Prescission蛋白酶制作及使用方法

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GST蛋白纯化

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GST bestarose 4FF说明书默认分类2010-01-18 09:32:34 阅读257 评论0 字号:大中小GST bestarose 4FF是专门用于纯化pGEX系列载体表达的GST标签蛋白,其它谷胱甘肽转移酶以及与谷胱甘肽有亲和作用蛋白的分离介质,操作简单,快速。

GST bestarose 4FF 可直接从预处理的细胞裂解物中纯化GST-tagged蛋白,纯化条件温和,可以保证蛋白的生物活性。

GST bestarose 4FF 具有高流动性,易于放大,GST bestarose 4FF有快速方便的预装柱,Ez-Fast bestarose 4FF 1ml和5ml。

介质性能谷胱甘肽是通过10碳原子的连接臂偶联到4%高度交联的琼脂糖上。

最优的偶联作用使介质具有高GST-tagged蛋白及与谷胱甘肽相互作用蛋白的结合能力。

总的蛋白结合能力约为每毫升填料结合10mg标签蛋白,动态结合能力随着外界因素改变,如不同的目标蛋白,流速等等。

如果需要去除GST部分(天然蛋白分子量为26KD),当蛋白吸附在柱上,或在洗脱后用位点专一的蛋白酶消化,选用前种方法,可减少额外分离目的蛋白与GST步骤,消化后,目的蛋白直接用结合液洗脱即可。

表1 GST bestarose 4FF性能配体谷胱甘肽与10碳原子连接臂配体浓度 120-320μmol谷胱甘肽/ml填料蛋白结合能力≈ 10mg重组GST-tagged蛋白/ml填料,GST,Mr26000动态结合能力≈11mgGST-tagged蛋白/ml填料,Mr43000平均颗粒大小90μm组成 4%高度交联的琼脂糖最大流速* 450cm/h(15ml/min),XK层析柱,柱高5cm,水溶性缓冲液,室温纯化建议的流速** 上样:<100cm/h(<3ml/min ,XK层析柱)洗涤与洗脱:100-300cm/h(3-10ml/min,XK层析柱)化学稳定性所有常用的水溶性缓冲液中稳定,如:1M醋酸盐,pH7.4,6M 盐酸胍,室温,1hpH稳定性 pH3-12贮存温度 +4-30℃贮存液 20%乙醇* 水是室温的。

碧云天生物技术pET-N-His-PreScission-SUMO产品说明书

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碧云天生物技术/Beyotime Biotechnology 订货热线:400-1683301或800-8283301 订货e-mail :******************技术咨询:*****************网址:碧云天网站 微信公众号pET-N-His-PreScission-SUMO产品编号 产品名称包装 D2918-1µg pET-N-His-PreScission-SUMO 1µg D2918-100µgpET-N-His-PreScission-SUMO100µg产品简介:pET-N-His-PreScission-SUMO 是一种用于表达N 端同时含有His 标签(His tag)和SUMO 标签(SUMO tag)双标签的目的蛋白的原核表达质粒。

His 标签有利于通过亲和层析方法进行目的蛋白的纯化,而SUMO 标签则有利于改善目的蛋白的折叠,增加目的蛋白可溶性和产量。

表达后的含有目的蛋白的融合蛋白可以通过PreScission Protease (P2302/P2303)酶切去除His 标签但保留SUMO 标签,也可以通过SUMO Protease (P2310)酶切去除N 端的His 和SUMO 两个标签。

如果通过无缝克隆技术(Seamless Cloning Kit, 无缝克隆试剂盒)在SUMO 标签酶切位点后插入目的蛋白ATG 起始的序列,SUMO Protease 酶切后,可以确保表达的目的蛋白氨基端(N 端)刚好从甲硫氨酸(Methione)开始,不会增加或减少任何一个氨基酸,实现目的蛋白的完美正确表达。

本质粒为卡那霉素抗性。

本质粒含有T7启动子/lac 操纵子,可以在异丙基硫代半乳糖苷(IPTG)的诱导下高效启动目的蛋白表达。

在多克隆位点根据读码框插入目的基因就可以表达N 端含有His 和SUMO 双标签的目的蛋白。

碧云天生物技术 PreScission Protease 产品说明书

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碧云天生物技术/Beyotime Biotechnology订货热线:400-168-3301或800-8283301订货e-mail:******************技术咨询:*****************碧云天网站微信公众号网址:PreScission Protease产品编号产品名称包装P2302 PreScission Protease 100U产品简介:PreScission Protease是一种大肠杆菌中重组表达的带GST标签的人鼻病毒14型的3C蛋白酶(human rhinovirus (HRV) type14 3C protease),也称HRV 3C Protease或HRV3C Protease,能在低温条件下(4°C)特异性地识别八肽序列Leu-Glu-Val-Leu-Phe-Gln-Gly-Pro或核心五肽序列Leu-Phe-Gln-Gly-Pro,并在Gln和Gly氨基酸残基之间进行酶切,常用于去除融合蛋白的Glutathione S-transferase (GST)、His或者其它标签的蛋白酶。

建议把GST或His等标签设计在融合蛋白的N 端,在GST或His等标签与目的蛋白之间设计加入PreScission Protease 专一性识别与酶切的上述八肽序列,这样在GST或His标签被酶切后,在目的蛋白的N端仅有两个额外的Gly-Pro氨基酸残基,从而最大限度地减少了对其结构和功能的影响。

本PreScission Protease带有GST标签,特别适合用于GST标签蛋白的在柱酶切。

在切割GST标签蛋白的时候,切下的GST标签和PreScission Protease可结合于GST纯化柱(GST-tag Purification Resin)上,而目的蛋白在穿透液中,这样洗脱下来的蛋白中就不会含有GST标签和PreScission Protease,从而极大地方便了目的蛋白的纯化。

Prescission蛋白酶制作及使用方法

Prescission蛋白酶制作及使用方法

Prescission蛋白酶制作及使用方法柱下酶切用酶的制作方法1L TB菌体用PBS重悬至35ml做高压裂解,最终40ml总量。

上清用0.5ml流速,挂3-4ml柱子,PBS 漂洗30ml。

用含有10%甘油的洗脱液洗脱,每管收集体积为2ml,只取主峰,可以粗略定量,也可以取百分之一的量在Akta上用上样泵来做积分定量(参考下面的积分定量方法举例)。

也可以用分光光度计定量,一般可用稀释20倍定量。

马上分装成0.25mg每管,可切5ml介质。

柱上酶切用酶的制作方法亲和纯化方法同柱下酶切,洗脱液不含甘油,得到10ml左右洗脱液,浓缩10倍,再加入10ml 含有10%甘油和2mM DTT的PBS稀释,一共浓缩三次换buffer,每次浓缩时间一般在30分钟以内。

最终浓缩至10mg/ml,浓缩10分钟混匀一次。

尽快分装成0.25mg每管,可切5ml介质。

柱上酶切用酶的Q纯化制作方法亲和纯化方法同柱下酶切,洗脱液不含甘油,收集后加水大于三分之一。

过Q柱,AB液配方中含有10%甘油,8%B洗脱,50%B?直接洗下后积分定量,分装。

粗略定量参考2000峰宽为10.5ml,蛋白质总量为24mg,取了12ml,浓度为2mg/ml,直接分装的话,可以用125ul 和250ul每份。

积分定量方法举例取10ul ppase浓缩液,用本底缓冲液(PBS)稀释到500ul,用上样泵做积分定量,积分体积为325mAu*ml,可知浓缩好的蛋白质光吸收为每毫升为32.5Au,光吸收为1,浓缩好的蛋白质浓度为32.5mg/ml,一共24mg蛋白。

表达1.取-80度保存的质粒pGEX-PPase转化BL21(DE3)感受态,涂布,37度孵箱培养12~16 h。

2.挑取单克隆到50ml LBA培养基37度培养12-15小时。

3.1%接种到1L TBA中,培养3小时,4度水浴降温,加终浓度为0.2mM的IPTG,15.3度诱导培养18小时。

蛋白酶作为饲料添加剂的流程

蛋白酶作为饲料添加剂的流程

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蛋白纯化试剂的原理及蛋白纯化实验问题分析

蛋白纯化试剂的原理及蛋白纯化实验问题分析

蛋白纯化试剂的原理及蛋白纯化实验问题分析蛋白纯化试剂盒主要是利用蛋白与亲和介质的亲和能力不同达到蛋白分离纯化的目的。

蛋白纯化试剂常见的蛋白标签有GST标签、HIS 标签等,本文主要介绍了蛋白纯化试剂盒的原理、His Tag 蛋白纯化方法试剂选择的方法、GST 标签融合蛋白纯化问题分析等。

蛋白抽提试剂盒和蛋白纯化试剂盒用途有什么不同?蛋白抽提试剂盒是从细菌、真菌、新鲜动植物组织或细胞蛋白、培养动植物组织将全细胞蛋白、核蛋白、胞浆蛋白、带化学修饰基团的天然蛋白(例如磷酸化蛋白)中的一种或两种以上作为目标从样品中分离收集的一套试剂。

用于液体样品中蛋白浓缩、提取、或脱盐、脱去垢剂、脱还原剂等目的。

蛋白纯化试剂盒用于将连接有Flag标签GST HIS 标签的重组蛋白、包涵体蛋白、抗体从重组蛋白表达系统中高效浓缩分离出来。

主要原理是利用蛋白A或蛋白G与抗体的不变区有多个结合位点或Ni- Sepharose与HIS标签蛋白在不同缓冲液条件下亲和能力多得多差异分离目标蛋白。

将蛋白A与Sepharose共价交联制备的层析介质,可以用于纯化抗体。

抗体与蛋白A或蛋白G在高盐高pH值条件下结合,在低盐低pH值条件下解离。

蛋白纯化试剂盒广泛的应用于蛋白表达、纯化、鉴定、功能研究及其蛋白相互作用等相关领域。

GST常见问题解答集锦纯化方法的问题解决以下解决问题的指南指出了对于大多数纯化方法的普遍问题,对于特别的纯化方法的问题也有提及,这种情况下会指出相应的纯化方法.问题可能原因解决方法G S T 标签蛋白GST标签蛋白被机械裂解的方法在裂解过程中,用温和的机械/化学裂解条件.裂解的条件不结合柱子或变性(比如超声).过分的裂解必须依照经验来决定. 结合非常弱会使标签蛋白变性,阻止其结合. GST标签蛋白在样品中有聚集, 在细胞裂解前加入DTT,在缓冲液中也加入DTT.1-20mM 导致沉淀标签蛋白的浓度过低的DTT会显著增加某些GST蛋白的结合. 浓缩样品.结合能力是浓度依赖的.低表达量的蛋白可能不会像高表达量蛋白那样有效地结合柱子.因此,浓缩样品会提高结合. 标签蛋白可能改变了G S T 的构检测所使用的pGEX载体中GST的结合.准备带有所使用的象,因此降低了GST标签蛋白的pGEX的细胞超声裂解物,检测其与柱材的结合.如果结合结合能力. 的很好,则可能是标签蛋白改变了GST的构象,因此降低了GST标签蛋白的亲和力.可以通过降低结合的温度到4°C限制洗涤来改善结果. 平衡时间太短确认柱材至少用5倍柱体积的pH6.5到8.0的缓冲液平衡过(比如PBS). GST标签蛋白在pH值低于6.5和高在净化好的样品上样前用pH6.5到8.0的缓冲液平衡过(比如于8时结合效率低GSTrap柱:柱子需要清洗PBS). 根据标准的清洗步骤清洗柱子(见附录2).如果GSTrap柱已经用过几次了,可能需要换用新柱. Glutathione Sepharose柱材使用使用新的Glutathione Sepharose柱材(清洗过程请见附录次数过多样品上样过程中的流速过高2) 降低在上样时的流速.影响GST标签蛋白结合的一个重要参数就是流速.由于GST与谷胱甘肽相对慢的结合,在样品上样过程中保持低流速以获得最大结合能力很重要. 在KTAprime plus上的GSTrap 柱子堵住了:根据说明书清洁柱子,确认样品已经离心或柱:柱子或系统被堵住了,导致用0.45m的滤膜过滤过了. 高压力和无结合. 系统堵住了:将柱子换成一段管子.如果压力高于0.3MPa,根据手册清洗系统在KTAprime plus上的GSTrap 检测是否使用了正确的柱子. 柱:样品不结合检测流入管是否接入了正确的流入端口. 检测缓冲液的组成和pH值是否正确.检测样品是否已经被调节到适合结合缓冲液的条件.1G S T 标签蛋白洗脱缓冲液的体积不够不能被高效的洗脱洗脱的时间不够增加洗脱缓冲液的体积.有些情况下,尤其是柱上酶切有标签蛋白时,需要更大体积的缓冲液来洗脱标签蛋白. 通过降低洗脱过程中的流速来增加洗脱时间. 对于GSTrap柱,为了获得最好的结果,在样品上样时,用0.2到1ml/min的流速(1ml HiTrap柱),0.5到5ml/min的流速(5ml HiTrap柱).对于离心方法,降低洗脱过程中的离心速度.谷胱甘肽的浓度不够增加洗脱缓冲液中谷胱甘肽的浓度:本方案中建议的10mM 浓度对于大多数应用来说足够了,但是也存在例外.尝试使用50mM Tris-HCl,20-40mM 还原型谷胱甘肽,pH8.0作为洗脱缓冲液.洗脱缓冲液的pH过低增加洗脱缓冲液的pH值:将pH增加到8-9会增强洗脱而不用提高洗脱所用谷胱甘肽的浓度.洗脱缓冲液的离子强度过低.增加洗脱缓冲液中的离子强度,在洗脱缓冲液中加入0.10.2M的氯化钠也会使结果变好.洗脱缓冲也中的谷胱甘肽被氧化使用新鲜的洗脱缓冲液. 了加入DTT.非特异的疏水相互作用导致蛋白向洗脱缓冲液中加入非离子去垢剂.加入1%的TritonX-100 和柱材非特异的结合或聚集,从或2%的n-octylglucoside可以显著提高某些GST标签蛋白的而阻止了标签蛋白的溶解和洗洗脱. 脱. 电泳或蛋白质分子量为70 000 的蛋白与GST标分子量为70 000 的蛋白可能是大肠杆菌dnaK基因的产物. 免疫印迹检测签蛋白共纯化发现多条条带该蛋白参与大肠杆菌中蛋白质折叠.有报道这种相互作用可以通过上样前在50mM Tris-HCl,2mM ATP,10mM MgSO4,pH7.4中37°C温浴10分钟而破坏.或者把有标签蛋白通过A TP-agarose或相似的纯化介质或进行离子交换层析来除去. 标签蛋白被蛋白酶部分降解加入蛋白酶抑制剂.多条条带可能是由于目的蛋白被蛋白酶部分降解的结果.在裂解溶液中加入1mM PMSF可能会使结果变好.一种无毒的水溶性的PMSF替代物是AEBSF, Roche Biochemicals的商品名为Pefabloc SC.注:丝氨酸蛋白酶抑制剂必须在使用凝血酶或凝血因子Xa前除去. Prescission Protease不是一种经典的丝氨酸蛋白酶.经GE Healthcare检测,它对很多蛋白酶抑制剂不敏感. PMSF有毒,有急性作用.如果可能的话使用Pefabloc SC.2在宿主细菌中的蛋白降解用一种蛋白酶缺失型宿主:多条带可能是在宿主细菌中蛋白酶切造成的.如果是这种情况,或许需要蛋白酶缺陷型菌株(比如lon-或ompT).大肠杆菌BL21随pGEX载体提供. 这种菌株是ompT和lon缺陷型菌株.在机械裂解过程中细胞破碎降低裂解时间:细胞裂解表面上是使悬浊液部分澄清,可以通过镜检检测.机械裂解前加入溶菌酶(0.1倍体积的10 毫克/毫升溶菌酶溶液,溶菌酶保存在25mM Tris-HCl,pH8.0 )可能会使结果变好.避免发泡,因为这可能使标签蛋白变性.过分裂解也会导致宿主细胞蛋白和GST标签蛋白共纯化.分子伴侣可能被共纯化了包括额外的纯化步骤:多余的条带可能由于共纯化一些分子伴侣所造成.这些分子伴侣参与大肠杆菌中新生成的蛋白的正确折叠.这些包括,但不仅仅是:DnaK(分子量70 000)DnaJ(分子量37 000)GrpE(分子量40 000)GroEL (分子量57 000)GroES(分子量10 000).一些从这些共纯化的蛋白中分离GST标签蛋白的方法已经发表.抗体和很多种大肠杆菌中的蛋白抗体和大肠杆菌蛋白交叉反应:取决于抗GST抗体的来源. 反应它可能包含一些抗体,这些抗体与标签蛋白样品中的大肠杆菌蛋白能够反应.通过和大肠杆菌的超声裂解物反应来除掉那些能够交叉反应的抗体.GE Healthcare的GST抗体已经和大肠杆菌蛋白进行过交叉吸附,并检测证明其在蛋白质免疫印迹中没有非特异条带. 目的蛋白酶切蛋白酶切发生在宿主细菌内后电泳检测发现多条条带检测条带何时出现:确定多余的条带在Precission Protease,凝血酶,凝血因子Xa切割前不存在.这些条带可能是在宿主细菌中降解的结果. 目的蛋白可能含有Precission Protease,凝血酶,凝血因子Xa 的切割位点,检查序列.细节请参见《GST基因融合系统手册》.His Tag 蛋白纯化方法之选择全攻略HisTag 蛋白纯化篇:用基因工程的方法来表达蛋白质,必须经过纯化才能实现最终目的。

嗜水气单胞菌气溶素的表达纯化和活性实验

嗜水气单胞菌气溶素的表达纯化和活性实验

嗜水气单胞菌气溶素的表达纯化和活性实验董靖;刘永涛;胥宁;杨秋红;杨移斌;艾晓辉【摘要】气溶素(AerA)是嗜水气单胞菌分泌的重要毒力因子之一.为开展抗气溶素药物的筛选,本实验设计得到高纯度的气溶素重组蛋白并研究其生物学活性.本实验依据嗜水气单胞菌气溶素基因(aerA)序列设计特异性引物,采用PCR扩增、酶切、连接构建aerA-pGEX-6p-1原核表达载体,经测序验证后将其转化至BL21(DE3)菌株,经IPTG诱导、亲和层析、离子交换层析纯化,然后进行溶血试验测定其生物学活性.结果表明,当表达温度为16℃,经0.2 mmol/L IPTG诱导表达16 h后可得到可溶性蛋白,纯化后其纯度大于95%,该蛋白对绵羊红细胞的溶血单位为54.17 HU/μg.本实验通过原核表达、纯化得到的可溶性重组气溶素蛋白,具有良好的溶血活性,为进一步探究气溶素功能及其应用铺垫基础.【期刊名称】《中国渔业质量与标准》【年(卷),期】2019(009)001【总页数】7页(P27-33)【关键词】嗜水气单胞菌;气溶素;原核表达;纯化;溶血活性;PCR扩增;分子克隆【作者】董靖;刘永涛;胥宁;杨秋红;杨移斌;艾晓辉【作者单位】中国水产科学研究院长江水产研究所,武汉430223;中国水产科学研究院长江水产研究所,武汉430223;中国水产科学研究院长江水产研究所,武汉430223;中国水产科学研究院长江水产研究所,武汉430223;中国水产科学研究院长江水产研究所,武汉430223;中国水产科学研究院长江水产研究所,武汉430223【正文语种】中文【中图分类】S942嗜水气单胞菌 (Aeromonas hydrophila)是一种人兽鱼共患病原菌,广泛分布于水体、土壤和环境中,能够引起淡水养殖鱼类、陆生动物和人的多种疾病[1]。

嗜水气单胞菌及其他运动性气单胞菌是可在世界范围内传播的水产动物致病菌,国内外的水产养殖业常因嗜水气单胞菌感染而导致巨大的经济损失[2]。

GST标签的去除

GST标签的去除

GST标签的去除GST标签的去除可在目的蛋白的功能或结构研究之前进行。

根据目的蛋白的性质不同,完全消化所需的蛋白酶量、温度、及孵育长度也各异。

含有PreScission蛋白酶、凝血酶或Xa因子识别位点的标签蛋白可在与Glutathione Sepharose 层析填料结合时切割,或者洗脱后在溶液中切割。

当GST蛋白与柱结合时,切割释放了目的蛋白,它与结合缓冲液一起洗脱,而GST部分仍与填料结合。

一般来说,柱上切割是推荐使用的方法,因为许多潜在的杂质都能洗掉,目的蛋白在洗脱时具有更高的纯度。

如果需要优化切割条件,建议洗脱后切割。

从蛋白或肽段制备中去除丝氨酸蛋白酶如凝血酶、Xa因子和PreScission蛋白酶,可利用Benzamidine Sepharose 4 Fast Flow来进行,此填料有大包装。

为了方便,Benzamidine Sepharose 4 Fast Flow也有预填充的HiTrap Benzamidine FF 1 ml和5 ml柱。

凝血酶凝血酶能够对带有可接近的凝血酶识别序列的融合蛋白进行位点特异的切割,用于消化包含凝血酶识别序列的pGEX载体所制备的GST标签蛋白(pGEX-1λT、pGEX-2T、pGEX-2TK、pGEX-4T-1、pGEX-4T-2及pGEX-4T-3)。

在22°C,1×PBS中,一个单位的酶16小时可切割100 μg待测GST标签蛋白,切割效率在90%以上。

Xa因子纯化自牛血浆的Xa因子特异切割四肽Ile-Glu-Gly-Arg之后的蛋白,可用于消化包含此序列的pGEX载体所制备的GST标签蛋白(pGEX-3X、pGEX-5X-1、pGEX-5X-2和pGEX-5X-3)。

在22°C,1 mM CaCl2、100 mM NaCl和50 mM Tris-HCl(pH 8.0)的反应体系中,一个单位的酶16小时可切割100 μg待测GST标签蛋白,切割效率在90%以上。

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Prescission蛋白酶制作及使用方法柱下酶切用酶的制作方法1L TB菌体用PBS重悬至35ml做高压裂解,最终40ml总量。

上清用0.5ml流速,挂3-4ml柱子,PBS 漂洗30ml。

用含有10%甘油的洗脱液洗脱,每管收集体积为2ml,只取主峰,可以粗略定量,也可以取百分之一的量在Akta上用上样泵来做积分定量(参考下面的积分定量方法举例)。

也可以用分光光度计定量,一般可用稀释20倍定量。

马上分装成0.25mg每管,可切5ml介质。

柱上酶切用酶的制作方法亲和纯化方法同柱下酶切,洗脱液不含甘油,得到10ml左右洗脱液,浓缩10倍,再加入10ml 含有10%甘油和2mM DTT的PBS稀释,一共浓缩三次换buffer,每次浓缩时间一般在30分钟以内。

最终浓缩至10mg/ml,浓缩10分钟混匀一次。

尽快分装成0.25mg每管,可切5ml介质。

柱上酶切用酶的Q纯化制作方法亲和纯化方法同柱下酶切,洗脱液不含甘油,收集后加水大于三分之一。

过Q柱,AB液配方中含有10%甘油,8%B洗脱,50%B?直接洗下后积分定量,分装。

粗略定量参考2000峰宽为10.5ml,蛋白质总量为24mg,取了12ml,浓度为2mg/ml,直接分装的话,可以用125ul 和250ul每份。

积分定量方法举例取10ul ppase浓缩液,用本底缓冲液(PBS)稀释到500ul,用上样泵做积分定量,积分体积为325mAu*ml,可知浓缩好的蛋白质光吸收为每毫升为32.5Au,光吸收为1,浓缩好的蛋白质浓度为32.5mg/ml,一共24mg蛋白。

表达1.取-80度保存的质粒pGEX-PPase转化BL21(DE3)感受态,涂布,37度孵箱培养12~16 h。

2.挑取单克隆到50ml LBA培养基37度培养12-15小时。

3.1%接种到1L TBA中,培养3小时,4度水浴降温,加终浓度为0.2mM的IPTG,15.3度诱导培养18小时。

4.4000rpm离心20分钟收菌。

加入PBSE(1mM EDTA)至终体积30-40ml重悬。

纯化1.高压裂解2-3次。

2.1.5万转离心30分钟,留上清。

3.PBSS平衡5ml的GST柱,上样,PBSS漂洗,4℃放置过夜,等RNA降解,再用含有10%甘油和0.1% Tween20的酶切buffer漂洗干净。

洗脱用含10%甘油的还原性谷胱甘肽溶液,2ml每管收集,取峰尖3*1.5ml。

4.上样泵灌盐酸胍再生柱子,重力流灌水,灌20%乙醇,4℃保存柱子。

酶切效率确定5ul,10ul,20ul酶切PH35C蛋白3-4天,电泳检测酶切产物,全部切开了。

估计10ul过夜酶切1L的培养产物足够,下次实验再做验证。

保存用PCR管,分装50ul每管,冻存于-80度。

使用谷胱甘肽洗脱的融合蛋白,加入1份PPase,混匀后4度过夜酶切。

缓冲液1.10*PBSS(欧蒙基础)配方:5包PBS粉剂(欧蒙),加入360ml 5M NaCl,定容到500ml,4℃保存。

2.500ml 2M Tris(pH8.0),500ml 2M Tris(pH7.4)350ml水溶解121.1g Tris碱,加转子搅拌或振荡下溶解(需要10分钟左右),加浓盐酸调pH至所需值,抽滤后4℃保存。

如温度升高,可加入预冷的水降温,温度下降1度pH升高0.03。

pH6.8约需盐酸160 ml,pH7.4约需盐酸70 ml,7.6约需60ml,8.0约需42ml,8.0约需40ml。

Tris缓冲液稀释10倍pH下降0.1,故如稀释为20mM使用,则pH下降0.2。

3.1L 2M Tris不调pH800ml水溶解242.2g Tris碱,加转子搅拌,定容至1L,抽滤后4℃保存。

4.500ml 0.5 mM EDTA将93.05g二水乙二胺四乙酸二钠加入400ml水中,加入氢氧化钠颗粒调节pH(约需10g氢氧化钠颗粒),先加入7g左右,用搅拌棒彻底搅匀,在转子搅拌下,使其大部分溶解,静置一会儿,使气泡排出,并观察沉淀量。

再继续搅拌,少量加入氢氧化钠颗粒,观察pH变化,勿使其变化过快,完全溶解后,加入4℃预冷的水(此时pH升高),继续调节pH为8.0,最终定容至1L,抽滤除去杂质,避光保存于4℃。

5.10% Tween 202ml Tween 20,溶于20ml水,避光保存,千分之一稀释使用(根据GE资料)。

6.250ml 20*酶切buffer储存液400mM Tris-HCl (pH 7.0-pH 8.5), 3 M NaCl, 20 mM EDTA配方:2M Tris-HCL 50 ml5M NaCL 150 ml0.5M EDTA 10 ml工作液成分(2M Tris稀释100倍使用,pH值会下降0.2):20mM Tris-HCl,150mM NaCl, 1 mM EDTA作为漂洗液,使用前添加0.1% Triton X100(或者Tween20),做为酶切液使用前添加0.01% Triton (或者Tween20)和1mM DTT。

7.100ml 20×还原性谷胱甘肽储液成分:200mM还原型谷胱甘肽,50mM NaCl,1mM EDTA,0.01% Triton X-100(用欧蒙Tween20替代),100mM Tris(pH8.0)50ml离心管1支,称取6.14g还原型谷胱甘肽,加20ml 5M NaCl,4ml 0.5M EDTA,0.2ml 10% Tween20再加水溶解至50ml,倒入100ml烧杯,再量取50ml 2M Tris(pH8.0),倒入100ml烧杯,搅拌溶解,滤器过滤至50ml离心管,1ml分装冻存于-20度。

8.500ml 7M盐酸胍称取334.4g盐酸胍,加水到450ml。

定容,抽滤,室温保存。

PPase信息1.PPase是人类鼻病毒蛋白酶Human rhinovirus B从11号氨基酸(G P N T E F A L S L L R ),N端接入为BamH,尾端为EcoR。

所用载体为pGEX4t2.pGEX4t-HR14载体表达蛋白质序列MSPILGYWKIKGLVQPTRLLLEYLEEKYEEHL YERDEGDKWRNKKFELGLEFPNLPYYIDGDVKL TQSMAIIRYIADKHNMLGGCPKERAEISMLEGA VLDIRYGVSRIAYSKDFETLKVDFLSKLPEMLK MFEDRLCHKTYLNGDHVTHPDFML YDALDVVL YMDPMCLDAFPKLVCFKKRIEAIPQIDKYLKS SKYIAWPLQGWQA TFGGGDHPPKSDLVPRGSGGGPNTEFALSLLRKNIMTITTSKGEFTGLGIHDR VCVIPTHAQPGDDVLVNGQKIRVKDKYKLVDPENINLELTVLTLDRNEKFRDIRGFISEDLEGVDA T LVVHSNNFTNTILEVGPVTMAGLINLSSTPTNRMIRYDYATKTGQCGGVLCATGKIFGIHVGGNGR QGFSAQLKKQYFVEKQ3.蛋白质参数Number of amino acids: 410Molecular weight: 46403.5Theoretical pI: 6.80Ext. coefficient 49195Abs 0.1% (=1 g/l) 1.060, assuming all pairs of Cys residues form cystinesExt. coefficient 48820Abs 0.1% (=1 g/l) 1.052, assuming all Cys residues are reduced1L LB,OD 0.8左右诱导,收菌。

缓冲液配制:1M 6.8的Tris稀释50倍(稀释10倍下降0.1),上纯化仪,温度为9.7度,pH为6.8,25度测pH值应该是6.351M 7.4的Tris稀释50倍,上纯化仪,温度为9.7度,pH为7.5,25度测pH值应该是7.05,所以酶切buffer可以用这个缓冲液稀释而成。

二者混合后,pH为7.25,温度升高1度,下降0.03,所以如果25度测的话,应该下降0.45,pH值为6.8裂解Buffer:40 mL of 50 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA, 5 mM DTT at pH 8.8.纯化方法:4度30分钟之内,缓缓滴入1ml 10% PEI,2万转离心,上清上GST柱,用谷胱甘肽洗脱,用PPase Buffer (添加10%甘油)透析,浓缩到10 mg/ml,然后分装,10 ul相当于0.1 mg的酶可以切2ml介质。

如果浓缩到1 mg/ml,100 ul分装即可。

500ml酶切buffer配方1.21g Tris-HCl, 15ml 5 M NaCl, 1ml 500 mM EDTA, 调节pH 7.0,500ul 1M DTT使用时添加20*酶切buffer配方:400mM Tris-HCl (pH 7.0), 3 M NaCl, 20 mM EDTA, 20 mM dithiothreitol(DTT可以使用时添加)100ml 配方(调pH到7.0)2M Tris-HCL 20 ml5M NaCL 60 ml0.5M EDTA 4 ml1L 储存液配方(调pH到7.0)2M Tris-HCL 200 ml5M NaCL 600 ml0.5M EDTA 40 ml10*酶切buffer配方(用1M Tis pH7.4):100ml 配方(不需要调pH)1M Tris-HCL 20 ml5M NaCL 30 ml0.5M EDTA 2 ml500 储存液配方(不需要调pH)1M Tris-HCL 100 ml5M NaCL 150 ml0.5M EDTA 10 mlSource:Comes from Human Rhinovirus – HRV3C Protease. This is a cysteine protease.Our version of this protease is an N-terminal His-GST- dual-tagged version that runs ~47KDa on SDS-PAGE. Can be removed by either GST- or Ni-affinity resins (WARNING: Need to remove DTT prior to Ni-resin use).Recognition site:LEVLFQ/GP is the standard site in most pGex vectors. Alternative sites can be cleaved. LE-P4-LFQ/GP /=cleaved siteP4=Val Ala or Thr.Standard Buffer:20mM TRIS pH=7.0150mM NaCl1mM DTT or 5-10mM BME (TCEPT not tested)0.5mM EDTA (optional)Buffer: pH ranges from 7.0 to 8.5 seem optimalTemperature: 4C is optimal but this enzyme will work at room temperature (4-15C).Salt: 30-500mM NaCl have been tested with no changes in proteolysis.Reducing agent: Required. Need 1mM DTT or 5-10mM BME (TCEP has not been tested). Not to exceed 2mM DTT.EDTA: (0 to 10mM) Often required to minimize metal poisoning of this enzyme (ie Ni+2 off Ni-column may form adducts in presence of DTT). First dialyze against cleavage buffer +0.5mM EDTA prior to addition of protease.Detergents (Triton X-100, Tween-20, NP-40, Nonidet) 0 - 1% (v/v).Cleavage in solution1. Following elution of the GST fusion protein from Glutathione Sepharose, dialyze the eluate extensively against Cleavage Buffer in order to remove reduced glutathione from the sample.-Note: Alternatively, sample may be adjusted to 1X Cleavage Buffer by addition of the appropriate volume of 10X Cleavage Buffer.2. Add 1 µl (2 units) of PreScission Protease for each 100 µg of fusion protein in the eluate. If the amount of fusion protein in the eluate has not been determined, add 40 µl (80 units) of PreScission Protease for each ml of Glutathione Sepharose bed volume* from which the fusion protein was eluted. Incubate at 5°C for 4 hours.**3. Once digestion is complete, apply the sample to washed and equilibrated Glutathione Sepharose to remove the GST portion of the fusion protein and the PreScission Protease from the protein of interest. Detailed instructions for the purification of GST fusion proteins are provided in the GST Purification Modules (from GE 27-4570-01, -02, -03) or the GST Gene Fusion Manual, available on-line (GE Healthsciences).*Bed volume is equal to 0.5X the volume of a 50% Glutathione Sepharose slurry used or 0.75X the volume of the original Glutathione Sepharose slurry supplied in the Bulk GST Purification Module. RediPack columns contain a 2 ml bed volume. MicroSpin columns have a 50 µl bed volume.**More rapid cleavage may be achieved by adding a greater amount of PreScission Protease.Note: Digestion may be improved by adding TritonTM X-100, TweenTM 20, NonidetTM, or NP40 to a concentration of 0.01%. Concentrations of these detergents up to 1% do not inhibit PreScission Protease.During cleavage reactions, it is recommended that samples be removed at various time points and analyzed by SDS-PAGE to estimate the yield, purity, and extent of digestion. The amount of PreScission Protease, temperature and length of incubation required for complete digestion of a given GST fusion partner may vary depending on the fusion partner. Optimal conditions for each fusion should be determined in pilot experiments. Substrate recognition and cleavage are likely to be dependent not only upon primary structural signals, but also upon the secondary and tertiary structures of the fusion protein as well.Units:1Unit will cleave >90% of 100ug of protein on standard buffer at 4C in 16 hours.There is 833-1000 Units per mg of purified protease.Some define the “Unit” as 1U will cleave 100mg of target and there are ~ 1U/mgof protease. So if this is stored at 10mg/ml one only needs to use 100ul to cleave 100mg of protein. Additives:Things that do NOT inhibit this enzyme:Upto 2mM DTT2% glycerol0.1% triton X-100Antipain dihydrochloride 74 µMAprotinin 0.3 µMBestatin 130 µME-64 28 µMLeupeptin 1 µMPepstatin 1 µMPhosphoramidon 0.6 mMPMSF 1 mMZnCl2 10 mMThings that strongly inhibit this protease (>50% reduction):ZnCl2 100 mMPefablocTM7 SC 4 mMChymostatin 100 µMOther Cysteine modifying reagents.Storage:Store at –20C in small aliquots.Long term at –80C.Suppliers:KathyGE LifesciencesAccelagen。

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