小鼠磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)说明书活性

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【国家自然科学基金】_蛋白激酶活性_基金支持热词逐年推荐_【万方软件创新助手】_20140801

【国家自然科学基金】_蛋白激酶活性_基金支持热词逐年推荐_【万方软件创新助手】_20140801

2011年 序号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21
2011年 科研热词 蛋白激酶 高等植物 高温强光胁迫 酵母 表达模式分析 表达 蛋白激酶基因 腺苷酸环化酶 肾上腺素 肝细胞 细胞膜 细胞分裂周期 离子通道 磷酸酯酶 磷酸二酯酶活性 环核苷酸 水杨酸 小麦 基因克隆 内蒙古白绒山羊 akt 推荐指数 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1
推荐指数 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1
2010年 序号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
科研热词 推荐指数 高温强光 1 靶基因 1 非amp依赖通路 1 蛋白激酶 1 腺苷一磷酸激活蛋白激酶 1 生物信息学 1 小麦 1 mirna 1 d1蛋白磷酸化 1 ca2+ 1 amp依赖通路 1 ampk激酶 1
推荐指数 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1
2009年 序号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25
科研热词 高温 酪氨酸蛋白激酶 蛋白激酶 葡萄 胃肿瘤 羊驼 缺氧 细胞凋亡 糖尿病 神经管缺陷 白介素-1β 、4、8、13 癌症 活性 序列分析 富集分析 叶片 凋亡 克隆 sa pc12细胞 microrna map kinase kit基因 c-myc akt
2014年 序号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14

运动对肥胖状态下LKB1-AMPK-ACC信号传导通路的影响

运动对肥胖状态下LKB1-AMPK-ACC信号传导通路的影响

运动对肥胖状态下LKB1-AMPK-ACC信号传导通路的影响陈春平;任华;何柯书;常波【摘要】肥胖已经成为危险人类健康的常见慢性疾病,而运动是目前公认的治疗肥胖最为有效的方法之一.AMPK(腺苷酸活化蛋白激酶)是一种比较重要的代谢性应激蛋白激酶,在全身的能量平衡中起着总开关的作用.LKB1可以活化细胞中的AMPK,AMPK使ACC(乙酰辅酶A羧化酶)磷酸化失活,脂肪酸合成减少、氧化分解增加,从而预防肥胖的发生发展.肥胖状态下,AMPK磷酸化水平降低,ACC活性增强,脂肪酸合成增加、氧化速率下降.而运动是改善肥胖的重要手段,可以使AMPK磷酸化增强,ACC活性减弱.主要阐述肥胖状态下LKB1 - AMPK - ACC信号传导通路各级联蛋白的变化趋势,以及运动干预对各级联蛋白含量的影响.【期刊名称】《广州体育学院学报》【年(卷),期】2012(032)004【总页数】5页(P101-104,113)【关键词】AMPK;ACC;LKB1;肥胖;运动【作者】陈春平;任华;何柯书;常波【作者单位】广东培正学院体育教学部,广东广州510530;沈阳体育学院研究生部,辽宁沈阳110102;沈阳体育学院研究生部,辽宁沈阳110102;沈阳体育学院运动人体科学学院,辽宁沈阳110102【正文语种】中文【中图分类】G804.61肥胖是一种由能量代谢失衡而导致的病症,它可以引起2型糖尿病、脂肪肝、心脑血管疾病、胆石症、某些癌症等严重危害身体健康的病症,已经成为困扰全球的健康问题之一,因此,WHO曾向全世界宣布:“肥胖症将成为全球首要的健康问题”。

中国目前肥胖人口已达3.25亿人,增幅已经超过美国、英国和澳大利亚,并且这个数字在未来20年还可能增加一倍。

AMPK(腺苷酸活化蛋白激酶)在调节机体能量代谢的平衡方面起总开关作用。

AMPK通过抑制ACC的活性达到抑制脂肪酸合成脂肪以及促进脂肪酸氧化分解利用从而达到减肥的目的,而AMPK的活性又受到其上游激酶之一的LKB1活性的调节。

抗阻运动对胰岛素抵抗小鼠海马内焦亡相关蛋白的影响

抗阻运动对胰岛素抵抗小鼠海马内焦亡相关蛋白的影响

抗阻运动对胰岛素抵抗小鼠海马内焦亡相关蛋白的影响姬瑞方1+,卞学鹏1+,刘蓓蓓2,胡静芸1,薛香莉1,娄淑杰1△(1.上海体育学院,上海200438;2.潍坊医学院,山东潍坊261042)【摘要】 目的:探讨胰岛素抵抗小鼠海马内焦亡相关蛋白的变化,以及抗阻训练对海马内焦亡相关蛋白的调节作用。

方法:6周龄C57BL/6J雄性小鼠随机分为对照组(C,n=12)和高脂膳食组(HFD,n=26)分别进行普通膳食或高脂膳食喂养12周。

随后根据葡萄糖耐量实验(GTT)和胰岛素耐量实验(ITT)的结果,将HFD组分为胰岛素抵抗组(IR,n=10)和抗阻运动组(RT,n=10),维持高脂膳食喂养同时RT组小鼠进行抗阻训练。

12周后,全部小鼠麻醉后处死,取脑并剥离出海马组织,通过Westernblot检测焦亡相关蛋白的表达。

结果:与C组相比,IR组小鼠海马内NF κB、NLRP3炎症小体、下游焦亡相关蛋白GSDMD N和GSDMD以及炎症因子IL 1β和IL 18的蛋白表达量显著性上升(P<0.05),SIRT1蛋白表达量以及p AMPK蛋白水平显著性下降(P<0.05);与IR组相比,RT组小鼠海马内NF κB、NLRP3炎症小体、下游焦亡相关蛋白GSDMD N和GSDMD以及炎症因子IL 1β和IL 18的蛋白表达量显著性下降(P<0.05),SIRT1蛋白表达量以及p AMPK蛋白水平显著性上升(P<0.01)。

结论:胰岛素抵抗小鼠海马内NLRP3炎症小体被激活,介导海马内发生细胞焦亡;经过12周的抗阻运动可有效抑制NLRP3炎症小体激活,改善海马内细胞焦亡和炎症状态。

【关键词】 抗阻运动;胰岛素抵抗;海马;NLRP3炎症小体;焦亡;小鼠【中图分类号】G804.2 【文献标识码】A 【文章编号】1000 6834(2020)05 456 006【DOI】10.12047/j.cjap.5969.2020.097Effectsofresistanceexerciseonpyroptosis relatedproteinsinhippocampusofinsulinresistantmiceJIRui fang1+,BIANXue peng1+,LIUBei bei2,HUJing yun1,XUEXiang li1,LOUShu jie1△(1.ShanghaiUniversityofSport,Shanghai200438;2.WeifangMedicalUniversity,Weifang261042,China)【ABSTRACT】Objective:Toinvestigatethechangesofpyroptosis relatedproteinsinthehippocampusofinsulin resistantmiceandtheregulationofresistancetrainingonpyroptosis relatedproteins.Methods:Six week oldmaleC57BL/6Jmicewererandomlydividedintocontrolgroup(C,n=12)andhigh fatdietgroup(HFD,n=26)fornormalorhigh fatdietfor12weeks.Subsequently,accord ingtotheresultsofglucosetolerancetest(GTT)andinsulintolerancetest(ITT),theratsfedwithhigh fatdietweredividedintoin sulinresistancegroup(IR,n=10)andresistanceexercisegroup(RT,n=10)aswellastomaintainhigh fatdiet.Atthesametime,miceintheRTgroupweresubjectedtoresistancetraining.After12weeks,allmiceweresacrificedafteranesthesia,brainwasre movedandhippocampuswasexfoliated,andtheexpressionsofpyroptosis relatedproteinsweredetectedbyWesternblot.Results:ComparedwiththeCgroup,NF κB,theNLRP3inflammasomeproteins,theirdownstreampyroptosis relatedproteinsGSDMD NandGSDMDaswellasinflammationfactorsIL 1βandIL 18inhippocampusofIRgroupweresignificantlyincreased(P<0.05),andtheexpressionlevelsofSIRT1andp AMPKproteinweresignificantlydecreased(P<0.05).ComparedwiththeIRgroup,NF κB,theNLRP3inflammasomeproteins,theirdownstreampyroptosis relatedproteinsGSDMD NandGSDMDaswellasinflammationfactorsIL 1βandIL 18inhippocampusofRTgroupweresignificantlydecreased(P<0.05),andtheexpressionlevelsofSIRT1andp AMPKproteinweresignificantlyincreased(P<0.01).Conclusion:NLRP3inflammasomeinthehippocampusofinsulin resistantmiceisac tivated,whichmediatespyroptosisinthehippocampus.TwelveweeksofresistancetrainingcaneffectivelyinhibittheactivationofNL RP3inflammasomeanddecreasepyroptosisandimproveinflammationinthehippocampus.【KEYWORDS】 resistancetraining; insulinresistance; hippocampus; NLRP3inflammasome; mice 【基金项目】国家自然科学基金资助项目(81572241);上海市人类运动能力开发与保障重点实验室(上海体育学院)资助项目(11DZ2261100)【收稿日期】2019 11 08【修回日期】2020 05 19 △【通讯作者】Tel:(021)51253243;E mail:shujielou319@163.com.+:为共同第一作者 高脂膳食可诱发多种代谢紊乱,例如肥胖、高血压、胰岛素抵抗、2型糖尿病和胰岛素抵抗[1],其中胰岛素抵抗(insulinresistance,IR)是指脂肪细胞、神经元、骨骼肌等靶细胞对正常循环水平的胰岛素反应降低[2],使胰岛素信号传导发生障碍,继而诱发氧化应激、氮化应激和内质网应激等多种细胞应激。

AMPK活化对Akt-FOX03信号通路及蛋白质降解的影响研究

AMPK活化对Akt-FOX03信号通路及蛋白质降解的影响研究

引用本文格式:马延超.朱荣.许寿生.王瑞元 AMPK活化对Akt-FOX03信号通路及蛋白质降解l q-中国生理学会运动生理学专业委员会会议暨“运动与骨骼肌”学术研讨会 (P<0.05),AICAR注射后7h,Fox03a&心53磷酸化水平有降低趋势,但差异没有显著性意义。Fox03a 总蛋白含量在各组间的差异没有显著性意义。 结论(1)AICAR一次性注射后1.7小时,AMPK活性升高,骨骼肌蛋白质降解加强,在注射后7h, AMPK活性和骨骼肌蛋白质降解开始下降。
(2)在一次性AICAR注射动物模型中,观察到在各个时相点上AMPK活性变化与Akt磷酸化 变化呈反变关系,与MAFbx mRNA、MuRFl mRNA表达量变化呈一致性。推测AMPK活性升高后, 可能通过降低Akt磷酸化,活化Akt.FoxO信号通路,促进MAFbx mRNA、MuRFl mRNA基因表达, 促进骨骼肌蛋白质的降解。
.76.
AMPK活化对Akt-FOX03信号通路及蛋白质降解的影响研究
作者: 作者单位:
马延超, 朱荣, 许寿生, 王瑞元 马延超(洛阳师范学院体育学院,河南洛阳 471022), 朱荣(温州医学院体育科学学院,浙 江温州 325035), 许寿生,王瑞元(北京体育大学研究生院,北京市 100084)
(3)AICAR…次性注射后,观察到MuRFl、MAFbx mRNA表达量显著升高,但没有观察到 骨骼肌内3.MH含量在各组问有显著性差异,推测反映骨骼肌蛋白质降解方面,MuRFI、MAFbx mRNA比3-MH的敏感度要高。 关键词腺苷酸活化蛋白激酶;泛素蛋白连接酶;3.甲基组氨酸;蛋白质降解;蛋白激酶B

雷美替胺对脂多糖诱导的血脑屏障模型通透性升高的保护作用及其机制

雷美替胺对脂多糖诱导的血脑屏障模型通透性升高的保护作用及其机制

雷美替胺对脂多糖诱导的血脑屏障模型通透性升高的保护作用及其机制郑文涛;杨林;王浩【期刊名称】《中国医院用药评价与分析》【年(卷),期】2024(24)1【摘要】目的:探讨雷美替胺(Ramelteon)对脂多糖(LPS)诱导的血脑屏障(BBB)模型通透性升高的保护作用和其机制以及与炎症反应、氧化应激反应的关系。

方法:将24只健康的C57BL/6雄性小鼠分为对照组(0.9%氯化钠溶液)、Ramelteon组、LPS组和LPS+Ramelteon组,用LPS诱导小鼠血脑屏障损伤,刺激小鼠内皮细胞损伤。

采用伊文思蓝染色法测定其脑通透性。

采用细胞计数法-8测定细胞的活力。

采用免疫染色和蛋白质印迹法来检测脑组织和内皮细胞中人紧密连接蛋白1(ZO-1)和闭合蛋白(Occludin)的表达。

采用定量反转录聚合酶链反应和酶联免疫吸附试验检测方法检测炎症因子白细胞介素1β(IL-1β)和单核细胞趋化蛋白1(MCP-1)水平的表达。

用硫代巴比妥酸法检测脑组织和内皮细胞中丙二醛(MDA)的浓度。

用蛋白质印迹法检测细胞核中人核因子E2相关因子2(Nrf2)和醌氧化还原酶(NQO1)的表达情况。

结果:(1)与对照组相比,LPS组小鼠的大脑通透性增加、小鼠神经功能评分显著降低;与LPS组比较,LPS+Ramelteon组小鼠大脑通透性降低、神经功能评分显著升高,差异均有统计学意义(P<0.05)。

(2)与对照组相比,LPS组ZO-1和Occludin表达降低,IL-1β和MCP-1表达升高;与LPS组比较,LPS+Ramelteon组ZO-1和Occludin表达升高,IL-1β和MCP-1表达降低,差异均有统计学意义(P<0.05)。

(3)与对照组相比,LPS组Nrf2和NQO1表达降低,MDA水平升高;与LPS组比较,LPS+Ramelteon组Nrf2和NQO1表达升高,MDA水平降低,差异均有统计学意义(P<0.05)。

运动介导AMPK调控线粒体质量控制的机制研究进展

运动介导AMPK调控线粒体质量控制的机制研究进展

运动介导AMPK调控线粒体质量控制的机制研究进展张坦;孙易;丁树哲【摘要】作为高度动态化的细胞器,线粒体处于持续动态变化中,其生物发生、融合分裂和自噬之间的平衡对维持线粒体网络稳态至关重要.骨骼肌线粒体的运动性适应包括两个方面,即线粒体数量的增加及线粒体质量(结构与功能)的完善.运动不仅能够促进线粒体生物发生,同时亦可诱导、促进线粒体自噬等逆向适应,其中腺苷酸活化蛋白激酶(Amp activated protein kinase,AMPK)被认为在其中发挥关键作用.本研究综述了运动通过AMPK对线粒体质量控制产生的干预作用及具体分子机制.【期刊名称】《中国体育科技》【年(卷),期】2018(054)006【总页数】6页(P97-102)【关键词】运动;线粒体;质量控制;腺苷酸活化蛋白激酶【作者】张坦;孙易;丁树哲【作者单位】华东师范大学青少年健康评价与运动干预教育部重点实验室,上海200241;华东师范大学体育与健康学院,上海 200241;华东师范大学青少年健康评价与运动干预教育部重点实验室,上海 200241;华东师范大学体育与健康学院,上海200241;华东师范大学青少年健康评价与运动干预教育部重点实验室,上海200241;华东师范大学体育与健康学院,上海 200241【正文语种】中文【中图分类】G804.7线粒体是真核细胞内普遍存在的细胞器,做为细胞生物氧化磷酸化的重要场所,为机体提供大部分能量。

然而,线粒体不仅是真核细胞的能量工厂,更是细胞信号转导的调控中心。

其中线粒体在氧化磷酸化提供ATP的同时伴随有活性氧(reactive oxygen species, ROS)的产生,过量的ROS则攻击线粒体DNA (mitochondrial DNA, mtDNA)、脂质及蛋白质等生物大分子物质,而且线粒体是ROS首先攻击的靶点。

受损线粒体堆积增加进而产生更多的ROS,最终使得氧化还原失衡,形成恶性循环。

G蛋白耦联胆汁酸受体激动剂INT777通过激活AMPK信号通路抑制施万细胞成髓鞘过程

G蛋白耦联胆汁酸受体激动剂INT777通过激活AMPK信号通路抑制施万细胞成髓鞘过程

南通大学学报(医学版)Journal of Nantong University (Medical Sciences) 2021 : 41 (1)6・D0I:10.16424/32-1807/r.2021.01.002G 蛋白耦联胆汁酸受体激动剂INT777通过激活AMPK 信号通路抑制施万细胞成髓鞘过程*关晋东:丁杰,刘晓宇,孙诚**** [基金项目]国家自然科学基金青年基金资助项目(81701222)** [作者简介]关晋东,男,汉族,生于1995年10月,山西省晋城市人,硕士在读,研究方向:外周神经发育及损伤修复机制的研究。

*** [通信作者] 孙诚,电话**************,E-mail: ********************.cn(南通大学教育部/江苏省神经再生重点实验室/神经再生协同创新中心,南通226001)[摘 要]目的:研究G 蛋白耦联胆汁酸受体(G-protein-coupled bile acid receptor 1, GPBAR1,同时也被称为TGR5) 特异性激动剂6琢-乙基-23(S)-甲基胆酸[6 alpha-ethyl-23(S)-methylcholic acid, INT777[对原代施万细胞髓鞘形成的影响并初步探讨其可能的作用机制遥方法:用5 滋mol/L 的INT777处理二丁酰环腺苷酸(dibutyryl cyclic adenoslne phosphate, dbcAMP )诱导分化原代施万细胞成髓鞘模型,用免疫印迹(Western Blot )方法检测髓磷脂蛋白表达量的变化遥同时,提取 施万细胞总核糖核酸后用定量聚合酶链式反应试验检测INT777对髓鞘形成过程相关分子基因表达的影响遥另外,用Western Blot 方法检测INT777对单磷酸腺苷活化蛋白激酶/核糖体蛋白S6激酶(adenosine 5'-monophosphate-activatedprotein kinase/ribosomal S6 kinase, AMPK/S6K )信号途径的影响遥结果:在dbcAMP 诱导分化原代施万细胞成髓鞘过程中,5 滋mol/L INT777的处理抑制了髓鞘早期生长因子20,八聚体结合转录因子6,髓磷脂蛋白的表达,且5滋mol/L INT777 处理激活了 AMPK 的活性,抑制了雷帕霉素作用靶点信号通路遥结论:INT777抑制dbcAMP 诱导的施万细胞成髓鞘过程,这种抑制作用可能是通过激活施万细胞AMPK 活性、抑制S6K 活性实现的遥[关键词]施万细胞曰髓鞘曰6琢-乙基-23(S)-甲基胆酸曰单磷酸腺苷活化蛋白激酶[中图分类号]R338.1 [文献标志码]A [文章编号]1674-7887(2021)01-0006-05G-protein-coupled bile acid receptor agonists INT777 inhibits myelination of Schwann cells byactivating AMPK signaling pathway*GUAN Jindong **, DING Jie, LIU Xiaoyu, SUN Cheng ***('Key Laboratory of Neuroregeneration of Jiangsu and Ministry ofEducation, Co-innovation Center of Neuroregeneration, Nantong University, Nantong 226001)[Abstract ] Objective: To investigate the effects of G-protein-coupled bile acid receptor 1(GPBAR1, also known as TGR5)specific agonist 6 alpha-ethyl-23(S)-methylcholic acid(INT777) on myelination in primary Schwann cells and the underlying mechanisms. Methods: Primary Schwann cells were treated with 5 滋mol/L INT777 and dibutiryl cyclic adenoslne phosphate (dbcAMP), and the changes of myelin protein zero were detected by Western Blot. Meanwhile, the total RNA was extractedfrom Schwann cells and quantitative real time polymerase chain reaction was employed for detecting myelin gene expression. In addition, the effect of INT777 on the adenosine 5' -monophosphate -activated protein kinase/ribosomal protein S6 kinase (AMPK/S6K) signaling pathway was examined by Western Blot. Results : Treatment with 5 滋mol/L INT777 inhibited theexpression of myelin early growth response -2, octamer -binding transcription factor 6, and myelin protein zero during dbcAMP-induced myelination of differentiated Schwann cells, and treatment with 5 滋mol/L INT777 activated AMPK activity and inhibited mTOR signaling pathway. Conclusion: INT777 attenuates dbcAMP-induced myelination of Schwann cells, whichmay be achieved by activating AMPK and inhibiting S6K activity.[Key words ] Schwann cell; myelination; 6 alpha-ethyl -23(S)-methylcholic acid; adenosine 5'-monophosphate-activated protein kinase外周神经系统(peripheral nervous system, PNS) 在机体内分布广泛且起到介导靶器官与中枢神经系 统信号传递的重要作用。

细胞自噬过程的调控机制

细胞自噬过程的调控机制

细胞自噬过程的调控机制细胞自噬是细胞内一种重要的代谢途径,它通过噬食并降解细胞内的有害或老化的细胞器和蛋白质,从而维持细胞内环境的稳定。

细胞自噬的调控机制非常复杂,包括多个信号通路和蛋白质分子的参与。

下面将对细胞自噬的调控机制进行详细的阐述。

细胞自噬主要由三个步骤组成:启动、扩张和降解。

在启动阶段,细胞内的自噬体外膜源于高度保守的源起体。

源起体是一个由Beclin 1(也称为Atg6)和Vps34(一个类III磷脂酰肌醇激酶)等蛋白质组成的复合体。

这个复合体催化产生磷脂酰肌醇3磷酸(PI3P),从而吸引其他自噬相关蛋白质结合并形成自噬体。

扩张阶段是自噬体的增加和长大过程。

自噬体的形成需要ATG蛋白家族的参与,其中最重要的是Atg8/LC3蛋白。

这些蛋白质结合到自噬体外膜上,使其与细胞质中的物质结合并形成腔泡。

同时,还需要Atg12和Atg5形成一个复合体,这个复合体与Atg16L结合,并参与自噬体的形成。

降解阶段是自噬体与溶酶体融合并进行降解。

自噬体主要通过融合ER(内质网)或/和早期和晚期溶酶体来实现。

融合的过程涉及Rab和SNARE蛋白质家族的参与。

一旦融合完成,酸性环境和溶酶体酶将开始降解自噬体内的物质。

降解产物如蛋白质和核酸可以通过运输蛋白质回到胞质中,参与细胞生理功能。

细胞自噬的过程受到许多信号通路的调控,其中最重要的包括mTOR信号通路、AMPK信号通路和PI3K-Akt信号通路。

mTOR信号通路是细胞内最重要的负调控自噬的信号通路。

mTOR是一个高度保守的丝氨酸/苏氨酸激酶,它主要通过对Atg1的抑制来负调控自噬体的形成。

当细胞内的氨基酸、葡萄糖或其他营养物质充足时,mTOR 被激活,导致自噬通路关闭。

但当细胞处于饥饿或其他应激条件下,mTOR 被抑制,自噬通路则被激活。

AMPK信号通路也是一个主要的负调控自噬的通路。

AMPK是一种腺苷酸活化的蛋白激酶,它主要通过磷酸化和抑制mTOR来激活自噬通路。

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小鼠磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)酶联免疫分析(ELISA)试剂盒使用说明书本试剂仅供研究使用目的:本试剂盒用于测定小鼠血清,血浆及相关液体样本中磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)活性。

实验原理:本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中小鼠磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)水平。

用纯化的小鼠磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK),再与HRP标记的磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显色。

TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。

颜色的深浅和样品中的磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)呈正相关。

用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中小鼠磷酸化腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)活性浓度。

样本处理及要求:1.血清:室温血液自然凝固10-20分钟,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清,保存过程中如出现沉淀,应再次离心。

2.血浆:应根据标本的要求选择EDTA、者柠檬酸钠或肝素作为抗凝剂,混合10-20分钟后,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应该再次离心。

3.尿液:用无菌管收集,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

胸腹水、脑脊液参照实行。

4.细胞培养上清:检测分泌性的成份时,用无菌管收集。

离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清。

检测细胞内的成份时,用PBS(PH7.2-7.4)稀释细胞悬液,细胞浓度达到100万/ml左右。

通过反复冻融,以使细胞破坏并放出细胞内成份。

离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清。

保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

5.组织标本:切割标本后,称取重量。

加入一定量的PBS,PH7.4。

用液氮迅速冷冻保存备用。

标本融化后仍然保持2-8℃的温度。

加入一定量的PBS(PH7.4),用手工或匀浆器将标本匀浆充分。

离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清。

分装后一份待检测,其余冷冻备用。

操作步骤1.标准品的稀释与加样:在酶标包被板上设标准品孔10孔,在第一、第二孔中分别加标准品100μl,然后在第一、第二孔中加标准品稀释液50μl,混匀;然后从第一孔、第二孔中各取100μl分别加到第三孔和第四孔,再在第三、第四孔分别加标准品稀释液50μl,混匀;然后在第三孔和第四孔中先各取50μl弃掉,再各取50μl分别加到第五、第六孔中,再在第五、第六孔中分别加标准品稀释液50ul,混匀;混匀后从第五、第六孔中各取50μl分别加到第七、第八孔中,再在第七、第八孔中分别加标准品稀释液50μl,混匀后从第七、第八孔中分别取50μl加到第九、第十孔中,再在第九第十孔分别加标准品稀释液50μl,混匀后从第九第十孔中各取50μl弃掉。

(稀释后各孔加样量都为50μl,浓度分别为18 U/L,12 U/L ,6 U/L,3 U/L,1.5 U/L)。

2.加样:分别设空白孔(空白对照孔不加样品及酶标试剂,其余各步操作相同)、待测样品孔。

在酶标包被板上待测样品孔中先加样品稀释液40μl,然后再加待测样品10μl(样品最终稀释度为5倍)。

加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀。

3.温育:用封板膜封板后置37℃温育30分钟。

4.配液:将30(48T的20倍)倍浓缩洗涤液用蒸馏水30(48T的20倍)倍稀释后备用。

5.洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置30秒后弃去,如此重复5次,拍干。

6.加酶:每孔加入酶标试剂50μl,空白孔除外。

7.温育:操作同3。

8.洗涤:操作同5。

9.显色:每孔先加入显色剂A50μl,再加入显色剂B50μl,轻轻震荡混匀,37℃避光显色15分钟.10.终止:每孔加终止液50μl,终止反应(此时蓝色立转黄色)。

11.测定:以空白空调零,450nm波长依序测量各孔的吸光度(OD值)。

测定应在加终止液后15分钟以内进行。

注意事项:1.试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用,酶标包被板开封后如未用完,板条应装入密封袋中保存。

2.浓洗涤液可能会有结晶析出,稀释时可在水浴中加温助溶,洗涤时不影响结果。

3.各步加样均应使用加样器,并经常校对其准确性,以避免试验误差。

一次加样时间最好控制在5分钟内,如标本数量多,推荐使用排枪加样。

4.请每次测定的同时做标准曲线,最好做复孔。

如标本中待测物质含量过高(样本OD值大于标准品孔第一孔的OD值),请先用样品稀释液稀释一定倍数(n倍)后再测定,计算时请最后乘以总稀释倍数(×n×5)。

5.封板膜只限一次性使用,以避免交叉污染。

6.底物请避光保存。

7.严格按照说明书的操作进行,试验结果判定必须以酶标仪读数为准.8.所有样品,洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。

9.本试剂不同批号组分不得混用。

10. 如与英文说明书有异,以英文说明书为准。

计算:Array以标准物的浓度为横坐标,OD值为纵坐标,在坐标纸上绘出标准曲线,根据样品的OD值由标准曲线查出相应的浓度;再乘以稀释倍数;或用标准物的浓度与OD值计算出标准曲线的直线回归方程式,将样品的OD值代入方程式,计算出样品浓度,再乘以稀释倍数,即为样品的实际浓度。

(此图仅供参考)试剂盒性能:1.样品线性回归与预期浓度相关系数R值为0.95以上。

2.批内与批见应分别小于9%和11%检测范围:1 U/L - 20 U/L保存条件及有效期:1.试剂盒保存:;2-8℃。

2.有效期:6个月Mouse Phosphorylated adenosine monophosphate activated protein kinase(AMPK)Drug NamesGeneric Name:Mouse AMPK ELISA Kit.PurposeThis kit allows for the determination of AMPK activity in Mouse serum, blood plasma, and other biological fluids.Principle of the assayT he kit assay Mouse AMPK level in the sample,use Purified Mouse AMPK antibody to coat microtiter plate wells, make solid-phase antibody, then add AMPK to wells, Combined AMPK antibody which With HRP labeled ,become antibody - antigen - enzyme-antibody complex, after washing Completely, Add TMB substrate solution, TMB substrate becomes blue color At HRP enzyme-catalyzed, reaction is terminated by the addition of a sulphuric acid solution and the color change is measured spectrophotometrically at a wavelength of 450 nm. The concentration of AMPK in the samples is then determined by comparing the O.D. of the samples to the standard curve.Materials provided with the kitSpecimen requirements1.serum- coagulation at room temperature 10-20 mins,centrifugation 20-min at the speed of2000-3000 r.p.m. remove supernatant, If precipitation appeared, Centrifugal again.2.plasma-use suited EDTA, citrate or heparinized plasma as an anticoagulant,mix 10-20mins ,centrifugation 20-min at the speed of 2000-3000 r.p.m. remove supernatant, If precipitation appeared, Centrifugal again.3.Urine-collect sue a sterile container, centrifugation 20-min at the speed of 2000-3000 r.p.m.remove supernatant, If precipitation appeared, Centrifugal again. The Operation of Hydrothorax and cerebrospinal fluid Reference to it.4.cell culture supernatant-detect secretory components, collect sue a sterile container,centrifugation 20-min at the speed of 2000-3000 r.p.m. remove supernatant,detect the composition of cells, Dilut cell suspension with PBS(PH7.2-7.4), Cell concentration reached 1 million / ml, repeated freeze-thaw cycles, damage cells and release ofintracellular components, centrifugation 20-min at the speed of 2000-3000 r.p.m. remove supernatant, If precipitation appeared, Centrifugal again.5.Tissue samples- After cutting samples, check the weight,add PBS(PH7.2-7.4), Rapidlyfrozen with liquid nitrogen, maintain samples at 2-8℃ after melting,add PBS(PH7.4), Homogenized by hand or Grinders, centrifugation 20-min at the speed of 2000-3000 r.p.m.remove supernatant.Assay procedure1.Dilute and add sample to Standard: set 10 Standard wells on the ELISA plates coated, add Standard 100μl to the first and the second well, then add Stand ard dilution 50μl to the first and the second well, mix; take out 100μl form the first and the second well then add it to the third and the forth well separately. then add Standard dilution 50μl to the third and the forth well ,mix ; then take out 50μl from the third and the forth well discard, add 50μl to the fifth and the sixth well ,then add Standard dilution 50μl to the fifth and the sixth well, mix ; take out 50μl from the fifth and the sixth well and add to the seventh and the eighth well, then add Standard dilution 50μl to the seventh and the eighth well ,mix ; take out 50μl from the seventh and the eighth well and add to the ninth and the tenth well, add Standard dilution 50μl to the ninth and the tenth well, mix , take out 50μl from the ninth and the tenth well discard(add Sample 50μl to each well after Diluting ,(density: 18 U/L,12 U/L ,6 U/L,3 U/L,1.5 U/L)2.add sample:Set blank wells separately (blank comparison wells don’t add sample and HRP-Conjugate reagent, other each step operation is same). testing sample well. add Sample dilution 40μl to testing sample well, then add testing sample 10μl (sample final dilution is 5-fold), add sample to wells , don’t touch the well wall as far as possible, and Gently mix.3.Incubate: After closing plate with Closure plate membrane ,incubate for 30 min at 37℃.4.Configurate liquid: 30-fold (or 20-fold)wash solution diluted 30-fold (or 20-fold) with distilled water and reserve.5.washing:Uncover Closure plate membrane, discard Liquid, dry by swing, add washing buffer to every well, still for 30s then drain, repeat 5 times, dry by pat.6.add enzyme:Add HRP-Conjugate reagent 50μl to each well, except blank well.7.incubate:Operation with 3.8.washing:Operation with 5.9.color:Add Chromogen Solution A 50ul and Chromogen Solution B to each well, evade the light preservation for 15 min at 37℃10.Stop the reaction:Add Stop Solution50μl to each well, Stop the reaction(the blue color change to yellow color).11.assay:take blank well as zero , Read absorbance at 450nm after Adding Stop Solution and within 15min.Important notes1.The kit takes out from the refrigeration environment should be balanced 15-30 minutes inthe room temperature, ELISA plates coated if has not use up after opened, the plate should be stored in Sealed bag.2.washing buffer will Crystallization separation, it can be heated the water helps dissolvewhen dilute . Washing does not affect the result.3.add Sample with sampler Each step, And proofread its accuracy frequently, avoids theexperimental error. add sample within 5 min, if the number of sample is much , recommend to use Volley .4.if the testing material content is excessively higher (The sample OD is bigger than the firststandard well ),please dilute Sample (n-fold), Please diluente and multiplied by the dilution factor.(×n×5).5.Closure plate membrane only limits the disposable use, to avoid cross-contamination.6.The substrate evade the light preservation.7.Please according to use instruction strictly, The test result determination must take themicrotiter plate reader as a standard.8.All samples, washing buffer and each kind of reject should according to infective materialprocess.9.Do not mix reagents with those from other lots.CalculateAssay range1 U/L - 20 U/LStorage and validity1.Storage : 2-8℃. 2.validity : six months.Take the standard density as the horizontal, the OD value for the vertical ,draw the standard curve on graph paper, Find out the corresponding density according to the sample OD value by the Sample curve, multiplied by the dilution multiple, or calculate the straight line regression equation of the standard curve with the standard density and the OD value ,with the sample OD value in the equation, calculate the sample density, multiplied by the dilution factor, the result is the sample actual density.This chartis for reference only。

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