广藿香的组培快繁技术研究
广藿香高效栽培技术
广藿香高效栽培技术广藿香是一种传统中药材，具有广泛的药用价值。
为了提高广藿香的产量和品质，研究人员通过多年的实践和总结，发展了一套高效的广藿香栽培技术。
本文将介绍广藿香高效栽培技术的几个关键要点。
首先，关于土壤的选择。
广藿香喜欢沙质或壤土质的土壤，排水良好，通风透气性好，水分保持适中。
因此，在选择土壤时应优先考虑土壤的排水性和透气性。
虽然广藿香对土壤的要求相对较低，但合理的土壤选择对广藿香的生长和发育仍然起到关键的作用。
其次，关于播种和育苗。
广藿香的播种时间通常在春季或秋季，种子可以通过湿润处理来促进发芽。
播种前应先将种子放入湿润的纱布袋中，浸泡几天，以增加种子的湿润程度。
然后，在准备好的育苗盘或育苗箱中播种，保持适宜的湿度和温度。
发芽后，适时进行移栽。
第三，关于灌溉和施肥。
广藿香的生长期需要保持适宜的湿度，但也不能过度补水。
在生长期间，适度浇水并定期除草。
施肥方面，可以采取有机肥和无机肥结合的方式，保证广藿香获得充足的养分。
施肥时应注意适量施用，避免过度施肥造成土壤污染。
第四，关于病虫害防治。
广藿香易受到一些病虫害的侵害，如黑斑病、霜霉病、黄萎病等。
为了有效防治这些病虫害，可以采用病虫害防治剂进行喷洒，也可以进行合理的轮作和间作，减少病虫害的发生。
另外，及时清除病叶和虫卵也是有效的措施。
最后，关于采收和加工。
广藿香一般在生长期达到90天左右进行采收。
采收时应选择天气晴朗、无雨的日子，将广藿香整株连根拔起，露地停放待晾干。
晾干后，可以进行初步的分级和筛选，去除杂质。
然后，对广藿香进行干燥处理，一般采用低温烘干或晾晒的方法。
最后，将干燥的广藿香储存于干燥通风的环境中，避免潮湿和虫害。
通过以上几个关键要点的掌握，可以有效提高广藿香的产量和品质。
当然，广藿香的栽培也需要根据当地的气候条件和土壤情况进行适当调整。
希望本文所介绍的广藿香高效栽培技术对广藿香种植者有所帮助。
广藿香如何繁殖范文
广藿香如何繁殖范文广藿香（Pogostemon cablin）是一种常见的香草植物，也被称为广藿香或土香草。
它具有浓郁的香气和草本的外观，被广泛用于香水、蜡烛和其他香气产品的制作中。
繁殖广藿香有几种方法，包括插枝、分株和种子繁殖。
下面将详细介绍这些方法。
1.插枝繁殖插枝是广藿香最常用的繁殖方法之一、这种方法适用于从现有植物中获取新植物。
以下是插枝繁殖的步骤：（1）从健康的成熟广藿香植物中选择一支长约10-15厘米的枝条。
（2）将枝条切下后，去掉下部的叶子，只保留顶部的几片叶子。
（3）将枝条插入湿润的育苗土中，确保枝条的两侧都埋在土中。
可以用一根小竹签插入土壤来支撑枝条。
（4）放置育苗盆在阳光充足、湿润的环境中，避免直射阳光。
保持土壤湿润，但不要过于湿润以免导致腐烂。
（5）约2-3周后，枝条可以开始生根。
生根后，可以将新植物迁移到更大的花盆中。
2.分株繁殖分株繁殖是广藿香另一种常见的繁殖方法。
以下是分株繁殖的步骤：（1）从成熟的广藿香植物中仔细挖掘出植株，尽量保留根系完整。
（2）将根部梳理开，将植株分成几个较小的分株。
确保每个分株都有足够的根系和茎。
（3）将每个分株分别重新植入湿润的育苗土中，然后轻轻压实土壤。
（4）将分株繁殖的广藿香放置在半阴凉的环境中，以减少干燥和温度的压力。
（5）保持土壤湿润，并定期喷水以增加湿度。
（6）约2-3周后，分株繁殖的广藿香植物应该开始长出新的叶片，并且可以逐渐移动到更大的花盆中。
3.种子繁殖种子繁殖是广藿香最耗时的繁殖方法，但也是最具挑战性和有趣的方法之一、以下是种子繁殖的步骤：（1）将成熟的广藿香花瓣收集到碗中，并用手指轻轻将花瓣碾压。
（2）将花瓣放入纸巾中，并将纸巾折叠起来。
然后将纸巾放入塑料袋中，并将袋子密封好。
（3）将塑料袋存放在温暖室内的暗处，保持湿润的环境。
每天打开袋子，检查是否出现新的发芽。
（4）大约2-4周后，种子应该开始萌发。
（5）将已经萌发的种子小心地移植到湿润育苗土中，约3-4毫米深。
广霍香栽培技术
广霍香栽培技术广霍香栽培技术广霍香原产于菲律宾、马来西亚、印尼等国家，后传入我国，主要以栽培为主。
我国主产区以广东为主，目前在广东的肇庆和湛江地区均有栽培，海南和广西等省区也有栽培。
广霍香是我国著名南药之一，别名霍香，是唇形科刺蕊草属植物广霍香的一年生全草。
通常多以全草的地上部分的茎叶入药。
广霍香味辛，性微温；归脾、胃、肺经；具有芳香化浊，开胃止呕，发表解暑的功能，被历代医家视为暑湿之要药。
临床上主要用于湿浊中阻、脘痦呕吐、暑湿倦怠、胸闷不舒、寒湿闭暑、腹痛腹泻、鼻渊头痛、疟疾痢疾、口臭等疾病的治疗。
广霍香喜温暖、忌严寒，喜湿润、忌干旱，耐肥、怕霜冻、怕浸渍、易倒伏，要求年平均气温20～28℃，年降水量1600～2000毫米。
广霍香对土壤要求较高，以排灌良好、土层深厚，土质肥沃、疏松的沙质壤土为宜，黑沙土最好。
广霍香苗期怕强光曝晒，需荫蔽。
一、繁殖方法广霍香是采用扦插繁殖。
通常采取扦插育苗和大田直插两种方法。
(1)扦插育苗在每年2～4月、7～8月，当气温回升和雨季进行。
选择5个月生以上，节密，粗壮，叶小而厚，无病虫害的枝条作插穗，剪成8－1 5厘米长小段，每段具3节以上，上部留2片叶和心芽，为了其快生根，可用0.05％的生根粉液浸泡插穗下端切口10～15秒钟，取出，在整好的育苗地的畦面上按行距15厘米开横沟，深12～13厘米，沟内每隔5～6厘米进行扦插，插条入土2／3，压实，铺草，浇透水。
插后搭棚遮荫，经常浇水，保持畦土湿润，以利插条生根发芽。
插后10天左右开始生根，要加强管理，进行中耕除草，培育壮苗。
经培育30天左右可以栽种。
(2)大田直插每年3～4月间，选择生长5个月以上，节密、粗壮、生长健壮、无病虫害的枝条作插穗。
插穗剪取和处理同育苗法。
整好的种植地内按行距50厘米、株距30厘米开穴深12厘米，每穴插入插穗1～2段，覆土压实，插穗l／3露出土面，浇水。
插树枝遮荫。
二、栽种和田间管理1．栽种通常在4～5月和8～9月进行。
广藿香栽培技术
广藿香栽培技术广藿香，又称藿香、藿香草，是一种常见的草本植物，具有广泛的药用和香料用途。
它具有抗菌、抗病毒、抗炎和消炎等药理作用，被广泛用于传统中医治疗以及食品、饮料等行业。
为了提高广藿香的产量和质量，正确的栽培技术非常关键。
本文将介绍广藿香的栽培技术以及相关注意事项。
一、选择适宜的种植地点广藿香喜阳光充足、温暖湿润的环境，所以选择适宜的种植地点非常重要。
首先，种植地应位于海拔500米以下的地带，避免高海拔地区的寒冷和缺氧对植株生长的不利影响。
其次，地势应略高，以利于排水，避免积水导致植株腐烂。
最后，土壤应疏松肥沃，并且富含有机质，以有利于广藿香的根系生长。
二、适时播种与繁殖广藿香适合春季和秋季进行播种。
春季大约在3月至4月之间，天气回暖且阳光逐渐增长，适宜广藿香的生长；秋季则在8月至9月之间，这个时候温度适宜，能够有效避免高温对广藿香的不良影响。
播种前，将种子埋在土壤中，浅埋即可，约2-3厘米即可。
播种后，保持土壤湿润，不让土壤过分干燥。
待苗子出土后，间距要保持在15-20厘米，这样有利于苗的生长。
广藿香也可以通过根茎繁殖。
当广藿香的植株生长到一定程度时，可将其根茎分割成多个小块，然后进行定植。
这种方式可以有效提高广藿香的繁殖效率，并且有利于株型的整齐。
三、合理施肥和浇水广藿香在生长期需要适量的肥料和水分。
在生长初期，可以施用磷肥和钾肥，有利于植株块茎和地上部位的生长。
不过，要注意不要过量施肥，以防止植株过度生长，影响产量和品质。
特别要注意的是，广藿香对氮肥需求较少，过量的氮肥会促使植株茎叶生长过大，减少其药材的含量。
浇水方面，要注意保持适度的湿度，避免过度干旱或过度湿润。
在生长期，保持土壤湿润，但不要过于积水，以免导致根部腐烂。
特别是在干旱的季节，要增加浇水的频率，保证植株的正常生长。
四、病虫害的防治广藿香容易受到一些常见的病虫害影响，如菌核病、细菌性溃疡病、蚜虫等。
为了防治病虫害，可以采用以下方法：1.合理选择防治药剂，如可使用杀菌剂、杀虫剂等进行喷洒；2.保持田间的通风良好，避免增加病虫害的孳生环境；3.及时清理杂草和枯萎的植株，减少病虫害的传播；4.定期巡视，发现病虫害及时处理。
利用组织培养技术研究广藿香的化感自毒作用
利用组织培养技术研究广藿香的化感自毒作用作者：林海胜来源：《农家科技下旬刊》2018年第02期摘要：在对中药材进行人工栽培的过程中发现许多植物都存在着化感自毒作用，随着栽培年限的增加，植物生长发育越来越差，在产量和质量上都出现较大幅度的下降。
为了能够让中药材得到更好的培养，对相关植物的化感自毒作用展开研究变得十分的重要。
本文主要通过利用组织培养技术来研究广藿香的化感自毒作用。
关键词：组织培养技术；广藿香；化感自毒作用在当前规模化、产业化的种植培养中，广藿香表现出较为严重的连作障碍，严重影响到广藿香的产量和质量，这种现象在许多的药用植物培养中都存在，对我国药用植物的培养带来极大的影响。
基于此种情况，本文通过利用组织培养技术，对广藿香不同器官水提液、根系分泌物的化感自毒作用展开研究。
一、化感自毒作用概述化感作用主要指的是植物在生长的过程中会向周围的环境之中释放出一些化感物质，而这些化感物质将会对植物本身或者其它植物的生长发育造成一定程度上的不良影响。
所谓的自毒作用只是在化感作用下的一种较为特殊的形式，植物在生长的过程中分泌出来的液体也会影响到自身生长发育的一种现象。
对于药用植物来讲，其内部许多的有效成分都属于次生代谢产物，且这些次生代谢产物分布在植物的不同器官之中，例如：植物的根、茎、叶、种子等部位都可能分布有次生代谢物。
也因此在药用植物之中真正产生药效的成分很可能就属于化感物质，而在人工大量栽培种植的过程中，希望重点加强这部分物质的培养，药用植物在外界环境的干扰下这部分有效成分出现增加的情况，虽然能够提升药用植物的药效，但是其释放出来的化感物质也同时在不断的增加。
这种外界干扰性生长在短时间内对于植物而言可能表现出较大的利处，但是在长时间的生产和培植过程中，药用植物的化感自毒作用将逐渐的表现出来，进而影响到药用植物的栽培，使其不管是质量还是产量都出现较大幅度的下降。
因此，在进行药用植物的栽培过程中还需要注重环境应力与次生代谢产物之间的关系，重视药用植物在生长过程中产生出来的次生代谢物对生态环境的化感作用。
广藿香遗传基础及生物技术研究进展
结构差异 ， 阐明了广藿香优质居群特异性 ， 并研究了广藿香区域性居群主要活性成分含量与遗传结构和
分 化的相 关性 …］ 。
收 稿 日期 ： ０ ０— ７— ９ ２ １ ０ ０ 基 金项 目 ：国家 自然 科 学 基 金 资助 项 目 （０ ６５ ３ ； ３９ ０ ３ ） 中央 级 公 益 性 科 研 院所 基 本 科 研 业 务 费 专 项 资金 资 助 项
为此， 笔者综 述 了广藿香遗 传基础及 生 物技 术 的研究 进 展 ， 就 广藿 香 育种 方 面存 在 的 问题 及 今后 研究 并 的重 点进行 了较系统 的探讨 ， 旨在为广 藿香 的现代研 究 、 合利用及 合理评 价提供 参考依 据 。 综
１ 广藿香生物遗传基础研 究
随着 Ｄ Ａ分 析技术 的发展 ， Ａ Ｄ技术 为 广 藿香 种 质 资源 的鉴定 和分 类 提 供 了新 的途径 。曹柳 英 Ｎ ＲＰ
广藿香在 １ ０ ｐ ６ ０ｂ ，０ ｐ和 ３ ０ｂ ０ｂ ，０ ｐ ５ ０ｂ ０ ５ ｐ处有 ４条 带 ， 江广藿香 在 １ ０ ｐ ８ ０ｂ ，０ ｐ ３ ０ｂ 湛 ０ｂ ，５ ｐ ６ ０ｂ ，５ ｐ和 ０
２０ｂ ５ ｐ处有 ５条 带 ， 广藿香 在 １ ０ ｐ６０ｂ ，５ ｐ和 ２０ｂ 海南 ０ｂ ，０ ｐ３０ｂ ０ ５ ｐ处有 ４条 带 ， 而广 州石牌 广藿香 则在 １ ０ ｐ ６ ０ｂ ０ｂ ，０ ｐ和 ３ ０ｂ ０ ５ ｐ处有 ３条带 ， 中的 １０ ０ｂ ，０ ｐ和 ３ ０ｂ 其 ０ ｐ ６０ｂ ５ ｐ３条带 可作为 广藿香 的特征 带。 李颖等 ¨。 。的试验结 果也 与之一致 。为 了进 一步探讨 广藿 香不 同栽培居 群 的遗传 多样性 及种 内分化 水平 ，
状，பைடு நூலகம்并就广藿香育种方 面存在的问题及今后研究的重点进行 了探讨 。 关键词 ： 广藿香 ； 生物遗传 ； 组培快 繁； 抗病分子育种
珍稀南药广藿香的研究进展
珍稀南药广藿香的研究进展陈元生（广东省农科院作物研究所，广东广州510640）摘要：综述了近年来广藿香的生物学特性、化学成分组成、生物技术、规范化种植与质量控制技术等方面的研究进展，并提出加强繁殖技术研究、加强品种选育研究以及加强规范化种植研究以推进广藿香产业化发展的建议。
关键词：南药；广藿香；研究进展中图分类号：S567 文献标识码：A 文章编号：1004-874X（2007）01-0109-04广藿香〔Pogostemon cablin（Bianco）Benth〕为唇形科剌蕊草属植物，原产于菲律宾、马来西亚、印度等国家，后传入我国。
广藿香全草入药，味辛、性微温，是我国重要常用中药之一，具有芳香化浊、开胃止呕、发表解暑等功效。
为《中华人民共和国药典》规定的著名国家中药保护品种“藿香正气丸（胶囊、水）”和“抗病毒口服液”的重要原料，同时也是其他30多种中成药的主要原料。
广藿香油则是医药工业和轻化工业的重要原料（用作配制丹、膏、丸、散及化妆品、定香剂和杀虫剂收稿日期：2006-09-14作者简介：陈元生（1967-），男，硕士，助理研究员等）。
目前广藿香在广东的广州、肇庆、湛江以及海南、广西、四川等省（区）均有栽培，是“十大南药”之一，其药材商品按产地不同分为牌香（广州产）、枝香（肇庆产）、湛香（湛江产）和南香（海南产）4种［1-2］。
为推广广藿香的规模化种植和产业化发展，现对其生物学特性、化学成分组成、生物技术、规范化种植与质量控制技术等方面的研究综述如下。
!"生物学特性研究广藿香为多年生草本植物，株高30~100cm，具有特殊的香气，全草均含挥发油。
茎直立、较粗壮、质脆、易折断、断面中部有髓，老茎类圆柱形、直径1~［17］Man H，Boriei R，Rami E K，et ai.Characterization of transgenic popiar with ectopic expression of pine cytosoiicgiutamine synthetase under conditions of varying nitrogenavaiiabiiity［J］.New Phytoiogist，2005，167：31.［18］Fu J M，Sampaio R，Gaiiardo F，et ai.Assembiy of a cy-tosoiic pine giutamine synthetase hoioenzyme in ieaves oftransgenic popiar ieads to enhanced vegetative growth［J］.Piant，Ceii&Environment，2003，26：411-418.［19］Keys A J，Bird I F，Corneiius M J，et ai.Photorespiratory nitrogen cycie［J］.Nature，1978，275：741-743.［20］Lea P J，Forde B G.The use of mutants and transgenic piants to study amino acid metaboiism［J］.Piant Ceii En-viron，1994，17：541-556.［21］Hausier R E，Lea P J，Leegwood R C.Controi of photo-synthesis in bariey ieaves with reduced activities of giuta-mine synthetase and giutamate synthase：II.Controi of e-iectron transport and CO2assimiiation［J］.Pianta，1994，194：418-435.［22］Hausier R E，Biackweii R D，Lea P J，et ai.Controi of photosynthesis in bariey ieaves with reduced activities ofgiutamine synthetase and giutamate synthase：I.Piantcharacteristics and changes in nitrate，ammonium and ami-no acids［J］.Pianta，1994，194：406-417.［23］Waiisgrove R M，Turner J C，Haii N P，et ai.Bariey mu-tants iacking chioropiast giutamine synthetase-biochemicaiand genetic anaiysis［J］.Piant Physioi，1987，83：155-158.［24］Biackweii R D，Murray A J S，Lea P J.Inhibition of pho-tosynthesis in bariey with decreased ieveis of chioropiasticgiutamine synthetase activity［J］.J Exp Bot，1987，38：1799-1809.［25］Migge A，Carrayoi E，Hirei B，et ai.Leaf-specific over-expression of piastidic giutamine synthetase stimuiatesgrowth of transgenic tobacco seediings［J］.Pianta，2000，210：252-260.［26］Fuentes S I，Aiien D J，Ortiz-Lopez A，et ai.Over-ex-pression of cytosoiic giutamine synthetase increases photo-synthesis and growth at iow nitrogen concentrations［J］.JExp Bot，2001，52：1071-1081.［27］Kozaki A，Takeba G.Photorespiration protects C3piants from photooxidation［J］.Nature，1996，384：557-560.［28］Knight T J，Langston-Unkefer P J.Enhancement of sym-biotic dinitrogen fixation by a toxin-reieasing piant patho-gen［J］.Science，1988，241：951-954.901广东农业科学 2007年第1期1.2cm、被灰褐色栓皮，幼茎长四方形、密被茸毛。
广藿香种质资源及栽培技术研究进展
热带作物学报2022, 43(8): 1595 1603Chinese Journal of Tropical Crops广藿香种质资源及栽培技术研究进展顾艳，梅瑜，徐世强，孙铭阳，周芳，李静宇，王继华*广东省农业科学院作物研究所/广东省作物遗传改良重点实验室/广东省道地南药资源保护与利用工程技术研究中心，广东广州 510640摘要：广藿香为多年生芳香草本或半灌木植物，是我国著名的南药之一。
通常以其干燥地上部分入药，具有芳香化浊、开胃止呕、发表解暑等功效，是多种中成药的重要原料。
此外，以其提取的广藿香油是世界上医药工业和轻化工业的重要原料，经济价值高，应用市场前景广阔。
广藿香为热带地区引入我国栽培，种质类型单一，遗传基础狭窄，资源极为有限。
由于长期的自然环境和人工栽培的影响，广藿香种质产生了一些变异和分化，目前主要分布于我国广东、广西、福建和海南等南方省（区），按照产地将其分为牌香、肇香、湛香和南香4种。
广藿香在种植过程中，存在严重的连作障碍现象，且由于田间管理粗放，其产量和品质不稳定，受品种、产地、栽培技术等多方面因素影响。
近年来，随着分子生药学的发展，其主要药用成分广藿香醇和广藿香酮的内在分子调控机制相关研究开展顺利，目前关于广藿香的研究大多集中在其有效成分的药效药理、生物合成及代谢调控方面，而对种质资源及栽培技术的系统性研究不足。
优良的品种和高效规范的种植技术是药材产量和质量稳定的基础，为充分利用广藿香药材资源，进一步推广广藿香规模化和产业化发展，本文主要综述了广藿香的生物学特性、种质资源研究现状、栽培技术中的瓶颈及产业发展过程中存在的问题，指出了广藿香栽培过程中养分管理技术缺乏，连作障碍问题严重，提出要加强广藿香的繁殖技术和品种选育研究，积极推进广藿香的规范化种植，以期为广藿香的产业发展和开发利用提供参考。
关键词：广藿香；种质资源；栽培技术；连作障碍中图分类号：Q949.748.5 文献标识码：AResearch Progress on Germplasm Resources and Cultivation Tech-niques of Pogostemon cablinGU Yan, MEI Yu, XU Shiqiang, SUN Mingyang, ZHOU Fang, LI Jingyu, WANG Jihua*Crop Research Institute, Guangdong Academy of Agricultural Sciences / Key Laboratory of Crops Genetics and Improvement of Guangdong Province / Guangdong Provincial Engineering and Technology Research Center for Conservation and Utilization of the Genuine Southern Medicinal Resources, Guangzhou, Guangdong 510640, ChinaAbstract: Pogostemon cablin (Blanco) Benth. is a perennial herb or semi-shrub plant, which is one of the famous me-dicinal herbs in China. The dry aboveground part is usually used as medicine which has the effects of aromatizing tur-bidity, appetizing and stopping vomiting, releasing and relieving heat and thus becomes the raw material of many kinds of Chinese patent medicine. Besides, the patchouli oil extracted from it is also an important raw material of pharmaceu-tical and chemical industry in the world, with high economic value and broad market prospect. Patchouli was brought into China for cultivation from tropical areas, resulting in single germplasm type, narrow genetic basis and extremely limited resources. Due to the long-term effect of natural environment and cultivation, the germplasm of patchouli has several variation and differentiation. Currently, patchouli is mainly distributed in Guangdong, Guangxi, Fujian and Hainan provinces of China and could be divided into four species including Paixiang, Zhaoxiang, Zhanxiang and Nanxiang. There are serious continuous cropping obstacles during the cultivation of patchouli. Due to extensive field收稿日期 2021-12-09；修回日期 2022-03-14基金项目 广东省农业科学院创新基金项目（No. 202110）；广东省现代农业产业技术体系创新团队项目（南药产业）（No.2019KJ148）；广东省农业科学院科技创新战略专项资金（高水平农科院建设）－金颖之星（No. R2019PY-JX003）。
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广藿香的组培快繁技术研究黄锋;曾劲松【摘要】以广东省遂溪县乌塘镇广藿香嫩茎为外植体,研究影响丛生芽诱导、增殖与壮苗生根的主要因素.结果表明:遂溪乌塘广藿香的外植体处理过程中,用0.1％升汞(加2滴吐温-80)溶液消毒8min.,污染率和褐变率最低;适宜丛生芽诱导分化的培养基是MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L;最佳增殖培养基是MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.2mg/L;生根培养基以MS+IAA0.5 mg/L+IBA0.5 mg/L最佳,生根率达100％,而且根系发育良好.【期刊名称】《热带林业》【年(卷),期】2018(046)001【总页数】3页(P4-6)【关键词】遂溪乌塘;广藿香;组织培养【作者】黄锋;曾劲松【作者单位】湛江市林业科学研究所,广东湛江 524033;海南渊源农业科技有限公司,海南海口 570276【正文语种】中文【中图分类】S722.3+7广藿香Pogostemon cablin(Blanco)Benth.为唇形科刺蕊草属多年生草本植物，喜温暖湿润和光照充足环境，怕霜冻，宜疏松肥沃和排水良好的沙壤土，生长最适温度为22～28℃。
原产菲律宾、马来西亚、印度等国，目前广东是主要产地。
广藿香作为中国传统药料由来已久，其挥发油具有抗菌、抗病毒、消炎、促进消化、抗氧化药理活性[1]。
此外，广藿香还广泛应用于食品、香料等领域。
广东省遂溪县乌塘镇地处雷州半岛北部，螺岗岭脚下，110°00′15″E，21°16′14″N。
属于亚热带气候，雨量充沛、长年无霜，土地肥沃，有雷州青运河横贯全镇，还有两条自然河流贯穿，灌溉便利，非常适合广藿香生长。
自1960年起，当地群众开始种植广藿香，广藿香是当地传统的经济作物，药效佳，销路广、效益高。
随着种植规模不断扩大，传统的剪枝扦插种植模式虽然简单易行，但长期采用扦插繁殖,引起植株生长缓慢、参差不齐,且病虫害发生率高、抗逆性弱,单位产量低[2]。
故采用新的繁殖方式以助提高广藿香的品质和产量的必要性。
喻良文等在做不同繁殖方式的广藿香药材挥发油分析表明，用组织培养繁殖与扦插繁殖的遂溪广藿香，其挥发油差异微小[3]。
因此，研究广藿香种苗组培快繁技术，可为今后遂溪乌塘镇广藿香种植的种源提纯、优化以及工厂化育苗提供技术基础。
1 材料和方法1.1 材料（1）以乌塘镇生长健壮、无病虫害的优良广藿香（以下简称乌塘广藿香）单株芽条作外植体。
（2）外植体诱导分化与芽增殖培养基：均采用MS基本培养基+适量细胞分裂素和生长素；添加3%白糖、0.6%琼脂，pH 值为 5.8。
（3）生根培养基：1/2MS+适量生长素。
添加3%白糖、0.5%琼脂，pH 值为 5.8。
1.2 方法（1）外植体选择与消毒处理：在天气条件良好时，选择生长健壮、无病虫害的优良单株幼嫩茎段，用自来水冲洗30min.，在无菌条件下用75%酒精浸泡8～10s，再用0.1%升汞加2滴吐温-80溶液浸泡,按不同时长分别处理，4、6、8、10、12、14min.，无菌水冲洗各5次，然后切成2～3cm带节小段，接种于诱导培养基上。
（2）培养条件：培养室温度为28℃，光照约2500Lx，光照时间约14h/d（外植体诱导和材料增殖转接采用暗培养7d）。
（3）外植体诱导：将不同消毒处理后的外植体接种于诱导培养基，诱导培养基采用MS培养基+6-BA1.0m g/L+N AA0.2m g/L组合，每个处理接种40个外植体，比较外植体的污染、褐化情况。
外植体接种大约20d左右，没有褐变和污染的外植体节间萌发出小芽。
(4)增殖培养：将诱导出的芽转接到增殖培养基中开始扩繁，转入增殖培养阶段。
增殖培养阶段,不同浓度的6-BA和NAA组合对乌塘广藿香丛芽增殖的效果进行比较。
以乌塘广藿香丛芽在不同培养基中转接3次（每次以25d为一个周期）后的生产情况进行观察和分析。
6-BA浓度分别为0.2、0.5、1.0、2.0.mg/L，NAA 浓度为 0.1、0.2、0.5mg/L，每种培养基分别接种20个芽。
(5)生根培养：生根阶段采用1/2MS培养基，然后对NAA和IBA在芽苗诱导生根过程中的效果进行比较。
分别设 NAA 浓度为 0.2、0.5、1.0、2.0m g/L，IBA浓度为 0.2、0.5、1.0、2.0mg/L，每种培养基分别接种100株苗，比较生根情况，25d后统计生根指标。
(6)试管苗移栽：把不同生根培养基中诱导生根的试管苗炼苗后，移栽到泥炭土、椰糠、珍珠岩、谷壳的混合基质中，30d后比较成活率和生长情况。
2 结果与分析2.1 外植体消毒处理从表1可知，升汞消毒时间对外植体的污染率和褐变率影响非常明显，消毒时间低于4min.污染率达100%，消毒时间超过14min.后，褐变率达100%。
而消毒时间为8min.时，诱导成功率最高，诱导率达51%。
这一结果与伍彧、李明的实验发现[4]基本吻合，但与叶片做为外植体时的结果有较大差异[5]。
表1 不同消毒处理时间对外植体诱导成功率的影响Table 1 The effect of different disinfecting time in the success rate of ex-plant induction外植体污染率（%）消毒时间(min.) 接种数量（个）褐化率（%）诱导率（%）6 0嫩茎4681 0 100 68 31 22 20 51 31 12 14 40 40 40 40 40 40 82 12 18 47 84 100 802.2 不同浓度的生长素和细胞分裂素对广藿香丛芽增殖的影响没有褐变和污染的外植体在诱导培养基中培养10d左右，节间处开始萌发出芽点，继续培养15d左右，芽点长成长度大约2cm的嫩芽后，将其从外植体切下转接到新的增殖培养基中培养，从而进入继代苗增殖阶段。
增殖培养基选择不同浓度的6-BA和NAA进行比较，挑选最合适的增殖培养基。
表2 不同激素水平对增殖培养的影响Table 2 The effect of different hormone levels in the tissue culture and propagation培养基代号激素水平(mg/L)NAA6-BA 增殖倍数苗高（cm）生长情况M1 M2 M3 M4 M5 M6 M7 M8 M9 M10 0.2 0.2 0.5 0.5 0.5 1.0 1.0 1.0 2.0 2.0 0.1 0.5 0.1 0.2 0.5 0.1 0.2 0.5 0.2 0.5 2.5 2.8 5.5 5.8 5.6 8.0 8.2 7.5＞20＞20 1.0～1.8 1.2～2.0 1.0～1.5 1.2～2.0 1.5～2.0 0.5～1.0 0.5～1.2 0.8～1.5＜0.4＜0.4长势较好,叶片较大长势不均匀，个体差异较大长势较好长势好,高度适中，个体比较均匀长势一般，苗矮小长势一般，苗矮小、丛芽多长势一般，丛芽多长势一般，丛芽多，生长不均匀(丛芽数量非常多，呈簇状，基本不伸长，有效芽数量少)从表2显示，激素浓度对乌塘广藿香的增殖培养影响很大，尤其是6-BA的浓度对芽苗的增殖起着决定性的影响。
M1和M2（6-BA浓度为0.2m g/L）培养基中，芽苗增殖率相对较低，但苗木长势较好。
M3、M4、M5（6-BA浓度为0.5m g/L）培养基中苗木生长都较好，尤其是M4，苗木高度比较一致，而且生长良好，适合进一步扩繁。
M6、M7、M8（6-BA浓度为1.0m g/L）培养基中，苗木增殖率较高，但苗木偏弱小，丛芽多，不利于壮苗培养。
M9、M10（6-BA浓度为2.0mg/L）培养基中，苗木增殖率非常高，基本呈团簇状，芽都非常细小，不易分辨，也不利于转接和壮苗培养。
在以上几种培养基中，NAA的浓度对苗木生长的影响不是很明显。
2.3 不同生长素对广藿香组培生根的作用乌塘广藿香组培苗扩繁到一定的数量后，就开始转入生根试验。
将长度为1～1.5cm的芽接种于生根培养基中，25d后观察根数及生长情况，结果见表3。
表3 不同激素水平对组培生根的影响Table 3 The effect of different hormone levels in the tissue culture rooting of Patchouli说明：根长及生根条数均取平均值培养基代号激素水平(mg/L)NAA IBA生根时间(d)根长(cm)根数(条/株)生根率(%) 生长情况S1 S2 S3 S4 S5 S6 S7 S8 S9 S10 S11 S12 0.2 0.2 0.2 0.5 0.5 0.5 1.0 2.0 1.0 1.0 2.0 2.0 0.2 0.5 1.0 0.5 1.0 2.0 0.5 0.5 1.0 2.0 1.0 2.0 10 97776766665 1.2 1.4 1.6 1.8 1.5 0.8 1.4 0.8 1.2 1.0 1.0 0.6 2.2 2.5 3.0 3.4 3.2 2.8 3.2 4.0 3.5 3.1 3.0 3.8 92 100 100 100 100 100 100 100 100 100 98 95生根较慢，而且比较细，须根较多生根较慢，比较细，生根较快，根系发育较好，比较粗壮生根较快，根系发育较好，植株生长旺盛生根较快，比较粗壮，生根快，根系短而且比较粗，根部愈伤组织较大生根较快，比较粗壮，生根快，根系短而且比较粗，根部愈伤组织较大生根较快，比较粗壮，生根快，根系短而且比较粗，根部愈伤组织较大生根快，根系短而且比较粗，根部愈伤组织较大生根快，根系短而粗，根部愈伤组织很大，植株生长慢由表3可以看出：在不同的生根培养基中，乌塘广藿香的生根率都很高，属于易生根的品种。
随着IBA和NAA的浓度增加，乌塘广藿香的生根时间会逐渐加快，但太高的激素浓度会促进根部愈伤组织的产生，容易出现畸形苗，苗木生长不正常，甚至会停止生长。
由于是易生根品种，相对较低的激素浓度对乌塘广藿香的生根培养比较有利。
NAA和IBA对乌塘广藿香的生根效果相差不大，只是使用浓度对生根影响较大。
通过比较，接种25d时，生根培养基S4的生根效果最佳，即1/2MS+0.5 mg/L IAA+0.5 mg/L。
2.4乌塘广藿香组培苗移栽及生长状况组培苗移栽前须进行驯化，即在自然光下炼苗5～7d，但需注意控制光照强度，以免光线太强灼伤组培苗。
当驯化5～7d，叶片呈深绿色、苗木比较健壮时从培养瓶中取出小苗洗干净基部培养基，再用0.1%甲基托布津溶液浸泡消毒5min.后栽植于无纺布轻基质袋中。
轻基质成分及比例为泥炭土：椰糠：谷壳：珍珠岩=3：3：2：2。