感染性标本的采样、储存、运输的具体操作方法
检验科样本采集保存和运输规定
检验科样本采集保存和运输规定一、背景介绍在医疗检验中，样本的采集、保存和运输是确保检验结果准确可靠的重要环节。
本文将针对检验科样本的采集、保存和运输进行规范，以确保样本的质量和可追溯性。
二、样本采集1. 采集前准备（1）合理安排采集时间，避免患者饮食或用药对样本产生干扰；（2）确保采集器械的洁净，消毒器械；（3）检查采集器械是否完好，避免损坏导致样本污染或无法采集。
2. 采集操作（1）向患者详细说明采集过程，解答其疑问和担忧；（2）采用无菌技术进行血液或体液样本的采集，注意遵循标本稳定性和抗凝剂的要求；（3）遵循标本采集顺序的原则，避免交叉污染；（4）按照要求采集足够的样本量，以确保后续检验的需要。
三、样本保存1. 样本分类（1）按照不同类型的样本，如血清、尿液、唾液等进行分类；（2）对于不同样本类型，采用适当的保存方式和温度，以维持样本的稳定性。
2. 储存条件（1）避免样本受到阳光直射，存放在干燥、阴凉且温度稳定的环境中；（2）在保存样本时，确保密封性，避免样本受到雾气、湿气或灰尘的污染；（3）对于特殊的储存条件要求，如低温保存或深冷保存，遵循相应的要求和操作规范。
四、样本运输1. 包装要求（1）在运输过程中，采用合适的包装材料，保护样本免受外界冲击或温度变化的影响；（2）对于易碎或液体样本，采用特殊的包装材料和容器，以避免破损或泄漏。
2. 运输环境（1）确保样本在运输过程中处于合适的环境条件，避免样本受到严重震荡或温度波动；（2）对于特殊要求的样本，如冷冻样本，采用冷链运输方式，保证低温环境的稳定性。
3. 文件记录（1）对每一次样本的采集、保存和运输情况进行详细的记录，包括时间、地点、操作人员等信息；（2）建立样本追踪系统，确保样本的可追溯性和安全性。
五、样本处理1. 检验前准备（1）按照标本要求进行预处理，如离心、分装等操作；（2）确保操作人员在处理样本时遵循规范的操作流程和要求。
2. 样本分发（1）对于检验科内部的样本分发，确保样本的准确性和完整性；（2）对于外部转运的样本，遵循相关规定，确保样本在转运过程中的安全和稳定。
传染病病例标本采集和运输参考课件
▪ 庆大霉素 (250 mg/L):广谱抗生素 ▪ 制霉菌素 (0.5 x 106 IU/L) ▪ 盐酸氧氟沙星 (60 mg/L)：广谱菌，对多数肠杆菌科细菌等G-菌较
强的抗菌活性 ▪ 磺胺甲基异恶唑 (0.2 g/L)
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病原微生物标本的采集
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病原微生物标本的采集
▪ 禽流感环境标本采集 ▪ 采样液： ▪ 可使用 PH 7.4-7.6 Hank‘s或Eagle’s等培养液加入以下抗菌素和
0.5%BSA(也可以使用MEM、EMEM、DMEM，价格相对较高 )：采 样液最好现配现用
▪ 氨苄青霉素 (2 x 106 IU/L)：主要对G+菌作用强 ▪ 链霉素 (200 mg/L) ：主要对G-菌，结核杆菌有抑制作用
平相适应的设备，包括个人防护用品（隔离衣、帽、 口罩、鞋套、手套、防护眼镜等）、防护材料、器材 和防护设施等； ▪ 3)具有有效的防止病原微生物扩散和感染的措施； ▪ 4)具有保证病原微生物样本质量的技术方法和手段。
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病原微生物标本的采集
▪ 采样时间及部位 ▪ 时间:一般在怀疑细菌感染时应尽量在急性发病期和使用抗生素之前
第一次于发病初期（1～3天），越早越好，第二次血样一般在恢复期（第一次采血后 3～4周）。双份血清同时检测，如抗体滴度有4倍以上升高才有意义。 （2）粪便采集：应在急性腹泻期及用药前采集自然排出的粪便。采集时应用灭菌棉拭子 多点蘸取患者新鲜排出粪便的脓血、粘液、水样便或稀便部分，采样量一般3-5克。 （3）咽拭子：令患者仰头张口，用压舌板压舌，将无菌棉拭子伸入口腔，适度用力拭涂 抹咽后壁和两侧扁桃体部位，放入盛有3-5mlHank’s液的采样管中，在靠近顶端处折 断棉签杆，旋紧管盖并密封。
新冠肺炎患者标本采集、运送、接收、储存流程
新冠肺炎患者标本采集、运送、接收、储存流程文档采集对新象为冠疑似病例、疑似聚集例性病患者或诊新冠断或鉴断别诊鼻拭子用2根聚丙烯纤维头塑料杆拭子同时擦拭双侧咽扁桃体及咽后将2根聚丙烯纤维头的塑料杆拭子分别插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退咽拭子拭子头浸入含3ml病毒保存液的管中，尾部弃去，旋紧管盖。
鼻咽抽取物或呼吸道抽取物用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘液或从气管抽取呼吸道分泌物。
将收集器头部插入鼻腔或气管，接通负压，旋转收集器头部并缓慢退出，收集抽取的粘液，并用3ml采样液冲洗收集器1次。
请求病人深咳后，将咳出的痰液收集于含3ml 采样液的50ml螺口塑料管中。
将收集器头部从鼻孔或气管插口处插入气管（约30cm深处），注入5ml生理盐水，接通负压，扭转收集器头部并迟钝退出。
收集抽取的粘液，并用采样液冲洗收集器1次。
深咳痰液支气管分泌物三级防护肺泡灌洗液局部麻醉后将纤维支气管镜通过口或鼻经过咽部插入右肺中叶或左肺舌段的支管，将其顶端契入支气管分支启齿，经气管活检孔慢慢加入灭菌生理盐水，每次30~50ml，总量100~250 ml，不应超过300 ml。
粪便标本血清标本血液标本发起使用含有EDTA抗凝剂的真空釆血管收罗血液标本5ml，室温静置30分钟，1500～2000rpm离心10分钟，分别收集血浆和血液中细胞于无菌螺口塑料管中。
建议使用含有EDTA抗凝剂的真空釆血管采集血液标本5ml，室温静置30分钟，1500～2000rpm离心10分钟，划分收集血浆和血液中细胞于无菌螺口塑料管中。
.患者发病早期出现腹泻症状，则留取粪便标本3-5ml；眼结膜表面用拭子轻轻擦拭后，将拭子头进入采样管中，尾部弃去，悬紧管盖。
眼结膜拭子标本文档。
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。
3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。
3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应足量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。
可感染高致病菌或样本运输管理规定
第二层：可以采用专用二级包装桶或耐高 压塑料袋。
第三层：将密封好的第二层包装放入运输 包装盒，运输包装盒要求有保持冷藏低温 功能。
样本包装的系统要求：
容器 材料 标识
密封 无菌
两耐 三防
警告用语 生物危害 放置位置 提示用语
高/低温（-40 ～ 55 ℃ ）（液氮-196 ℃ ） 高压（95kPa）
水 损 泄露
必须在符合生物安全规定的场所中进行包装
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主容器
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3、感染性物质的正确运输 《病原微生物实验室生物安全管理条例》
第二章 病原微生物分类和管理 第十条～第十三条 具备基本条件：符合规定、运输容器、生物危险标识 运输方式：陆路、水路和航空（部分机场出港及进港受限 制或无资质），有关单位或者个人不得通过公共电(汽)车和 城市铁路运输病原微生物菌(毒)种或者样本。 运输审批权限：省级卫生（兽医）部门（省内），部级 （省 际和国际），出入境检疫机构、航空主管部门 运输过程：不少于2人，不得通过公共电（汽）车和城市铁 路 承运单位：批准文件和安全措施
• 病原微生物分类及名称、运输包装分类见卫 生部制定的《人间传染的病原微生物名录》
• 其它材料
• 法人资格证明材料（复印件） • 接收单位同意接收的证明文件（原件）
感染性物质的运输管理与操作规范
《可感染人类的高致病性病原微生物菌 （毒）种或样本运输管理规定》
第六条 申请运输高致病性病原微生物菌 （毒）种或样本的单位（以下简称申请单 位），在运输前应当向省级卫生行政部门 提出申请，并提交以下申请材料（原件一 份，复印件三份）
《可感染人类的高致病性病原微生物菌 （毒）种或样本运输管理规定》 第八条 在固定的申请单位和接收单位之间多次运输相 同品种高致病性病原微生物菌（毒）种或样本的，可 以申请多次运输。多次运输的有效期为6个月；期满 后需要继续运输的，应当重新提出申请。
《生物安全管理条例》第二章 病原微生物分类和管理
第十条～第十三条
运输方式：省内、陆路 承运单位：陆路运输均无资质-单位专车 具备基本条件： 符合规定、运输容器、生物危险标识 运输审批权限：省级卫生部门（省内）， 运输过程： 不少于2人，接受过培训 不得通过公共电（汽）车和城市铁路
人感染猪流感预防控制技术指南（试行） • 生物安全要求
主 容 器
WHO 《实验室生物安全手册》
第三版(2004 )、 第四部分、第十二章
标本的安全操作 – 标本容器
• 可以是玻璃的，但最好使用塑料制品。 • 应当坚固，正确地用盖子或塞子盖好后无泄 漏。 • 容器外部不能有残留物。 • 容器上应当正确地粘贴标签以便于识别。 • 标本的要求或说明书不能够卷在容器外面，而 是要分开放置，最好放置在防水的袋子里
(条例 第十二条 不得通过公共电（汽）车和城市铁路运输 ）
专车、溢出紧急处理箱、受训人员
《可感染人类的高致病性病原微生物菌 （毒）种或样本运输管理规定》 第十五条 高致病性病原微生物菌（毒）种或样本在运输 之前的包装以及送达后包装的开启，应当在符合生物安 全规定的场所中进行。 申请单位在运输前应当仔细检查容器和包装是否符 合安全要求，所有容器和包装的标签以及标本登记表是 否完整无误，容器放置方向是否正确。 运输前仔细检查容器和包装，要符合安全要求 运输前的包装和送达后的开启，在规定的场所中进行
样品采集、运送和保存
二、样品的采集和处理
艾滋病检测最常用的样品：血液，包括血清、
血浆和全血。
唾液或尿液有时也可作为测试样品。
1. 血清样品采集：
用一次性注射器（或真空采血管） 抽出一定量静脉血，一般为5mL，放入 一次性塑料试管，室温下自然放置1-2 小时，待血液凝固和血块收缩后再用 3000rpm离心15分钟，吸出血清备用。
首选EDTA。 肝素是PCR反应的一个潜在的抑制剂，会使核 酸检测出现假阴性结果。且HIV-RNA降解的速 率显著高于EDTA和枸橼酸钠处理的血浆 。 采集样品应避免微生物和核酸污染。
病毒载量测定对样品的要求
血清和血浆的测定结果具有高度的相关性。 血清的检测结果大约是血浆的50%（ 3080% ）。因为部分HIV病毒颗粒被包裹在纤 维蛋白网络中。 首选血浆标本，血清标本也可。但每位病人 每次检测使用的标本类型应始终保持一致。
样品管应为螺旋口的塑料管（1.5ml），检 查有无破损，将螺旋盖旋紧，防止样品渗漏。 血清样品量至少应大于600μ l 。 禁止使用扳盖式样品管。 建议第一层:螺旋口的塑料管（1.5ml） 第二层：血清盒。5份或5份以下可以使 用一次性乳胶手套（每个手指放一个） 第三层：冰瓶（内置冰块） 禁止第二层使用封口塑料袋
普遍性防护原则（WHO推荐）
2.对所有器具严格消毒 为保证消毒效果，器具必须用热水和清洁剂洗干净 后再消毒，所有符合消毒规范的消毒程序都足以杀 灭HIV、乙型肝炎病毒和丙型肝炎病毒。 常用的灭菌方法足以使HIV灭活。常用的两种灭菌 方法是煮沸和化学灭菌。煮沸是有效的灭菌方法， 已清洗过的器具应煮沸20分钟。 医务人员的手常常带有病原微生物，这也是造成病 原体在病人中传播和主要原因之一。医务人员手上 沾着的体液，可以很容易地用肥皂和水清除干净。
病原微生物标本的采集运送标准操作程序
SOP_15-5 病原微生物标本的采集运送标准操作程序一、病原微生物标本采集和运送基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。
2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。
3.在感染的急性期、使用抗生素前或伤口局部治疗前收集样本。
4.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
5.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。
7.采样后立即送检，最好在2h内。
为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。
8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）二、血培养标本采集和运送1.采集指征：临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效地抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。
2.采集方法：1.采血时机:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。
2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。
对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。
对发热原因不明者两次抽血间隔60min;必要时于24～48h后再抽血2次。
因为1次血培养不足以说明问题,且会遗漏阳性结果。
国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%,2次检出90%,3次检出99%。
国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。
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感染性标本的采样、储存、运输的具体操作方法所有的采样工作都必须根据疾病的特点，在严格做好防护的基础上进行。
常见传染病需采集的标本见表1
表1 常见传染病需要采集的标本种类
序号传染病采样种类
1 白喉鼻咽拭子，急性期、恢复期双份血清
2 百日咳鼻咽拭子，全血
3 甲肝粪便，血清
4 乙肝血清
5 丙肝血清
6 戊肝粪便，血清
7 布病血清
8 不明原因肺炎咽拭子，急性期、恢复期双份血清
9 风疹咽拭子，急性期、恢复期双份血清
10 霍乱粪便，呕吐物
11 AFP 粪便
12 克雅氏病血清，脑脊液
13 流感咽拭子
14 流行性出血热血清
15 流脑全血，脑脊液、瘀点（斑）组织液
16 流行性腮腺炎血清，唾液
17 乙脑血清，脑脊液
18 麻疹咽拭子，急性期、恢复期双份血清
19 疟疾全血，指尖、耳垂血血涂片
20人感染H7N9禽流感咽拭子，急性期、恢复期双份血清
21 人感染猪链球菌病全血
22 手足口病粪便，急性期、恢复期双份血清，疱疹液，脑脊液23 细菌性痢
疾粪便
24 猩红热咽拭子
25 埃博拉出血热急性期、恢复期双份血清
（一）呼吸道标本的采集（如不明原因肺炎）
1（采样器材
拭子、压舌板、塑料瓶、采样杯或器皿、15ml 的离心管、移液管、注射器、
10ml 真空取血管、冰壶、采样运输管、有生物安全标志或标有“感染性物质”的外包装容器（见图1）; 其他:酒精灯、剪刀、纸漏斗、酒精、碘酒、吸耳球、塑料袋、记号笔、标签、登记表等。
（采集方法2
（1）鼻拭子（上呼吸道）: 将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。
以同一拭子拭两侧鼻孔。
将棉签浸入4-5 ml 采样液的管中，尾部弃去。
然后，塞紧或盖好管盖。
（2）咽拭子（上呼吸道）: 用棉签用力擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁（见图2），同样将棉签头浸入4-5 ml 采样液的管中，尾部弃去，塞紧或盖好管盖。
注: 亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中，以便提高分离率，减少工作量。
（3）鼻洗液（上呼吸道）:患者取坐姿，头稍后仰，用移液管将5ml生理盐水注
入一侧鼻孔，嘱患者同时发K 音以关闭鼻腔。
然后让患者低头使生理盐水流出，用平皿或烧杯收集洗液。
重复此过程洗两侧鼻孔。
⑷鼻咽抽取物或抽取气管和支气管分泌物(下呼吸道):用与负压泵相连的收集 器从鼻咽部抽取粘液或从气管抽取气管和支气管分泌物。
先将收集器头部插入鼻腔 或气管，接通负压，旋转收集器头部并缓慢退出。
收集抽取的粘液，并用采样液涮 洗收集器3次。
近来国内有用小孩导尿管接在 50 ml 注射器上来替代收集器。
(5) 漱口液：用10 ml 采样液漱口。
漱时让患者头部微后仰，发噢声，让洗液在 咽部转动。
然后，用平皿或烧杯收集漱液。
注：取漱口液时，需预先了解患者是否 对抗菌素有过敏史，如有，含漱液中不应含抗菌素。
(6) 肺活检材料：肺活检组织在无菌条件下，用灭菌过的乳钵磨碎，用生理盐水 配成20%悬液，2000rpm 离心10min ,取上清加入上述提到的抗菌素。
(7) 血清:血液标本采集后应放入10ml 真空管中，静止或4?冰箱，待血清自然
析出
图1生物安全标志图2咽拭子采样图
(二)消化道标本的采集
1.检测细菌的采便：取自然排出的新鲜粪便，成形便采集约5g 标 本;水样便或 典
型的米泔水样便采集约5ml 。
菌痢尽量挑取脓血部分，尽可能在急性期、抗生素 使用前采集新鲜粪便。
保存及送样条件：所采标本立即接种于培养基；或将标本加入 碱性蛋白胨水中，24小时内室温保存，立即送检(如霍乱、细菌性痢疾等)
2检测病毒的米便：米集AFP 麻痹出现后14天内米集，应米集应米集双份大便
标
本，两份标本采集时间至少间隔24 小时; 每份标本重量?5克（约为大枣大小）。
放入AFP专用采便管内冰箱冷冻保存，7天内送检。
手足口、甲肝便采集后要立即放在无菌采编管内，4?暂存，-20?冷冻保存，在4?下送检（如手足口病、AFP甲肝等）。
3.呕吐物：用面试字条去少量呕吐物作为件材，放入自封塑料袋中并封好袋口或置于灭菌带盖瓶中，然后盖紧瓶盖，室温下立即送检，或置于冷藏箱中24小时内送检（如霍乱等）。
（三）脑脊液标本的米集
脑脊液：需要检测抗原时，在无菌条件下由腰椎穿刺，用无菌试管收集3,5ml ，（作厌氧培养时标本应注入厌氧瓶内）; 检测抗体时，一般于出现神经症状时米集，
查IgM 只需一份脑脊液，而查IgG 则需收集两次。
操作最好在医院内由有经验的医生按腰椎穿刺术进行。
（四）血液标本的米集
作血液病原培养时，严格用无菌穿刺法米静脉血，一般米集3-5ml ，移入无菌的有螺口的抗凝的容器或培养瓶中送检; 检测抗体时，需要分离血。
3. 标本的包装
（1）标本必须放在大小适合的带螺旋盖内有橡胶圈的塑料管里，拧紧。
直接在塑料管上用油性记号笔写明样本的种类、米样时间、编号、姓名。
原始容器应该是防漏的，可盛容量不大于500ml。
（2）将密闭后的标本放入大小适合的塑料袋内密封;每袋装一份标本。
同一患者2份以上的密封标本，可以放在同一个塑料袋内再次做密封。
在原始容器与第二层包装之间应放置有吸附作用的材料。
并辅以第二层防漏包装。
(3) 运输标本的第三层包装( 外包装) 必须有明确的标签，标明寄送人和接收人的详细联系方式、包装日期和运输日期等。
外包装一般为专用运输箱内( 或疫苗冷藏包) ，放入冰排，然后以柔软物质填充，内衬具吸水和缓冲能力的材料。
若将进行病毒分离，可将密封好的装有标本的容器直接放入液氮运输罐内运输。
外包装必须有生物安全标识。
4( 标本的保存与运送按照样本的性质和检测需求，把样本放在合适的保存环境中。
如果是细菌样本一般常温保存。
如果是病毒或血清标本若不能在24 小时内送达，则应尽快在,70 ? 以下保存。
无,70 ? 条件的需在,20 ? 冰箱短时间暂存，并尽快联系递送标本。
标本运送方式采取专人专车运送，主要用于近距离样品运送，地面运送标本时注意将装有标本的箱子紧紧固定在交通工具上，至少 2 人护送，车上还应备有吸水材料、消毒剂、手套、口罩、护目镜、密封防水的废弃物容器等防护用品，为避免路途颠簸引起标本溶血，可在运送前分离血清。
在国际、国家、商业的有关规定允许下，诊断标本也可空运，应注意规范包装。
5( 标本的交接样品采集后应与市疾控中心应急办负责样品接收人员取得联系进行样品交接，经双方验收确认后签字。
采集样品时应填写患者的相关信息，包括: 姓名、性别、年龄、职业、家庭住址、样品名称、数量、保存方式等。