最新机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管教学文稿
气管插管实验报告
篇一：家兔气管插管实验兔的固定方法背位固定用棉绳拉住兔的上门牙齿固定于手术台柱上。
也可用兔头架，先将兔颈嵌入半圆形铁圈，再将兔嘴套入可调节铁环内。
拧紧固定螺丝，再将长柄固定于手术台的定柱上（四）常用手术的基本操作1.备皮（1）剪毛法：常用于急性实验。
用一般弯剪刀贴皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。
勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。
（2）拔毛法：适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。
（3）剃毛法：用于大动物的慢性实验，用电剃刀顺着毛方向剃毛。
（4）脱毛法：用于无菌手术野备皮。
小动物脱毛，脱毛剂配方：硫化钠8g，淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼酸1g，水75g，调成糊状。
用法：先将手术野的毛剪短，后用棉球涂一薄层脱毛剂，2～3分钟后用温水洗净，擦干，涂一薄层油脂。
鼠类亦可不用剪毛，直接涂脱毛剂。
狗等大动物脱毛，配方：硫化碱10g，生石灰15g，加水至100ml拌匀。
用法：术者戴耐酸手套，用纱布涂之，使狗毛浸透，等2～3分钟后洗净擦干，涂一薄层油脂。
注意切不可在脱毛前用水弄湿脱毛部位，以免脱毛剂渗入毛根造成炎症。
2.消毒常用于慢性实验，一般用3%碘酊和75%乙醇常规法消毒。
（五）常用动物的给药方法及采血方法1.常用动物的给药方法（1）淋巴囊内注射法常用于蟾蜍。
注入药物易于吸收。
方法为左手取动物，右手持注射器以150角斜挑刺入尾骨两侧皮下淋巴囊，缓慢推入，量宜小于0.5ml，因动物皮薄，弹性差，拔针后应用棉球按压针孔片刻。
（2）皮下注射法常用于鼠类、兔、猫、狗等。
鼠类注射法为左手提起其头部皮肤，右手握注射器，以约15o角刺入皮下，缓缓注入药液，拔针后轻压针孔。
小白鼠注入量应小于0.4ml药液。
大白鼠、豚鼠要用大号针头。
鼠类亦可从背部皮下注射，但需两个人合作完成。
兔、狗、猫常在背部或大腿内侧等皮下脂肪少的部位进行皮下注射，禽类常选翼下注射。
（3）肌肉注射法鼠类常选后肢外侧肌肉。
兔、猫、狗多选臀部肌肉，鸟类选胸肌和腓肠肌。
机能学实验家兔的捉拿麻醉气管插管讲课教案
4
5 心
注意事项
麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血； 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
固定在兔台四周的固定木块上。 头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。 4
5
实验步骤
2 气管插管
1、剪毛
2、做切口：沿颈中线从甲 状软骨下到胸骨上
4 3、游离气管：钝性分离皮 下管组，织穿5、线背备侧用结缔组织、食
实验步骤
2 气管插管
1、切开倒“T”形切口：甲状软骨下第3~4软骨环处 2、插管及固定
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机能学实验家兔的捉拿麻醉气管 插管
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
麻醉： 药量：1.5%戊巴比妥钠 2ml/kg 方法：注射耳缘静脉（由耳尖到耳根）
4麻醉成功标志：1、角膜反、疼痛反应消失
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
固定（台式）：
四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结
机能兔子实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解兔子生理机能的基本结构和功能。
2. 观察并分析兔子的心脏、肺脏、肝脏等主要器官的生理活动。
3. 掌握兔子生理机能实验的基本操作技能。
二、实验原理兔子作为一种实验动物，其生理机能与人类有许多相似之处。
通过兔子生理机能实验，可以了解兔子各器官系统的生理功能，为医学研究提供实验依据。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年兔子（体重2-2.5kg）3只。
2. 实验器材：手术器械、解剖显微镜、生理盐水、肝素、乌拉坦、注射器、气管插管、动脉插管、动脉夹、玻璃分针、止血钳、皮钳、绳子、毛剪、镊子等。
3. 实验试剂：20%的乌拉坦、肝素、生理盐水、肾上腺素、复方氯化铵、谷氨酸钠等。
四、实验方法与步骤1. 家兔称重，并注射20%的乌拉坦进行麻醉。
2. 家兔固定在解剖台上，备皮，消毒。
3. 暴露气管，插管，连接记录系统。
4. 暴露心脏，观察心脏的结构和功能，记录心率、血压等指标。
5. 暴露肺脏，观察肺脏的结构和功能，记录呼吸频率、潮气量等指标。
6. 暴露肝脏，观察肝脏的结构和功能，记录肝功能指标。
7. 暴露十二指肠，基底部荷包缝合，十二指肠插管（朝向肠腔）。
8. 观察家兔正常生理指标，停止吸入麻醉。
9. 分为甲、乙、丙三组，分别进行以下实验：- 甲组：注射复方氯化铵，观察肝性脑病的发生。
- 乙组：注射复方氯化铵，同时耳缘静脉给予谷氨酸钠进行治疗。
- 丙组：不结扎肝脏，观察肝性脑病的发生。
10. 动态观察家兔各项指标的变化，记录实验数据。
五、实验结果与分析1. 心脏：兔子心脏呈椭圆形，分为四个腔室，即左右心房和左右心室。
心脏跳动时，心房先收缩，心室后收缩，从而推动血液在体内循环。
实验中观察到兔子心率约为每分钟120-150次，血压约为100-150mmHg。
2. 肺脏：兔子肺脏呈粉红色，分为左右两个肺叶。
肺脏是呼吸系统的重要组成部分，负责氧气的吸入和二氧化碳的排出。
实验中观察到兔子呼吸频率约为每分钟30-40次，潮气量约为50-60ml。
家兔气管插管实验原理
家兔气管插管实验原理家兔气管插管实验是一种常用的实验方法，用于研究气管插管技术的有效性和安全性。
本文将从实验原理、操作步骤和实验结果等方面介绍家兔气管插管实验的相关内容。
一、实验原理家兔气管插管实验的原理在于通过插入气管插管来模拟人体气管插管手术，进而观察和评估插管技术的效果和安全性。
实验中常采用家兔作为实验对象，因为家兔的气管结构与人类相似，且家兔体型较小，易于操作和观察。
二、操作步骤1. 准备工作a. 麻醉家兔：使用合适的麻醉剂对家兔进行麻醉，确保家兔处于无痛觉状态。
b. 消毒准备：对实验所需的仪器、器械和操作台等进行彻底消毒，以确保实验的无菌性。
c. 准备插管器材：包括气管插管、导丝、喉镜等。
2. 插管操作a. 定位：将家兔固定在操作台上，保持颈部伸直，以便插管的顺利进行。
b. 喉镜引导：使用喉镜引导导丝进入气管，确保插管的准确性。
c. 插管：将气管插管顺利地通过口腔或鼻腔插入气管，并固定好插管位置。
3. 实验观察a. 呼吸观察：插管后观察家兔的呼吸情况，包括呼吸频率、深度等。
b. 血氧饱和度监测：使用血氧仪等设备监测家兔的血氧饱和度，评估插管对呼吸功能的影响。
c. 心率监测：监测家兔的心率变化，评估插管对心血管系统的影响。
三、实验结果家兔气管插管实验的结果主要包括插管的成功率、呼吸功能的变化以及家兔的生理指标等。
插管成功率是评估插管技术的重要指标，插管成功率越高，说明插管技术越优秀。
呼吸功能的变化可通过观察家兔的呼吸频率、深度以及血氧饱和度等指标进行评估。
此外，还可以通过监测家兔的心率变化来评估插管对心血管系统的影响。
四、实验应用家兔气管插管实验在临床医学中具有重要意义，可以用于评估气管插管技术的安全性和有效性。
通过此实验可以评估插管对呼吸和心血管功能的影响，为临床医生提供参考，以确保手术操作的安全性和患者的生命安全。
此外，家兔气管插管实验还可以用于研究新型插管材料和技术的应用前景，推动气管插管技术的发展和改进。
兔呼吸运动实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的基本规律和生理特征；2. 研究呼吸运动调节的生理机制；3. 掌握呼吸运动实验的基本操作技能。
二、实验原理呼吸运动是指在中枢神经系统控制下，通过呼吸肌的收缩和舒张，使胸廓节律性地扩大或缩小，从而完成气体交换的过程。
呼吸运动调节机制主要包括：中枢神经系统调节、化学感受器调节和反射调节。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔；2. 实验器材：手术台、常用手术器械、气管插管、呼吸传感器、引导电极、计算机采集系统、生理盐水、20%氨基甲酸乙酯等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：取一只家兔，称重后，用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
2. 气管插管：麻醉后，将家兔背位固定于手术台，剪去颈部与剑突腹面的被毛，切开颈部皮肤，分离气管，插入气管插管。
3. 记录呼吸运动：将引导电极插入家兔的膈神经，通过计算机采集系统实时记录膈肌放电情况，从而反映呼吸运动的频率和幅度。
4. 观察呼吸运动调节：（1）观察家兔正常呼吸运动曲线：记录家兔安静状态下的呼吸频率、幅度和膈肌放电情况。
（2）观察CO2浓度对呼吸运动的影响：将家兔置于含有5%CO2的混合气体环境中，观察呼吸频率、幅度和膈肌放电情况的变化。
（3）观察H+浓度对呼吸运动的影响：将家兔置于含有5%HCl的混合气体环境中，观察呼吸频率、幅度和膈肌放电情况的变化。
（4）观察肺牵张反射对呼吸运动的影响：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸频率、幅度和膈肌放电情况的变化。
五、实验结果与分析1. 家兔正常呼吸运动曲线：家兔安静状态下的呼吸频率约为60次/分钟，幅度适中，膈肌放电呈规律性变化。
2. CO2浓度对呼吸运动的影响：在含有5%CO2的混合气体环境中，家兔呼吸频率明显加快，幅度增大，膈肌放电频率和幅度也随之增加。
3. H+浓度对呼吸运动的影响：在含有5%HCl的混合气体环境中，家兔呼吸频率和幅度明显增加，膈肌放电频率和幅度也随之增加。
机能学实验动物实验技术操作训练
因腹壁与腹腔内脏紧贴，作腹壁切口时一定提起腹壁，以免伤及腹腔内脏。
01
分离输尿管时，注意分清输精管，输精管为围绕输尿管横向走行的白色管，与膀胱无联系。
02
分离输尿管时不要伤及周围血管，以防出血模糊手术野。分离应尽量干净，以便剪口和插管时看得清楚。
03
插管时不要插入肌层与粘膜之间，插入方向应与输尿管方向一致，勿使输尿管扭结。
4
(4)麻醉效果
麻醉过量 实验动物会出现两种情况，一是呼吸、心搏骤停或间断等情况：二是动物全身皮肤色表紫，呼吸运动浅而慢。要密切观察动物生命体征的变化，做好实施各项抢救工作的准备。
麻醉过浅 动物可能出现挣扎、尖叫等表现，需要及时地追加麻醉药物，但一次追加不宜超过总量1／3，并密切观察动物是否已达到麻醉的基本状态。
3.颈总动脉插管术(视频)
A
分离动脉时不要损伤动脉的小分支，以免造成出血。
B
颈总动脉剪口不宜过大或过小，过大易于使颈总动脉插断，过小导管不易插入。
C
动脉导管的插入端要光滑，不能过尖，以防刺破动脉壁，引起大出血。
D
未扎紧动脉插管前不要松动动脉夹。
(2)注意事项
膀胱插管术(视频)
膀胱插管操作要点： 在耻骨联合上方备皮，做一3~5cm的切口，沿腹白线打开腹腔，暴露膀胱，将膀胱向下方翻开，可见白色输尿管。 结扎尿道口。 膀胱底部剪一小口，插入导管，与切口处的膀胱壁结扎固定。
1.家兔的捉拿
可损伤两肾 可造成皮下出血 可损伤两耳
图2 错误捉拿法
家兔的称重
注意点： 调零 切勿使劲按压称面 将家兔放在婴儿秤上，待家兔安静的时候观察体重并记录。
1
2
二、家兔的麻醉
家兔气管插管实验报告
家兔气管插管实验报告
本实验旨在探究家兔气管插管的操作方法及其对家兔呼吸系统的影响，以期为
临床医学提供参考依据。
实验中，我们选取了健康的家兔作为实验对象，通过对其进行气管插管操作，并观察其呼吸情况，记录实验数据，最终得出结论。
首先，我们对家兔进行了术前准备工作，包括测量体温、体重，观察呼吸情况等，确保家兔处于良好的生理状态。
随后，我们进行了麻醉操作，选择合适的麻醉药物，控制麻醉深度，保证家兔在实验过程中不会感到疼痛。
在家兔完全麻醉后，我们进行了气管插管操作，通过专业的插管技术，成功将气管插管置入家兔气管内，并固定好插管位置，以确保插管的稳定性和安全性。
随后，我们观察了家兔的呼吸情况，记录了插管后家兔的呼吸频率、潮气量等
呼吸参数，并与插管前进行了对比分析。
实验结果显示，家兔在插管后呼吸频率略有下降，但潮气量有所增加，呈现出一定的生理变化。
此外，我们还观察到家兔在插管后出现了轻度的咳嗽反应，但并未影响呼吸功能。
在实验过程中，我们严格遵守了实验操作规范，确保了实验的准确性和可靠性。
同时，我们也对家兔进行了良好的术后护理，观察了其恢复情况，并及时处理了可能出现的并发症。
综合以上实验结果，我们得出结论，家兔气管插管操作对家兔呼吸系统产生了
一定的影响，但并未引起严重的生理异常，插管后的家兔呼吸功能基本正常。
因此，家兔气管插管是一种安全有效的操作方法，可用于临床医学的相关研究和治疗实践中。
总之，本实验为我们提供了关于家兔气管插管操作及其对呼吸系统影响的重要
实验数据，为临床医学研究提供了有益的参考依据。
我们将继续深入探究气管插管技术及其临床应用，为医学领域的发展贡献我们的力量。
机能实验之家兔手术操作讲课讲稿
机能实验之家兔手术操作机能实验之家兔手术操作1．皮肤切开：动物麻醉固定后，在切口沿线的中点两侧，分别用血管钳向两侧夹起皮肤，用手术剪在两血管钳之间的皮肤上剪一小口，将剪刀伸进切口，贴紧并挑起皮肤撑开剪刀以钝性分离皮下组织，然后小心剪开皮肤。
分离下面的组织避免使用剪刀，以免发生出血，尽可能作钝性分离。
2．家兔颈部手术：颈部手术主要包括气管插管、颈动脉插管、颈外静脉插管和分离颈部神经等。
（1）气管插管：先用水湿润局部毛发，再用粗剪刀剪去颈部手术部位兔毛，在麻*醉情况下沿颈部正中线切开皮肤5－7cm，分离皮下组织，于正中线分开肌肉，暴露气管，分离出气管，剔尽周围组织，于气管下穿线备用，在甲状软骨下约l cm处剪一倒“T”型切口，插入气管插管，并用线扎紧，再将余线绕气管插管的分又处再行结扎，以防滑脱。
（2）颈动脉插管：将上述切口边缘的皮肤及其下方的肌肉组织向外侧拉开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷走神经、降压神经伴行在一起。
可先将颈总动脉鞘分离出来，再从鞘内分离出颈总动脉，剔尽周围结缔组织，游离出长3～4cm的颈总动脉，尽可能向远心端游离，在动脉下穿2根线，用其中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与动豚夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。
用眼科镊柄垫在颈总动脉下方，用眼科剪在远心端结扎线的近心侧0.3cm处的动脉壁上作一斜切口，切口约为管径的一半，然后将准备好的充满肝素溶液的动脉导管（事先在距导管口上方1.5cm处裹贴一白胶布）由切口向心脏方向插入动脉内。
用已穿好的线扎紧插入导管的血管，并将剩余线平行于导管拉直，与远心端结扎线打一死结，以拉住导管防止其滑脱。
使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后将动脉导管作适当固定。
（3）颈外静脉插管：颈部皮肤切开后，用左手拇指和食指捏住颈部左侧缘皮肤切口，其余三指从皮肤外向上顶起外翻，可清晰的看见位于颈部皮下，胸骨乳突肌外缘的颈外静脉。
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也可用兔头架，先将兔颈嵌入半圆形铁圈，再将兔嘴套入可调节铁环内。
拧紧固定螺丝，再将长柄固定于手术台的定柱上（四）常用手术的基本操作1.备皮（1）剪毛法：常用于急性实验。
用一般弯剪刀贴皮肤依次将手术范围内的皮毛剪去。
勿用手提起毛剪之，以免剪破皮肤。
（2）拔毛法：适用于大、小白鼠和家兔耳缘静脉，以及后肢皮下静脉的注射、取血等。
（3）剃毛法：用于大动物的慢性实验，用电剃刀顺着毛方向剃毛。
（4）脱毛法：用于无菌手术野备皮。
小动物脱毛，脱毛剂配方：硫化钠8g，淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼酸1g，水75g，调成糊状。
用法：先将手术野的毛剪短，后用棉球涂一薄层脱毛剂，2～3分钟后用温水洗净，擦干，涂一薄层油脂。
鼠类亦可不用剪毛，直接涂脱毛剂。
狗等大动物脱毛，配方：硫化碱10g，生石灰15g，加水至100ml拌匀。
用法：术者戴耐酸手套，用纱布涂之，使狗毛浸透，等2～3分钟后洗净擦干，涂一薄层油脂。
注意切不可在脱毛前用水弄湿脱毛部位，以免脱毛剂渗入毛根造成炎症。
2.消毒常用于慢性实验，一般用3%碘酊和75%乙醇常规法消毒。
（五）常用动物的给药方法及采血方法1.常用动物的给药方法（1）淋巴囊内注射法常用于蟾蜍。
注入药物易于吸收。
方法为左手取动物，右手持注射器以150角斜挑刺入尾骨两侧皮下淋巴囊，缓慢推入，量宜小于0.5ml，因动物皮薄，弹性差，拔针后应用棉球按压针孔片刻。
（2）皮下注射法常用于鼠类、兔、猫、狗等。
鼠类注射法为左手提起其头部皮肤，右手握注射器，以约15o角刺入皮下，缓缓注入药液，拔针后轻压针孔。
小白鼠注入量应小于0.4ml药液。
大白鼠、豚鼠要用大号针头。
鼠类亦可从背部皮下注射，但需两个人合作完成。
家兔气管插管实验原理
家兔气管插管实验原理家兔气管插管实验是一种常用的实验方法，用于研究家兔气管插管技术和相关疾病的治疗方法。
本实验旨在通过插入气管插管，模拟气管插管手术过程，探究插管对家兔的影响，并验证插管技术的可行性和安全性。
实验前准备：1.选择健康的家兔，体重适中，免疫系统良好。
2.准备麻醉剂和镇痛剂，确保家兔处于无痛苦和镇静状态。
3.准备气管插管器具，包括气管插管管、导丝、插管固定带等。
实验步骤：1.将家兔置于手术台上，进行全身消毒，确保手术场所无菌。
2.使用注射器将麻醉剂和镇痛剂混合后，通过皮下注射给家兔麻醉。
3.等待麻醉剂起效后，将家兔固定在手术台上，保持舒适的体位。
4.使用无菌手套和器具，进行局部消毒，特别是颈部和喉咙区域。
5.用手指按压家兔的气管，找到气管的位置。
6.将气管插管器的导丝插入家兔的气管中，确保导丝顺利通过气管。
7.将气管插管管沿着导丝缓慢插入家兔的气管，直到插管的一端位于气管末端。
8.固定插管，使用插管固定带将插管与家兔的颈部固定，防止插管脱落。
9.观察家兔的呼吸情况和身体反应，确保插管过程没有引起异常情况。
10.实验结束后，将家兔从麻醉状态中唤醒，观察其恢复情况。
实验原理：1.气管插管可以通过人工方式将插管管插入气管，建立起人工通气通道。
这个通道可以用于给家兔提供氧气和麻醉药物，同时也可以用于清除气道分泌物，预防肺部感染等。
2.插管过程中要注意插管管的长度和位置，确保插管的一端位于气管末端，而不是误插入食道或其他部位。
插管的固定带也要正确使用，保证插管不会松脱。
3.气管插管需要经过严格的消毒和无菌处理，以避免引入细菌或其他病原体，导致感染和并发症。
4.实验中的麻醉剂和镇痛剂的使用，可以减轻家兔的痛苦和不适感，同时也使实验操作更加顺利和安全。
实验结果和意义：1.通过家兔气管插管实验，可以验证气管插管技术的可行性和安全性，为临床操作提供依据。
2.实验结果可以帮助研究人员了解插管对家兔的影响，探究插管对气道和呼吸功能的影响，进一步研究相关疾病的治疗方法。
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实验步骤
2 气管插管
1、切开倒“T”形切口：甲状软骨下第3~4软骨环处 2、插管及固定
头
4
5 心
注意事项
麻醉动物时,注射速度先快后慢, 边注射边观察动物麻醉指征。如麻醉过浅, 动物挣扎时可适量追加麻醉药, 切忌麻醉过深引起家兔死亡；
4麻醉成功标志：1、角膜反射消失
2、肌张力降低
5
3、呼吸减慢
4、疼痛反应消失
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
Hale Waihona Puke 固定（台式）：四肢用粗绳活结固定，拉直四肢，将绳打结
固定在兔台四周的固定木块上。 头用一根粗绳挑过兔门齿固定在兔台上。 4
5
实验步骤
2 气管插管
1、剪毛
2、做切口：沿颈中线从甲 状软骨下到胸骨上
手术过程中操作应轻柔,尽量避免不必要的损伤和出血； 手术时, 切开颈部皮肤后, 尽量钝性分离, 以免损伤血管； 气管插管前，应注意止血，并将气管分泌物清理干净；
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机能学实验家兔的捉拿麻 醉气管插管
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
捉拿： 右手抓兔颈部皮毛提起 左手托其臀部
使兔呈坐位，重量大部分 集中在左手
应避免的错误： 4 1、单提兔耳 25、捉拿四肢 3、提抓腰部、背部
实验步骤
1 家兔捉拿、麻醉与固定
麻醉： 药量：1.5%戊巴比妥钠 2ml/kg 方法：注射耳缘静脉（由耳尖到耳根）