氟啶酮、赤霉素和发芽温度对巫山淫羊藿种子休眠解除的影响
箭叶淫羊藿种子的休眠类型与萌发研

㊀Guihaia㊀Nov.2022ꎬ42(11):1939-1948http://www.guihaia-journal.comDOI:10.11931/guihaia.gxzw202201063吉浴芳ꎬ宋松泉ꎬ田向荣ꎬ等.箭叶淫羊藿种子的休眠类型与萌发研究[J].广西植物ꎬ2022ꎬ42(11):1939-1948.JIYFꎬSONGSQꎬTIANXRꎬetal.DormancytypeandgerminationofEpimediumsagittatumseeds[J].Guihaiaꎬ2022ꎬ42(11):1939-1948.箭叶淫羊藿种子的休眠类型与萌发研究吉浴芳1ꎬ2ꎬ宋松泉3ꎬ田向荣1ꎬ高家东2ꎬ戴嘉兴2ꎬ刘㊀军2∗(1.吉首大学生物资源与环境科学学院ꎬ湖南吉首416000ꎻ2.广东省农业科学院农业生物基因研究中心ꎬ广东省农作物种质资源保护与利用重点实验室ꎬ广州510640ꎻ3.中国科学院植物研究所ꎬ北京100093)摘㊀要:箭叶淫羊藿具有重要的药用价值和较大的市场需求ꎬ但其种子休眠和萌发特性目前仍不够清楚ꎬ严重影响了其产业化育苗与栽培ꎮ为探明其种子的休眠类型及释放休眠和促进休眠的最适方法ꎬ该文以箭叶淫羊藿的成熟种子为材料ꎬ研究种子对水分的吸收㊁种子的脱水耐性ꎬ以及温度㊁层积和植物激素对种子休眠与萌发的影响ꎮ结果表明:(1)箭叶淫羊藿种子不具有物理休眠ꎬ而具耐脱水性ꎮ(2)在4~25ħ和黑暗条件下ꎬ种子萌发率为零ꎬ具有休眠特性ꎮ(3)胚与种子的比值非常小ꎬ4ħ和10ħ及变温层积能显著地促进胚的生长发育以及增加种子的萌发速率和萌发率ꎮ(4)赤霉素和氟啶酮显著增加种子的萌发速率和萌发率ꎮ综上认为ꎬ箭叶淫羊藿种子的休眠类型为形态生理休眠(MPD)ꎬ释放休眠和促进萌发的最适方法是先将种子在10ħ中层积30dꎬ再置于4ħ环境中让其萌发ꎮ该研究结果为箭叶淫羊藿的产业化育苗提供了参考ꎮ关键词:脱水耐性ꎬ箭叶淫羊藿种子ꎬ萌发ꎬ形态生理休眠ꎬ层积中图分类号:Q945㊀㊀文献标识码:A㊀㊀文章编号:1000 ̄3142(2022)11 ̄1939 ̄10DormancytypeandgerminationofEpimediumsagittatumseedsJIYufang1ꎬ2ꎬSONGSongquan3ꎬTIANXiangrong1ꎬGAOJiadong2ꎬDAIJiaxing2ꎬLIUJun2∗(1.CollegeofBiologyandEnvironmentalSciencesꎬJishouUniversityꎬJishou416000ꎬHunanꎬChinaꎻ2.Agro ̄biologicalGeneResearchCenterꎬGuangdongAcademyofAgriculturalSciencesꎬGuangdongProvincialKeyLaboratoryforCropGermplasmResourcesPreservationandUtilizationꎬGuangzhou510640ꎬChinaꎻ3.InstituteofBotanyꎬChineseAcademyofSciencesꎬBeijing100093ꎬChina)Abstract:Epimediumsagittatumplantshaveanimportantmedicinalvalueandahugemarketdemandꎬbutthecharacteristicsondormancyandgerminationoftheirseedsarestillunclearꎬwhichseriouslyaffectsitsindustrialseedlingproductionandcultivation.Inordertoverifythetypeofseeddormancyandtheoptimalwaytoreleaseandpromote收稿日期:2022-07-27基金项目:国家自然科学基金(31871716)ꎻ广东省农作物种质资源保存与利用重点实验室项目(2020B121201008)[SupportedbyNationalNaturalScienceFoundationofChina(31871716)ꎻGuangdongProvincialKeyLaboratoryProjectofCropGermplasmResourcesPreservationandUtilization(2020B121201008)]ꎮ第一作者:吉浴芳(1997-)ꎬ硕士研究生ꎬ主要从事种子生物学研究ꎬ(E ̄mail)710211436@qq.comꎮ∗通信作者:刘军ꎬ研究员ꎬ主要从事种质资源保存和创新利用研究ꎬ(E ̄mail)liujun@gdaas.cnꎮdormacyꎬusingthematureseedsofE.sagittatumasexperimentalmaterialsꎬweinvestigatedthewateruptakeandthedesiccationtoleranceofseedsꎬaswellastheeffectsoftemperatureꎬstratificationandphytohormoneonseeddormancyandgermination.Theresultswereasfollows:(1)E.sagittatumseedshadnophysicaldormancybuthaddesiccationtolerance.(2)Thegerminationpercentageofseedswaszeroat4-25ħanddarknessꎬandtheseseedshaddormancycharacteristics.(3)Theembryo/seedratiowasverysmallꎬaswellasembryogrowthanddevelopmentandseedgerminationrateandgerminationpercentagewereincreasedbystratificationat4ħꎬ10ħpercentagerateandfluctuatingtemperaturestratification.(4)Gibberellinandfluridonesignificantlyincreasedthegerminationrateandgerminationpercentageofseeds.InsumꎬalltheaboveresultsindicatethatthedormancytypeofE.sagittatumseedsismorphophysiologicaldormancyꎬandtheoptimalmethodtoreleasedormancyandpromotegerminationistostratifytheseedsat10ħfor30dandthentransfertotheenvironmentof4ħ.ThisstudyprovidesthereferenceforindustrialculturingseedlingsofE.sagittatum.Keywords:desiccationtoleranceꎬEpimediumsagittatumseedꎬgerminationꎬmorphophysiologicaldormancyꎬstratification㊀㊀种子休眠是活种子在适宜环境条件下暂时不能萌发的一种机制ꎬ对种子植物的生存和繁衍起到关键作用(Gao&Ayeleꎬ2014)ꎮ种子休眠是植物对环境适应的一个重要表现(Donohueetal.ꎬ2010ꎻHuangetal.ꎬ2010)ꎮ高水平的种子休眠会延迟萌发和萌发不整齐ꎬ从而导致生长季节的长度缩短和生长不一致ꎻ相反ꎬ低水平的休眠可能引起种子在有利的生长季节开始之前萌发ꎬ存在幼苗死亡的风险(Donohueetal.ꎬ2010)ꎬ从而降低作物的产量和质量ꎮ休眠是一个复杂的性状ꎬ主要由遗传和环境因素决定ꎬ植物物种之间存在种子休眠的多样性和普遍性(Baskin&Baskinꎬ2014)ꎮ种子休眠可分为生理休眠(physiologicaldormancyꎬPD)㊁形态休眠(morphologicaldormancyꎬMD)㊁形态生理休眠(morphophysiologicaldormancyꎬMPD)㊁物理休眠(physicaldormancy)和组合休眠(combinationaldormancy)(Baskin&Baskinꎬ2004ꎬ2014ꎻIwasakietal.ꎬ2022)ꎮPD存在于具有充分发育和成熟胚的种子中ꎬ主要是由种子组分中抑制剂的存在和植物生长物质的缺乏所引起的(Chenetal.ꎬ2010)ꎮPD是最普遍的休眠形式ꎬ可分为深度㊁中度和浅生理休眠ꎬ广泛存在于裸子植物和所有主要被子植物中(Baskin&Baskinꎬ2004ꎬ2014ꎻFinch ̄Savage&Leubner ̄Metzgerꎬ2006)ꎮMD的种子胚小(未发育完全)ꎬ但已分化ꎬ种子的萌发不需要释放休眠的预处理ꎬ但需要较长时间让胚生长至足够体积ꎬ之后萌发ꎮMPD的种子具有未发育完全和生理休眠的胚ꎬ其种子萌发需要释放休眠的预处理ꎮMPD的种子胚的生长/胚根突破种皮需要的时间比MD的种子长得多ꎮ植物激素脱落酸(abscisicacidꎬABA)和赤霉素(gibberellinꎬGA)参与种子休眠和萌发的控制(Weitbrechtetal.ꎬ2011ꎻIwasakietal.ꎬ2022)ꎮDong等(2012)发现ꎬ氟啶酮(fluridoneꎬFluꎬABA生物合成的抑制剂)和GA3显著降低莴苣种子萌发的热休眠ꎬ而烯唑醇(diniconazoleꎬABA分解代谢酶ABA8ᶄ ̄羟化酶的抑制剂)和多效唑(paclobutrazolꎬGA生物合成途径的抑制剂)增加莴苣种子萌发的热休眠ꎮ在降低莴苣种子萌发的热休眠中ꎬ多效唑具有明显拮抗氟啶酮的作用ꎬ而氟啶酮具有显著增加GA3的作用ꎮ特别是ABA和GA水平之间的平衡及其各自的信号通路在诱导和维持休眠以及促进萌发的调控中起重要作用(Finkelsteinetal.ꎬ2008ꎻGraeberetal.ꎬ2012ꎻ宋松泉等ꎬ2020aꎬb)ꎮ此外ꎬ种子休眠还被一些环境因素释放ꎬ如后熟㊁变温㊁冷/暖层积㊁交替光照等ꎬ具体取决于物种(Baskin&Baskinꎬ2004ꎬ2014ꎻBlacketal.ꎬ2006ꎻFinch ̄Savage&Leubner ̄Metzgerꎬ2006)ꎮ淫羊藿属(EpimediumL.)植物为小檗科(Berberidaceae)多年生草本植物ꎬ该属植物约55种ꎬ我国有45种ꎬ其中淫羊藿(Epimediumbrevicornum)㊁箭叶淫羊藿(E.sagittatum)㊁柔毛淫羊藿(E.pubescens)㊁朝鲜淫羊藿(E.koreanum)和巫山淫羊藿(E.wushanense)为«中华人民共和国药典»所收载(国家药典委员会ꎬ2020)ꎮ淫羊藿为常用中药ꎬ最早记载于«神农本草经»ꎬ具有补肾壮阳㊁祛风除湿之功效ꎻ在临床上ꎬ淫羊藿常被用于治疗0491广㊀西㊀植㊀物42卷骨质疏松㊁更年期综合征㊁乳房肿块㊁高血压㊁冠心病等ꎻ另外ꎬ淫羊藿还具有增强免疫力㊁抗衰老㊁抗肿瘤㊁抗艾滋病等作用ꎮ淫羊藿含有多种生理活性很强的成分ꎬ主要包括黄酮类化合物㊁生物碱㊁多糖㊁木脂素和一些必需的微量元素(Kangetal.ꎬ2012ꎻ李聪聪等ꎬ2020)ꎮ长期以来ꎬ种子萌发困难ꎬ淫羊藿的栽培大多采用挖取野生植株进行分蔸种植ꎬ但其繁殖系数低ꎬ并对野生资源造成了严重破坏ꎮ近年来ꎬ随着市场需求的大量增加ꎬ淫羊藿野生资源的蕴藏量逐年锐减ꎬ濒临枯竭ꎮ因此ꎬ利用种子进行种苗繁育已成为淫羊藿产业化栽培中亟须解决的关键问题ꎮ淫羊藿属植物在果实成熟时ꎬ种胚发育不完全ꎬ需要经过一段时间的冷层积或冷暖层积才能萌发ꎬ具有明显的休眠现象(樊家乙等ꎬ2010ꎻ付长珍等ꎬ2012ꎻ田向荣等ꎬ2015ꎻ苏贺等ꎬ2016ꎻRhie&Leeꎬ2020)ꎮGA3处理促进巫山淫羊藿(苏贺等ꎬ2016)和朝鲜淫羊藿(Rhie&Leeꎬ2020)种胚的生长ꎬ氟啶酮处理能显著增加巫山淫羊藿种子的萌发率(苏贺等ꎬ2016)ꎮ田向荣等(2015)利用常规萌发试验以及直接测量和石蜡制片技术初步研究了箭叶淫羊藿种子的萌发特性ꎮ目前ꎬ箭叶淫羊藿种子的休眠和萌发特性仍不够清楚ꎮ本文以成熟的箭叶淫羊藿种子为材料ꎬ研究了种子对水分的吸收㊁种子的脱水耐性以及温度㊁层积和植物激素对种子萌发的影响ꎬ试图探明箭叶淫羊藿种子的休眠类型及其释放休眠和促进萌发的适宜方法ꎬ为产业化育苗提供参考ꎮ1㊀材料与方法1.1材料箭叶淫羊藿(Epimediumsagittatum)的成熟果实于2020年6月采自张家界八大公山(110ʎ07ᶄE㊁29ʎ77ᶄNꎬ海拔1302m)ꎬ年平均温度小于9.9ħꎬ最冷月为1月ꎬ平均温度3.5~4.3ħꎬ最热月为7月ꎬ平均温度26.3~28ħꎻ年均降雨量2300mmꎬ春夏季(4 6月)降雨最多ꎬ约占48%ꎮ将收集后的果实置于(25ʃ3)ħ和(50ʃ5)%相对湿度下自然干燥ꎬ待种子从果荚中脱落后ꎬ干燥种子含水量到(9.7ʃ0.49)%ꎬ一部分种子用于耐脱水性分析ꎬ另一部分种子在4ħ中贮藏备用ꎮ玉米 郑单958 (Zeaways Zhengdan958 )和水稻 日本晴 (Oryzasativa japonica )种子由广东省农业科学院农业生物基因中心种质资源实验室提供ꎮ1.2耐脱水性分析将含水量为9.7%的种子置于筛网中ꎻ将筛网置于盛有干燥硅胶的干燥器中ꎬ分别脱水0㊁2㊁4㊁8㊁12㊁24㊁36h后ꎬ一部分种子用于测定含水量ꎬ另一部分种子则在4ħ下层积60d后在10ħ和黑暗条件下萌发ꎮ1.3含水量测定种子含水量的测定参照国际种子检验协会的方法(InternationalSeedTestingAssociationꎬ1999)ꎬ以鲜重的百分比表示ꎮ1.4种子对水分的吸收箭叶淫羊藿种子㊁玉米种子和水稻种子分别播种在垫有两层滤纸的培养皿中ꎬ加入7mL蒸馏水ꎬ于25ħ和黑暗中分别吸胀不同时间后测定种子的含水量ꎮ种子的含水量用鲜重百分比来表示ꎮ1.5层积处理层积基质为珍珠岩ꎮ首先ꎬ将珍珠岩在自来水中除去粉尘ꎬ121ħ中灭菌30minꎬ冷却后装入自封袋中并加入适量的无菌水ꎬ室温下放置20min后ꎬ用吸管将多余的水吸掉ꎮ其次ꎬ将含水量为9.7%的箭叶淫羊藿种子与湿润的珍珠岩(V/V=1ʒ10)在自封袋中充分混合ꎬ然后ꎬ分别在4㊁10㊁(4+10)㊁(10+4)㊁(4+10+4)ħ和黑暗条件下层积ꎮ最后ꎬ层积不同的时间组合后ꎬ取样ꎮ一部分种子利用OLYMPUS(SZ61)体式显微镜观察胚的形态变化ꎬ拍照㊁计算胚/种子(embryo/seedꎬE/S)的比例(胚的长度/种子的长度)ꎻ另一部分种子做萌发试验ꎬ测定种子的萌发速率和萌发率ꎮ1.6种子萌发经不同处理的种子用0.1%(V/V)NaClO灭菌15min后ꎬ播种在垫有两层滤纸的培养皿中ꎬ加入6mL蒸馏水或不同浓度的植物激素GA3或氟啶酮ꎬ之后在注明温度和黑暗的条件下萌发ꎮ以胚根突破种皮2mm作为萌发的标准ꎮ1.7统计分析所有数据均使用SPSS20.0软件的单因素方差分析模型(one ̄wayANOVAmodel)进行分析ꎬ平均数差异的显著性利用Student ̄Newman ̄Keuls(S ̄N ̄K)检验确定(P=0.05)ꎮ149111期吉浴芳等:箭叶淫羊藿种子的休眠类型与萌发研究2㊀结果与分析2.1种子对水分的吸收为了解种子是否具有物理休眠ꎬ将收获的新鲜箭叶淫羊藿㊁玉米和水稻种子在25ħ和黑暗中分别吸胀0~72hꎮ我们观察到ꎬ箭叶淫羊藿种子具有2个阶段的水分吸收ꎬ即阶段Ⅰ(0~4h)的快速吸水和阶段Ⅱ(4~72h)的缓慢吸水直到平台期ꎮ在阶段Ⅰꎬ种子的含水量从9.7%增加到52%ꎻ在阶段Ⅱꎬ种子的含水量从52%增加到56.7%ꎮ玉米和水稻种子的吸水过程可分为3个阶段ꎬ即阶段Ⅰ的快速吸水和阶段Ⅱ的缓慢吸水以及阶段Ⅲ种子萌发后的迅速吸水(图1:A)ꎮ在吸胀的72h内ꎬ未观察到箭叶淫羊藿种子萌发ꎻ相反ꎬ玉米和水稻种子随着吸水量的增加逐渐萌发ꎮ玉米和水稻种子达到10%萌发率的时间分别为22h和33hꎬ达到50%萌发率的时间分别为34h和42hꎮ当吸胀72h时ꎬ玉米和水稻种子的萌发率分别达到97%和93%(图1:B)ꎮ2.2脱水对种子萌发的影响为研究箭叶淫羊藿种子的耐脱水性ꎬ将含水量为9.7%(鲜重为基础)的箭叶淫羊藿种子置于干燥硅胶表面在不同的时间进一步脱水ꎮ脱水初期ꎬ种子的含水量下降较快ꎬ之后缓慢下降ꎮ如脱水2h时ꎬ种子的含水量下降了18.9%ꎻ从脱水8h至脱水12hꎬ含水量仅下降了4.2%(图2:A)ꎮ脱水4h和8hꎬ当含水量从9.7%下降到7.3%和5.7%时ꎬ种子(经4ħ层积60d后)的萌发率增加ꎻ随着进一步脱水ꎬ种子的萌发率稍微下降ꎬ但仍高于对照ꎬ与对照没有显著性差异(图2:B)ꎮ脱水后ꎬ种子的萌发速率加快ꎬ如未经脱水的种子在萌发处理后155d时开始萌发ꎬ而经过脱水的种子在萌发处理后105d时开始萌发(未表明数据)ꎮ2.3温度对种子萌发的影响为发现箭叶淫羊藿种子的适宜萌发温度ꎬ将采集的新鲜干燥种子分别在4㊁10㊁15㊁20㊁25ħ和黑暗条件下吸胀30dꎬ其萌发率为零(未表明数据)ꎮ但是ꎬ在4ħ和10ħ的条件下ꎬ种子分别在吸胀的115d和145d开始萌发ꎬ随着吸胀时间的增加ꎬ种子的萌发率也增加ꎻ当吸胀240d时ꎬ种子的萌发率分别为55%和44%(图3:A)ꎮ而在15㊁20㊁25ħ的条件下ꎬ到吸胀的240dꎬ种子的萌发率分别为2%㊁0和0ꎮ种子在4ħ和10ħ的条件下能够部分萌发ꎬ在4ħ下的萌发速率和萌发率明显高于10ħ(图3:A)ꎮ为进一步找到种子的适宜萌发温度ꎬ将在10ħ层积60d后转移到4ħ中层积30d的种子置于不同温度和黑暗条件下萌发ꎮ结果发现ꎬ在4㊁10㊁15㊁20㊁25ħ下ꎬ种子的萌发率分别为88%㊁85%㊁3%㊁2%和0ꎬ适宜的萌发温度为4ħ和10ħꎮ在萌发初期ꎬ种子在10ħ中的萌发速率稍微高于4ħꎬ但随着萌发时间的增加ꎬ在4ħ下的萌发速率和萌发率都高于10ħ(图3:B)ꎮ2.4层积处理对胚生长和种子萌发的影响2.4.1层积对胚生长的促进作用㊀箭叶淫羊藿种子从果荚脱落时ꎬ种子中胚的体积较小ꎬ呈球形胚ꎬE/S比值仅为0.07(图4:AꎬB)ꎮ随着在4ħ和10ħ中层积时间的增加ꎬ胚逐渐从球形胚发育到心形胚㊁鱼雷形胚和成熟胚ꎬ胚的体积也不断增加(图4)ꎮ当种子在4ħ中层积时ꎬ胚在层积0~60d时生长缓慢(E/S比值较小)ꎬ到层积60d时ꎬE/S比值为0.09ꎻ在层积的61~90d里胚逐渐生长ꎬ到层积90d时E/S比值为0.14ꎻ在层积90d后胚迅速生长ꎬ到层积165d时E/S比值为0.88(图4:C)ꎮ当种子在10ħ中层积时ꎬ胚的生长逐渐增大ꎻ到层积165d时ꎬ其E/S比值为0.8(图4:D)ꎮ我们观察到ꎬ在10ħ中层积的种子ꎬ其E/S比值显著大于在4ħ中层积的种子ꎬ如种子在10ħ中层积60d的E/S比值(0.24)比在4ħ中层积相同时间的比值(0.09)增加了167%(图4:D)ꎮ当种子在4ħ中层积30d后转移到10ħ中层积时ꎬ胚的生长速率比一直在4ħ中层积生长更快ꎮ例如ꎬ从4ħ中层积30d后转到10ħ中继续层积60d的种子ꎬ其E/S比值(0.25)比在4ħ中层积90d的种子(0.144)增加了约74%ꎻ在4ħ中层积60d后转移到10ħ中层积的种子其E/S比值在层积初期与一直在4ħ中层积的种子类似ꎬ随着在10ħ中层积时间的延长ꎬ其E/S比值有所增加(图4:C)ꎮ种子在10ħ中层积30d或60d后转移到4ħ中层积时ꎬ其E/S比值均显著大于一直在10ħ中层积种子的E/S比值ꎮ例如ꎬ种子一直在10ħ中层积90d时ꎬ其E/S比值为0.4ꎻ在10ħ中层积30d后转移到4ħ中层积60dꎬ其E/S比值为0.83ꎻ在10ħ中层积60d后转移到4ħ中层积30dꎬ其2491广㊀西㊀植㊀物42卷干种子在25ħ和黑暗中吸胀不同时间后ꎬ种子的含水量和萌发率被测定ꎮ胚根伸出种皮2mm作为种子完成萌发的标准ꎮ所有的数值均为100粒种子重复3次的平均值ʃ标准误ꎮWatercontentandgerminationofseedsweredeterminedafterdryseedswereimbibedat25ħanddarknessfordifferenttime.Aradiclelengthof2mmwasusedasthecriterionforgerminationcompletion.Allvalueswerexʃsxofthreereplicatesfor100seedseach.图1㊀箭叶淫羊藿㊁玉米和水稻种子的含水量(A)与萌发率(B)Fig.1㊀Watercontent(A)andgerminationpercentage(B)ofEpimediumsagittatumꎬZeamaysandOryzasativaseedsa.含水量的变化ꎻb.萌发率的变化ꎮ种子在干燥硅胶表面被分别脱水不同的时间后ꎬ测定种子的含水量和萌发率ꎮ脱水后的种子先在4ħ下层积60dꎬ然后在10ħ和黑暗条件下萌发72dꎮ胚根伸出种皮2mm作为种子完成萌发的标准ꎬ所有的数据为50粒种子4次重复的平均值ʃ标准误ꎮ下同ꎮ条形图上相同的大写字母表示不同处理之间没有显著性差异(S ̄N ̄KꎬP=0.05)ꎮa.Changeofwatercontentꎻb.Changeofgerminationpercentage.Watercontentandgerminationpercentageofseedsweredeterminedafterseedsweredehydratedatsurfaceofdrysilicagelfordifferenttime.Dehydratedseedswerefirststratifiedat4ħfor60dꎬandthengerminatedat10ħanddarknessfor72d.Aradiclelengthof2mmwasusedasthecriterionforcompletionofgermination.Allvaluesarexʃsxoffourreplicatesof50seedseach.Thesamebelow.Thesameuppercaselettersabovebarsrepresentnosignificantdifferencesamongdifferenttreatments(S ̄N ̄KꎬP=0.05).图2㊀箭叶淫羊藿种子对脱水的反应Fig.2㊀ResponseofEpimediumsagittatumseedstodehydrationE/S比值为0.67(图4:D)ꎮ种子在4ħ层积30d和10ħ层积90d后转移到4ħ中层积ꎬ或在4ħ层积60d和10ħ层积60d后转移到4ħ中层积ꎬ胚的生长(E/S)都表现出相同的趋势ꎻ而在层积75~135d时ꎬ前者的生长比后者稍微快些ꎬ在136~165d时ꎬ二者的生349111期吉浴芳等:箭叶淫羊藿种子的休眠类型与萌发研究A.采集的新鲜干燥种子ꎻB.10ħ层积60d后转移到4ħ层积30d的种子ꎮA.Freshly ̄collecteddryseedsꎻB.Seedsstratifiedat10ħfor60dandtransferedto4ħfor30d.图3㊀温度对箭叶淫羊藿种子萌发的影响Fig.3㊀EffectsoftemperatureongerminationofEpimediumsagittatumseeds采集的新鲜干燥种子用不同的温度组合层积表明的时间后ꎬ用体式显微镜观察和测定胚的大小ꎬ拍照和计算E/S比值ꎮAꎬB.在4ħ和10ħ层积过程中胚的形态变化ꎻC-E.在不同温度组合层积过程中E/S比值的变化ꎮ图中箭头表示温度变化的时间点ꎮ所有的数据为10粒种子3次重复的平均值ʃ标准误ꎮThefreshly ̄collecteddryseedswerestratifiedindifferenttemperaturecombinationsforanindicatedtimeꎬandtheembryosizewasthenobservedꎬmeasuredꎬandphotographedbystereomicroscopeꎬandtheE/Sratiowascalculated.AꎬB.Morphologicalchangeofembryoduringstratificationat4ħand10ħꎬrespectivelyꎻC-E.ChangeofE/Sratioduringstratificationatdifferenttemperaturecombinations.Thearrowinthefigureindicatesthetimepointoftemperaturechange.Allvaluesarexʃsxofthreereplicatesof10seedseach.图4㊀不同层积处理对箭叶淫羊藿胚生长(胚/种子ꎬE/S)的影响Fig.4㊀Effectsofdifferentstratificationtreatmentsonembryogrowth(embryo/seedꎬE/S)ofEpimediumsagittatumseeds4491广㊀西㊀植㊀物42卷A.种子在4ħ中分别层积30d和60dꎬ之后在10ħ和黑暗条件下萌发ꎻB.种子在10ħ中分别层积30d和60dꎬ之后在4ħ和黑暗条件下萌发ꎻC.种子在4ħ中层积30d后转移到10ħ中继续层积90dꎬ或在4ħ中层积60d后转移到10ħ中继续层积60dꎬ之后在4ħ和黑暗条件下萌发ꎮ图中箭头表示种子开始萌发的时间点ꎮ胚根伸出种皮2mm作为种子完成萌发的标准ꎮ所有的数据为50粒种子4次重复的平均值ʃ标准误ꎮ下同ꎮA.Seedswerestratifiedat4ħfor30and60dꎬrespectivelyꎬandthengerminatedat10ħanddarknessꎻB.Seedswerestratifiedat10ħfor30and60dꎬrespectivelyꎬandthengerminatedat4ħanddarknessꎻC.Seedsarestratifiedat4ħfor30dandtransfered10ħfor90dorat4ħfor60dandat10ħfor60dꎬandthengerminatedat4ħanddarkness.Thearrowinthefigureindicatesthetimepointatwhichtheseedbeginstogerminate.Aradiclelengthof2mmwasusedasthecriterionforcompletionofgermination.Allvaluesarexʃsxoffourreplicatesof50seedseach.Thesamebelow.图5㊀不同层积处理对箭叶淫羊藿种子萌发的影响Fig.5㊀EffectsofdifferentstratificationtreatmentsongerminationofEpimediumsagittatumseeds种子在10ħ和黑暗中层积120dꎬ之后在不同浓度的GA3(A)㊁Flu(B)和GA3+Flu组合(C)以及4ħ和黑暗中萌发60dꎮSeedswerestratifiedat10ħanddarknessfor120dꎬandthengerminatedindifferentconcentrationsofGA3(A)ꎬFlu(B)andGA3+Flucombinations(C)aswellasat4ħanddarknessfor60d.图6㊀植物激素赤霉素(GA3)和氟啶酮(Flu)对淫羊藿种子萌发的影响Fig.6㊀Effectsofphytohormonegibberellin(GA3)andfluridone(Flu)ongerminationofEpimediumsagittatumseeds长没有明显差异ꎻ到层积165d时ꎬ二者的E/S比值均大于0.8(图4:E)ꎮ2.4.2层积对种子萌发的促进作用㊀种子在4ħ中分别层积30d或60d后ꎬ置于10ħ和黑暗中萌发ꎬ随着层积时间的延长ꎬ种子的萌发速率和萌发率显著增加(图5:A)ꎮ种子在10ħ中层积30d或60d后ꎬ置于4ħ和黑暗中萌发ꎬ种子的萌发速率和萌发率也显著增加ꎬ在10ħ中层积30d和60d的作用效果类似(图5:B)ꎮ种子在10ħ中层积30d或60d后在4ħ中的萌发速率和萌发率远比在4ħ中层积30d或60d后在10ħ中萌发的种子高得多(图5:AꎬB)ꎮ例如ꎬ4ħ中层积30d和60d的种子在10ħ中的最初萌发时间分别为125d和90dꎬ在萌发150d时的萌发率分别为22.5%和67%ꎻ在10ħ中层积30d和60d的种子在4ħ中的最初萌发时间均为45dꎬ在萌发150d时的萌发率分别为93%和96%ꎮ在4ħ中层积60d的种子在10ħ中萌发率达到50%的时间为135dꎬ而在10ħ中层积30d的种子在4ħ中萌发率达到50%的时间仅为60d(图5:AꎬB)ꎮ549111期吉浴芳等:箭叶淫羊藿种子的休眠类型与萌发研究两种变温层积(4ħ层积30d+10ħ层积90d或4ħ层积60d+10ħ层积60d)都能显著增加种子在4ħ中的萌发速率和萌发率ꎬ萌发率达到50%的时间均为70d(图5:C)ꎻ与在10ħ中层积30d或60d后在4ħ中萌发的种子比较ꎬ种子的萌发速率和萌发率稍微降低ꎬ但比在4ħ中层积30d或60d后在10ħ中萌发的种子高得多(图5)ꎮ2.5赤霉素和氟啶酮对种子萌发的促进作用为了解箭叶淫羊藿种子萌发对植物激素GA3和氟啶酮的响应ꎬ种子先在10ħ和黑暗中层积120dꎬ使胚发育成熟ꎬ再在不同浓度的GA3㊁氟啶酮和GA3+氟啶酮中萌发ꎮ结果表明ꎬ1㊁10μmol L ̄1GA3对种子的萌发没有作用ꎬ100~10000μmol L ̄1GA3明显地促进种子萌发ꎬ10000μmol L ̄1GA3的促进作用明显低于1000μmol L ̄1GA3ꎬ以及种子的萌发率仍然低于70%(图6:A)ꎮ5~500μmol L ̄1氟啶酮显著地促进种子萌发ꎬ其萌发率都高于90%ꎬ均比对照增加46%及以上(图6:B)ꎮ在添加10㊁100μmol L ̄1GA3的同时ꎬ分别添加10μmol L ̄1或100μmol L ̄1的氟啶酮ꎬ种子的萌发速率(未表明数据)和萌发率都比单独添加相同浓度的GA3高得多ꎬ萌发率约为95%(图6:C)ꎮ3㊀讨论3.1箭叶淫羊藿种子对水分的吸收种子萌发随着水分吸收开始ꎬ当胚根突破种皮萌发结束(Bewleyetal.ꎬ2013)ꎮ箭叶淫羊藿种子的水分吸收具有快速吸水(阶段Ⅰ)和缓慢吸水(阶段Ⅱ)两个阶段ꎬ缺乏吸水的第Ⅲ阶段ꎮ在阶段Ⅰꎬ种子的含水量迅速增加到52%ꎬ表明箭叶淫羊藿种子的种皮是透水的ꎬ不具有物理休眠ꎮ阶段Ⅰ的水分吸收是由衬质势(matrixpotential)驱动的ꎬ因为干种子的水势非常低(Obroucheva&Antipovaꎬ1997)ꎮ阶段Ⅱ的缓慢吸水直到72h(甚至更长ꎬ未表明数据)是水分吸收的滞后期ꎮ以上结果与巫山淫羊藿种子的水分吸收类似(樊家乙等ꎬ2010)ꎮ阶段Ⅲ的水分吸收是由种子萌发引起的ꎻ在吸胀的72h内ꎬ箭叶淫羊藿种子的萌发率为零ꎬ没能观察到水分吸收的第Ⅲ阶段ꎮ在25ħ下ꎬ玉米和水稻种子的水分吸收具有阶段Ⅰ的快速吸水ꎬ阶段Ⅱ的短暂缓慢吸水以及阶段Ⅲ的迅速吸水ꎮ玉米和水稻种子的萌发率随着吸水逐渐增加ꎬ分别在吸胀后的34h和42h达到50%萌发率ꎮ3.2脱水对种子萌发的影响成熟脱水是正常性种子(orthodoxseed)发育的末端事件ꎬ在植物种子(质)资源保存中起关键作用(宋松泉等ꎬ2022)ꎮ箭叶淫羊藿种子的含水量从9.7%下降至4.6%ꎬ种子经4ħ层积60d后的萌发率仍然为56.3%ꎬ表明种子具有耐脱水性ꎮ值得注意的是ꎬ种子萌发率低于60%ꎬ不是由于种子被脱水伤害ꎬ而是在4ħ层积60d未能完全解除种子的休眠特性ꎮ本研究结果为淫羊藿属植物种子的干燥及其种质资源的长期保存提供了耐脱水的依据ꎮ3.3温度对种子萌发的影响温度既是影响种子萌发最重要的环境因素之一ꎬ也决定种子萌发的能力和速率ꎬ并打破种子的初生和/或次生休眠(Brándel2004ꎻBaskin&Baskinꎬ2014)ꎮ箭叶淫羊藿种子分别在4㊁10㊁15㊁20㊁25ħ和黑暗条件下吸胀30dꎬ其萌发率为零ꎬ表明种子具有休眠特性ꎮ然而ꎬ在4ħ和10ħ的条件下ꎬ种子分别在吸胀115d和145d时开始萌发ꎻ到吸胀240d时ꎬ种子的萌发率分别为55%和44%ꎻ在15㊁20㊁25ħ的条件下ꎬ到吸胀240d时ꎬ种子的萌发率分别为2%㊁0和0ꎮ这表明箭叶淫羊藿种子具有深休眠特性ꎬ温度显著影响种子的萌发ꎬ以及4~10ħ可能是箭叶淫羊藿种子萌发的适宜温度ꎮ苏贺等(2016)的研究结果表明ꎬ巫山淫羊藿种子只能在低温(4ħ)中萌发ꎬ不能在变温(10ħ/20ħ)中萌发ꎮ在10ħ层积60d后转移到4ħ中层积30d的种子ꎬ在4㊁10㊁15㊁20㊁25ħ下的萌发率分别为88%㊁85%㊁3%㊁2%和0ꎬ表明种子的适宜萌发温度为4~10ħꎮ3.4层积处理对胚生长和种子萌发的影响Graeber等(2012)提出ꎬ休眠是一种数量性状ꎬ其深度随着发育进程而变化ꎮ初生休眠是种子在成熟过程中形成的ꎬ在生理成熟时达到最高水平ꎻ在随后的干藏(后熟)或层积过程中ꎬ种子的休眠深度逐渐降低(Finch ̄Savage&Leubner ̄Metzgerꎬ2006ꎻHoldsworthetal.ꎬ2008)ꎮ箭叶淫羊藿种子脱落时ꎬ种子中胚的体积较小(E/S比值为0.07)ꎻ随着种子在4㊁10ħ中层积时间的增加ꎬ胚逐渐从球形胚发育到心形胚㊁鱼雷形胚和成熟胚(E/S比值大6491广㊀西㊀植㊀物42卷于0.8)ꎻ这表明箭叶淫羊藿种子具有形态休眠ꎬ在4㊁10ħ层积过程中ꎬ胚能够逐渐生长发育ꎮ田向荣等(2015)观察到类似的结果ꎬ研究发现箭叶淫羊藿种子的胚未分化ꎬ停留在球形胚阶段ꎬ在后熟过程中ꎬ胚的结构逐步发育ꎬ形成子叶胚ꎮ朝鲜淫羊藿(王晶等ꎬ2013)和巫山淫羊藿(樊家乙等ꎬ2010)种子也具有类似的特性ꎬ需要经过一定时间的层积才能促进胚的生长ꎮ这些结果与朝鲜淫羊藿在田间条件下胚的生长㊁萌发和出苗的物候一致ꎮ朝鲜淫羊藿种子的胚未发育ꎬ在田间条件下在6 9月初ꎬ胚很少生长ꎬ但从9月下旬至11月胚迅速生长ꎬ到12月初胚已完成生长ꎬ胚的长度比初始长度增加了16倍ꎻ种子在次年3月萌发ꎬ萌发率达84.4%(Rhie&Leeꎬ2020)ꎮ当种子在4ħ中层积30d后转移到10ħ中层积时ꎬ胚的生长速率比一直在4ħ中层积生长更快ꎻ在10ħ中层积的种子ꎬ其E/S比值显著大于在4ħ中层积的种子ꎮ这表明10ħ层积有利于胚的生长发育ꎮ此外ꎬ当种子在10ħ中层积30d或60d后转移到4ħ中层积时ꎬ其E/S比值均显著大于一直在10ħ中层积种子的E/S比值ꎬ表明胚和/或胚乳中可能存在某些生长抑制物质ꎬ在4ħ中层积比在10ħ中层积更有利于这些生长抑制物质的释放和胚的生长ꎮ本研究结果表明ꎬ变温层积有利于箭叶淫羊藿种胚的生长发育ꎮRhie和Lee(2020)发现ꎬ当朝鲜淫羊藿种子在20ħ或15ħ的恒温下培养时ꎬ胚几乎不生长ꎮ在10ħ萌发条件下ꎬ箭叶淫羊藿种子的萌发速率和萌发率随着在4ħ中层积时间的延长而显著增加ꎮ同样ꎬ在4ħ萌发条件下ꎬ箭叶淫羊藿种子的萌发速率和萌发率也随着在10ħ中层积时间的延长而显著增加ꎻ而在10ħ中层积30d或60d后在4ħ中的种子萌发速率和萌发率却远远高于在4ħ中层积30d或60d后在10ħ中萌发的种子ꎮ这些萌发结果与层积温度对E/S比值的影响类似ꎮ付长珍等(2012)报道ꎬ拟巫山淫羊藿种子在15ħ中处理1~7个月后转移到4ħ中ꎬ胚的生长和种子萌发率显著增加ꎬ但随着15ħ处理时间的延长ꎬ种子的萌发率增加ꎬ而种子的萌发速率下降ꎮ4ħ层积30d+10ħ层积90d或4ħ层积60d+10ħ层积60d的变温层积都能显著增加种子在4ħ中的萌发速率和萌发率ꎬ这与变温层积对E/S比值的影响类似ꎮ3.5赤霉素和氟啶酮对种子萌发的促进作用ABA是休眠诱导与维持的正调控因子ꎬ是种子萌发的负调控因子ꎻ而GA3能释放休眠ꎬ促进萌发和拮抗ABA的效应ꎬ它们的水平和信号转导在种子休眠释放和萌发中起重要作用(Hauvermaleetal.ꎬ2012ꎻ宋松泉等ꎬ2020aꎬbꎻIwasakietal.ꎬ2022)ꎮ对于在10ħ和黑暗中层积120d的(胚成熟)箭叶淫羊藿种子ꎬ1㊁10μmol L ̄1GA3对种子的萌发没有作用ꎬ100~10000μmolL ̄1GA3明显地促进种子萌发ꎬ但种子的萌发率仍然低于70%ꎮ这表明GA3能部分促进种子的萌发ꎮ5~500μmol L ̄1氟啶酮显著促进种子的萌发ꎬ其萌发率均大于90%ꎻ对于种子的萌发ꎬ10μmol L ̄1或100μmol L ̄1的氟啶酮对GA3有加成作用ꎮ苏贺等(2016)利用变温(10ħ/20ħ)层积90d的巫山淫羊藿种子作为材料ꎬ研究了氟啶酮和赤霉素对巫山淫羊藿种子休眠解除的影响ꎬ发现氟啶酮的作用较强ꎬ赤霉素的作用较弱ꎬ并且氟啶酮可以促进在变温中不能萌发的种子萌发ꎮRhie和Lee(2020)观察到ꎬGA3处理能增加朝鲜淫羊藿种子胚的生长ꎬ但对种子萌发的促进作用较小ꎬ萌发率低于10%ꎮ这些结果都表明ꎬABA在抑制箭叶淫羊藿种子萌发中可能具有重要作用ꎮ4㊀结论箭叶淫羊藿种子的种皮透水ꎬ不具有物理休眠ꎻ种子具有耐脱水性ꎬ能在低含水量和低温的条件下贮藏ꎻ在4~25ħ和黑暗条件下ꎬ种子的萌发率为零ꎻE/S比值非常小ꎬ4㊁10ħ和变温层积能显著促进胚的发育以及增加种子的萌发速率和萌发率ꎻGA3和氟啶酮能显著增加种子的萌发速率和萌发率ꎮ根据Baskin和Baskin(2004ꎬ2014)㊁Finch ̄Savage和Leubner ̄Metzger(2006)的观点ꎬ本研究认为ꎬ箭叶淫羊藿种子的休眠类型为MPDꎬ释放休眠和促进萌发的最适方法是将种子先在10ħ中层积30dꎬ再置于4ħ的环境中让其萌发ꎮ参考文献:BASKINJMꎬBASKINCCꎬ2004.Aclassificationsystemforseeddormancy[J].SeedSciResꎬ14(1):1-16.BASKINCCꎬBASKINJMꎬ2014.Seeds:ecologyꎬbiogeographyꎬandevolutionofdormancyandgermination749111期吉浴芳等:箭叶淫羊藿种子的休眠类型与萌发研究。
一种打破巫山淫羊藿种子休眠的方法[发明专利]
![一种打破巫山淫羊藿种子休眠的方法[发明专利]](https://img.taocdn.com/s3/m/0635061c0166f5335a8102d276a20029bc646371.png)
(10)申请公布号 CN 102057776 A(43)申请公布日 2011.05.18C N 102057776 A*CN102057776A*(21)申请号 201010515877.6(22)申请日 2010.10.22A01C 1/00(2006.01)A01G 1/00(2006.01)(71)申请人南京农业大学地址210095 江苏省南京市卫岗1号南京农业大学科技处(72)发明人郭巧生 樊家乙 刘作易周宁(54)发明名称一种打破巫山淫羊藿种子休眠的方法(57)摘要本发明利用低温湿沙层积的方法,打破巫山淫羊藿种子休眠状态,促进种胚发育,缩短发芽时间,提高发芽率。
对于保护野生巫山淫羊藿资源,提高繁殖系数,促进巫山淫羊藿资源可持续利用及产业化具有重要的理论和现实意义。
(51)Int.Cl.(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请权利要求书 1 页 说明书 4 页 附图 2 页1.一种打破巫山淫羊藿种子休眠的方法,包括:A.种子采集:将采集到的巫山淫羊藿(Epimedium wushanense T.S.Ying)种子,去除杂质及瘪粒后种子置于5℃低温储藏6~7天;B.清水浸种和种子消毒:a.取储藏的种子,在室温下清水浸种1h;b.用体积比70%乙醇溶液浸泡2min表面消毒,随后用清水洗净种子;C.化学药剂浸种:将清洗干净的种子,在室温条件下,放入300g·mL-1赤霉素溶液中浸泡24h,随后用清水冲洗4~5次;D.沙藏低温层积:将河沙于121℃高温杀菌1h后自然冷却至室温,将经步骤C处理后的巫山淫羊藿种子与河沙按1∶3的比例混合均匀,保持含水量为60%,经5℃低温层积处理90天打破种子休眠;E.播种:将层积处理结束后的种子置于25℃恒温光照箱中沙床培养,种子经4~15天萌发,10天内萌发率达78%以上。
2.根据权利要求1所述的一种打破巫山淫羊藿种子休眠的方法获得的巫山淫羊藿种子,其特征是:获得的巫山淫羊藿种子适温培养10天内萌发率达78%以上。
不同处理对淫羊藿种子打破休眠的影响

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调查 ii 1
2018.10.16 2018.10.16 2018.10.16 2018.10.16 2018.10.16 2018.10.16 2018.9.30 2018.10.16 2018.10.16
种子休眠的原理是什么变化

种子休眠的原理是什么变化种子休眠是种子在一定条件下暂停其生理活动,保持不活跃状态的一种自然现象。
这种状态让种子能够在适宜的环境条件下才能发芽和生长,以提高种子的存活率和繁殖成功率。
种子休眠的原理涉及到一系列生理、生化和遗传调控机制,下面将详细介绍。
首先,种子休眠的原理与外界环境因素有关。
种子休眠的触发和解除通常与外界环境因素如温度、湿度、光照和化学物质等有关。
某些种子需要经历一定的低温处理(寒冷休眠)或一定的高温处理(热休眠)才能解除休眠状态。
还有一些种子需要通过光照(光照要求)或浸泡在特定的化学物质中(化学诱导)才能解除休眠状态。
这些外界环境因素的变化会引起种子内部生理和生化的变化,从而促进或抑制种子发芽。
其次,种子休眠的原理与内部因素的调控有关。
种子内部存在一系列激素和蛋白质,它们通过相互作用和调节来控制种子休眠和解除休眠状态。
激素赤霉素(gibberellin)和激素细胞分裂素(cytokinin)是促进种子发芽和生长的重要激素。
而激素脱落酸(abscisic acid)和乙烯(ethylene)是抑制种子发芽和生长的重要激素。
种子休眠的触发和解除与这些激素的相对含量和平衡有关。
一些休眠种子中存在抑制激素,使得赤霉素无法充分发挥其促进发芽的作用。
而当环境条件适宜时,种子内部的激素含量和平衡发生变化,从而导致休眠的解除。
另外,种子休眠的原理与种子结构和代谢状态的调控有关。
种子表皮和内胚乳层对水分的吸收和透过性能起到关键作用。
休眠种子在表皮和内胚乳层的阻隔下减缓了水分的吸收,降低了种子的活性和代谢速率。
种子内部还有以淀粉和油脂形式储存的能量和营养物质,能够在种子发芽时提供所需的能量和营养。
休眠状态下,这些能量和营养物质在种子内部储存,保持不被使用,以延缓种子的老化和损耗。
还有一些种子休眠的原理涉及到遗传因素和进化选择的作用。
种子休眠是一种适应环境变化的机制,确保种子在合适的时间和环境条件下才能发芽和生长,提高了种子的存活率和繁殖成功率。
羊草种子休眠和萌发的激素调控研究_黄晓辉

√
√
PA+FL
√
√
“√ ”表 示 ห้องสมุดไป่ตู้ 选 激 素 。 “√”means the selected hormone.
萌发速率用 T50表示,T50指 萌 发 率 达 到 最 终 萌 发
率 的 50% 所 需 的 天 数 。
用 Excel程序进行数据的录入,并制图。采用 SPSS 17.0软件进行数据分析,激素种类与浓度及其互作对 萌
影响(P>0.05),200,400μmol/L 的 ABA 显著抑制羊草种子的萌发(P<0.05),萌 发 率 分 别 为 4% 和 2%(对 照 71%)。加入 ABA 的合成抑制剂 FL 处理后,羊草种子休眠基本破除,萌发率最高可达 94%,且各浓度间无显著
差异。GA4+7各浓度处理均显著提高羊草 种 子 萌 发 率,且 处 理 间 无 显 著 差 异,而 不 同 浓 度 的 GA3 处 理 与 对 照 无
显著差异。GA 的合成抑制剂 PA 对羊草 种 子 萌 发 的 抑 制 作 用 随 处 理 浓 度 的 升 高 而 增 强(图 1A)。 不 同 浓 度 的
FL、GA3、GA4+7处理对羊草种子萌发速率无显著影响。ABA 处理下,T50显著 高 于 对 照,羊 草 种 子 萌 发 速 率 显 著
降 低 (图 1B)。
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ACTA PRATACULTURAE SINICA(2013)
Vol.22,No.5
1 材 料 与 方 法
1.1 种 子 来 源
供试种子于2009年取自吉林羊草繁殖中心,种子在室温晾干后装入透气布袋 中,置 于 农 业 部 牧 草 与 草 坪 草
种子质量监督检验测试中心种子库(兰州)保存备用。测得其千粒重为2.51g,种子生活力 为 [17] 96%。
赤霉素等4种化学物质对几种植物种子萌发的影响

赤霉素等4种化学物质对几种植物种子萌发的影响刘洪见,黄建,张旭乐,钱仁卷,曾爱平,杨燕萍,林霞【摘要】摘要:研究不同浓度的氯化钠、赤霉素、水杨酸、磷酸二氢钾溶液对中华野海棠、秀丽野海棠、方枝野海棠、瞿麦、滨海前胡、单叶蔓荆、地菍种子发芽率的影响,结果发现适当浓度的赤霉素和水杨酸溶液处理能促进这几种种子萌发,提高其发芽率,而氯化钠和磷酸二氢钾溶液处理有抑制这几种植物种子萌发的作用。
【期刊名称】浙江农业科学【年(卷),期】2010(000)006【总页数】3【关键词】关键词:种子;萌发率;赤霉素;水杨酸测定不同盐浓度胁迫下的种子发芽情况是表征抗盐能力的重要依据之一。
与生长相比,植物种子萌发时对盐胁迫更敏感[1]。
即使是盐生植物,其种子萌发也要受到盐胁迫抑制[2-4]。
盐胁迫下植物种子的萌发情况同植物本身的耐盐性有一定关系。
种子能够在盐胁迫下萌发成苗,是植株在盐碱条件下生长发育的前提,因此研究盐胁迫下种子的萌发生理具有重要意义。
水杨酸(salicylic acid,SA)是苯丙氨酸代谢途径的产物,属于肉桂酸的衍生物.能够影响根部离子的吸收和运输,具有诱导气孔关闭,降低叶片蒸腾强度,提高膜脂不饱和度,逆转脱落酸的抑制作用,调控细胞生长和死亡,参与细胞线粒体抗氰呼吸和非磷酸化途径等多种生理调节作用,有关水杨酸浸种促进种子萌发已有报道[5],采用SA对豌豆种子进行浸种处理,结果表明,10~40 mg·L-1浓度浸种对种子萌发有明显的促进作用,并能显著提高种子的发芽势和发芽率,从而提高发芽的整齐度和种子的利用率,并有利于植株的生长,幼苗干重和鲜重增加[6]。
萌发过程开始于种子吸水,结束于胚轴伸长及胚根突出种皮。
种子吸胀后胚根突出种皮需要新的GA合成,GA含量的高低决定着种子能否萌发。
GA在促进种子萌发中至少起到2种信号作用:软化种胚周围的组织,克服种皮机械限制;促进种胚的生长。
有研究指出。
KH2PO4和青霉素复配液在一定浓度范围确实可以提高小麦老化种子的发芽率、发芽指数、活力指数和幼苗长度,这可能是KH2PO4和青霉索参与种子体内多种酶(如过氧化物酶等)的活性调控及一些生长因子的调节有关[7]。
温度和赤霉素处理对两头毛种子萌发和幼苗株高的影响
温度和赤霉素处理对两头毛种子萌发和幼苗株高的影响作者:张书东王宪菊凌立贞来源:《安徽农业科学》2020年第16期摘要采用不同浓度赤霉素(100、200、500 mg/L)经不同处理时间(1、5 h)后培养在不同温度(20、25 ℃)下,探讨对两头毛种子萌发和幼苗生长的影响。
结果表明,培养温度在20 ℃,赤霉素浓度在100~500 mg/L处理1 h时两头毛的种子萌发均与对照组呈显著差异。
而培养温度在25 ℃,赤霉素处理(不同浓度和处理时间)均显著提高两头毛幼苗的株高。
这些研究结果可为将来人工栽培两头毛优化播种育苗技术提供依据。
关键词两头毛;种子萌发;温度;赤霉素;幼苗生长;幼苗株高;影响中图分类号 R 282.2 文献标识码 A 文章编号 0517-6611(2020)16-0171-03doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2020.16.048Effects of Temperature and Gibberellin on Seed Germination and Seedling Height of Incarvillea argutaZHANG Shu-dong, WANG Xian-ju, LING Li-zhen(School of Biological Science and Technology, Liupanshui Normal University,Liupanshui, Guizhou 553004)Abstract Different concentrations of gibberellin (100, 200, 500 mg/L) were used for different treatment times (1, 5 h) and cultured at different temperatures (20, 25 ℃) to explore the effects on seed germination and seedling growth of Incarvillea arguta.The results showed that when the culture temperature was 20 ℃ and the gibberellin concentration was 100-500 mg/L for1 h, the seed germination of Incarvillea arguta was significantly different from that of the control group.While the cultivation temperature was 25 ℃, gibberellin treatment (different concentrations and treatment time) significantly increased the plant height of Incarvillea arguta seedlings.These results will provide the basis on the artificial seedling-raising of Incarvillea arguta.Key words Incarvillea arguta;Seed germination;Temperature;Gibberellin;Seedlinggrowth;Seedling height;Effect基金項目六盘水师范学院大学生科研项目(LPSSYDXS19100);特色农业种质资源开发与利用重点实验室(黔教合KY字〔2017〕012)。
不同试剂及温度对解除滇重楼种子休眠的影响
河南农业科学,2020,49(3):47-53Journal of Henan Agricultural Sciencesdoi :10.15933/ki.1004-3268.2020.03.007收稿日期:2019-08-31基金项目:贵州省生物学一流学科建设项目(GNYL[2017]009);贵州省药用植物繁育与种植人才基地项目(黔人领发[2013]15号);贵州省特色粮油作物栽培与生理生态研究科技创新人才团队项目(黔科合平台人才[2019]5613号)作者简介:汪佳维(1994-),女,贵州遵义人,在读硕士研究生,研究方向:药用植物栽培㊂E -mail:854473604@ 通信作者:王华磊(1979-),男,山东兖州人,教授,博士,主要从事药用植物栽培研究㊂E -mail:3027865861@不同试剂及温度对解除滇重楼种子休眠的影响汪佳维,王华磊,赵㊀致,刘红昌,罗春丽,陈松树(贵州大学农学院/贵州省药用植物繁育与种植重点实验室,贵州贵阳550025)摘要:为筛选解除滇重楼种子休眠的最佳方法,分别研究了不同质量浓度赤霉素(GA )㊁氟啶酮(FL )浸种和不同层积温度对滇重楼种子发芽和胚率变化的影响㊂结果表明,GA 单独处理㊁GA +FL 组合㊁恒温20ħ沙藏都可有效打破滇重楼种子的休眠,其中GA 单独处理下发芽情况最好的是300mg /L GA 处理,其发芽率和发芽势分别为79.00%㊁54.33%;GA +FL 组合处理下300mg /L GA +10mg /L FL 处理发芽率最高(81.33%),300mg /L GA +0mg /L FL 处理发芽势最高(54.33%),200mg /L GA +10mg /L FL 处理烂种率最高(4.33%);不同沙藏温度处理中恒温20ħ沙藏处理下滇重楼种子胚率增长最快㊂综合滇重楼种子的发芽情况来看,GA +FL 组合及恒温20ħ沙藏这2种处理解除滇重楼种子休眠的效果优于其他处理,即300mg /L GA +10mg /L FL 为最佳浸种处理,恒温20ħ为最佳沙藏温度㊂关键词:滇重楼;种子休眠;氟啶酮;赤霉素;层积处理;发芽率;发芽势;胚率中图分类号:S567.23㊀㊀文献标志码:A㊀㊀文章编号:1004-3268(2020)03-0047-07Effects of Different Reagents and Temperature on Removing SeedDormancy of Paris polyphylla var.yunnanensisWANG Jiawei,WANG Hualei,ZHAO Zhi,LIU Hongchang,LUO Chunli,CHEN Songshu(College of Agriculture,Guizhou University /Guizhou Key Laboratory of Propagation andCultivation on Medicinal Plants,Guiyang 550025,China)Abstract :The effects of different concentrations of gibberellin (GA),fluridone (FL)to soak the seedsand different stratification temperature on seed germination and embryo rate of Paris polyphylla var.yun-nanensis were studied respectivly to screen the best way to revive the seed of Paris polyphylla var.yun-nanensis .The results showed that GA treatment alone,GA +FL combination and sand storage at constant temperature of 20ħcould effectively break the dormancy of the seeds.Among them,the best germinationwas at 300mg /L with GA treatment alone,and the germination rate and germination potential were 79.00%and 54.33%respectively.The highest germination rate was 81.33%with GA +FL combination(300mg /L GA +10mg /L FL),and the highest germination potential was 54.33%with 300mg /L GA +0mg /L FL,and the rotten seed rate was 4.33%with 200mg /L GA +10mg /L FL.The seed embryo rateof Paris polyphylla var.yunnanensis increased fastest under constant temperature of 20ħin different tem-peratures with sand storage.By all accounts of the seeds germination of Paris polyphylla var.yunnanensis ,the effects of GA +FL combination and constant temperature of 20ħsand storage were better than other treatments.That is to say,300mg /L GA +10mg /L FL is the optimal seed soaking combination,and con-stant temperature of 20ħis optimal for sand storage.Key words :Paris polyphylla var.yunnanensis ;Seeds dormancy;Fluridone;Gibberellin;Stratification;河南农业科学第49卷Germination rate;Germination potential;Embryo rate㊀㊀滇重楼[Paris polyphylla var.yunnanensis (Franch.)Hand.-Mazz.]为延龄草科(Trilliaceae)重楼属(Paris)多年生草本植物,又名重楼一枝箭㊁独角莲㊁七叶一枝花和两把伞等,主要分布于云南㊁四川和贵州等地,生长于海拔1400~3100m的常绿阔叶林㊁云南松林㊁竹林㊁灌丛或草坡中[1-2],在抗癌㊁清热解毒㊁止血㊁抑菌㊁抗炎㊁防治心血管疾病等方面具有重要的药用价值[3-4]㊂滇重楼种子存在较长的休眠期,需要经过两冬一夏才能出苗,且自然生长条件下出苗率低[5],为滇重楼的人工种植增加了难度㊂滇重楼种子的休眠类型为综合性休眠,果实成熟后胚发育还不完全,且种皮和胚乳中存在萌发抑制物[6]㊂张家玲等[7]研究了不同激素处理对滇重楼种子萌发的影响,得出赤霉素(GA)㊁2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)㊁萘乙酸(NAA)均可促进滇重楼种子的萌发㊂赵程等[8]研究了GA和氟啶酮(FL)协同作用对肉苁蓉种子发芽的影响,发现2种植物生长调节剂组合可有效提高肉苁蓉种子的发芽率㊂苏贺等[9]用GA和FL处理巫山淫羊藿种子,可有效打破其休眠㊂陈疏影等[10]研究表明,滇重楼更多还原种子层积过程中GA含量显著升高,ABA含量显著下降㊂在此基础上,采用不同浓度GA和FL及不同层积温度分别处理滇重楼种子,通过分析处理后种子的萌发情况,筛选解除滇重楼种子休眠的适宜方法,为滇重楼种苗的快速繁殖提供理论依据㊂1㊀材料和方法1.1㊀试验材料供试滇重楼种子由云南红河学院薛春丽老师提供,采收后洗去外果皮,于阴凉通风处保存㊂供试主要试剂为GA和FL㊂1.2㊀试验方法1.2.1㊀滇重楼种子的千粒质量及吸水率变化㊀采用百粒法测定,每次随机取100粒种子,脱去外果皮,称其质量,重复10次,取平均值[11]㊂种子千粒质量(g)=10ˑ平均100粒种子质量(g)㊂将新鲜滇重楼种子洗去外果皮,晾干水分,取30粒称质量,作为吸水前的原始质量,在室温下置于烧杯中加蒸馏水进行吸胀,分别于2㊁4㊁8㊁12㊁24㊁36㊁48㊁60㊁72㊁84㊁96h取出种子,用滤纸吸干种子表面水分称质量,重复3次㊂根据吸水速率绘制吸水率曲线[12]㊂种子吸水率(Y t)=(X t-X0)/X0ˑ100%,X0为30粒滇重楼种子的原始质量(g),X t为吸胀t小时30粒种子的质量(g)[13]㊂1.2.2㊀不同植物生长调节剂对滇重楼种子发芽的影响㊀分别设置GA质量浓度为0㊁100㊁200㊁300㊁400㊁500㊁600mg/L,对滇重楼种子进行浸种24h处理,根据发芽率㊁发芽势和烂种率统计结果,选择发芽效果最好的3个GA质量浓度水平与4个FL质量浓度(0㊁5㊁10㊁20mg/L)完全组合,进行二因素完全随机试验设计,同时以蒸馏水预处理作对照(CK)㊂采用双层滤纸培养法,将预处理后的种子(种子无需消毒)置于垫有棉花及双层滤纸的培养皿上,每皿100粒,每个处理重复3次,于20ħ培养箱中培养㊂每隔3d调查1次,胚根突破种皮视为发芽,调查过程中把烂种取出并计数,若发现滤纸发霉及时更换㊂发芽率=累计发芽数/种子总数ˑ100%,发芽势=第30天的发芽数/种子总数ˑ100%,烂种率=霉烂种子数/种子总数ˑ100%㊂1.2.3㊀不同层积温度对滇重楼种子胚率的影响㊀设置恒温沙藏温度为0㊁5㊁10㊁20ħ,变温沙藏温度为20ħ(45d) 5ħ(30d) 20ħ(75d),以常温25ħ作为对照㊂将洗去种皮的新鲜滇重楼种子用蒸馏水浸种24h,移入装有湿沙的玻璃瓶中,每瓶100粒滇重楼种子,每个处理重复3次㊂每隔30d 取样1次,每次各处理取10粒种子,共取4次样㊂用解剖刀将种子沿中间对半切开,在体式显微镜下观察并测量种胚和胚乳的长度,计算平均胚率,然后统计和观察不同层积温度下滇重楼种子种胚的生长变化[10],胚率=胚长/胚乳长㊂1.3㊀数据分析采用Excel2010和DPS2.0整理数据并进行统计及方差分析,用Duncan s法进行种子发芽率㊁发芽势及烂种率的多重比较㊂2㊀结果与分析2.1㊀滇重楼种子的千粒质量及吸水率变化经测定,滇重楼种子千粒质量为(51.34ʃ0.03)g㊂由图1可以看出,吸胀0~24h,滇重楼种子吸水率快速上升;吸胀24~60h,种子吸水率上升趋势逐渐变缓;吸胀60h后种子吸水率趋于稳定㊂整体来看,滇重楼种子的吸水性不强,吸水率最高仅为5.7%㊂84㊀第3期汪佳维等:不同试剂及温度对解除滇重楼种子休眠的影响图1㊀滇重楼种子的吸水率曲线Fig.1㊀Water absorption rate curve in seeds ofParis polyphylla var.yunnanensis2.2㊀不同质量浓度GA 对滇重楼种子发芽的影响2.2.1㊀发芽率㊀滇重楼种子从第20天开始陆续发芽㊂由表1可以看出,不同质量浓度GA 处理滇重楼种子均能够发芽,且发芽率均高于对照,说明GA 对滇重楼种子发芽具有促进作用㊂GA 质量浓度为100~300mg /L 时滇重楼种子发芽率均较高,其中GA 质量浓度为300mg /L 时发芽率达到最高(79.00%),但3个质量浓度处理间无显著差异㊂GA 质量浓度为400~600mg /L 时,滇重楼种子发芽率随GA 质量浓度升高呈下降趋势㊂表1㊀赤霉素对滇重楼种子发芽的影响Tab.1㊀Effects of gibberellin on seeds germinationof Paris polyphylla var.yunnanensis%GA 质量浓度/(mg /L)Mass concentration of GA发芽率Germinationrate发芽势Germination potential烂种率Seed rottenrate0(CK)19.33ʃ0.58c8.33ʃ1.53d1.00ʃ1.00c 10076.33ʃ5.03a 25.00ʃ1.73c 0.67ʃ0.58c 20075.66ʃ6.66a 34.67ʃ7.23b1.67ʃ0.58c 30079.00ʃ7.00a 54.33ʃ9.87a 0.67ʃ0.58c 40055.33ʃ7.78b 21.00ʃ2.00c6.67ʃ1.53b50052.67ʃ3.06b 17.33ʃ2.52cd 11.00ʃ2.65a 60048.00ʃ3.46b 17.33ʃ2.08cd 13.00ʃ4.00a㊀注:同列不同字母表示差异显著(P <0.05)㊂㊀Note:Different letters in the same column indicate significant difference(P <0.05).2.2.2㊀发芽势㊀由表1所示,不同质量浓度GA 处理的滇重楼种子发芽势均高于对照,且不同处理间差异显著,说明GA 能显著提高滇重楼种子的发芽势㊂GA 质量浓度为300mg /L 时发芽势最高(54.33%),其次是200㊁100mg /L 处理,GA 质量浓度为400~600mg /L 时发芽势降低㊂2.2.3㊀烂种率㊀由表1所示,不同质量浓度GA 处理下的滇重楼种子烂种率差异较大,100~300mg /L GA 处理时烂种率较低,且均与对照无显著差异㊂GA 质量浓度为400~600mg /L 时,烂种率随GA 质量浓度升高而逐渐加大,600mg /L GA 处理时烂种率达到最高(13.00%),且与对照差异显著㊂说明滇重楼种子的烂种率随GA 浓度升高而增加㊂综上可得出,GA 质量浓度为100㊁200㊁300mg /L时有助于滇重楼种子的萌发,可用于后续与FL 的组合试验㊂2.3㊀不同质量浓度GA 和FL 组合对滇重楼种子发芽的影响2.3.1㊀发芽率㊀由表2可见,单独使用GA㊁FL 以及GA +FL 组合对滇重楼种子发芽率的影响均达到极显著水平(P <0.001㊁P <0.004以及P =0.001)㊂由F 值可以看出,GA 对滇重楼种子发芽率的影响最大(F =70.598),其次是GA +FL(F =18.680),FL 组合对滇重楼种子发芽率的影响最小(F =13.396)㊂表2㊀赤霉素、氟啶酮组合对滇重楼种子发芽率的影响方差分析Tab.2㊀ANOVA for effects of gibberellin and fluridoneon germination rate of Paris polyphylla var.yunnanensis seeds误差来源Error sourcesdf 平方和Sum of squares均方Mean squareF PGA37158.9162386.30570.598<0.001FL32838.916946.30613.396<0.004GA +FL 99562.3001062.47818.680<0.001由图2可见,单独使用FL 处理滇重楼种子发芽率差异显著且总体上表现为低于单独使用GA 处理和GA +FL 组合,单独使用GA 处理的发芽率较高且处理间差异不显著,GA +FL 组合处理间差异显著㊂所有处理中以300mg /L GA +10mg /L FL 处理(GA300+FL10)发芽率最高(81.33%),其次是GA200+FL20处理(80.33%),对照GA0+FL0发芽率最低(19.33%)㊂2.3.2㊀发芽势㊀由表3可见,单独使用GA㊁FL 处理以及GA +FL 组合对滇重楼种子发芽势的影响均极显著(P <0.001㊁P <0.004以及P =0.001),由F 值可以看出,GA 对滇重楼种子发芽势的影响最大(F =48.187),其次是FL(F =32.143),GA +FL 组合影响最小(F =17.291)㊂由图3可见,单独使用FL 处理间滇重楼种子发芽势差异显著且整体低于对照,单独使用GA 及GA +FL 组合的发芽势处理间差异显著㊂所有处理中,以GA300+FL0处理发芽势最高(54.33%),其次是GA300+FL20处理(38.33%),GA0+FL5处理发芽势最低,仅为2.67%㊂94河南农业科学第49卷GA㊁FL 后数字表示质量浓度(mg /L);不同字母表示单独使用GA㊁FL 以及GA +FL 组合内分别差异显著(P <0.05);图3㊁图4同The figures after GA and FL indicate the mass concentration(mg /L);Different letters indicate significant difference(P <0.05)among GAtreatments,FL treatments,GA +GL treatments,respectively;The same as Fig.3and Fig.4图2㊀赤霉素㊁氟啶酮组合对滇重楼种子发芽率的影响Fig.2㊀Effect of gibberellin and fluridone combination on seed germination rate of Paris polyphylla var.yunnanensis表3㊀赤霉素㊁氟啶酮对滇重楼种子发芽势的影响方差分析Tab.3㊀ANOVA for effects of gibberellin and fluridone on germination potential of Paris polyphylla var.yunnanensis seeds误差来源Error sourcedf 平方和Sum of squares均方Mean squareF P GA 33320.9171106.97248.187<0.001FL356.25018.75032.143<0.004GA +FL 92727.866303.09617.291<0.001图3㊀赤霉素㊁氟啶酮组合对滇重楼种子发芽势的影响Fig.3㊀Effect of gibberellin and fluridone combination on seed germination potential of Paris polyphylla var.yunnanensis2.3.3㊀烂种率㊀由表4可见,FL 处理对滇重楼种子烂种率影响极显著(P =0.006),GA +FL 组合处理影响显著(P =0.035),GA 处理对滇重楼种子烂种率影响不显著(P =0.216)㊂由F 值可以看出,FL 对滇重楼种子烂种率影响最大(F =12.250),其次是GA +FL (F =4.142),GA 影响最小(F =2.000)㊂表4㊀赤霉素㊁氟啶酮对滇重楼种子烂种率的影响方差分析Tab.4㊀ANOVA for effects of gibberellin and fluridone on seedrotten rate of Paris polyphylla var.yunnanensis seeds误差来源Error sourcedf 平方和Sum of squares 均方Mean squareF P GA 3 2.0000.667 2.0000.216FL312.250 4.08312.2500.006GA +FL928.1333.1264.1420.0355㊀第3期汪佳维等:不同试剂及温度对解除滇重楼种子休眠的影响由图4可见,单独使用FL 处理间滇重楼种子的烂种率差异显著,且随FL 质量浓度增大而逐渐增大㊂单独使用GA 的烂种率整体较低且与GA0+FL0(CK )差异不显著,GA +FL 处理高于GA0+FL0(CK )㊂所有处理中,GA200+FL10处理烂种率最高(4.33%),其次是GA100+FL20处理(4.00%),GA100+FL0㊁GA300+FL0处理最低(均为0.67%)㊂图4㊀赤霉素、氟啶酮组合对滇重楼种子烂种率的影响Fig.4㊀Effect of gibberellin and fluridone combination on seed rotten rate of of Paris polyphylla var.yunnanensis㊀㊀通过对GA㊁FL 处理滇重楼种子发芽率㊁发芽势及烂种率的统计分析可得出,单独使用GA㊁FL 和GA +FL 组合都能有效解除滇重楼种子的休眠㊂GA㊁FL 和GA +FL 组合处理滇重楼种子发芽率影响均极显著;对于发芽势,影响最显著的是GA,其次是FL;对于烂种率,FL 影响极显著,且随FL 质量浓度增加而增大,GA 处理烂种率较低㊂2.4㊀不同层积温度对滇重楼种子胚率的影响由图5可见,滇重楼种子胚率总体上随层积时间推移逐渐增大,不同层积温度处理种子胚率的增长速度不同㊂0㊁5㊁10ħ低温条件下种子胚率增长缓慢,且低于对照(25ħ);20ħ条件下滇重楼种子胚率增长最快,远高于对照(25ħ),到层积60d 左右时,胚突破种皮开始萌发;变温[20ħ(45d)5ħ(30d) 20ħ(75d)]下,在45d 后放入5ħ环境开始胚率增长速度与恒温20ħ相比明显下降图5㊀滇重楼种子不同温度层积过程中胚率的变化Fig.5㊀Embryo rate change during different temperaturestratification of Paris polyphylla var.yunnanensis且与对照(25ħ)增长速度相差不大,即使在75d后再次放回20ħ环境中胚率增长也比较缓慢㊂说明低温㊁常温㊁变温处理都不能很好地解除滇重楼种子的休眠,而在恒温20ħ条件下可以在较短时间内打破种子休眠㊂3㊀结论与讨论滇重楼种子具有较长的休眠期,休眠类型为综合性休眠,其形态休眠中的胚休眠是滇重楼种子休眠的主要因素,种子中存在萌发抑制物抑制胚的形态后熟[6];在滇重楼种子的生长发育过程中,GA㊁IAA㊁ZR 含量显著升高,ABA 含量显著下降且变化量较大[14-15]㊂目前,在激素处理方面,可以通过添加2,4-D㊁NAA㊁GA 等促进滇重楼种子的萌发[16-18]㊂本试验中,单独使用GA 处理滇重楼种子也表现出了促进使用,另外还发现,随着GA 质量浓度的进一步增加,其发芽率㊁发芽势逐渐降低,烂种率加大㊂FL 可以抑制种子类胡萝卜素的合成从而减少ABA 的合成[19]㊂GA +FL 组合作用可有效促进滇重楼种子的发芽,发芽率最高的处理出现在GA +FL 组合中(GA300+FL10,81.33%),与张家玲等[7]得出的500mg /L GA 处理的滇重楼种子发芽率(82.36%)相当,但在此基础上降低了GA 的使用浓度,且与使用500mg /L GA 相比降低了发芽时的烂种率㊂因此,确定GA300+FL10为解除滇重楼种子休眠的最佳植物生长调节剂处理㊂滇重楼种子存在生理休眠,需要经过一定的层15河南农业科学第49卷积处理打破休眠㊂有研究表明,低温沙藏可以促进北沙参种子的萌发[20],打破铁包金种子休眠[21],显著提高种子发芽势与发芽率㊂关于滇重楼种子最适萌发温度的研究中,大多数认为恒温20ħ为最佳温度,也有研究认为变温层积可在较短时间打破滇重楼种子休眠[7]㊂本研究通过对不同温度层积处理下滇重楼种子胚率的变化研究可以发现,滇重楼种子胚的生长变化与温度有很大的联系,不同温度下胚的生长变化差异极显著㊂在常温(25ħ)㊁低温(0㊁5㊁10ħ)以及变温(20ħ 5ħ 20ħ)条件下胚率增长缓慢,不能有效打破滇重楼种子的休眠,只有在恒温20ħ条件下胚率增长较快,可有效打破休眠,与李宝等[17]的研究结果一致,且在层积60d左右时胚就突破种皮开始萌发㊂参考文献:[1]㊀何俊,张舒,王红,等.滇重楼植物的研究进展[J].云南植物研究,2006,28(3):271-276.HE J,ZHANG S,WANG H,et al.Advances in studies onand uses of Paris polyphylla var.yunnanensis(Trilliace-ae)[J].Plant Diversity,2006,28(3):271-276. 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植物激素在种子休眠与萌发中的调控机制
植物激素在种子休眠与萌发中的调控机制植物激素在种子休眠与萌发中起着重要的调控作用。
种子休眠是指种子在特殊环境下无法发芽的一种状态,而种子萌发则是种子释放休眠状态并开始生长的过程。
种子休眠与萌发涉及多种植物激素的调节,包括赤霉素、脱落酸、脱落酸酯酶、激动素、乙烯以及腺苷酸等。
赤霉素是一种非常重要的激素,它对种子的休眠与萌发具有双重调节作用。
赤霉素能够促使种子胚轴的伸长和根的形成,从而促进种子的萌发。
在种子休眠期间,赤霉素的含量较低,而在种子开始萌发后,赤霉素含量会随着胚轴和根的伸长而增加。
另外,赤霉素还能激活种子内部的酶的活性,从而加速种子的发芽过程。
在种子休眠中,赤霉素的合成和降解都在起作用。
种子休眠期间,赤霉素的合成受到抑制,导致其含量较低。
在种子发芽的早期阶段,由于赤霉素的降解速度较慢,赤霉素的含量会上升。
随着种子的萌发过程的进行,赤霉素的降解速度会增加,从而促使种子休眠的解除。
脱落酸是一种类似生长素的植物激素,可以促进种子萌发。
在种子休眠的阶段,脱落酸的合成和降解都受到调控。
种子休眠期间,脱落酸的含量较低,但随着种子开始萌发,脱落酸的含量会逐渐上升。
脱落酸通过促进胚乳消化酶的合成和胚乳组织的水解,促进种子的萌发。
此外,脱落酸还可以通过调节种子的AUX/IAA基因家族的表达,从而参与种子的休眠与萌发的调节。
脱落酸酯酶是脱落酸降解的关键酶,它能够催化脱落酸的转化为脱落酸酯。
在种子休眠期间,脱落酸酯酶的活性较低,导致脱落酸的含量较高。
当种子开始萌发时,脱落酸酯酶的活性会上升,从而促使脱落酸的降解。
激动素是一类植物激素,它们能够抑制种子的胚轴伸长和根的形成,从而促进种子的休眠。
激动素的合成和降解在种子休眠与萌发过程中发挥重要作用。
在种子休眠期间,激动素的合成活性较高,同时激动素降解酶的活性较低,导致激动素的含量较高。
在种子开始萌发后,激动素降解酶的活性会增加,从而促使激动素的降解,进一步促进种子的萌发。
植物激素对种子休眠和萌发调控机理的研究进展
(1)知识创新能力:衡量一个国家或地区在科技创新方面的能力,包括研发 投入、科研论文发表量、专利申请与授权等。
(2)技术转化能力:反映一个国家或地区将科技成果转化为现实生产力的能 力,包括技术市场交易额、高新技术产业增加值等。
(3)劳动生产率:衡量一个国家或地区的生产效率,包括人均GDP、工业增加 值率等。
未来,植物激素对种子休眠和萌发调控机理的研究将进一步深入到以下几个方 向:一是发掘更多的功能基因;二是研究基因表达的调控机制;三是探索植物 激素与其他环境因素相互作用对种子休眠和萌发的影响;四是利用基因编辑技 术进行抗逆性和增产性状改良的作物育种实践。这些研究将为农业生产提供新 的理论依据和技术手段,有助于提高作物的产量和质量。
一、植物激素对种子休眠的调控
பைடு நூலகம்
种子休眠是指种子在适宜的萌发条件下,仍不能萌发的现象。它是一种自然的 防御机制,使种子能够在不利的环境条件下保持生存。植物激素在种子休眠过 程中的作用复杂而精细。
1、赤霉素(GA):赤霉素是促进种子萌发的主要激素之一,它可以打破种子 的休眠,促进种子的萌发。赤霉素的作用主要表现在以下几个方面:一是诱导 胚乳的分解,提供胚发育的营养;二是促进细胞伸长和分裂,增加胚的体积; 三是诱导α-淀粉酶的合成,促进淀粉的水解。
赤霉素(Gibberellin,GA)是另一种重要的植物激素,在烟草种子萌发中也 起着关键作用。赤霉素的主要功能是促进细胞的伸长和分裂,以及解除休眠。 研究发现,赤霉素可以刺激细胞伸长和分裂,促进种子的萌发。此外,赤霉素 还可以抑制脱落酸的合成,解除种子的休眠状态。
然而,外源生长素和赤霉素并不是单独发挥作用的。它们通过一种复杂的信号 网络相互影响,共同调控烟草种子的休眠与萌发。一方面,外源生长素可以促 进赤霉素的合成,加强其信号传导途径;另一方面,赤霉素可以增强外源生长 素的细胞伸长和分裂效果。这种相互作用的网络使得烟草种子在面对不同的环 境条件时,能够做出适应性的反应。
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氟啶酮、赤霉素和发芽温度对巫山淫羊藿种子休眠解除的影响作者:苏贺王月杨阳董学会来源:《中国中药杂志》2016年第14期[摘要]以经变温层积90 d的巫山淫羊藿种子为材料,用不同配比的氟啶酮、赤霉素混合溶液浸种,并转入10/20 ℃变温和4 ℃低温中发芽,比较了各处理种子发芽势、发芽率及烂种率,旨在了解氟啶酮、赤霉素、发芽温度对巫山淫羊藿种子休眠解除的影响。
结果表明:①赤霉素、氟啶酮、发芽温度可显著影响种子休眠解除效果,其中,氟啶酮效应最强,温度其次,赤霉素最弱。
低温中,10 mg·L-1氟啶酮+300 mg·L-1赤霉素处理发芽率最高,为793%,20 mg·L-1氟啶酮+200 mg·L-1赤霉素处理发芽势最高,为5.2.7%;变温中,20 mg·L-1氟啶酮+200 mg·L-1赤霉素处理发芽率、发芽势最高,分别为720%,5.60%。
②巫山淫羊藿种子只能在低温中萌发,不能在变温中萌发,但氟啶酮可使其于变温中萌发;③赤霉素、浸种具有增加烂种率的风险。
研究表明,一定浓度配比的氟啶酮、赤霉素混合溶液,能显著提高种子休眠解除率,增加种子发芽速度和成苗率,但是赤霉素也有增加烂种率的风险,实际应用中应合理规避。
[关键词]氟啶酮;赤霉素;种子休眠;巫山淫羊藿巫山淫羊藿Epimedium wushanense为小檗科Berberidaceae淫羊藿属多年生宿根性草本药用植物,以干燥叶入药,具补肾阳,强筋骨,祛风湿的功效,是传统中医药中利用最为广泛的中药之一,也是我国指定药用淫羊藿品种之一[1]。
淫羊藿属药材主要来源于野生资源,由于长期过度采挖及不合理利用,淫羊藿属野生资源已面临枯竭,资源保护工作迫在眉睫,与资源保护密切相关的种苗快速繁殖技术亟待建立[23]。
目前,生产上常通过淫羊藿地下根茎采用分株法进行无性繁殖,但该法周期长、效率低[4]。
张著林等发现粗毛淫羊藿可通过种子进行种苗繁殖后,关于淫羊藿种子研究的报道逐渐增多[59],其中,樊家乙等[6]发现巫山淫羊藿种子具有胚形态休眠及内源萌发抑制物质,但所用材料是否为巫山淫羊藿有待商榷;付长珍等[7]发现拟巫山淫羊藿具有形态生理休眠,暖温可解除种子生理休眠,低温可解除种子形态休眠,形态休眠解除后种子需在低温中萌发。
脱落酸(ABA)和赤霉素(GA)为2种相互拮抗的植物激素,在种子休眠与萌发中起着重要的调控作用。
其中,ABA为种子萌发抑制因子,GA为种子萌发促进因子,内源ABA/GA 水平决定着种子对环境信号的响应特性,进而使种子表现出休眠或萌发的现象[101.1]。
氟啶酮为ABA生物合成抑制剂,具有促进种子萌发的作用,也具有促进种子于不利的高温条件下萌发的作用[1.2.1.5]。
本研究以巫山淫羊藿种子为实验材料,不仅研究了氟啶酮与赤霉素对巫山淫羊藿种子休眠的影响,还研究了发芽温度对处理后种子的萌发的影响。
以期建立一套适于巫山淫羊藿种子休眠解除的方法,为巫山淫羊藿种苗快速繁殖提供理论依据。
1材料与方法1.1样品201.3年5月于贵州省贵阳市黔南州龙里镇采集成熟度一致,形态饱满的巫山淫羊藿蒴果,用牛皮纸装好;回到实验室后,将种子从蒴果中分离出来,除去瘪粒及杂物,蒸馏水洗净种子,将种子贮藏于10 ℃无光培养箱中备用;75%乙醇浸种60 s进行表面消毒,蒸馏水洗净种子;1%次氯酸钠消毒1.5 min,蒸馏水洗净种子;先将洗净的无菌河沙与蒸馏水配制成含水量为20%的湿沙(100 g河沙,20 mL水),再将种子与湿沙以1∶7质量比拌种,转入10/20 ℃无光照条件进行变温层积。
层积过程中,每隔1.5 d倒种1次,并适当补充水分。
变温层积90 d后,将种子分离出来,消毒备用。
1.2种子处理本文采用2因素完全试验设计,以赤霉素(0,200,300,400 mg·L-1)、氟啶酮(0,5,10,20 mg·L-1)完全组合浸种巫山淫羊藿种子2.4 h,浸种结束后先用无菌蒸馏水洗净种子,再进行发芽实验,以未经浸种的种子作为CK。
发芽实验:将50粒种子播种于直径90 mm含20 mL 05%琼脂培养基的一次性培养皿中,并用parafilm 封口膜封口,每处理3个重复,整个过程在超净工作台中进行。
播种结束后,分别将种子置于4 ℃,10/20 ℃条件进行发芽。
2周后开始调查发芽率,此后每隔1周调查1次,调查至第5.6天。
调查过程中胚根突破种皮视为萌发,每次调查结束时挑出已发芽种及烂种。
GR=Gf×100% (1)GE=Gm×100% (2)Rot=R/N×100% (3)其中,GR为发芽率(germination rate),GE为发芽势(germination energy),Rot为烂种率(Rotten rate),Gf为发芽结束时种子萌发总数,Gm为发芽至2.8 d时种子萌发总数,N 为发芽用种子总数,R为发芽结束时烂种总数。
1.3数据处理用R 3.2.2进行数据处理、分析并作图,采用AOV模型对种子在不同发芽温度中发芽率、发芽势及烂种率进行3因素方差分析;采用Duncan多重比较法对种子发芽率、发芽势及烂种率进行多重比较。
2结果与分析2.1发芽温度、赤霉素、氟啶酮对巫山淫羊藿种子发芽率、发芽势及烂种率影响方差分析发芽温度,氟啶酮和赤霉素对巫山淫羊藿种子发芽率影响均极显著(P发芽温度对巫山淫羊藿种子发芽势影响极显著(P=0003),氟啶酮和赤霉素对发芽势影响也均极显著(P酮赤霉素交互作用也均极显著(P发芽温度,氟啶酮对种子烂种影响均不显著(P分别为01.97,02.63),赤霉素对烂种影响极显著(P2.2不同赤霉素、氟啶酮浓度组合对低温发芽条件下种子发芽率的影响低温条件下,10 mg·L-1氟啶酮+300 mg·L-1赤霉素处理(记为F10GA300),发芽率最高,其次为F20GA200,分别为793%,720%,F0GA0最低,为07%。
未施用氟啶酮的各处理,发芽率均小于60%,见图1。
施用氟啶酮可显著增加种子发芽率,但增幅因赤霉素浓度不同而不同:赤霉素质量浓度为0 mg·L-1时,种子发芽率增幅表现为F10>F5>F20;赤霉素质量浓度为200 mg·L-1时,表现为F20>F10>F5,F20显著高于F5;赤霉素质量浓度为300 mg·L-1时,表现为F10>F20=F5,F10显著高于其他处理;赤霉素质量浓度为400 mg·L-1时,表现为F10>F20>F5,F10显著高于F5,见图1。
只施用赤霉素对种子萌发影响不显著,但同时施用氟啶酮与赤霉素可显著提高种子发芽率,增幅因赤霉素浓度不同而不同:氟啶酮为0 mg·L-1时,不同浓度赤霉素处理种子发芽率均低于60%,处理间差异不显著;氟啶酮为5,10 mg·L-1时,GA300发芽率最高,处理间差异显著;氟啶酮为20 mg·L-1时,GA200发芽率最高,见图1。
由经各处理种子于低温中发芽曲线可以看出,氟啶酮处理后,巫山淫羊藿种子萌发速度显著提高,赤霉素与氟啶酮存在交互作用,GA为0 mg·L-1时,种子萌发速度表现为F10>F5>F20>F0;GA为200 mg·L-1时,种子萌发速度表现为F20>F10>F5>F0;GA为300 mg·L-1时,种子萌发速度数据表示为±s,不同字母表示数值间差异显著(PF10>F20>F0,F20与F5萌发速度相当;GA为400 mg·L-1时,种子萌发速度F10>F20>F5>F0,见图2。
2.3不同赤霉素、氟啶酮浓度组合对变温发芽种子发芽率的影响变温条件下,F20GA200处理发芽率最高,其次为F5GA0和F20GA400,氟啶酮为0 mg·L-1时,各处理发芽率均为0,见图3。
施用氟啶酮可显著增加种子发芽率,但增幅因赤霉素浓度不同而不同,赤霉素质量浓度为0 mg·L-1时,发芽率增幅表现为F5>F10>F20,F5显著高于F10,F20;赤霉素质量浓度为200 mg·L-1时,表现为F20>F10>F5,F20显著于F10,F5;赤霉素质量浓度为300 mg·L-1时,表现为F10>F5>F20,处理间差异不显著;赤霉素质量浓度为400 mg·L-1时,表现为F20>F5>F10,处理间差异不显著,见图3。
只施用赤霉素对种子萌发影响不显著,但同时施用氟啶酮与赤霉素可显著提高种子发芽率:氟啶酮为10 mg·L-1时,发芽率表现为GA300>G200>GA400>GA0,其中GA200,GA300显著高于GA0,GA400与GA0差异不显著;氟啶酮为20 mg·L-1时,发芽率表现为GA200>G400>GA300>GA0,其中GA200最大,显著高于其他处理,GA400显著高于GA0;氟啶酮为5 mg·L-1时,发芽率表现为GA0>GA300>GA400>GA200,其中,GA200显著低于GA0,见图3。
由各处理种子在变温中的发芽曲线可知,氟啶酮处理后,巫山淫羊藿种子萌发速度显著提高,赤霉素与氟啶酮存在交互作用:GA为0 mg·L-1时,种子萌发速度表现为F5>F10=F20>F0;GA为200 mg·L-1时,种子萌发速度表现为F20>F10>F0,F10与F5萌发速度相当;GA为300 mg·L-1时,F5,F10,F20萌发速度相当,但均显著大于F0;GA为400 mg·L-1时,种子萌发速率表现为F20>F10>F0,F10与F5萌发速度相当,见图4。
2.4不同赤霉素、氟啶酮浓度组合对低温发芽种子发芽势的影响低温条件下,F20GA200发芽势最高,其次为F10GA300,氟啶酮为0 mg·L-1时,各处理发芽势均低于10%,见图5。
氟啶酮可显著增加种子发芽势,增幅因赤霉素浓度不同而不同:GA质量浓度为0 mg·L-1时,种子发芽表现为F5=F20>F5,处理间差异不显著;GA质量浓度为200 mg·L-1时,表现为F20>F10>F5,其中F20显著高于F10,F5;GA质量浓度为300 mg·L-1时,表现为F10>F20>F5,F10显著高于F5;GA质量浓度为400 mg·L-1时,表现为F20>F10>F5,处理间差异不显著,见图5。