灌胃方法
腹腔注射灌胃实验报告
1. 掌握腹腔注射和灌胃的操作方法；2. 了解腹腔注射和灌胃的优缺点；3. 掌握实验动物的基本操作技术。
二、实验材料1. 实验动物：大鼠（体重约200-300g）；2. 实验药品：生理盐水、葡萄糖、抗生素等；3. 实验器材：注射器、针头、酒精棉球、镊子、剪刀、解剖盘、剪刀、纱布等；4. 实验环境：实验室。
三、实验方法1. 腹腔注射实验（1）准备工作：将实验动物固定在解剖盘上，用酒精棉球消毒实验动物腹部皮肤。
（2）注射操作：左手抓取大鼠腹部皮肤，右手持注射器，针头斜向上，沿腹中线方向进针，进入腹腔后回抽无血液，缓慢注入药物。
（3）注射完毕，用纱布覆盖注射部位，观察动物反应。
2. 灌胃实验（1）准备工作：将实验动物固定在解剖盘上，用酒精棉球消毒实验动物口腔及咽部皮肤。
（2）灌胃操作：左手抓住大鼠头部，右手持注射器，针头沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头后仰以便伸直消化道，缓慢注入药物。
（3）注射完毕，用纱布覆盖注射部位，观察动物反应。
四、实验结果1. 腹腔注射实验：注射过程中，大鼠无不良反应，注射完毕后，动物精神状态良好。
2. 灌胃实验：注射过程中，大鼠无明显不适，注射完毕后，动物精神状态良好。
1. 腹腔注射和灌胃是两种常见的实验动物给药方式，各有优缺点。
2. 腹腔注射的优点是操作简便，药物吸收迅速，但可能引起动物应激反应，且部分药物不适宜腹腔注射。
3. 灌胃的优点是给药量准确，适用于多种药物，但操作过程中可能损伤动物，且药物吸收速度较慢。
4. 在实验过程中，应严格遵守操作规程，确保动物安全。
六、实验结论1. 通过本次实验，掌握了腹腔注射和灌胃的操作方法。
2. 了解腹腔注射和灌胃的优缺点，为今后的实验研究提供参考。
3. 提高了实验动物的基本操作技能，为科研工作奠定基础。
大鼠灌胃实验报告
一、实验目的本实验旨在探究灌胃方法在动物实验中的应用效果，通过对大鼠进行灌胃实验，观察灌胃给药对大鼠生理指标、血液指标和病理组织学的影响，评估灌胃方法的可靠性和安全性。
二、实验材料1. 实验动物：SPF级SD大鼠，体重180-220g，雌雄各半。
2. 实验药物：已知药物，剂量为10mg/kg。
3. 试剂与仪器：灌胃针、注射器、电子天平、血液分析仪、病理切片机、显微镜等。
三、实验方法1. 将SD大鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验组大鼠通过灌胃途径给予已知药物，剂量为10mg/kg，对照组大鼠给予等体积的生理盐水。
3. 灌胃操作：将大鼠固定在实验台上，用灌胃针将药物缓慢注入大鼠口腔，直至药物完全进入消化道。
4. 给药后，观察大鼠的生理指标、血液指标和病理组织学变化。
5. 实验结束后，对大鼠进行解剖，采集相关组织样本，进行病理切片和显微镜观察。
四、实验结果1. 生理指标：实验组大鼠在给药后出现轻微的呕吐、腹泻等症状，但症状持续时间为1-2天，未出现死亡现象。
对照组大鼠生理指标无明显变化。
2. 血液指标：实验组大鼠给药后血液白细胞计数、红细胞计数、血红蛋白浓度等指标无明显变化，与对照组相比无统计学差异。
3. 病理组织学观察：实验组大鼠胃黏膜、小肠黏膜、肝脏、肾脏等器官组织无明显病变，与对照组相比无统计学差异。
五、讨论与分析1. 灌胃方法是一种常用的动物实验给药途径，具有操作简便、给药剂量准确、对动物生理影响较小的特点。
2. 本实验结果显示，灌胃给药对大鼠生理指标、血液指标和病理组织学影响较小，说明灌胃方法在本实验中具有较高的可靠性和安全性。
3. 然而，灌胃方法也存在一定的局限性，如给药剂量难以精确控制、药物吸收速度较慢等。
在实际应用中，应根据实验目的和动物种类选择合适的给药途径。
六、结论本实验结果表明，灌胃方法在大鼠实验中具有较高的可靠性和安全性，可用于动物实验的给药途径。
在后续实验中，可根据具体实验目的和动物种类，选择合适的灌胃方法，以获得准确的实验结果。
小鼠灌胃操作要点及注意事项
小鼠灌胃操作要点及注意事项小鼠灌胃是一种常用的实验操作方法，用于给小鼠灌输物质。
以下是小鼠灌胃操作的要点和注意事项：一、操作要点：1.准备工作：a.准备所需的灌胃针、注射器、化学药品等。
b.准备小鼠，先将小鼠固定在操作台上，保持其安静。
c.为小鼠准备灌胃槽或灌胃袋，确保其质量干净。
2.前置处理：a.按照实验需要，给小鼠空腹或饥饿。
b.清理小鼠口腔，将小鼠头部固定，用湿纱布或棉签轻轻擦拭小鼠口腔内侧，以确保吞咽功能正常。
3.灌胃操作：a.对小鼠进行适当的麻醉或麻醉前处理，以减轻小鼠的压力和疼痛感。
b.将小鼠牙齿用软胶膨化剂夹住（或用手指轻轻按压），使其张嘴。
c.将灌胃针缓慢插入小鼠食道，并确保进入胃内，但不要插得太深。
可以通过咽喉喉反射来判断是否插入正确。
d.缓慢注入要灌胃的药物或液体，避免引起窒息或误吸入气管。
e.缓慢拔出灌胃针，确保药物不会被小鼠吐出。
4.恢复：a.灌胃操作完成后，放开小鼠，并观察其情况，确保其恢复正常。
b.可以给小鼠提供适当的水和食物。
二、注意事项：1.灌胃操作需要高度的细心和耐心，确保操作平稳，避免误伤小鼠。
2.选择适当的灌胃针和注射器，以确保灌胃过程顺利进行。
3.在灌胃针插入前应检查其是否被弯曲或损坏，确保能正常灌胃。
4.在灌胃操作过程中，要避免过度灌注或迅速拔出灌胃针，以免引起小鼠呕吐或误吸。
5.灌胃前可以给小鼠提供适当的水和食物，以减轻其饥饿感和不适。
6.灌胃操作结束后，要观察小鼠的情况，如有异常表现应及时处理。
7.尽量减少灌胃操作的次数和时间，以减少小鼠的压力和疲劳感。
8.在进行小鼠灌胃操作时，应遵守实验伦理规范和相关法律法规。
总之，小鼠灌胃操作是一种常用的实验方法，但需要进行细致的操作和注意事项，以确保操作的准确性和小鼠的安全性。
同时，要尊重动物福利，遵循伦理和法律规定，以保护实验动物的权益。
小鼠灌胃操作要点及注意事项
小鼠灌胃操作要点及注意事项一、操作要点。
1.准备工作：在操作前要准备好所需物品：小鼠、胃管、吸管、注射器、药品或营养液等。
同时，还要确保操作过程中的安全和舒适性，维持操作环境的清洁和温度的适宜。
2.选择合适的胃管和吸管：胃管和吸管应根据小鼠的体重和年龄选择，胃管应略长于小鼠体长的1/5，吸管要略短于胃管的长度，以便有效吸取经过胃肠道的液体。
3.固定小鼠：将小鼠取出放入操作台上，用手掌将其身体固定，让小鼠头部向上，使其舌头伸出口外，用手持注射器或吸管轻压舌头，使其张开嘴巴。
4.插入胃管：将已冲洗干净的胃管沿着舌头推入口腔内，让其顶到舌根部的位置，然后沿着颈部咽喉处缓慢推进，直到胃管穿过食管，进入胃内为止。
注意：操作过程中要避免将胃管插入气管或肺部，同时要注意不要刺伤食管，以免引起感染。
5.插入吸管：将吸管插入口腔，经过较粗的食管及胃肠道，插入胃管一端，只留下另一端露出口外。
然后，将吸管口与注射器连接，缓慢将药物或营养液注入。
6.除去胃液：将药物或营养液注入胃管后，用注射器或吸管轻吸几次，排出胃液和药物或营养液中的气泡，然后拔出胃管和吸管，松开小鼠以便排空胃肠道。
二、注意事项。
1.准确测量：在给小鼠灌胃时，必须准确测量所需药物或营养液的剂量，尽可能减少误差和副作用。
3.保护小鼠：操作时要保持小鼠的身体舒适和安全，不要让其感到惊恐或疼痛。
将小鼠固定时避免施加过大的力量，插入胃管和吸管时不能过于粗暴。
4.清洁和消毒：使用过的器材要及时清洁和消毒，以避免污染和传播病原体。
综上所述，正确的小鼠灌胃操作方法和注意事项能有效提高实验结果的准确性和可靠性，从而确保实验的科学性和严密性。
灌胃方法——精选推荐
灌胃⽅法
给药剂量按⼈与动物体质量⼀剂量换算公式：
⼤⿏的剂量(mg/kg)=W×⼈的剂量(mg／kg)
W是换算系数在这⾥约等于6．5，制备药液浓度为0．185g／ml，每天2次给药，每次2ml，共计给药四周。
⼤⿏真武汤⾼剂量每天每次灌胃3ml，37.5g/kg，每天共灌胃6ml,约合⽣药7.5g；
⼤⿏真武汤中剂量每天每次灌胃3ml，18.75g/kg，每天共灌胃6ml,约合⽣药3.75g；
⼤⿏真武汤低剂量每天每次灌胃3ml，9.37g/kg，每天共灌胃6ml,约合⽣药1.87g，
中药组予以真武汤灌胃，给药剂量按⼈和动物体质量—剂量换算公式：⼤⿏的剂量（g/kg）=W×⼈的剂量（g/kg），W是换算系数约等于6.3。
⼤⿏剂量是18.9g/kg，约合⽣药3.78g，
间等效剂量换算⽅法折算⼤⿏服⽤剂量作为中剂量，按1:2:4设⾼中低三个剂量组，（中剂量为正常剂量）。
末次注射⼀周后给予药物⼲预，空⽩对照组及模型组
予⽣理盐⽔2mL灌胃，中药组给予中药灌胃治疗。
给药剂
量按⼈与动物体质量⼀剂量换算公式障]：⼤⿏的剂量
(mg／kg)=W×⼈的剂量(rng／kg)，W是换算系数在这⾥
约等于6．5，制备药液浓度为0．1859／IIll，共计给药四周。
小鼠灌胃操作要点及注意事项
小鼠灌胃操作要点及注意事项小鼠灌胃是一种常用的实验操作方法，用于给小鼠灌输溶液、药物或其他物质。
正确的灌胃操作可以保证实验结果的可靠性，同时也要注意对小鼠的生理和行为影响。
一、灌胃操作要点：1. 预备工作：(1) 准备所需的实验器材，包括灌胃针、注射器、药物或其他物质。
(2) 确保操作环境的清洁和消毒，以防止潜在的感染。
(3) 合理安排实验时间，以避免影响小鼠正常的进食、活动和休息。
2. 小鼠准备：(1) 选择适合的小鼠，一般选择体重在20-30g之间、健康的小鼠。
(2) 在操作前，将小鼠放置在灌胃台上，尽量保持其镇静和稳定。
(3) 清洁小鼠鼻孔和口腔，以防止灌胃时出现异物或分泌物。
3. 操作步骤：(1) 抓住小鼠的脖子部位，将小鼠的口腔打开。
(2) 将灌胃针插入小鼠的食管，插入位置应当与小鼠头部姿势平行，以减少损伤食管和误入气道的风险。
(3) 慢慢注入所需的溶液或物质，注射器压力应适中，以防止液体流入气管或其他不正确的位置。
(4) 边灌胃边轻轻摇动小鼠的体部，帮助溶液更好地进入胃部。
(5) 操作结束后，保持小鼠的体位稳定，以便溶液在胃中充分混合和吸收。
4. 灌胃后的处理：(1) 在灌胃结束后，及时将小鼠放回其饲养箱内，并观察其恢复情况。
(2) 注意监测小鼠的进食、水分摄入和体重变化，以评估灌胃对其生理状况的影响。
(3) 根据实验需求，可在一定时间范围内重复灌胃操作，但要注意避免对小鼠造成过多的应激和伤害。
二、注意事项：1. 灌胃操作需要经过专业培训，并严格按照实验室的规范操作。
操作人员应掌握灌胃技巧，并了解小鼠的生理特点和行为习性。
2. 灌胃针的选择要合适，长度和直径应根据小鼠的体重和年龄来选择，以免造成食管和胃部的损伤。
3. 注射器的压力要适中，过大的压力会导致溶液迅速注入胃部，增加小鼠感受到的不适。
过小的压力则可能导致溶液无法流入胃部。
4. 灌胃操作时要注意观察小鼠的反应，如有异常反应，如嗳气、剧烈挣扎等应立即停止操作，并观察小鼠的恢复情况。
小鼠灌胃操作实验报告
一、实验目的1. 掌握小鼠灌胃的基本操作技巧。
2. 熟悉灌胃过程中可能遇到的问题及解决方法。
3. 了解灌胃操作在实验研究中的应用。
二、实验原理灌胃法是实验动物给药的一种常用方法，通过将药物灌入动物的胃中，使药物在小肠吸收，达到实验目的。
灌胃法操作简便，对动物损伤较小，适用于多种实验研究。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠（体重20-25g，雌雄不限）。
2. 实验器材：灌胃针头、注射器、生理盐水、酒精、棉球、鼠笼、天平等。
3. 实验药物：2%尼可刹米溶液（10g/0.2mL）。
四、实验步骤1. 动物准备：选取体重相近、性别相同的小鼠2只，进行编号和称重。
2. 灌胃操作：- 将小鼠固定在鼠笼中，使其头部和颈部成一直线。
- 使用酒精棉球消毒小鼠口鼻部位。
- 右手持注射器，将灌胃针头插入小鼠口角，沿着咽后壁缓慢推进至食道。
- 在推进过程中，观察小鼠的反应，如出现不适，立即停止操作。
- 当灌胃针头进入食道后，调整角度，使针头进入胃内。
- 将2%尼可刹米溶液缓慢注入小鼠胃中，注射完毕后迅速拔出灌胃针头。
3. 灌胃后观察：灌胃后，观察小鼠的反应，如出现异常，及时进行处理。
4. 实验结束：实验结束后，将小鼠放回鼠笼，并进行日常管理。
五、实验结果1. 灌胃操作顺利进行，小鼠无异常反应。
2. 灌胃后，小鼠表现正常，活动如常。
六、实验讨论1. 灌胃操作过程中，要注意保持小鼠头部和颈部成一直线，方便灌胃针头进入。
2. 操作时动作要轻柔，避免损伤小鼠食道。
3. 灌胃针头插入过程中，若小鼠出现不适，应立即停止操作，并观察小鼠反应。
4. 灌胃后，要注意观察小鼠的反应，如出现异常，应及时进行处理。
七、实验总结本次实验成功掌握了小鼠灌胃操作技巧，了解了灌胃操作在实验研究中的应用。
在实验过程中，要注意操作规范，确保实验顺利进行。
八、注意事项1. 灌胃操作前，应充分了解实验目的和操作步骤，确保实验顺利进行。
2. 操作过程中，要注意保持小鼠头部和颈部成一直线，避免损伤小鼠食道。
灌胃方法
给药剂量按人与动物体质量一剂量换算公式：
大鼠的剂量(mg/kg)=W×人的剂量(mg／kg)
W是换算系数在这里约等于6．5，制备药液浓度为0．185g／ml，每天2次给药，每次2ml，共计给药四周。
大鼠真武汤高剂量每天每次灌胃3ml，37.5g/kg，每天共灌胃6ml,约合生药7.5g；
大鼠真武汤中剂量每天每次灌胃3ml，18.75g/kg，每天共灌胃6ml,约合生药3.75g；
大鼠真武汤低剂量每天每次灌胃3ml，9.37g/kg，每天共灌胃6ml,约合生药1.87g，
中药组予以真武汤灌胃，给药剂量按人和动物体质量—剂量换算公式：大鼠的剂量（g/kg）=W×人的剂量（g/kg），W是换算系数约等于6.3。
大鼠剂量是18.9g/kg，约合生药3.78g，
间等效剂量换算方法折算大鼠服用剂量作为中剂量，按1:2:4设高中低三个剂量组，（中剂量为正常剂量）。
末次注射一周后给予药物干预，空白对照组及模型组
予生理盐水2mL灌胃，中药组给予中药灌胃治疗。
给药剂
量按人与动物体质量一剂量换算公式障]：大鼠的剂量
(mg／kg)=W×人的剂量(rng／kg)，W是换算系数在这里
约等于6．5，制备药液浓度为0．1859／IIll，共计给药四周。
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随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。
根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。
尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。
在国内文献上却很少见到具体的描述。
在此，作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。
一、灌胃器具制作
1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作
小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个，一是从市面上购买特制的I2～l6号灌胃针。
二是自制。
自制方法为：取l2号普通注射针头，首先将针头尖部去掉，然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光，再用沙纸磨光滑，有条件时可在针尖处点焊成球型。
加工成有20度弧度的灌胃针，连接1ml或5ml的注射器，即成为大小鼠的灌胃器。
在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀，否则就会将针管弄扁，影响针管畅通。
豚鼠灌胃器，可采用大鼠灌胃器。
1.2家兔灌胃器的制作
取12号腰椎穿刺针。
加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作，针体长约9cm，并连接10ml或20ml注射器，即家兔灌胃器。
二、灌胃操作方法
2.1小鼠经口灌胃给药方法
先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起，置于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠向前挣扎时，用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤，翻转小鼠置于掌心，拉直后肢，以小指压住小鼠尾巴即可。
在保定小鼠过程中，不要用力过大，勿握其颈部，以免窒息死亡。
以灌胃器轻轻压其头部，使口腔与食道成一条直线，再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道，当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。
如果灌胃针的位置插入正确，小鼠可自行吞服药，灌胃针插入位置不正确，小鼠会强烈挣扎，必须拔出重插，否则可能将药物灌入气管，造成小鼠死亡。
注完药液后轻轻抽出灌胃针。
小鼠一次最大灌胃量为：0.4ml/10g.w。
2.2大鼠经口灌胃给药方法
大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。
根据长期的实践经验，我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上，既可以防滑，又可以给初学者一种安全感。
为了防止大鼠咬伤，应戴上帆布手套。
大鼠体型较大，所以不能象保定小鼠那样可以把尾巴压住。
同样在保定大鼠时不能用力过大和握其颈部，尤其在采取抓握保定大鼠时，要特别注意。
大鼠灌胃的关键是左手把大鼠头部固定好，使其头不能随意摆动。
其他操作方法与小鼠基本相同。
灌胃针进入深度为5cm左右。
大鼠一次灌胃最大容量 2ml/100g.w。
2.3豚鼠经口灌胃给药方法
把豚鼠放在实验台上，用一块干纱布罩住其头，将豚鼠固定在左手掌下，用拇指和食指挤压其口角部让口张开。
然后，右手持抽好药物的灌胃器，沿豚鼠上腭壁插入食道。
如果灌胃器插入顺畅，位置正确，豚鼠会自动吞咽。
否则，豚鼠会乱动，此时应立即拔出灌胃器，重新插入灌胃器，灌胃器进入深度为5cm左右。
豚鼠一次灌胃最大容量2.0ml/100g.w。
2.4家兔经口灌胃给药方法
把实验兔放在实验台上，用左手掌从头部握住兔头颈部，将其固定，用拇指和食指使劲压迫其口角部使口张开。
然后，右手持抽好药液的灌胃器，用有弧度灌面从右口角处慢慢插入。
如插入位置正确就会看见兔自动吞咽，如插入不对，动物就会乱动，此时应立即拔出灌胃器，重新插入灌胃器，灌胃针进入深度为 15～18cm。
药物注完后，慢慢拔出灌胃器。
用此方法给兔灌胃给药，基本上不会把药物误注入气管。
家兔一次的最大灌胃量为：80～150ml/只。
三、注意事项
3.1小鼠、大鼠
保定动物时，一定要固定好动物，使动物头不要随意摆动，但不能挤捏颈部。
灌胃器针头弧度面向前从动物右角处插入，灌胃动作要轻柔。
不能虐待动物，尤其是大鼠，否则，容易被其咬伤。
插入灌胃针时，如果遇到阻力，不能用力继续进针，应停止进针，等待其自动吞咽时，迅速进针。
否则，容易损伤动物食道。
3.2豚鼠
豚鼠虽然性情比较温顺，但是胆小，容易被惊吓。
所以，捕捉豚鼠时，动作要敏捷而轻柔。
保定动物时，要在其头部盖上一块纱布。
固定动物，要使其头不能随意摆动。
灌胃时，插入灌胃器动作不能过大，不要损伤动物食道。
3.3家兔
保定家兔，一定要使其头部不能随意摆动，要做到这一点，左手要用力卡住兔左右嘴角。
插入灌胃器的位置要正确，不要误入气管。