基因表达检测RTPCRppt课件

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基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技术 ppt课件

基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技术 ppt课件
OD260/OD280在1.8~2.0之间 ,比值越低,混有蛋白质污染。 OD260/OD230在2.0~2.5之间 ,若比值小于2,说明有残余的盐存在; OD230/OD260在0.4-0.5之间,若比值较高说明有残余的盐存在 。
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
• 乙醇:主要目的是:沉淀+除盐;洗涤异丙醇,也可以溶解一部分
蛋白,痕量的乙醇很容易挥发掉。
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA浓度和纯度的测定
DNA/RNA在260nm处有最大的吸收峰, 蛋白质在280nm处有最大的吸收峰,因为酪氨酸和色氨酸的最大吸收峰在 280nm附近,而大多数蛋白含有酪氨酸和色氨酸残基,且含量相对恒定。 盐和小分子则集中在230nm处, 320nm或340nm为检测溶液样品的浊度,该值应该接近0。
“Measure”
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
RNA提取常见问题及分析
得率
A.样品裂解或匀浆处理不彻底 B.最后得到的RNA沉淀未完全溶解
A260/A280<1.65
A.检测吸光度时,RNA样品不是溶于TE,而是溶于水。 B.样品匀浆时加的试剂量太少。 C.匀浆后样品未在室温放置5分钟。 D.水相中混有有机相。 E.最后得到的RNA沉淀未完全溶解。
RNA的琼脂糖凝胶电泳
• 28S的亮度是18S的2倍左右 • rRNA占总RNA80%以上。
5lRNA+1ul loading buffer,100V电泳10分钟
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术
基因分子生物学实验--第二节 RNA的制备及鉴定和RT-PCR技 术

RTPCR(共47张PPT)

RTPCR(共47张PPT)
大于0.99 真正的信号:荧光信号超过域值
实时荧光定量PCR 原理 -------Ct值
Ct值的定义:
PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经 过的扩增循环次数
C(t) value
纵轴:荧光信号量
实时荧光定量PCR 原理 -------Ct值的重现性
横轴:PCR反映循环数
Ct值的特点:
EXON 1 EXON 1
INTRON 2 EXON 2
EXON 2
DNA RNA
PRIMER PREMIER 5.0
上机操作
点击
运行程序
保存
结果分析
难以查找原因。
• Buffer and dNTPs Ex:扩增效率
实时荧光定量PCR定义
• Template
cDNA
Real-time PCR
Real-time PCR
引物设计
• 总原则与普通PCR相同 –避免引物二聚体,避免二级结构 • 尽量小些 (70 - 300bp) • 目标区段位置:考虑目标剪接体 • 推荐做跨intron设计
实时荧光定量PCR法
染料法举例
SYBR Green法研究CDK6 在
肺癌组织标本中的表达差异
实验步骤
流程示意图
TaqMan法举例
材料准备
从正常肺组织中提取的总 RNA 从肺癌组织中提取的 总RNA
-Trizol 最常用 -裂解液 (氰酸胍,异硫氰酸呱, SDS) -液氮
-RNA保存液
小心DNA污染! -使用DEPC处理相关器材
TaqMan法
优缺点
25
实时荧光定量PCR原理 相对定量
以各自样本中内参(housekeeping)基因为标杆,

RTPCR实验报告课件

RTPCR实验报告课件

逆转录pcrrt-pcr)和及时为反转录rcr ( reverse transcription pcrpcr ( real time pcr)共同的缩写。

逆转录pcr ,或许称反转录pcr(reversetranscription-pcr, rt-pcr) ,是聚合酶链式反响 (pcr) 中,一条 rna 链被逆转录成为互补 dna ,再以此为模板经过的一种宽泛应用的变形。

在pcr 进行dna 扩增。

rt-pcr由一条rna 单链转录为互补dna(cdna) 称作“逆转录” ,由依靠rna 的dna 聚合酶(逆转录酶)来达成。

随后,dna 的另一条链经过脱氧核苷酸引物和依靠rna 的dna 聚合酶达成,随每个循环倍增,即往常的pcr 。

原来的rt-pcr的指数扩增是一种很敏捷的技术,于遗传病的诊疗,并且能够用于定量监测某种rna 模板被rna 酶 h 降解,留下互补dna 。

能够检测很低拷贝数的rna 。

rt-pcr宽泛应用rna的含量。

(检测基因表达的方法,拜见northern blot 法。

)rt-pcr 作“ 定量有时也会指代及时pcr ” (quantitative pcr)pcr(real-time pcr)。

为了与逆转录或许rtq-pcr(real-time quantitative pcr)pcr 相差别,往常被写。

及时pcr及时为基础进行pcr(real-time pcr)dna 的定量剖析。

,属于定量pcrreal time pcr( q-pcr)的一种,以一准时间内dna 的增幅量的定量使用萤光色素,当前有二种方法。

一种是在ds dna 中插入特异的萤光色素;另一种使用一种能与增幅dna 序列中特定寡核酸序列相联合的一种萤光探针(probe )。

real time pcr 与reverse transcription pcr 相联合,能用微量的rna 来找出特准时间、细胞、组织内的特别表达的遗传基因。

rtqPCR实验操作 ppt课件

rtqPCR实验操作 ppt课件
耐热dna聚合酶按53方向催化以引物为起始点的延伸反应70723060srtqpcr实验操作示意图rtqpcr实验操作?realtime定量pcr仪是在pcr反应体系中加入荧光基团利用荧光信号累积实时监测和连续地分析整个pcr进程随着反应时间的进行监测到的荧光信号的变化可以绘制成一条曲线最后通过标准曲线对未知模板进行定量的分析
内参基因(Endogenous Control) 用于校准实验过程中样品本身对定量结果的
影响 原因:核酸提取时通常以重量,体积或细胞数 为单位取
样,提取过程中存在得率差异和操作误 差,造成
等量样品不一定获得等量提取物 目的:将定量结果校准rtqPCR为实验操以作 基因组(或单个细
2、降低随机误差: 重复实验
rtqPCR实验操作
• 在相同的条件下,进行复制扩增,每扩增 一个循环,通过检验荧光来检测每个孔里 目标基因片段的含量,记录每个反应管内 的荧光信号达到设定的域值时所经历的循 环数(样本的域值循环数Ct),次数越多就 说明目标基因在原本的样品里越少,即初 始模板的量越少。
rtqPCR实验操作
logX= n (1+E)+logX0
4、按照排板的顺序往板内加样本混合物,每 孔18.4微升,加完后rt按qPCR实排验操作板顺序加相应的前
即实验组基因表达相较于对 照组上调或下调的倍数。
rtqPCR实验操作
荧光定量PCR如何减小误差 1、校准生物学误差:内参(管家基因) 2、降低随机误差
rtqPCR实验操作
1、校准生物学误差内参(管家基因)
rtqPCR实验操作荧光实时定量PCFra bibliotek rt-qPCR
定义
实时荧光定量PCR(rt-qPCR): • 在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧 光信号的变化对PCR过程进行 实时监控,以 此实现对初始模板的定量分析。

基因表达的检测PPT课件

基因表达的检测PPT课件
2) 选择性拼接:从同一基因产生若干种有部分相同结构 的蛋白质,即通过Mrnau前性的选择性拼接而产生不 同的成熟mRNA,然后翻译成不同的蛋白质。
3) 选择性表达:多基因的基因家族中的各成员在特定的细 胞中,在一定的发育阶段和在一定的生理条件下选择性 的表达。
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3. RNA编辑的调控: RNA编辑(editing):是指转录后的mRNA前体在编码区发生 核苷酸改变的现象,从而产生出氨基酸序列不同的蛋白质。包括:
▪ 转录起始的调控:
基因表达的转录水平调控主要通过反式作用因子、顺式作用元件和RNA聚合酶 的相互作用来完成。调控机制涉及反式作用因子的激活及反式作用因子的作用 等。
– 反式作用因子的活性调节: • 表达调节:迅速合成、迅速降解
• 共价修饰:磷酸化-去磷酸化、糖基化
• 配体结合:激素-激素受体(是核内的反式作用因子)
➢ 亮氨酸拉链(leucine zipper)
➢ 螺旋-转角-螺旋(helix-loop-helix)
4) RNA聚合酶对基因表达的影响: A. 转录起始是通过RNA聚合酶与启动子的结合来实现的,转录起始的调控 是基因表达调控中最重要、最基础的调控点之一。 B. 不同启动子的序列不同,因而影响它们与RNA聚合酶结合的亲和力, 亲和力的不同继而直接影响转录起始的频率。 C. RNA聚合酶和启动子的结合也会受到调节蛋白的影响,阻遏蛋白、激活蛋
5. 基因重排:
基因重排是指某些基因片段改变原来的存在顺序,通过调整有关基 因片段的衔接顺序,重新组成为一个完整的转录单位。一种熟知的 以基因重排来调节不同基因表达的例子是哺乳动物免疫球蛋白各编 码区的连接: – 一个免疫球蛋白分子包括两条相同的轻链和重链。

实时荧光定量PCR(qPCR,RT-PCR)的原理及应用ppt课件

实时荧光定量PCR(qPCR,RT-PCR)的原理及应用ppt课件
pcrrtpcr反应体系模板45ltagmixture50l025l荧光染料sybrgreen荧光标记的探针taqman探针法rtpcrmonitoringpcrsybrgreendyesybrgreen变性退火延伸rtpcrsybrgreenrtpcr10rtpcrmonitoringpcrtaqmantaqman法11rtpcrtaqman法12taqmanrtpcr13?绝对定量absolutequantificationaq病原体检测转基因食品检测基因表达研究?相对定量relativequantificationrq基因在不同组织中的表达差异药物疗效考核耐药性研究rtpcr14相对定量通过内标定量内标定量结果代表了样本中所含细胞或基因组数rtpcr内标endogenouscontrol通常是18s28sactingapdh基因等看家基因在细胞中的表达量或在基因组中的拷贝数恒定受环境因素影响小15rtpcr16rtpcrctpcr扩增循环数荧光域值threshold的设定在定量pcr中需要经过数个循环后荧光信号才能够被检测到一般以15个循环的荧光信号作为荧光本底信号
4
实时荧光定量PCR的定义
PCR技术和荧光检测技术的结合
通过荧光染料或荧光标记的特异性探针,对PCR产物进行 标记跟踪,实时在线监控反应过程,通过仪器和相应的软 件分析结果,对待测样品的初始模板进行定量或定性分析。
5
RT-PCR技术的原理及试验流程
6
RT-PCR技术的原理及试验流程
7
RT-PCR技术的原理及试验流程
RT-PCR反应体系
模板
4.5μl
Tag mixture
5.0μl
F(F’)
0.25μl
R(R’)
0.25μl

PCR详细讲解 ppt课件

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2
PCR的基本原理
① DNA半保留复制的机理;
② 体外DNA分子于不同温度下可变 性和复性的性质。
2021/3/26
PCR详细讲解 ppt课件
3
PCR扩增体系
➢模板(Template):基因组、质粒DNA、cDNA,也可
以是细菌、组织样品等。
➢引物(Primer):确定扩增目的序列的特异性;确定
1、避免重复碱基,尤其是G。
2、引物退火温度在58-60℃之间。
3、G+C为30-80%。
4、3’端最后5个碱基内不能有多于2个
的G或C。
5、引物的产物大小一般在80-250bp之
间;80-150 bp最为合适(可以延长至
300 bp)。 2021/3/26
PCR详细讲解 ppt课件
38
Real-Time PCR引物设计原则
2021/3/26
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35
引物设计的基本原则
9、引物的3’端不可以A结尾。
引物3’端错配时,不同碱基引发效率存 在着很大的差异,当末位的碱基为A时,即 使在错配的情况下,也能有引发链的合成, 而当末位链为T时,错配的引发效率大大降 低,G、C错配的引发效率介于A、T之间,所 以3’端最好选择T。
引物设计的最重要的原则:最大限度 地提高扩增效率和特异性;同时尽可 能减少非特异性扩增。
2021/3/26
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26
引物设计的基本原则
1、引物应具有足够的特异性。
如果需要从基因组等较复杂的模板中扩 增特定的DNA序列,则需要考虑目的DNA序列 的保守性,尽量避免所选引物设计区域序列 的非特异性。
30
引物设计的基本原则

rtpcr详细图文解析讲课讲稿

rtpcr详细图文解析讲课讲稿

RT-PCR详细图文解析一、实时荧光定量PCR原理(一)定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。

(二)实时原理1、常规PCR技术:对PCR扩增反应的终点产物进行定量和定性分析无法对起始模板准确定量,无法对扩增反应实时检测。

2、实时定量PCR技术:利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,通过Ct值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析3、如何对起始模板定量?通过Ct值和标准曲线对起始模板进行定量分析.4、几个概念:(1)扩增曲线:(2)荧光阈值:(3)Ct值:CT值的重现性:5、定量原理:理想的PCR反应: X=X0*2n非理想的PCR反应: X=X0 (1+Ex)n n:扩增反应的循环次数X:第n次循环后的产物量X0:初始模板量Ex:扩增效率5、标准曲线6、绝对定量1)确定未知样品的 C(t)值2)通过标准曲线由未知样品的C(t)值推算出其初始量7、DNA的荧光标记:二、实时荧光定量PCR的几种方法介绍方法一:SYBR Green法(一)工作原理1、SYBR Green 能结合到双链DNA的小沟部位2、SYBR Green 只有和双链DNA结合后才发荧光3、变性时,DNA双链分开,无荧光4、复性和延伸时,形成双链DNA, SYBR Green 发荧光,在此阶段采集荧光信号。

PCR反应体系的建立及优化:1、SYBR Green 使用浓度:太高抑制Taq酶活性,太低,荧光信号太弱,不易检测2、Primer:引物的特异性高,否则扩增有杂带,定量不准3、MgCl2的浓度:可以降低到 1.5mM,以减少非特异性产物4、反应Buffer 体系的优化5、反应温度和时间参数:由酶和引物决定6、其他与常规PCR相同(二)应用范围1、起始模板的测定;2、基因型的分析;3、融解曲线分析:可以优化PCR反应的条件,对常规PCR有指导意义,如对primer的评价;可以区分单一引物、引物二聚体、变异产物、多种产物。

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RNA抽提前应准备的其它试剂及物品:
1. 75%乙醇(in DEPC-treated water) 2. 氯仿 3. 异丙醇(RNA专用) 4. RNase-free water:Draw water to RNase-free glass
bottles. Add diethylpyrocarbonate (DEPC)to 0.1% . Let stand overnight and autoclave. 5. 防止外源RNase的污染: 应戴口罩和手套,环境洁净;玻璃器皿180ºC烘烤3hrs 以上;塑料制品DEPC水清洗,蛋白质变性剂处理;一 次性用品如tube, tip等使用新的,无RNA酶的产品。
PCR
基因表达水平
•Awarded Nobel Prize for Chemistry in 1993.
(梁大成等,2006)
表达增强克隆的RT-PCR和Northern杂交分析
ladder
EI12I1
AB
C
D
E
c13 57 c 13 57 c 13 57 c 13 57c 13 57
A: IRBB10 叶片接种 白叶枯(PXO86)
操作步骤(一)
• 液氮磨样,每管分装0.1克样品; • 每管加1毫升Trizol 试剂(样品体积不超过Trizol 试剂体
积的10%),迅速混匀(若样品较多可先将混好的样品置 于冰上);室温下净置5-10分钟以利于核酸蛋白质复合 体的解离; 1. 加200 µl的氯仿,用手剧烈摇荡15秒,室温下静置5分钟 左右;
3. 检测 0.5×TBE
电泳
In 1× MOPS 80 —150V 40 min —1h30min
有溴化乙锭存在时,电泳后28S rRNA和18S rRNA 在紫外灯下应当很清楚的看得到,还应当有一条由 tRNA,5.8S rRNA和5S rRNA组成的较模糊的迁移较 快的带。如果RNA没有降解, 28S rRNA的亮度应当是 18S rRNA的2倍,且这两条带都没有弥散现象。
RNA操作中应注意的问题: 防止RNase污染
外源RNase的主要来源: 被污染的试剂,缓冲液 移液器 使用的器皿及tip等 操作者的手,头发等
防止内源RNA酶降解RNA
材料要新鲜; 裂解过程要同RNase活性抑制同步
RNA酶抑制剂
RNA酶是一种很顽固的酶,在RNA 分离和鉴定的各个阶段严重威胁RNA的 完整性。用来使RNA酶不发挥作用的 RNA酶抑制剂主要有:
操作步骤(二)
4. 2-8 ℃ ,12000×g 离心10-15分钟;
将水相(上清)转入一新离心管,加0.5ml 异丙醇室 温下沉淀10分钟;
5. 2-8 ℃ ,12000×g 离心15分钟;
6. 弃上清,加1ml 75%乙醇清洗RNA,振荡片刻后(务 必使沉淀悬浮起来,以确保洗涤干净),7500×g 离 心5分钟,小心弃上清;
实验目的:学习RNA的简易制备过程,通过RNA电泳
带评价RNA质量
实验材料:水稻幼嫩叶片
提取方法:
苯酚/氯仿反复抽提 ,价廉但质不优, 尤其是对多酚等含量高的材料不适
蛋白酶/SDS配合酚、氯仿抽提的方法 强变性剂法。硫氰酸胍,盐酸胍等,可
配合氯化铯离心或有机溶剂提取。
Trizol Reagent
利用Trizol 试剂 抽提植物总RNA
Trizol 试剂是由苯酚和硫氰酸胍配制而成的单相 的快速抽提总RNA的试剂,在匀浆和裂解过程中, 能在破碎细胞、降解细胞其它成分的同时保持RNA 的完整性。在氯仿抽提、离心分离后,RNA处于水 相中,将水相转管后用异丙醇沉淀RNA。
用这种方法得到的总RNA中蛋白质和DNA污染很少, 可以用来做Northern,RT-PCR,分离mRNA,体外翻译 和分子克隆等。
可与RNase形成非共价的复合物,从而使RNA酶失活。 不能在变性剂如SDS、胍等存在的情况下使用。
RNA EXTRACTION (mini prep)
RNA的制备与分析对于了解基因在转录水平上的 调节和cDNA的合成都是必须的,RNA的纯度和完整性 对于NortheA分离的方法很多,最关 键的因素是尽量减少RNA酶的污染。
第三部分: 基因表达检测
RT-PCR (Reverse transcription PCR)
基因表达分析
Northern Blotting
Reverse Transcription PCR
RNA抽提
反转录
基因特异性引导 Oligo(dT)引导 随机六核苷酸引物引导
cDNA
Northern Blotting
7. 室温静置5-15分,使RNA沉淀恰好干燥,加入20 µl DEPC水溶解,保存于-70 ℃ 。
8. 取2 µl 琼脂糖电泳检测RNA质量。
RNA的琼脂糖凝胶电泳
1. 用乙二醛/甲酰胺对RNA进行预变性,然后进 行琼脂糖凝胶电泳
2. 用甲醛和二甲基亚砜对RNA进行预处理,在 含6%或2.2mol/L甲醛的凝胶中电泳
1. DEPC 2. 氧钒核糖核苷复合物 3. RNA酶的蛋白质抑制剂
DEPC:
是高度活性的烷基化试剂,通过组胺基团乙氧 基甲酸化形式破坏RNase的活性
氧钒核糖核苷复合物:
O
C-CH2-CH3 O
C-CH2-CH3 O
能与多种RNA酶活性位点结合并几乎百分之百 地抑制RNA酶的活性
RNA酶蛋白质抑制剂 Ribonuclea good or bad total RNA look like when separated in gel?
EI22F22
B: IRBB13 叶片接 种 白叶枯(PXO99)
EI1K8
C: C101A51 叶接种 稻瘟病(V86013)
EI35I3 ß-actin
D: MH63 叶片接种 稻瘟病(V86013)
E: MH63 叶片接种 稻瘟病(1366)
(周斌,2001,硕士论文)
实验原理
mRNA 反转录生成的cDNA可作为PCR的模板 进行扩增称为RT-PCR,RT-PCR比Northern杂交 更灵敏,对RNA的质量要求较低,操作简便, 它是在转录水平上检测基因时空表达的常用方 法。
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