细胞生物学实验方法与技术

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细胞生物学实验方法与技术

细胞生物学实验方法与技术

第二节细胞生物学实验方法与技术当前细胞生物学与医药保健事业联系的较为紧密的热点问题主要有以下几种:1)真核细胞基因结构及其表达调控;2)细胞膜、膜系、受体与信号传递研究;3)细胞生长、分化、衰老、癌变、死亡,尤其是程序性细胞死亡的研究;4) 细胞工程,包括基因工程及体细胞核移植的研究。

一、细胞培养常用方法1、细胞原代培养(primay culture)又称初代培养,即直接从机体取下细胞、组织、或器官、让他们在体外维持与生长。

原代细胞的特点是细胞或组织刚离开机体,他们的生物状态尚未发生很大的改变,一定程度上可反映他们在体内的状态,表现出来源组织或细胞的特性,因此用于药物实验尤其是药物对细胞活动、结构、代谢、有无毒性或杀伤作用等研究是极好工具。

常用的原代培养方法有组织快培养法及消化培养法。

前者方法简单,细胞也较易生长,尤其是培养心肌有时能观察到心肌组织块的搏动。

细胞从组织块外长并铺满培养皿或培养瓶后即可进行传代。

2、细胞的传代培养当细胞生长至单层汇合时,便需要进行分离培养否则会因无繁殖空间、营养耗竭而影响生长,甚至整片细胞脱离基质悬浮起来直至死亡。

为此当细胞达到一定密度时必须传代或再次培养,目的是借此繁殖更多的细胞,另一方面是防止细胞的退化死亡。

二、器官培养方法器官培养(organ culture)是指用特殊的装置使器官、器官原基或它们的一部分在体外存活,幷保持其原有的结构和功能。

器官培养可模拟体内的三维结构,用于观察组织间的相互反应、组织与细胞的分化以及外界因子包括药物对组织细胞的作用。

器官培养方法很多,最经典的方法即表玻皿器官培养法;一种最常用的方法是不锈钢金属网格法及Wolff培养法和扩散盒培养法,实验者可根据情况选择采用。

三、放射自显影术测定放射自显影术(autoradiography)是利用放射性同位素电离辐射对核子乳胶的感光作用,显示标本或样品中放射物的分布、定量以及定位的方法。

放射性同位素能在紧密接触的感光乳胶中记录下它存在的部位和强度,准确显示出形态与功能的定位关系。

医学细胞生物学实验

医学细胞生物学实验
采用荧光染色、流式细胞术、免疫组化等方法检测细胞凋亡的数量、形态和相关蛋白的表达。
细胞凋亡诱导与检测
细胞凋亡检测
细胞凋亡诱导
自噬诱导
通过饥饿、药物刺激等手段诱导细胞自噬,以研究自噬的生物学意义和作用机制。
自噬检测
采用荧光染色、电镜观察、蛋白质印迹等方法检测自噬体的形成、数量和相关蛋白的表达。
自噬诱导与检测
03
02
01
实验原理
实验设计
根据实验目的和原理,设计具体的实验方案和操作流程。
实验操作
按照实验方案进行实验操作,包括细胞培养、显微观察、分子生物学检测等步骤。
数据收集与分析
收集实验数据,进行统计分析,得出实验结果。
结果汇报与讨论
将实验结果以书面形式汇报,并进行讨论和总结。
实验步骤
02
细胞培养
CHAPTER
利用免疫荧光染色、荧光共振能量转移等技术,可以检测和定位细胞内特定信号分子的分布和动态变化,进而揭示其在信号转导中的作用机制。
详细描述
总结词
信号转导抑制剂的应用
总结词:信号转导抑制剂是一类能够干扰细胞信号转导过程的化合物,具有潜在的治疗作用。
07
细胞凋亡与自噬研究
CHAPTER
通过使用化学物质、射线、病毒等手段诱导细胞凋亡,以研究其发生机制和生物学意义。
电子显微镜
利用电子束代替可见光,观察细胞超微结构。
显微镜观察
通过显微镜或细胞计数板,统计细胞数量。
细胞计数
利用染色剂或荧光染料,检测细胞活性,如MTT法、染色排除法等。
细胞活力检测
细胞计数与活力检测
利用染色剂对细胞进行染色,以便观察细胞形态和结构。
染色技术

细胞生物学的研究方法与技术

细胞生物学的研究方法与技术

细胞生物学的研究方法与技术细胞生物学是研究细胞结构、功能及其在生物过程中作用的学科。

细胞生物学的发展离不开许多研究方法和技术的支持,这些方法和技术涉及多方面的学科,包括生物学、化学、物理学等,为细胞生物学的研究提供了有力的工具和手段。

常见的细胞生物学研究方法包括显微镜技术、细胞培养、各种分离和纯化技术、蛋白质组学、基因组学、转基因技术以及细胞途径和信号传导的研究等。

显微镜技术是细胞生物学的基础工具之一,早在17世纪就有学者发现了显微镜的作用。

如今,显微镜已经发展到了高倍率、高分辨率水平,并且应用范围越来越广。

荧光显微镜能够将酶标法和细胞组织学高效结合,使得研究人员能够看到细胞中特定蛋白质的位置及其在细胞内的转移过程,这种技术促进了细胞和分子生物学的研究进展。

另一个广泛应用的细胞生物学技术是细胞培养技术。

细胞培养可以使研究人员通过体外实验的方法来探究细胞生物学的许多方面,例如细胞增殖、代谢、分化以及感染和治疗等方面。

同时,细胞培养技术也为其他科学领域如医学和药物研发提供了重要工具和方法。

分离和纯化技术也是细胞生物学研究的重要方法之一。

这些技术用于从细胞中分离出不同的细胞结构和分子,以便对它们进行研究和分析。

例如,对蛋白质的分离和纯化可使研究人员了解蛋白质的功能和结构,以及它们如何参与到多种细胞过程中。

蛋白质组学和基因组学是近年来迅速发展起来的研究领域。

随着研究的深入,我们了解到不同细胞中的蛋白质和基因组成具有多种不同的功能。

可以通过分析这些蛋白质和基因组以探究它们在不同疾病中的作用,并且这些研究可为新药物的开发提供重要参考。

转基因技术是一种较新兴的细胞生物学研究方法。

通过转基因技术,研究人员可将指定的基因嵌入宿主细胞,以进一步研究这些基因的功能和影响。

转基因技术在药物研发和基因工程等领域有着广泛的应用,并是细胞生物学领域的重要组成部分。

最后一个细胞生物学研究方法是研究细胞途径和信号传导。

细胞途径和信号传导可使研究人员了解到不同的生物分子之间相互作用的机制,以及它们如何在生物过程中发挥作用。

细胞生物学实验:细胞膜的渗透性

细胞生物学实验:细胞膜的渗透性

五、实验结果
未溶血
溶血
作业
试管编号
1.10ml氯化钠+1ml稀释血 2.10ml氯化铵+1ml稀释血 3.10ml醋酸铵+1ml稀释血
4.10ml硝酸钠+1ml稀释血
5.10ml草酸铵+1ml稀释血 6.10ml硫酸钠+1ml稀释血 7.10ml葡萄糖+1ml稀释血 8.10ml甘油+1ml稀释血 9.10ml乙醇+1ml稀释血 10.10ml丙酮+1ml稀释血
是否溶血 时间ຫໍສະໝຸດ 结果分析细胞生物学实验课件
盐城师范学院生命科学与技术学院
实验:细胞膜的渗透性
一、实验目的
了解细胞膜的渗透性及各种物质进入细胞膜 的速度。
二、实验原理
在低渗液中,红细胞很快吸水胀裂,称为溶 血。在等渗液中,由于有些溶质会进入红 细胞内、引起细胞渗透压升高,细胞也会 吸水胀裂,由于各种物质透入细胞的速度 不同,溶血的时间不同。
三、实验用品
1.器材: 烧杯、移液管、试管、试管架等 2.试剂: 0.17mol/L氯化钠和其他等渗液。 3.材料: 鸡血
四、实验方法
1. 低渗溶液
试管一支:
• 鸡血红细胞液1ml;
• 蒸馏水10ml;
• 结果溶血,溶液变透明。
2. 等渗溶液
• 0.17mol/L氯化钠、0.17mol/L氯化铵、 0.17mol/L醋酸铵、0.17mol/L硝酸钠、 0.12mol/L草酸铵、0.12mol/L硫酸钠、 0.32mol/L葡萄糖、0.32mol/L甘油、0.32mol/L 乙醇、0.32mol/L丙酮10种溶液进行同样实验, 步骤同上。

细胞生物学实验技术

细胞生物学实验技术

细胞生物学实验技术细胞生物学实验技术是现代生命科学研究中的关键环节,它为研究人员提供了深入了解细胞结构、功能和相互作用的途径。

本文将重点介绍一些常见的细胞生物学实验技术,包括细胞培养、染色技术、分离技术和显微镜观察等。

一、细胞培养技术细胞培养是一项基础性技术,它可以将细胞从体内取出并在适当的培养基中进行增殖和维持。

细胞培养的首要任务是提供适当的培养基,其中含有必需的营养物质、生长因子和适当的温度、湿度和气体条件。

细胞培养技术广泛应用于细胞生物学实验、组织工程、药物研发等领域。

二、染色技术染色技术是细胞生物学实验中常用的方法之一,它使研究者能够对细胞内各种结构和分子进行可视化观察。

常用的染色方法包括荧光染色、酶标染色和核酸染色等。

荧光染色利用荧光标记的抗体或染料,可使特定的细胞结构或分子在显微镜下发出荧光信号,从而观察其位置和表达水平。

酶标染色则通过酶与底物的反应,使细胞或组织显示出颜色等信号。

核酸染色则利用特定染料与细胞核酸结合,以观察DNA或RNA的分布情况。

三、分离技术分离技术在细胞生物学实验中具有重要作用,它可以将不同类型的细胞或细胞组分进行分离和纯化。

常用的分离技术包括细胞离心、流式细胞术和免疫磁珠分离等。

细胞离心是通过离心机将混合细胞悬液分离成上清液和沉淀,从而获得纯化的特定类型细胞。

流式细胞术则通过流式细胞仪测量细胞的大小、形态和表面标记物,从而实现对细胞的高通量分离和分析。

免疫磁珠分离则利用特定抗体结合在磁珠表面,以实现对需要纯化的细胞或细胞组分的选择性捕获。

四、显微镜观察显微镜观察是细胞生物学实验的重要手段,它使研究者能够观察到细胞内不同的结构和过程。

传统光学显微镜可实现对细胞形态和部分细胞器的观察,但其分辨率有限。

近年来,随着超分辨显微镜技术的发展,研究者们能够突破传统光学显微镜的分辨率极限,实现对亚细胞结构和分子过程的观察。

总结细胞生物学实验技术在现代生命科学研究中发挥着至关重要的作用。

细胞生物学的实验方法与技巧

细胞生物学的实验方法与技巧

细胞生物学的实验方法与技巧细胞生物学是研究细胞结构和功能的科学领域。

在细胞生物学中,实验方法和技巧是非常关键的。

细胞生物学的实验技术涉及到多种技术和方法,包括细胞培养、细胞分离、荧光显微镜、分子生物学等等。

在本文中,我们将会详细讨论细胞生物学中的实验方法和技巧。

一、细胞培养技术细胞培养技术是研究细胞生长、增殖、衰老等生理状态的一种重要的实验技术。

细胞培养技术通常需要使用一个适宜的培养基,该培养基还需要添加适当的营养物质和培养物质。

在培养细胞时,需要注意适宜的温度、湿度、和二氧化碳含量等因素,这些因素可以影响细胞的状态和生命活动。

另外,在细胞培养中,不可避免地会遇到一些问题,例如细胞的寿命、细胞的死亡、菌污染等问题。

为避免这些问题,需要在实验中采取一些必要的预防措施。

例如,可以使用无菌操作技术,采用CDMF等杀菌剂消毒培养器、培养器中的培养物料,这样可以有效防止细胞因菌污染而死亡。

二、细胞分离技术细胞分离技术是研究细胞的单个特性、形态和功能的一种技术。

在实验中需要利用细胞分离技术来获得一定数量的单个细胞。

细胞分离技术有多种方法,包括分离器分离、离心分离、胶体分离和酶消化等,每种方法都有其优缺点。

其中,酶消化是一种比较常见的细胞分离方法,通过加入一定量的酶,将组织内的胶原纤维、纤维素及其他基质物质消化掉,从而获得单个细胞。

在酶消化实验中,需要根据不同细胞类型、不同组织、不同生长状态等因素进行调整,以获得最佳效果。

三、荧光显微镜技术荧光显微镜技术是一种广泛用于生物学和生命科学中的高级显微镜技术。

在细胞生物学研究中,荧光显微镜技术是最常用的技术之一,因为它可以用来标记和检测细胞内的各种生物大分子,如蛋白质、核酸、酶等。

在荧光显微镜实验中,使用的荧光探针要与待检测的细胞相匹配,例如,使用荧光染料DPH来探测细胞内外膜分子的相互作用。

同时,还需注意荧光显微镜的光源选择、荧光图像的采集和分析等问题,以获得高质量的研究数据。

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告

细胞生物学实验报告实验名称:细胞培养实验实验目的:1. 了解细胞培养的基本原理和过程2. 观察细胞生长和分化的现象3. 掌握细胞培养的实验技术和方法实验原理:细胞培养是一种将生物体细胞从其原始生存环境中分离出来,在体外条件下进行培养的技术。

这种技术对于研究细胞生物学、发育生物学、药物筛选等学科具有重要意义。

本实验将通过观察细胞生长和分化的现象,加深对细胞培养技术的理解。

实验材料:1. 人体皮肤细胞2. 培养基(包含血清、抗生素、氨基酸、维生素等)3. 塑料瓶(培养皿)4. 显微镜5. 记录表实验步骤:1. 取适量人体皮肤细胞,用胰蛋白酶消化,使其从组织中分离出来。

2. 将细胞接种到塑料瓶(培养皿)中,加入适当浓度的培养基。

3. 将塑料瓶(培养皿)放入恒温培养箱中,定期观察并记录细胞生长和分化的现象。

4. 在合适的时间点,使用显微镜拍照记录细胞生长和分化的过程。

5. 实验结束后,整理数据和图片,撰写实验报告。

实验结果:经过一段时间的培养,我们观察到皮肤细胞在培养基中开始贴壁,并逐渐生长。

随着时间的推移,部分细胞开始出现分裂,形成相互连接的细胞团。

一些细胞逐渐伸展成梭形或扁平形,呈现出典型的贴壁生长形态。

在某些区域,我们观察到细胞开始分化为两种不同形态的细胞群,一种呈圆形或椭圆形,另一种呈多角形。

这些现象表明细胞已经开始分化。

实验分析:根据实验结果,我们可以得出以下结论:1. 细胞确实可以在体外条件下贴壁生长并增殖。

这证明了细胞培养技术的可行性。

2. 细胞分化是一个自然的过程,在本实验中得到了证实。

这说明细胞具有自我更新和多向分化的潜能。

3. 实验过程中需要注意无菌操作和适宜的培养条件,以确保细胞的存活和正常生长。

此外,不同种类的细胞可能需要不同的培养条件,因此在实际操作中需要针对具体细胞类型进行实验。

实验结论:通过本次实验,我们了解了细胞培养的基本原理和过程,观察了细胞生长和分化的现象,并掌握了细胞培养的实验技术和方法。

细胞生物学研究中的新技术与方法

细胞生物学研究中的新技术与方法

细胞生物学研究中的新技术与方法细胞生物学是研究细胞结构、功能、发生和发展等方面的科学。

过去几十年间,随着科技的迅猛发展,细胞生物学的研究也取得了长足的进步。

新的技术与方法不断涌现,为细胞生物学领域的研究提供了更多的选择和工具。

本文将介绍一些在细胞生物学研究中常用的新技术与方法,并探讨它们的应用和意义。

一、单细胞测序技术单细胞测序技术是一种可以对单个细胞进行基因组和转录组测序的方法。

通过单细胞测序,可以揭示不同细胞之间的遗传和功能差异,为我们深入了解细胞的复杂性提供了契机。

这项技术在癌症研究、生殖细胞发育和免疫调节等领域具有重要意义。

以癌症研究为例,通过单细胞测序技术,研究人员可以分析肿瘤组织中不同细胞的基因组和转录组变化,揭示肿瘤细胞的异质性以及可能的耐药机制。

这有助于我们更好地理解肿瘤的发生发展,并为精准医疗提供理论基础。

二、蛋白质组学技术蛋白质组学技术是研究细胞中蛋白质组成和功能的方法。

蛋白质是细胞中最重要的功能分子,能够参与细胞的各种生物学过程,包括信号传导、代谢调控等。

蛋白质组学技术的发展为我们揭示蛋白质组份、相互作用与功能提供了重要手段。

例如,质谱法是一种常用的蛋白质组学技术,在蛋白质鉴定和定量中起到了关键作用。

利用质谱法,研究人员可以鉴定和定量细胞中的蛋白质,进而研究它们的功能和相互作用。

这有助于我们理解细胞中复杂的调控网络,揭示疾病发生机制,并发现新的治疗靶点。

三、CRISPR-Cas9基因编辑技术CRISPR-Cas9基因编辑技术是一种通过改变细胞基因组的方式,实现对特定基因的精准编辑。

相比传统的基因编辑方法,CRISPR-Cas9技术具有操作简便、高效准确的优势,已经成为细胞生物学研究中的重要工具。

通过CRISPR-Cas9技术,研究人员可以精确地切除、替换或添加目标基因,从而研究该基因在细胞功能中的作用。

此外,CRISPR-Cas9技术还可以用来建立疾病模型、筛选药物靶点等。

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第二节细胞生物学实验方法与技术
细胞生物学是生命科学中的重要分支,它以生命基本单位细胞为研究对象,应用近代物理、化学和实验生物学方法,从显微、亚显微和分子水平来揭示细胞生命活动及规律,其中包括细胞的生长、发育、分裂、分化、遗传、变异(包括癌变)、兴奋、运动、代谢、衰老与死亡等基本生命现象,并且利用与调控细胞的行为活动,已达到为生产实践尤其为医药卫生事业服务。

当前细胞生物学与医药保健事业联系的较为紧密的热点问题主要有以下几种:1)真核细胞基因结构及其表达调控;2)细胞膜、膜系、受体与信号传递研究;3)细胞生长、分化、衰老、癌变、死亡,尤其是程序性细胞死亡的研究;4) 细胞工程,包括基因工程及体细胞核移植的研究。

一、细胞培养常用方法
1、细胞原代培养(primay culture)又称初代培养,即直接从机体取下细胞、组织、或器官、让他们在体外维持与生长。

原代细胞的特点是细胞或组织刚离开机体,他们的生物状态尚未发生很大的改变,一定程度上可反映他们在体内的状态,表现出来源组织或细胞的特性,因此用于药物实验尤其是药物对细胞活动、结构、代谢、有无毒性或杀伤作用等研究是极好工具。

常用的原代培养方法有组织快培养法及消化培养法。

前者方法简单,细胞也较易生长,尤其是培养心肌有时能观察到心肌组织块的搏动。

细胞从组织块外长并铺满培养皿或培养瓶后即可进行传代。

2、细胞的传代培养当细胞生长至单层汇合时,便需要进行分离培养否则会因无繁殖空间、营养耗竭而影响生长,甚至整片细胞脱离基质悬浮起来直至死亡。

为此当细胞达到一定密度时必须传代或再次培养,目的是借此繁殖更多的细胞,另一方面是防止细胞的退化死亡。

二、器官培养方法
器官培养(organ culture)是指用特殊的装置使器官、器官原基或它们的一部分在体外存活,幷保持其原有的结构和功能。

器官培养可模拟体内的三维结构,用于观察组织间的相互反应、组织与细胞的分化以及外界因子包括药物对组织细胞的作用。

器官培养方法很多,最经典的方法即表玻皿器官培养法;一种最常用的方法是不锈钢金属网格法及Wolff培养法和扩散盒培养法,实验者可根据情况选择采用。

三、放射自显影术测定
放射自显影术(autoradiography)是利用放射性同位素电离辐射对核子乳胶的感光作用,显示标本或样品中放射物的分布、定量以及定位的方法。

放射性同位素能在紧密接触的感光乳胶中记录下它存在的部位和强度,准确显示出形态与功能的定位关系。

现已可将放射自显影术与电镜以及生物分子结合起来。

不但可以研究放射性物质在组织和细胞内的分布代谢,而且可以揭示核酸合成及其损伤等改变,目前已在生命科学各领域被广泛应用。

四、染色体分析技术
染色质或染色体是遗传物质在细胞水平的形态特征。

前者是指当细胞处于合成期时遗传物质经碱性染料着色后,呈现出细丝状弥漫结构;当细胞进入分裂期时,染色质细丝高度螺旋化凝聚为形态有特征的染色体。

特别是在分裂中期,复制后的染色体达到最高程度的凝聚,称为中期染色,是进行染色体形态观察分析的最佳时期。

染色体分析应用领域越来越广,主要用于以下几方面:1)为临床诊断提供新手段;2)研究不育和习惯性流产发生的遗传基础;
3) 通过检查胎儿的染色体,预防有染色体异常患儿出生(先天愚型);4)根据染色体的多肽性进行亲子和异型配子的起源研究;结合DNA重组技术可以将基因定位于染色体的具体
区带上。

五、电镜技术
早在1940年,英国剑桥大学首先试制成功扫描电子显微镜,但因分辨率低无实用价值。

1965年英国剑桥科学仪器有限公司开始生产出商品扫描电镜,其以显著优点广泛用于生物学、医学、物理学、化学、电子学及勘探、冶金、国防、公安、机械与轻工业等诸多领域,并已成为非常有用的研究工具。

电镜主要特点:1)景深大,较光学显微镜大几百倍;2)图像富有立体感,是一个具有真实感的三维结构立体图象;3)图像放大范围大,光学显微镜有效放大倍数为1000倍左右,透视电镜的放大倍数为几百倍至100万倍,扫描电镜可放大十几倍至几十万倍;4)分辨率高,扫描电镜可达6-3nm;5)样品可在三度空间平移和旋转,聚焦后可以任意放大倍数,而不需调整重新聚焦。

六、细胞、细胞器、及细胞间质的分离技术、
1、细胞的分离分离不同的细胞及亚细胞组分在现代生物学研究中起着重要的作用。

如研究某种药物治疗白血病的机理,需要分离培养人或动物的骨髓细胞,观察药物的细胞作用;研究与细胞生长分化有关的生长因子的作用,需将与此类因子有关的细胞分离出来;分离细胞膜,线粒体等细胞的亚组分,对于研究信号传递,某些遗传疾病,也都是必不可少的手段。

2、细胞膜的分离细胞内的膜系统与细胞质膜统称为生物膜(biomembrane),他们都有共同结构和特征。

首先要分离出形状完整的、具有生物活性的、高纯度的细胞膜,用于研究细胞膜的结构和功能,以利于观察膜在细胞与环境进行能量交换及信息传递的过程。

3、细胞核的分离细胞核作为一个功能单位,完整的保存遗传物质,幷指导RNA合成,后者为蛋白质及其它细胞组分合成所必需。

因此细胞核分离是研究基因表达及细胞核形态结构的首要步骤。

不同组织来源的细胞经匀浆后,用分级离心或超声波处理等方法进行纯化。

4、溶酶体的分离溶酶体是处理细胞吞噬物的细胞器,含有高浓度的各种水解酶类,调控细胞内的消化过程。

溶酶体的分离常用于研究因溶酶体功能缺陷而引起的多种疾病。

5、线粒体的分离线粒体是细胞呼吸的主要场所,细胞活动所需要的能量,主要由在线粒体内进行氧化所产生的能量供给。

制备线粒体关键是保持其完整性及高纯度。

6、细胞DNA、RNA分离与纯化核酸是遗传信息及基因表达的物质基础。

核酸的提取与纯化关键是保持核酸的完整性,但较困难,主要因为:一是细胞内有活性很高的核糖核酸酶;二是酸碱等化学因素;三是高温机械损伤等物理因素,需严格遵守操作规程。

七、细胞凋亡研究方法
细胞凋亡(apoptosis),又称为程序性死亡(programmed cell death,PCD)指的是有核细胞在一定条件下,通过激活其自身内部机制,尤其是开启与关闭某些基因以及内源性DNA内切酶活化,导致产生细胞自然性死亡的过程。

可以认为细胞死亡的这种方式是一种生理性的自发过程。

为此有人也称其为细胞自杀。

目前认为程序性死亡几乎和细胞的增殖同样重要,如果没有细胞凋亡,个体不能形成与存活,或者发生疾病。

只有通过细胞凋亡的发生,使特定细胞群体在特定的时间和特定的部位死亡。

从而使机体在总体上保障其细胞数量,以及形态与功能的平衡。

近年来如何用药物诱导癌细胞死亡也成为细胞凋亡的热点之一。

透视电镜观察是研究细胞凋亡的首选方法。

八、原位杂交
原位杂交技术是将分子杂交与组织化学相结合,用标记的DNA或RNA为探针,在原位检测组织细胞内特异互补的DNA或RNA序列。

它分为三类:DNA-DNA、DNA-RNA、RNA-RNA。

已广泛用于生物学的各个领域。

原位DNA末端标记可以用于细胞凋亡的定量
研究。

原位杂交技术和PCR技术结合用于检测人乳头瘤病毒(HPV)
九、单克隆抗体
是1975年被描述的一种可产生无限量,并可预测其性质的抗体制备技术。

该技术的关键步骤在于淋巴细胞之间的融合,所以称为“淋巴细胞杂交瘤技术”;由于杂交瘤经过筛选可产生针对单一抗原决定簇抗体的细胞克隆,故称为单克隆抗体技术。

该技术的问世使得免疫学研究与实践发生了革命性的改观,同时还为生物学和医药学的许多领域提供了前所未有的研究工具。

人们利用其可精确地识别出极为复杂的分子,测定出无法测定的物质,识别出新的细胞群体,揭示了以往未曾了解的细胞分化途径,为肿瘤、感染性疾病、自身免疫性疾病等的诊断和治疗创造出令人兴奋的前景。

十、神经细胞培养神经细胞培养是指从体内取出某一种神经组织,在无菌、适当温度和一定营养条件下模拟在体生理环境,使之存活和生长,幷保持其结构和功能。

神经细胞培养按培养前切割程度分为器官培养、组织快培养和细胞分离培养。

1、器官培养(organ culture )是切割最少型的培养。

全器官或器官大片放在保温的营养液中可保存数日。

这类培养切断了正常的血供,器官的营养交换取决于简单的灌流。

2、组织块培养(explant culture)是真正最小器官培养。

组织块通常厚度为0.5-1mm,一个或几个组织块放在一个培养皿内存活数周。

实验在其组织块周围生长出的边缘细胞上进行。

3、细胞分离培养(dissciated cell culture )是由分散其原始组织至其组成的细胞。

常用酶进行消化。

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