01月季组培最优条件的选择

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月季组织培养

月季组织培养

目录摘要 (4)前言 (4)综述 (5)1.外植体 (5)1.1取材部位1.2取材时间1.3取材大小2. 消毒 (8)3. 接种方式 (8)4.培养基 (9)4.1基本培养基4.2激素4.2.1不同激素对诱导愈伤组织的影响4.2.2不同激素对继代培养的影响4.2.3不同激素对生根培养的影响4.3糖浓度的影响4.4无机盐4.5琼脂5.培养基的配置 (13)6.培养条件 (14)7.防褐化 (14)技术路线与实验设计 (15)参考文献 (17)摘要:为了进行月季组织培养实验,我们查阅了相关文献,从多个方面了解影响月季组织培养的因素,如外植体的取材部位、时间、大小、消毒、接种方式、不同阶段激素的配比、培养基成分、培养条件等,以期在实验中调控月季组培的环境,确保实验顺利进行。

基于我们想探究激素对组织培养中细胞的脱分化和再分化的作用这一想法,我们的设计了以NAA浓度、6BA浓度、外植体部位为影响因素的正交实验(L9(34)),并考察NAA与6BA的交互作用。

同时,我们还以接种方式作为单因素考察其对愈伤组织诱导的影响。

关键词:组织培养、影响因素、正交前言在阅读了植物组织培养的相关文献资料后,我们设计了此次组织培养实验方案,考察细胞分裂素浓度、生长素浓度、接种方式、取材部位因素对愈伤组织的形成有何影响,期望寻找出诱导月季愈伤组织的最佳条件;同时探究由愈伤组织诱导出芽及生根所需的最佳浓度配比。

并在月季组织培养过程中,掌握外植体消毒方面要注意的事项,整个培养过程中培养条件的选取与控制,实验过程中出现的现象的观察记录以及分析,在这个过程中不断加强理论与实践的联系,深化对理论知识的理解。

对于外植体选择,我们采用了以往研究者的做法,即选用带腋芽的枝条。

但是,我们的不同之处在于,我们还保留了一部分刚好能包裹住腋芽的叶柄。

这样做的目的是为了在消毒时避免芽受到太大损伤。

参考论文中防褐化多用抗氧化剂和其他抑制剂,减轻外植体在组培中的酶促褐变,我们根据生理生化原理,考虑到酶活性与温度有关、以及外植体内的酚类物质含量有关,因此需对外植体做如下处理:接种前先将外植体用低温水流冲洗24小时;选择晴朗天气采摘外植体。

园林用月季培育

园林用月季培育

园林用月季培育
月季是一种常见的园林植物,因其美丽的花朵和丰富的花色而备受喜爱。

以下是一些月季培育的关键技巧:
1. 选择合适的位置:月季需要充足的阳光和良好的排水,因此选择阳光充足、排水良好的位置种植月季是非常重要的。

2. 培育土壤:月季喜欢酸性土壤,pH值在5.5至6.5之间。

如果土壤过于碱性,可以添加硫酸铁或硫酸铵来降低pH值。

此外,添加有机肥料也能提高土壤的肥力。

3. 剪枝:月季需要定期剪枝,以保持其形态和提高花朵的品质。

在春季和秋季进行剪枝,去除枯萎、受损和交叉的枝条。

4. 浇水和施肥:月季需要充足的水分和营养物质来生长和开花。

在生长期间每周浇水一次,施肥两次。

使用有机肥料,如腐熟的堆肥或鸡粪,可以提供丰富的营养。

5. 防治病虫害:月季容易受到黑斑病、白粉病、蚜虫等病虫害的侵害。

定期检查月季的叶子和花朵,如果发现病虫害,可以使用有机或化学药剂进行防治。

以上是园林用月季培育的关键技巧,希望对您有所帮助。

- 1 -。

月季花的组织培养

月季花的组织培养

(b)移栽。幼苗出瓶后,先洗去沾附的琼脂培养基,再 种植到粗沙+园田土(1:3)介质中,总的原则是疏松透 气,有一定的保水、保肥能力。种植密度2~3厘米×4~6 厘米/株,移栽完毕浇透水,并用0.1%的百菌清、多菌灵 或甲基托布津等喷雾保苗,能显著提高成活率。
(c)移栽后管理。移栽后需保持相对湿度85%以上,在 温室、拱棚中移栽,覆好遮荫网,一般成活率都比较高, 并注意通风和温度管理。4~6周后,须做好第二次移植, 通常植入5厘米×9厘米的塑料杯中,每杯种1苗,再经4~ 6周,地上、地下部分都充分生长,有些植株还能开花。
(4) 壮苗培养
①对增殖倍率高的品种,所增殖的嫩茎很细弱,要求进行 一次壮苗培养,以取得适合生根和今后移栽的苗子。壮苗 培养的培养基为:MS+BA0.3-0.5+NAA0.01-0.1,如果并 不特别强调繁殖速度,也可以一直使用这种培养基,以壮 苗为主,增殖为辅,使增殖与壮苗合为一步。
②培养条件。光照10~12小时/天,光强800~1800LX, 温度20~23℃,最高24~26℃。
4.在切割组织块时候,用酒精灯灭刀、剪后 未完全晾凉就切割叶片。
5.因为温度太高将叶片杀死;叶片比起茎段 来说组织较薄胶脆弱,灭菌很可能伤害到 组织内部,影响其愈伤组织的形成。
6.花药及萼片出愈率很低,原因可能是因为 花药为单倍体,在培养方面的要求较高, 配制的培养基的成分上不能充分满足;萼 片的分化能力较低,所以出愈率不高。
问题分析及解决
1. 可能是在外植体灭菌过程中个别没有灭菌完全 ,是自生菌;或者升汞灭菌后没有将升汞完全洗 干净。
2.可能因为培养基内水分较大,在培养过程中平 皿上方形成很多水珠,造成加大了污染几率。

月季组培方案

月季组培方案

月季的组培一、工作目标通过此项工作掌握植物组织培养的基本知识,并掌握月季的组培技术二、材料用具超净工作台、高压灭菌锅、电磁炉、无菌培养皿、酒精灯、接种工具、无菌瓶、烧杯三、工作过程1.培养基的配置初代培养基:MS+6-BA0.5~3.0mg/L+NAA0.01~1.0mg/L继代培养基:MS+BA0.5~2.0mg/L+NAA0.01~0.05mg/L生根培养基:1/2MS+IBA 0.2mg/L+活性炭2.培养过程(1)外植体的选择一般选取生长健壮的带腋芽的枝条是较适宜的外植体,选芽以茎段中芽为最好,采样成活率较高,枝条须保留一部分包裹住腋芽的叶柄,避免在消毒时芽受到太大损伤(2)外植体的消菌灭毒接种材料为当年抽生侧芽饱满的幼嫩茎段,自来水冲洗10-20min;75%或70%乙醇浸泡30s,0.1%升汞表面消毒3min,无菌水冲洗4-5次,将侧芽切下接种到MS培养基上,获得无菌苗备用。

取回枝条用自来水冲洗干净,无菌条件下用70%酒精表面消毒30-40s,再用0.1%Hgcl2溶液灭菌5-10min,最后用无菌水冲洗3-5次(3)初代培养将消毒后的外植体放入带有滤纸的无菌平皿中,用解剖剪和解剖刀将嫩叶剪成5mm大小、茎段长2~3cm,每段至少有一个侧芽、将花苞打开取花药,分别接种到带有培养基的培养皿中并封口(每皿3~5个),标记好后,放入培养室中培养2周左右(4)继代培养挑选长有愈伤组织的外植体,将其转移到分化培养基中。

在超净工作台中,将培养皿封口膜在酒精灯旁打开,将长有愈伤组织的外植体用灭菌的镊子从平皿中取出,转移到带有分化培养基三角瓶中(每瓶最多)并封口。

(5)生根培养苗高2~3cm,茎粗0.1cm左右,苗开始木质化,此时进行生根培养,把苗转移到生根培养基上。

观察它生长情况。

(6)驯化小苗接到生根培养基上后,14d可见基部分化出根点,20d则长出许多白根。

此时组培阶段结束,进入试管苗移栽成活阶段。

月季组培实验报告(3篇)

月季组培实验报告(3篇)

第1篇一、实验简介实验名称:月季组培实验实验目的:通过组培技术,了解月季组织培养的原理和方法,掌握无菌操作技术,提高植物繁殖效率,为月季的快速繁殖和遗传改良提供技术支持。

实验时间:2023年X月X日至X月X日实验地点:XX大学园艺实验室实验材料:月季植株(品种:XX)实验设备:超净工作台、无菌操作箱、高温高压灭菌器、移液枪、解剖刀、培养皿、试管、滤纸、镊子、剪刀、酒精灯、高压蒸汽灭菌锅等。

二、实验方法1. 外植体选取与消毒:- 选择生长健壮的月季植株,取其茎尖作为外植体。

- 使用无菌水清洗外植体,然后用75%酒精浸泡30秒,再用无菌水冲洗3次。

- 将外植体置于0.1%的氯化汞溶液中消毒5分钟,再用无菌水冲洗5次。

2. 诱导生根:- 将消毒后的外植体切成1-2厘米的小段,接种到含有不同激素比例的MS培养基中。

- 将接种后的培养皿放入培养箱中,培养温度为25℃,光照时间为12小时/天。

3. 生根培养:- 当外植体开始生根时,将培养基更换为含有较低激素浓度的MS培养基。

- 继续培养至生根率达到80%以上。

4. 炼苗与移栽:- 将生根的植株从培养皿中取出,置于温室中炼苗。

- 炼苗成功后,将植株移栽到花盆中,进行正常的养护管理。

三、实验结果与分析1. 外植体消毒效果:- 通过显微镜观察,发现消毒后的外植体表面无细菌污染,说明消毒效果良好。

2. 诱导生根效果:- 在不同激素比例的培养基中,生根效果最好的培养基为1/2MS+0.5mg/LNAA+0.5mg/L IBA。

- 在此培养基中,生根率达到90%,平均根长为3.5厘米。

3. 炼苗与移栽效果:- 炼苗过程中,植株生长良好,无病虫害发生。

- 移栽后的植株成活率达到了95%。

四、实验讨论1. 外植体选取:- 本实验选择茎尖作为外植体,主要是因为茎尖细胞分裂旺盛,易于诱导生根。

2. 消毒方法:- 消毒是组培实验的关键步骤,本实验采用氯化汞溶液消毒,效果良好。

3. 激素配比:- 激素配比对生根效果有显著影响,本实验通过优化激素配比,提高了生根率。

植物组织培养具备的基本培养条件

植物组织培养具备的基本培养条件

在植物组织培养中温度、光照、湿度等各种环境条件;培养基组成、PH值、渗透压等各种化学环境条件都是影响组织培养育苗的生长和发育重要因素..一、温度temperature因为温度是植物组织培养中的重要因素;所以植物组织培养在最适宜的温度下生长分化才能表现良好;大多数植物组织培养都是在23~27℃之间进行;一般采用25±2℃..低于15℃时培养;植物组织会表现生长停止;高于35℃时对植物生长不利..但是;不同植物培养的适温不同..白鹤非的最适温度是20℃、月季是25~27℃、番茄是28℃..温度不仅影响植物组织培养育苗的生长速度;也影响其分化增殖以及器官建成等发育进程..如烟草芽的形成以28℃为最好;在12℃以下;33℃以上形成率皆最低..不同培养目标采用的培养温度也不同;百合鳞片在30℃以下再生的小鳞茎的发叶速度和百分率比在25%以下的高..桃胚在2~5℃条件进行一定时间的低温处理;有利于提高胚培养成活率..用35℃处理草莓的茎尖分生组织3~5d;可得到无病毒苗..二、LED光照light组织培养中使用光照也是重要的条件之一;主要表现在光强、光质、以及光照时间方面:1、LED光照强度light intensity光照强度对培养细胞的增殖和器官的分化有重要影响;从目前的研究情况看;光照强度对外植物体、细胞的最初分裂有明显的影响..一般来说;光照强度较强;幼苗生长的粗壮;而光照强度较弱幼苗容易徒长..2、LED光质light wave光质对愈伤组织诱导;培养组织的增殖以及器官的分化都有明显的影响..如百合珠芽在红光下培养;8周后;分化出愈伤组织..但在蓝光下培养;几周后才出现愈伤组织;而唐菖蒲子球块接种15天后;在蓝光下培养首先出现芽;形成的幼苗生长旺盛;而白光下幼苗纤细..3、LED光周期light period试管苗培养时要选用一定的光暗周期来进行组织培养;最常用的周期是16h 的光照;8h的黑暗..研究表明;对短日照敏感的品种的器官组织;在短日照下易分化;而在长日照下产生愈伤组织;有时需要暗培养;尤其是一些植物的愈伤组织在暗培养下比在光下更好..如红花、乌饭树的愈伤组织..三、湿度humidity湿度的影响包括培养容器保持和环境的湿度条件;容器内主要受培养基水分含量和封口材料的影响..前者又受琼脂含量的影响..在冬季应当适当减少琼脂用量;否则;将使培养基干硬;以致不利于外植体接触或插进培养基;导致生长受阻..封口材料直接影响容器内湿度情况;但封闭性较高的封口材料易引起透气性受阻;也会导致植物生长发育受影响..环境的相对湿度可以影响培养基的水分蒸发;一般要求70%-80%的相对湿度;常用加湿器或经常洒水的方法来调节湿度..湿度过低会使培养基丧失大量水分;导致培养基各种成分浓度的改变和渗透压的升高;进而影响组织培养的正常进行..湿度过高时;易引起棉塞长霉;造成污染..四、渗透压penetrating pressure培养基中由于有添加的盐类、蔗糖等化合物;因此影响到渗透压的变化..通常1-2个大气压对植物生长有促进作用;2个大气压以上就对植物生长有阻碍作用;而5-6个大气压植物生长就会完全停止;6个大气压植物细胞就不能生存..五、PH值不同的植物对培养基最适PH值的要求也是不同的;大多在5-6.5左右;一般培养基皆要求5.8;这基本能适应大多数植物培养的需要..PH值适度因材料而异;也因培养基的组成而不同..以硝态氮作氮源和以铵态氮作氮源就不一样;后者较高一些..一般来说PH值高于6.5时;培养基会变硬;低于5时;琼脂不能很好地凝固..因为高温灭菌会降低PH值约0.2-0.3个PH值因此在配制时常提高PH 值0.2-0.3单位..PH值大小调节可用0.1M的NaOH和0.1M的HCl来调整..1ml 的NaOH可使PH值升高0.2单位;1ml的HCl可使PH值降低0.2单位..调节时一定要充分搅拌均匀..六、气体gas氧气是组织培养中必需的因素;瓶盖封闭时要考虑通气问题;可用附有滤气膜的封口材料;如易生组培热销的培养瓶盖和封口膜本身带有PTFE材质的滤菌膜;孔径为0.2um;即保证通气又可以滤菌..通气最好的是棉塞封闭瓶口;但棉塞易使培养基干燥;夏季易引起污染..固体培养基可加进活性炭来增加通气度;以利于发根..培养室要经常换气;改善室内的通气状况..液体振荡培养时;要考虑振荡的次数、振幅等;同时要考虑容器的类型、培养基等..。

月季分生组织培养技术要点

月季分生组织培养技术要点
甘肃紫斑牡丹植株高大耐寒耐旱花色 艳丽籽实饱满芳香四溢油脂可食用 主要分 布于海拔 0 )""! )"" 34;" &' 温度 !( 湿度 )"*的培养室进行 培养 生根培养
外植体清洗干净后"放在消毒过的超净工作 台上"用无菌的脱脂棉擦拭 & 遍外植体表面&
+*酒精消毒 & 分钟" 用无菌水冲洗 & 次* 有效氯 !,的 -./01 溶液消毒 !" 分钟"用无菌水 冲洗 # 次% 最后加入 "$& )234 5( 浸泡 !" 分钟% 接种及培养条件
刀用酒精灯灼烧灭菌"解剖刀)镊子的先端 在 %*,的酒精中蘸一下"再用酒精灯灼烧灭菌" 置于刀架上冷却"待用% 用镊子夹住蘸有酒精的 脱脂棉点着"对接种盘里外进行灼烧灭菌"灭菌 好的接种盘放上滤纸%
关键词 紫斑牡丹繁育嫁接砧木
紫 斑 牡 丹 又 名 甘 肃 牡 丹 西 北 牡 丹 紫 斑 牡 丹品种群是中国第二大牡丹品种群 仅次于中 原牡丹品种群 紫斑牡丹是我国特有的一级保
!基 金 资 助 "#甘 肃 省 农 业 科 学 院 重 点 研 发 计 划 项 目 $甘肃紫斑牡丹品种资源收集% 评价及种质创新& '!"!0=883!%()
从培养室移到温室的瓶苗在移栽前必须进 行驯化需 0)!" 天 先用遮阴网把瓶苗全部盖 住白天温度 !#!9 晚上 !"!# 湿度 9"* 左右使瓶苗逐渐适应温室环境 经过一段时间 的锻炼幼苗叶片由嫩绿色变深绿色萌发新叶 茎变粗壮幼苗整体长高并生出新根表明幼苗 已经适应外界环境 选择阴天或晴天早上移栽

月季组织培养(1)

月季组织培养(1)

月季组织培养分组:12级生技2班3组指导老师:韩文军成员:成晨,江应龙,牟思斯,盛威摘要了解月季组织培养的研究概况,以及组织培养中遇到的相关问题的研究。

外植体的选择为月季枝条,灭菌用75%酒精和10%次氯酸钠,初代培养基为MS+BA 1mg/L,继代培养基为MS+BA1.5mg/L 十N A A 0.05m g/ L。

引言月季是中国十大名花之一,被誉为“花中皇后”,具有极高的观赏价值和商业价值①它是蔷薇科蔷薇属多年生落叶或常绿灌木②,被广泛运用于园林绿化,具有很高的观赏价值和经济价值。

目前月季的繁殖手段除了传统的扦插、嫁接、压条之外,还有月季的组织培养技术,相对前面几种方法来说,月季的组织培养技术能大幅地提高获得月季植株的速度和质量,正越来越被广泛地运用到实际生产中。

一方面,组织培养可有效地保持母株的优良性状;另一方面,它对植物品种改良和选育新品种也有重要意义③。

0实验流程外植体处理→初代培养→继代培养→生根培养→壮苗炼苗→移栽1外植体的选择和灭菌1.1外植体的选择月季组培外植体通常采用带芽茎段。

同一枝条上不同部位的腋芽诱导效果不同。

取枝条中部的腋芽效果最好,这可能与月季枝条不同部位的腋芽成熟程度及休眠状态不同等因素有关。

很多研究都证明枝条中部的腋芽萌发较顶部和基部时间早,且中部的腋芽长势好,增殖系数高,其次是基部,再次是顶部④-⑥。

另外,取材时也注意天气的选择,根据几次初代培养的结果来看,天气晴好时取材初代培养的成功率要比阴雨天要高,具体原因可能是阴雨天植物的外植体带菌比较多,杀菌不彻底从而使培养失败。

此外,外植体的休眠状态对芽的萌发也有影响,李青等⑦采用1 年生枝条的冬芽和当年生枝条的腋芽为外植体进行比较,发现越冬芽较嫩枝条的芽成活率高,且萌动所需时间较短,主要原因是芽内积累了丰富的营养物质,在适宜的条件下很快萌发生长;而春季嫩枝上的芽,由于刚刚形成且未经休眠,所以本身较弱,但越冬芽污染率高于嫩枝芽。

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表 1 增殖培养基(MS)中不同激素对芽的影响 (mg/L)
激素组成
增殖苗生长情况
NAA 0.01+BA 0.5
增殖系数较高,健壮
NAA 0.01+BA 1.0
增殖系数较高,健壮
NAA 0.01+BA 2.0
增殖系数较高,健壮
NAA 0.05+BA 1.0
增殖系数较高,健壮
NAA 0.05+BA 2.0
对 生 根 率 有 显 著 影 响 ,浓 度 过 高 会 抑 制 根 的 形 成,NAA 浓度为 0.50 mg/L 时效果最佳(表 2)。生 根阶段加入 活 性 炭(AC)后 ,有 助 于 提 高 生 根 率 和 生 根 质 量 [11]。李青等[6]利用 1/2 MS+IBA 0.2 mg/ L +活性炭诱导生根,生根率最高为 90%,且随着 活 性 炭 百 分 比 的 加 大 ,生 根 率 逐 渐 下 降 。 活 性 炭 的 加 入 能 显 著 促 进 生 根 量 和 根 的 长 势 ,但 仅 含 活 性 碳 的 培 养 基 只 见 较 少 发 根 ,且 根 细 弱 ,说 明 植 物 激 素 对 于 生 根 是 必 不 可 少 的 [9]。 Hyndman 等 [12] 用改良烟火月季品种进行研究发现,MS 培养基中 盐 浓 度 过 高 ,特 别 是 氮 素 含 量 过 高 会 导 致 生 根 不 适应,所以需减少无机盐用量。
(3)在 无 菌 苗 的 生 根 诱 导 过 程 中 ,生 长 素 的 种类和浓度起决定性作用。培养基一般选择 1/2 MS,激 素 浓 度 控 制 在 0.1~0.5 mg/L。 活 性 炭 对 生 根有一定的促进作用。
(5)影 响 移 栽 成 活 率 较 大 的 因 素 有 3 个 :湿 度、温度和基质消毒灭菌。严格控制这 3 个条件 能得到很高的成苗率。
诱导培养基以 MS 为基本培养基,附加适量的 细胞分裂素 6-苄氨基嘌呤(6-BA)和生长素萘乙
收稿日期:2009-02-12;修订日期:2009-05-10 基金项目:格尔木市政府项目;“十一五”国家科技支撑计划(2007BAD67B02) 作者简介:邱文青(1988-),女,山东济宁人,在读硕士生,主要从事植物转基因方面的研究。 通讯作者:季静(1965-),女,吉林长春人,教授,博士后,主要从事作物和花卉转基因研究。
天津农业科学 Tianjin Agricultural Sciences 植物生理与生物技术
月季组培最优条件的选择
2009,15(3):26-28
邱文青 1,季 静 1,杜长城 2
(1.天津大学 农业与生物工程学院,天津 300072;2.天津市林业局,天津 300061)
摘 要:综述了月季组织培养、快繁的研究技术及进展,并对月季组培的最优条件进行了总结。 关键词:月季;组培;快繁 中图分类号:S685.12 文献标识码:A DOI 编码:10.3969/j.issn.1006-6500.2009.03.009
月季(Rosa chinensis)别名长春花、月月红、斗 雪红、瘦客等,蔷薇科(Rosaceae)蔷薇属(Rosa L.)植 物 ,是 世 界 上 著 名 的 四 大 切 花 之 一 [1]。 由 于 其 特 殊 的 情 感 内 涵 和 商 品 价 值 [2] ,被 广 泛 应 用 于 园 林 、 庭 院 装 饰 ,并 可 制 成 月 季 盆 景 ,作 切 花 、花 篮 、花 束 等 。 此 外 ,月 季 花 可 提 取 香 料 ,根 、叶 、花 均 可 入 药 ,具 有 活 血 消 肿 、消 炎 解 毒 等 功 效 。 当 前 ,月 季育种是花卉育种中最活跃的领域之一。月季 通 常 采 用 扦 插 、嫁 接 和 压 条 繁 殖 ,但 是 一 些 名 贵 品 种 扦 插 不 易 生 根 ,主 要 靠 芽 接 繁 殖 ,而 芽 接 速 度慢,因而造成优良品种的月季苗供不应求 。 [3] 随 着 生 物 技 术 的 迅 猛 发 展 ,植 物 组 织 培 养 和 细 胞 培 养 等 现 代 生 物 技 术 得 到 普 遍 重 视 和 应 用 ,为 月 季 的 快 繁 和 新 品 种 的 选 育 提 供 了 新 的 途 径 ,在 月 季 的 改 良 上 显 示 了 很 大 的 应 用 潜 力 。 同 时 ,月 季 组 培和遗传转化系统的建立也是体细胞克隆变异 育 种 和 基 因 工 程 育 种 的 重 要 前 期 工 作 [4] 。 笔 者 综 述 了 近 年 来 月 季 组 培 技 术 ,并 对 其 最 优 条 件 进 行 了总结。
增殖系数较高,健壮
NAA 0.05+BA 3.0
增殖系数高,苗发黄,细弱
NAA 0.1+BA (0.5,1.0,2.0,3.0) 增殖系数低,苗细弱,玻璃化
NAA 0.2+BA(1.0,2.0)
芽基部长有愈伤组织
1.3 生根培养 无菌芽苗在继代培养基中只诱导地上部分生
长 。 待 培 养 一 段 时 间 后 ,转 入 生 根 培 养 基 中 ,诱 导生根。多数试验采用的培养基为 1/2 MS[6,9](大量 元 素 减 半)。 Skirvin 等 [13] 在 用“Forever yours”月 季 做生根试验时发现,采用 1/4MS 培养基,不加生长 素即可以促进生根。在无菌苗的生根诱导过程 中 ,生 长 素 的 种 类 和 浓 度 起 决 定 性 作 用 。 李 青 等 [6] 分 别 使 用 不 同 浓 度 的 NAA、IBA、IAA 对 藤 本 月 季进行生根培养,发现 3 种生长素的生根效果不 同 ,且 浓 度 的 影 响 较 大 。 李 海 燕 等 [8] 发 现 低 浓 度 的生长素有利于根的形成,适当浓度的 IBA、NAA
表 2 生根培养基(1/2MS)组成对生根的影响 (mg/L)
激素组成 NAA 0.1 NAA 0.1+活性炭 0.3 NAA 0.5 IBA 0.1 IBA 0.2 IBA 0.5
生根情况 生根多,健壮 生根多,生根快 生根较多,健壮 生根率低 生根完全,生根快 生根数多,生根快
1.4 移 栽 小苗接到生根培养基上后,14 d 可见基部分
将诱导培养基上已经萌发的嫩芽转入附加 6-BA、NAA 等 激 素 的 MS 培 养 基 中 ,进 行 增 殖 继 代 。 KT,IAA 等 激 素 作 用 效 果 较 差 ,协 同 作 用 不 明显[6]。低浓度的 6-BA 有利于不定芽的增殖,浓 度过高则抑制不定芽增殖,适量 NAA 有利于芽和 叶 生 长 [7] ,但 浓 度 过 高 诱 导 产 生 大 量 愈 伤 组 织 ,不 利于侧芽的直接分化和生长[8]。在 NAA 浓度相同 而 BA 浓度不同的培养基中,随 BA 浓度的升高, 芽苗的增殖系数也相应提高。在 BA 浓度相同而 NAA 浓度不同的培养基中,随 NAA 浓度升高,小 芽 生 长 速 度 加 快 ,继 代 所 需 时 间 对 增 殖 系 数 也 有 一 定 的 影 响 [9]。 此 外 ,增 殖 系 数 还 与 品 种 有 关 [6]。 从 增 殖 倍 数 、叶 片 数 、再 生 芽 长 势 等 综 合 因 子 来 看 ,MS+BA 0.5~2.0 mg/L+NAA 0.01~0.05 mg/L 是最 适的不定芽增殖培养基(表 1)。
化出根点,20 d 则长出许多白根。此时组培阶段 结 束 ,进 入 试 管 苗 移 栽 成 活 阶 段 。 所 有 试 管 苗 移 栽前都应先将生根苗移至室温进行移栽前的锻 炼。锻炼时间与移栽成活率有关,炼苗 7 d 以上, 成活率达到 95%[6]。影响移栽成活率的主要因素 有 3 个 :湿 度 、温 度 以 及 基 质 种 类 和 带 菌 量 。 [15,16] 考虑到这 3 个因素,移栽时应保持 90%以上湿度, 18~25 ℃ 的 环 境 温 度 ,基 质 用 0.2% 的 高 锰 酸 钾 [14] 或 其 他 灭 菌 剂 进 行 消 毒 灭 菌 [15]。 而 基 质 的 选 择 上 ,以 蛭 石 和 珍 珠 岩 的 栽 培 效 果 较 好 。 移 栽 成 活 后 喷 极 稀 的 营 养 液 ,使 小 苗 得 到 营 养 补 充 。 10~ 15 d 即长出新叶,且根系快速生长,可适时进行大 田移栽。
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mg/L+NAA 0.01~1.0 mg/L。 (2)继代增殖中,低浓度的 6-BA 有利于不定
芽 的 增 殖 ,浓 度 过 高 则 抑 制 不 定 芽 增 殖 ,又 诱 导 大 量 愈 伤 组 织 。 从 增 殖 倍 数 、叶 片 数 、再 生 芽 长 势 等 综 合 因 子 来 看 ,MS + BA 0.5~2.0 mg/L + NAA 0.01~0.05 mg/L 是最适的不定芽增殖培养基。
2 讨论
(1)外 植 体 应 选 取 当 年 生 饱 满 而 未 萌 发 的 侧 芽 ,来 源 于 枝 条 中 部 的 侧 芽 的 繁 殖 速 率 最 快 。 外 植体的接种方式对再生芽生长量具有较大的影 响 ,垂 直 接 种 ,斜 向 上 45° 接 种 是 最 佳 的 接 种 方 式。最适的侧芽诱导培养基为 MS+6-BA 0.5~3.0
第3期
邱文青等:月季组培最优条件的选择
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酸(NAA)。NAA 增加至 0.1 mg/L 时,6-BA 浓度的 高 与 低 已 对 增 殖 系 数 不 产 生 明 显 影 响 [6] 。 最 适 的 侧 芽 诱 导 培 养 基 为 MS+6-BA 0.5~3.0 mg/L+NAA 0.01~1.0 mg/L[6-9],且 培 养 基 中 添 加 蔗 糖 有 增 加 丛 生芽数量的作用[10]。 1.2 继代增殖
1 月季组培方法及最优条件
1.1 外植体的选择、消毒及接种 外植体一般选取生长健壮的当年生枝条的饱
满而未萌发的侧芽。取回枝条用自来水冲洗干 净 ,无 菌 条 件 下 用 70%酒 精 表 面 消 毒 30~40 s,再 用 0.1%HgCl2 溶液灭菌 5~10 min,最后用无菌水冲 洗 3~5 次。芽的快速繁殖与供试材料的基因型有 关 ,同 时 还 与 外 植 体 的 取 材 部 位 有 关 ,来 源 于 枝 条 中 部 的 侧 芽 的 繁 殖 速 率 最 快 [5]。 李 青 等 [6] 分 别 选取一年生枝条的冬芽和当年生枝条的腋芽作 为 外 植 体 ,相 同 条 件 下 培 养 发 现 越 冬 芽 的 成 活 率 较 高 ,且 从 接 种 到 萌 动 时 间 较 短 ,生 长 快 ,在 后 代 繁 殖 中 植 株 健 壮 。 于 冰 沁 [7] 在 外 植 体 的 接 种 中 采 用了垂直接种,斜向上 45°接种,水平接种和反转 接种 4 种方式,发现垂直接种和斜向上 45°接种是 最 佳 的 接 种 方 式 ,腋 芽 再 生 芽 数 多 ,且 生 长 健 壮 , 这可能与植物的生长极性有关。
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