2018年淋巴细胞分离
淋巴细胞分离的原理
淋巴细胞分离的原理
淋巴细胞分离的原理主要是利用淋巴细胞在密度梯度离心中的沉降速率差异进行分离。
淋巴细胞是一种低密度细胞，其密度约为1.06 g/ml，而其他血液细胞如红细胞、粒细胞等的密度
均大于1.06 g/ml，因此可以通过离心来分离淋巴细胞。
具体操作步骤如下：
1. 采集血液样品，一般可采用外周血样品，例如静脉采血。
2. 转移血液样品至离心管中，离心管中需要加入离心介质，常用的有Ficoll或Percoll等。
3. 轻轻混合血液与离心介质，以确保均匀混合。
4. 放入离心机，进行离心。
离心过程中，血液样品会在离心介质形成的密度梯度中逐渐分层。
5. 离心结束后，离心管中会分为不同层次的组分。
上层为清澈的血浆层，中间为若干个白色或黄色的细胞层，其中最上面一个细胞层即为淋巴细胞层。
6. 使用移液器将淋巴细胞层吸取出来，转移至另一个离心管中。
7. 加入适当的洗涤缓冲液，如PBS，进行洗涤。
洗涤缓冲液
的作用是去除离心介质残留和其他杂质。
8. 离心再次沉淀淋巴细胞，并倒掉上清液。
9. 加入适量的培养液，使淋巴细胞得到适当的营养和环境，以维持其存活和生长。
通过以上步骤，可以将淋巴细胞从血液中分离出来，并得到较为纯净的淋巴细胞样本，便于后续实验和研究的进行。
淋巴细胞的分离技术
淋巴细胞的分离技术（一）材料与试剂1．淋巴细胞分层液有两种：（1）聚蔗糖—泛影葡胺液：聚蔗糖（polysucrose solution）,商品名Ficoll，分子量400 000，多配制成40±1％（W/V）水溶液，也有干粉出售。
应用时，用蒸馏水配制9％溶液。
泛影葡胺溶液(Meglumini diatrizoici)，商品名Vrografin，结构式为3，5—二乙酰氨基2，4，6三碘苯甲酸1—去氧—甲氨基山梨醇。
含量为60％或75％，每安瓶为20ml装，常用于人的脏器造影。
应用时，取60％泛影葡胺原液20ml，加双蒸馏水15.38ml，即为33.9％泛影葡胺。
1.077±0.001聚蔗糖—泛影葡胺的配制：9％聚蔗糖液 24份33.9％泛影葡胺液 10份混合即可。
必要时，可测比重。
需要备用，可用G5漏斗过滤除菌或114.3℃高压灭菌15min，4℃保存。
一般可保存3个月。
如要配制不同比例的分层液，可按下列公式计算：式中dm为分层液的比重，d1和d2分别为9％聚蔗糖和33.9％泛影葡胺的比重，V1和V2分别为它们的体积。
如需配制1.077比重的聚蔗糖—泛影葡胺的分层液，则9％的聚蔗糖和33.9％的泛影葡胺的比例应为100︰46.3。
（2）泛影葡胺—右旋糖酐（dextran）液34％泛影葡胺液 10份60％右旋糖酐液 12.5份混合，即为比重1.07～1.09的分层液。
分装于棕色瓶中，4℃冰箱保存备用。
2． 3％的明胶液称取明胶3g，溶于0.9％的灭菌生理盐水，终体积100ml，114.3℃高压灭菌10min，冷却后4℃冰箱保存，临用时37℃预热10min。
3．Hank’s液。
（二）操作方法1．取抗凝血，自然沉降，如是马属动物的血液，可直接直立试管架上，让其自然沉降1h，取上层血浆。
如是牛、羊血液，由于其血沉速度非常慢，可加等量3％明胶液，混匀后让其自然沉降，1h后取上层血浆。
2．2 000r/min离心10min，弃上清。
淋巴细胞分离方法
淋巴细胞分离方法
淋巴细胞是咱们身体免疫系统里超级重要的小战士呢。
那怎么把它们从其他细胞里分离出来呢？这可有不少有趣的办法哦。
有一种方法叫密度梯度离心法。
想象一下，就像把不同重量的东西放在一个超级特别的旋转机器里。
咱们把血液或者含有淋巴细胞的组织液放在一种有特殊密度的溶液里，然后让这个混合液高速旋转起来。
淋巴细胞就像是一群小机灵鬼，它们会根据自己的密度，跑到溶液里特定的位置。
其他细胞呢，就被分离开啦。
就好像是在一场超级有趣的细胞大派对里，淋巴细胞们被安排到了专属的小角落。
还有一种叫免疫磁珠分离法。
这个方法可酷啦。
咱们给淋巴细胞贴上一种特殊的小标签，这个小标签就像是一个小磁铁。
然后把这个带有标签的细胞混合液放在一个有磁场的地方。
那些贴了标签的淋巴细胞就会被磁场吸引住，就像小铁屑被磁铁吸住一样。
这样就能轻松地把淋巴细胞和其他细胞分开啦。
这就像是给淋巴细胞们发了个特别的通行证，只有它们能被磁场这个小保安给挑出来。
另外，贴壁黏附法也很有意思哦。
淋巴细胞不太喜欢黏附在容器壁上，但是有些细胞就特别爱黏附。
咱们把细胞混合液放在一个容器里，过一会儿，那些爱黏附的细胞就像小懒虫一样趴在容器壁上了，而淋巴细胞还在溶液里自由自在地游着。
这时候把溶液取出来，就得到比较纯的淋巴细胞啦。
就好像是在一个细胞宿舍里，那些黏附细胞是赖床的，淋巴细胞是早起活动的，咱们把早起活动的给挑出来就好啦。
淋巴细胞分离实验
外周血单个核细胞的分离
外周血单个核细胞的分离 原理 试剂和仪器 实验步骤 注意事项
原理
外周血各种血细胞的密度不尽相同， 利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作 密度梯度离心，使一定比重的细胞 群按相应密度梯度分布，从而将各 种血细胞加以分离。
原理
红细胞
1.093 1.092
实验步骤
5、计算：将结果代入下式，得出细胞密度 细胞数/毫升原液 =（4大格细胞数之和/4）×104
注意事项
1.取样计数前，应充分混匀细胞悬液 2.加样量不要溢出盖玻片，也不要过少或带 气泡 3.细胞压中线时，数上不数下，数左不数右 4.本法要求细胞密度不低于104细胞/ml 5.镜下计数时，细胞数过少或过多，说明稀 释不当，需重新制备细胞悬液、计数
淋巴细胞 单核细胞
外周血
粒细胞
单个核细胞 (PBMC) 血小板
1.075~1.090 1.030~1.035
Ficoll：1.077±0.001
稀 释 外 周 血
稀释的血浆、 血小板
1500rpm, 20℃ , 30min
PBMC
Ficoll
Ficoll
红细胞 粒细胞
实验步骤
1.采血，稀释 （外周血：稀释液=1：2） 2.在离心管中加入Ficoll，沿倾斜的 管壁缓缓加入稀释的外周血 （Ficoll：稀释血=1：2）
实验步骤
3.20℃，1500r/min，离心30min
4.沿管壁周缘轻轻吸取PBMC层移入 另一试管中
实验步骤
5.加足量稀释液充分洗涤，1800 r/min 离心10min ，弃上清 6.重复洗涤一次，1400r/min离心10min， 弃上清 7.适量的培养基重悬细胞 ，计数
淋巴细胞分离的实验方法
肝脏免疫学实验室淋巴细胞分离技术肝脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取肝脏。
2．将肝脏放在200目钢丝网上自边缘开始研磨，转至15ml离心管中。
3．650rpm×1min离心，将上层液体转至15ml离心管中。
4．1500prm×5min离心后弃上清，重复洗两次。
5．6ml 40% Percoll 溶液重悬沉淀，将3ml 70% Percoll溶液加于其底层，2000rpm×20min，升6降2。
6．吸取两层Percoll溶液之间的白细胞层至15ml离心管中，加满PBS后2000rpm×5min 离心收集细胞。
7．1ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
脾脏淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后剪开颈动脉处死，摘取脾脏。
2．用载玻片的粗糙面将脾脏一点一点磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．8ml PBS重悬细胞沉淀，在底层加入3ml Ficoll , 2000rpm×20min，升6降2。
4．吸取两层溶液之间的白细胞层至15ml离心管，加满PBS后2000rpm×5min离心收集细胞。
5．6-8 ml PBS 重悬细胞后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
胸腺淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后，剪开颈动脉处死，摘取胸腺。
2．将胸腺放在200目钢丝网上研磨，将收集的研磨悬液通过尼龙网过滤至15ml离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
3．6-8ml PBS 重悬细胞沉淀，再次通过200目尼龙网过滤后，吸取10ul细胞悬液，按照1：1的比例与台盼蓝混匀后计数。
淋巴结淋巴细胞分离1．小鼠摘眼球放血后脱臼处死，摘取淋巴结。
2．用载玻片的粗糙面将淋巴结磨碎，将收集的研磨悬液通过200目尼龙网过滤至15ml 离心管中，1500rpm×5min离心收集细胞。
全血淋巴细胞分离的原因
全血淋巴细胞分离的原因你知道吗，血液里的小伙伴可不少，它们不仅帮我们抵抗疾病，还参与很多我们平常根本意识不到的“幕后工作”。
说到血液，大家通常想的都是红细胞、白细胞这些“老朋友”。
但今天，我们不谈这些“常客”，咱们聊聊一个有点神秘的小角色——淋巴细胞。
淋巴细胞就像是血液中的侦探，常常在你不注意的时候默默地守护着身体里的各个角落。
那到底是什么原因让我们去单独分离这些淋巴细胞呢？为什么要“特别照顾”它们呢？好啦，让我们一起揭开这个谜底！你想啊，我们的身体就像是一个巨大的工厂，里面有成千上万的细胞在“加班加点”工作。
白细胞是守卫，红细胞是运输工，淋巴细胞则是这座工厂里的“秘密特工”。
它们不只帮你抵抗外来的病毒和细菌，还要和你身体里的坏细胞进行“较量”。
所以，淋巴细胞其实是身体免疫系统的一个重要组成部分，离了它们，咱们的免疫系统就成了“空壳子”，啥事都干不了。
分离淋巴细胞，听上去有点复杂，其实也就是把血液里的淋巴细胞挑出来，分开，留着后头做一些分析。
哎呀，难怪一些科研工作者老说：“这些小家伙，真是‘宝藏’。
”你可能会问，为什么要分离呢？不就是在血液里能找到它们吗？那不就是“吃力不讨好”吗？说得对，问题就在这里。
淋巴细胞虽然是免疫系统中的“精英部队”，但是它们的数量不是很多，血液中的红细胞和血小板才是“主力军”。
所以，如果咱们要研究这些淋巴细胞，必须得把它们从“人海中”挑出来，才能更好地进行分析。
这种分离方法很有趣，就像是挑选好吃的水果一样。
科研人员通过一些特殊的方法，把血液中的淋巴细胞挑出来，给它们做个“大体检”。
有的科学家会把它们放到显微镜下仔细观察，看它们是不是“身体健康”，有没有受到病毒侵袭。
有的研究还会进一步分析它们的功能，看看它们在抗病毒、抗癌等方面是否表现出色。
这就像是在找“超级英雄”，看看哪个能在危机时刻挺身而出，保护身体免受外界的侵害。
说到这里，你可能会想：“咱们平常能不能自己知道这些淋巴细胞的情况呢？”老实说，这个就像是想知道一个人每天都在做什么工作，我们是无法通过肉眼看得出来的。
报告实验二：淋巴细胞分离实验.ppt
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实验步骤
5.加足量稀释液充分洗涤，1000 r/min 离心5min ，弃上清
6. 适量的培养基重悬细胞 ，计数
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注意事项
1.在Ficoll上加入稀释外周血时，应缓慢 加，以免冲散界面
2. 吸取单个核细胞层时，应避免吸出过 多的上清液或分层液而导致血小板污染
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细胞计数
实验步骤 注意事项
实验二
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
小鼠脾脏淋巴细胞的分离
目的 原理 实验步骤 注意熟悉淋巴细胞和外周血单个核细胞 （PBMC）的分离方法
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原理
脾脏各种血细胞的密度不尽相同， 利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作 密度梯度离心，使一定比重的细胞 群按相应密度梯度分布，从而将各 种血细胞加以分离。
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实验步骤
1、准备计数板： 2、制备细胞悬液：收集细胞，制成单个细胞
悬液 3、加样：用吸管轻轻吹打细胞悬液，取少许
细胞悬液，在计数板上盖玻片的一侧加微量细 胞悬液， 4、计数：在显微镜下，用10×物镜观察计数 板四角大方格中的细胞数
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实验步骤
5、计算：将结果代入下式，得出细胞密度 细胞数/毫升原液 =（4大格细胞数之和/4）×104
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原理
外周血
红细胞
1.093
粒细胞
单个核细胞 (PBMC) 血小板
淋巴细胞 单核细胞
1.092 1.075~1.090
1.030~1.035
Ficoll：1.077±0.001
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稀
释
外
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淋巴细胞的分离方法[整理]
![淋巴细胞的分离方法[整理]](https://img.taocdn.com/s3/m/c6b23f1f773231126edb6f1aff00bed5b9f373c2.png)
1、淋巴细胞的来源：人淋巴细胞的方便来源是外周血分离的原则是收率较高、纯度较好、失活较低。
根据不同试验有相对纯度，无论采用哪种方法，应尽最大可能保持细胞应有活性。
分离的技术可由细胞的物理性状和表面标志设计，根据不同实验目的可采用密度梯度离心法、吸附分离法和其它特殊分离法。
2、密度梯度离心法：外周血各种血细胞的密度不尽相同，利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作密度梯度离心，使一定比重的细胞群按相应密度梯度分布，从而将各种血细胞加以分离。
为此利用一种密度介于1.075～1.092之间而近于等渗的溶液（分层液）做密度梯度离心，使一定密度的细胞按相应密度梯度分布，从而将各种血细胞加以分离。
常用的分层液有Ficoll和Percoll两种。
3、实验方法：1.采血，稀释（外周血：稀释液=1：2）2.在离心管中加入Ficoll，沿倾斜的管壁缓缓加入稀释的外周血（Ficoll：稀释血=1：2）3、20℃，1500r/min，离心30min从上一次至下稀释的血浆、血小板PBMCFicoll红细胞、粒细胞4.沿管壁周缘轻轻吸取PBMC层移入另一试管中。
5.加足量稀释液充分洗涤，1800 r/min离心10min ，弃上清。
6.重复洗涤一次，1400r/min离心10min，弃上清。
7.适量的培养基重悬细胞，计数。
分离单个核细胞纯度为95%淋巴细胞约占90%～95%4、淋巴细胞高纯度化(一)红细胞的去除一般采用无菌蒸馏水低渗裂解法或0.83%氯化铵处理法。
(二)血小板的去除将PBMC悬液通过离心洗涤2～3次，常可去除PBMC中绝大部分混杂的血小板。
在某些疾病状态下，若外周血中血小板数量异常增多，可采用胎牛血清(FCS)梯度离心法去除PBMC中混杂的血小板。
（三）单核细胞和粒细胞的去除1．粘附去除法原理：单核细胞和粒细胞在37℃和Ca离子存在条件下能主动粘附在玻璃、塑料、尼龙毛、棉花纤维或葡聚糖凝胶。
采集的非粘附细胞即为淋巴细胞。
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淋巴细胞分离
淋巴细胞分离与计数
淋巴细胞分离
原理：
外周血各种血细胞的密度不尽相同，利用淋巴细胞分层液（Ficoll）作密度梯度离心，使一定比重的细胞群按相应密度梯度分布，从而将各种血细胞加以分离。
tZz3a1Ui实验材料：
淋巴细胞分离液
肝素
稀释液（生理盐水）
RPMI1640粉末
实验设备：1ml移液器、移液管、5ml注射器、刻度吸管、EP管、离心机、显微镜
操作流程：
1.在离心管中加入适量淋巴细胞分离液。
2.无菌采集静脉血若干毫升,注入盛有肝素的无菌小瓶中，（每1ml全血加
0.1ml 125-250U/ml肝素溶液),加盖后立即轻轻摇匀,使血液抗凝
3.稀释（外周血：稀释液=1：2取肝素抗凝血与等量生理盐水充分混匀）
4.用刻度吸管沿倾斜的管壁，把稀释血缓慢叠加于分层液面上，注意保持清楚的界面（Ficoll：稀释血=1：2）
5.放入离心机1500r/min离心20min（注:缓慢加速1-4档个3分钟）
6.用吸管插到云雾层，吸取单个核细胞。
置入另一离心管中，加入5倍以上体积的稀释液（生理盐水），1500rpm×10分钟离心，洗涤细胞。
7.重复洗涤一次，1500rpm×10分钟离心。
8.末次离心后，弃上清，加入含有10％小牛血清的RPMI1640，重悬细胞
9.计数细胞后再调整细胞置所需浓度.
10.取一滴细胞悬液与一滴0.2％台盼兰染液混合，于血球计数板上，计数四个大方格内的细胞总数。
单个核细胞浓度(细胞数／1毫升细胞悬液)＝
4个大方格内细胞总数
────────── × 10４×2(稀释倍数)
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11.分离出的淋巴细胞置于培养瓶中二氧化碳培养箱培养。
注意事项:
1.每毫升外周血液大约可获1×106单个核细胞
2. Ficoll应适量，外周血应充分稀释
3.温度直接影响到Ficoll的比重和分离效果
4.在Ficoll上加入稀释外周血时，应缓慢加，以免冲散界面
5.吸取单个核细胞层时，应避免吸出过多的上清液或分层液而导致血小板污染
淋巴细胞计数：
实验流程：
1.准备计数板：
2.制备细胞悬液：收集细胞，制成单个细胞悬液
3.加样：用吸管轻轻吹打细胞悬液，取少许细胞悬液，在计数板上盖玻片的一侧加微量细胞悬液，
4.计数：在显微镜下，用10×物镜观察计数板四角大方格中的细胞数
5.计算：将结果代入下式，得出细胞密度
胞数/毫升原
=（4大格细胞数之和/4）×104
注意事项：
1.取样计数前，应充分混匀细胞悬液
2.加样量不要溢出盖玻片，也不要过少或带气泡
3.细胞压中线时，数上不数下，数左不数右
4.本法要求细胞密度不低于104细胞/ml
5.镜下计数时，细胞数过少或过多，说明稀释不当，需重新制备细胞悬液、计数。