTCAG CG GAGC-3′
K 99上游引物序列 :5′-AAAAACACTGCTAG C-3′ K 99下游引物序列 :5′-AGTAG TAAA TA CG CC-3′ 50 μL PCR反应体系中包含 10 ×PCR buffer;200 μm o l /L dNTP;50 p m ol 引物 P1 和 P2;5 U 的 T aq DNA 聚合酶 , M g2 +浓度为 2 mm o l /L. K88 PCR 循环参数 为 :96 ℃预变性 4 m in;然后进入 94℃ 60 s, 57℃ 60 s, 72℃ 60 s, 共 30 个循环 ;最后 72℃延伸 8 m in. K 99PCR 循环参数 与 K88 相 比 , 除了 复性的 温度 由 57℃改 为 55℃外 , 其余均 相同. 1. 3%的 琼脂糖 凝胶 电泳检 测 PC R 产物 . (6)标记菌株的血清型鉴定 将转化 3代的菌落和原始菌株与标准 K88 、K 99因 子血清做玻片凝集试验 , 鉴定其血清型. (7)转化前菌株和未转化菌株的生长曲线测定 取过夜培养物 , 按 1%接菌量置于新鲜的 LB液体 培养基 , 于 37 ℃ , 150 r /m in振荡 培养. 每隔 1 h 取 样 , 用紫外分光光度计测 OD 600 吸收值 , 重复 2 次. 以 时间为横坐标 , OD 600值为纵坐标做图 , 绘制生长曲线.
1. 2 实验方法
(1)质粒提取方法 挑取紫外灯下发绿色荧光的质 粒宿主菌 DH 5α 的单菌落 , 于 10 m L 含 100 μg mL -1 Am p的 LB液体 培养基中 , 37℃振荡培养过夜. 碱裂解法提取质粒 [ 4] . 提取的质粒用 0. 8%琼脂糖电泳检测纯度. (2)感受态细胞的制备 在 NA 液 体 中 摇 床震 荡 培 养 ETEC 至 O D600 为 0. 6, 取菌液冰浴 10 m in, 8 000 r /m in 4℃离心收集菌 体. 冰预冷的无菌水洗菌体 4次 , 最后将菌体 重悬于 10%甘油中 , - 70℃冰箱保存备用. (3)电击转化 2 mm 电转化杯冰上预冷后 , 分别加入 100 μL 感 受态细胞和 50 ng质粒 , 冰浴 10 m in后进行电击转化 , 电击条件为 2. 5 kV , 200 Ψ, 25 μF. 电击结束立即加入 900 μL 的 NA 培养基 , 混匀并转入 1. 5 mL 的 Eppendorf管中 , 于 37℃、120 r /m in的摇床上振荡培养 2 h, 取 100 μL菌液涂布在 NA +100 μg m L- 1Am p +6 m g mL -1阿拉伯糖 (a ra)筛选培养基上 , 并置于 37℃培 养箱培养 16 h. (4)转化子的荧光检测 将筛选培养基上长出的菌落 , 紫外灯照射检测绿 色荧光. 用接种环挑取稀释后的菌液置于载波片上 , 常 规压片 , 荧光显微镜观察. (5)标记菌株的 PCR鉴定
收稿日期 :2005-12-27 基金项目 :福建省发展和改革委员会重大产业技术开发专项
(2004-4-7)资助 作者简介 :朱红梅 (1981 -), 女 , 硕士研究生. *通讯作者 :fz liubo@163. com ;htzhou@ jingx ian. xmu. edu. cn
3 讨 论
近年来 , 国内外对 ETEC 的分子结构 、致病机理及 免疫防治研究进展迅速 ,取得了一些结果. 一般认为
O 抗原 K 抗原
表 1 菌株血清鉴定结果 Tab. 1 The se ro log ical identification results of stra ins
K88
K88-pG LO
products o f K88 and K 88 -pG LO M. M arker(100bp ladder); 1. the am plifica tion strand o f K 88 ; 2. the am plifica tion strand o f K 88 -pG LO
图 4 K99 、K99 -pG LO PCR 产物电泳分析图谱 F ig. 4 E lectrophoresis analysisfor the PCR am p lification
光显微镜检测均发现转 化菌株发出绿色的荧光 , 表明 gfp 基因得到稳定 、高效的表达. 进一步通过 PCR 分子鉴定 、血清型 鉴定 、微生物学特性分析均表明 , 转化菌株与原始菌株是一致的. 该转化菌 株将为研究 肠毒性大 肠杆菌的 致病机 理及益
生素的筛选提供有效的 手段.
关键词 :肠毒性大肠杆菌 ;绿色荧光蛋白 ;遗传转化 中图分类号 :Q 943. 2 文献标识码 :A 文章编号 :0438-0479(2006)S-0043-04
第 45卷 增刊 2006年 5月
Jou
rn
厦 门大学学 al of X iam en U
报 (自 然 科 学 版 ) nive rsity (Na tu ra l Scien
ce)
V o .l 45 Sup. M ay 2006
肠毒性大肠杆菌的绿色荧光蛋白转化及表达研究
produc ts of K99 and K99 -pGLO , M. M arker(100bp ladde r); 1. the am plification strand o f K99 ; 2. the am plification strand o f K99 -pG LO
图 5 K88 、 K88 -pG LO 生长曲线图 F ig. 5 The grow th g raph o f K88 and K 88 -pG LO
提取转化菌株及原始菌株基因组 DNA, 进行菌毛 结构基因的 PCR 扩增. K88 、K88 -pG LO 基因组 DNA 上 都扩增得到大小约为 800 bp的预期片段 (图 3);K 99 、 K 99-pG LO 基因组 DNA 上都扩增到大小约为 500 bp的 预期片段 (图 4). PCR鉴定结果表明转化后的宿主菌 与原始菌具有基因背景上的一致性.
细 菌 基 因 组 DNA的 提 取 方 法 参 照 少 量 制 备
44 厦门大学学报 (自然科学版 ) 2006年
DNA[ 5] 的 操作 步 骤 , 0. 8%琼 脂 糖电 泳 鉴 定基 因 组 DNA. 参考李鹏 [ 6] 的研究 , 根据发表的 K88 及 K 99菌毛 结构基因序列 , 分别合成 2对特异性引物.
K99
O138
O138
O101
K88
K88
K99
K 99 -pGLO O 101 K 99
增刊 朱红梅等 :肠毒性大肠杆菌的绿色荧光蛋白转化及表达研究 45
图 3 K88 、K 88 -pG LO PCR产物电泳分析图谱 F ig. 3 E lectropho resis analysis for the PCR am p lification
2. 3 转化子的血清型鉴定
血清学鉴定结果 (见表 1)表明 , 所转化菌株 K88 pG LO 、 K99 -pG LO 与未转化的宿主菌 K 88 、K99血清型一 致.
2. 4 未转化菌株和转化菌株的生长曲线比较
转化菌株与原始菌株的对照生长曲线如图 5、6所 示. 未转化菌株和转化菌株的生长状况一致. 显著性分 析表明转化菌株与原始菌株的差异不显著 (p >0. 05).
阿拉伯糖调控蛋白和 gfp基因. 蛋白胨为上海生工 BB I公司产品 , 酵母抽提物为
OXO ID 公司. dNTP s、TaqDNA 聚合酶 、购自上海生工 ; 100 bp DNA L adde r购自 B io labs.
BECKMAN 冷冻离心机 , B io-Rad Gene , OLYM PUS荧光显微镜.
肠毒素性大肠杆菌 (En tero tox igenic E scherich ia coli. , ETEC )是一类引起人和幼畜 (初生仔猪 、犊牛 、羔 羊及断奶仔猪 )腹泻的重要病原菌 , 初生幼畜被 ETEC 感染后 , 常因剧烈水样腹泻和迅速脱水而死亡 , 发病率 和死亡率均很高 , 是目前的研究热 点之一 [ 1] . 猪源产 肠毒素 性 大 肠杆 菌 的 黏附 素 抗 原 主 要 有 K 88 , K 99 , 98 7P.
本研究利用 gfp基因标记 ETEC, 希望获得 g fp 基 因稳定表达 、特性稳定的发光标记菌株 , 为进一步研究 ETEC 侵染途径及治病机理奠定基础 , 同时也方便益 生素的筛选及效果评价.
1 材料与方法
1. 1 材 料
肠毒性 大肠 杆 菌 菌 株 C83905 (K88 ac), C 83529 (K99)由福建省农科院畜牧兽医研究所提供. 质粒 pG LO 购自 B io-Rad公司 , 有 Am p (氨卞青霉素 )抗性和
2 结果与分析
2. 1 转化菌株荧光检测
电击转化后筛选培养基上长出的菌落 , 肉眼直接观 察呈绿色 , 用紫外光照射则发出强烈绿色荧光 (图 1). 用荧光显微镜观察 , 可看到清晰的绿色发光的杆状细 菌. 标记菌落分别命名为 K88 -pG LO 、K99 -pG LO (图 2).
2. 2 转化菌株分子鉴定
图 6 K99 、 K99 pG LO 生长曲线图 F ig. 6 The grow th g raph of K99 and K99 -pG LO
ETEC 属非侵袭性细菌[ 7] , 细菌进肠道后 , 借助位于细 菌表面的菌毛上的定居因子 (CFA a)粘附在宿主小肠 上皮细胞表面 , 细菌繁殖并分泌毒素 (耐热肠毒素 LT (heat stable enterotox in)和 或/ 不耐热 肠毒素 ST (hea t labile enterotoxin), 毒素进入细胞导致水钠代谢混乱 , 造成分泌性腹泻 ;但也有研究表明 , ETEC的致病机理 可能更复杂 , 仍有许多不明之处 [ 8] , 例如该菌 是否具 有侵袭性 , 毒素能否进入或影响肠道其它部位组织或 细胞 , 对 LT 与 ST 的作用部位问题一直未解决 [ 9] . 陈 清等[ 10] 通过切片观察到主要在空肠和回肠组织病变 , 有明显的炎症反应. 用免疫组织化学技术对毒素的定 位进行了观察 , 表明 LT 和 ST 除分布于粘膜上皮细胞 表层外 , 也分布于肌层细胞 , 甚至浆膜层 , 分布弥漫. 提 出一个假设 , LT 和 ST 能够通过细胞间隙进入上皮下 的粘肌层及肌层 , 作用于肌细胞. LT 或 ST 甚至可进入 血流 , 导致毒血症发生.