环介导等温核酸扩增技术快速检测食物中的大肠杆菌O157
环介导等温核酸扩增技术快速检测食源性致病菌应用进展

1/2—1/3。直接靠扩增副产物焦磷酸镁沉淀的浊度 进行判断是否发生反应。LAMP技术具有高特异性、 高效率和便捷等特点141。 1.2引物设计LAMP引物的设计比常规PCR要 复杂。一个反应至少包括4条引物,包括一对内引物 (FIP和BIP)和一对外引物(F3和B3);外部引物限 定了扩增片段的大小范围,同时也为内部引物提供 了模板,如果再增加一对环引物(100p primer),会明 显加快等温扩增的速度,大大提高检测效率,检测率 比没有加环引物的高7个数量级15,61。国外已建立
61
要的食源性致病菌,感染导致肠炎疾病,发病率呈逐 年上升趋势。副溶血性弧菌致病因子是其携带的tdh 和tdl编码毒力基因,采用常规检测方法无法解决风 险监测和评估。徐芊等“7首次报道了利用LAMP技 术检测副溶血性弧菌,针对副溶血性弧菌不耐热溶 血素基因(tlII)设计4条特异引物进行LAMP扩增, 对扩增反应进行优化,最佳反应时间为60min,反应 温度为60℃,特异性为100%,且副溶血性弧菌基因 组DNA和纯培养物的检测灵敏度分别为90fg和 24cfu/mL,对模拟样品检测,检测限为89cfu/g,整个 过程l小时能完成检测。 2.5阪崎肠杆菌检测2002年国际食品微生物标 准化委员会(ICMSF)把阪崎肠杆菌列为“严重危害 特定人群,危害生命或慢性实质性后遗症或长期影 响”致病菌[181,该菌能引起严重的新生儿脑膜炎、菌 血症和坏死性小肠结肠炎,并可能遗留严重的神经 系统后遗症,死亡率20%一50%It9 Jo贺楠等∞参照 阪崎肠杆菌标准株(ATCC51329)16SrRNA基因设计 4条特异性引物。方法最低检测限可达到 0.3pgDNA,当稀释度105时才检测不到扩增产物,而 PCR方法稀释度102时就检测不到扩增物。而胡莲 霞m1则以16S。23S rRNA间区序列作为靶序列,采 用带有2条环引物(LF和LB)的改良LAMP方法检 测婴儿配方奶粉中的阪崎肠杆菌,灵敏度为 0.101cfu/mL,人工污染阪崎肠杆菌的婴儿配方奶粉 的检出限为1.1efu/g,而对照PCR方法检测阪崎肠 杆菌的灵敏度为101cfu/mL,人工污染阪崎肠杆菌的 婴儿配方奶粉的检出限为1 100 cfu/g,改良LAMP 方法比较PCR方法,其灵敏度提高了l 000倍,检测 耗时仅为l~3h。 2.6金黄色葡萄球菌检测 金黄色葡萄球菌是一 种常见的致病菌,导致感染性疾病是其产生的肠毒 素造成的,且耐药性金黄色葡萄球越来越广泛。申 建维等勉荆用多重LAMP法同时扩增金黄色葡萄球 菌耐药基因mecA和femA,在反应过程中,两种分子 信标荧光探针分别与mecA和femA基因的扩增产物 序列互补结合,最后检测反应管中的两种荧光值。 结果显示该方法的检测下限为10cfu/mL,与传统的 M2H培养基苯唑西林药敏实验结果比较,灵敏度为 99.9%,特异度为90.9%。适用于直接快速检测临 床标本中的耐甲氧西林金黄色葡萄球菌。 2.7单核细胞增生李斯特氏菌单核细胞增生李 斯特氏菌是一种能够引起人畜共患疾病的食源性致 病菌,WHO已将其列为20世纪90年代食品中四大
LAMP实时浊度法快速检测肠出血性大肠杆菌O157的研究

LAMP实时浊度法快速检测肠出血性大肠杆菌O157的研究肠出血性大肠杆菌(EHEC) O157发病率越来越高,已经被世界卫生组织列为新的病原菌。
而大肠杆菌的传统检测方法消耗时间长、步骤多而复杂,因此开发高效、快速、特异性高的鉴定方法,已经成为当务之急。
在分子生物学水平上来研究EHEC O157的核酸结构和分子特征,采用环介导等温扩增(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)方法来进行检测EHEC O157,将可能取代PCR检测成为大肠杆菌O157快速检测的发展方向。
LAMP 实时浊度法是利用浊度仪全程监控等温扩增过程,主要通过LAMP扩增反应过程中会产生的一种白色沉淀副产物焦磷酸镁,与反应液中靶基因得到扩增的量成正比,通过沉淀产生的起始时间判断反应的进行的程度。
本研究主要针对EHEC O157的抗原基因rfbE和产Vero毒素的毒力基因stx1和stx2,设计特异性的LAMP引物对。
经条件优化后确定最适反应体系为,内引物(FIP和BIP)各1.6μM、外引物(F3和B3)各0.2μM、20mM Tris-HCl(PH8.8)、10mM KCl、8mMMgSO4、10mM(NH4)2SO4、0.1%Tween20、0.8M甜菜碱、8mM MgSO4、1.4mM dNTP、8U Bst DNA聚合酶和2μl DNA,63℃恒温反应60min以及在80℃下5min结束反应。
使用优化后的系统进行LAMP反应以确定3种引物的特异性、稳定性及灵敏度,研究结果显示,该方法的最低检出限为l03CFU/mL,比普通PCR法灵敏度提高100倍,可以检测添加菌量为100CFU/25g(mL)的样品。
运用此法对珠海地区的200份食品样品进行检测,为食品风险评估提供了基础数据。
LAMP实时浊度法解决了常规的LAMP法只能对反应终点进行检测的缺陷,它能对整个反应过程进行实时监控,无需通过凝胶电泳分析反应产物,使方法所得数据准确可靠,效率高,同时具有操作简单、灵敏快速等优势,是食品中致病微生物快速筛检的一种良好方法。
环介导等温扩增技术快速检测牛肉中的大肠杆菌O157

环介导等温扩增技术快速检测牛肉中的大肠杆菌O157苑宁;梁磊;张蕴哲;付博宇;姜旋;张伟【期刊名称】《农产品加工·学刊》【年(卷),期】2015(000)009【摘要】利用环介导等温扩增技术(LAMP)检测牛肉中大肠杆菌O157.以O157:H7的rfbE基因序列(Genbank S83460)为靶序列设计了5条引物,通过可视白色沉淀和电泳观察结果.19株食源性致病菌被应用于LAMP方法检测的特异性试验,其中显示阳性结果的为3株大肠杆菌O157,剩余16株菌结果显示均为阴性.LAMP检测大肠杆菌O157:H7的灵敏度为1.0 CFU/mL,人工污染牛肉的检出限为1.4 CFU/MP技术作为一种基因检测技术,因其灵敏度高、特异性强以及操作简单等特点,将为食源性致病菌的检测搭建一个新的技术平台,尤其在大肠杆菌O157:H7的快速检测上存在巨大潜力.【总页数】4页(P49-52)【作者】苑宁;梁磊;张蕴哲;付博宇;姜旋;张伟【作者单位】河北农业大学理工学院,河北沧州061100;河北保定第一中学,河北保定071500;河北农业大学食品学院,河北保定071500;河北农业大学食品学院,河北保定071500;河北农业大学食品学院,河北保定071500;河北农业大学理工学院,河北沧州061100;河北农业大学食品学院,河北保定071500【正文语种】中文【中图分类】TS251.52【相关文献】1.逆转录环介导等温扩增技术在玉米褪绿矮缩病毒快速检测中的应用 [J], 徐颖;张峰;于莹;邱志君2.环介导等温核酸扩增技术快速检测食物中的大肠杆菌O157 [J], 王丽;徐振波;赵喜红;钟青萍3.环介导等温扩增技术快速检测鲜切蔬菜中的大肠杆菌 [J], 袁光宇;龚维瑶;谢体波;冯才伟;贾玲玲4.免疫磁珠-环介导等温扩增快速检测牛肉中的\r鼠伤寒沙门氏菌与金黄色葡萄球菌 [J], 吕观;常彦磊;石磊5.环介导等温扩增技术在病原微生物快速检测中的应用研究进展 [J], 刘昌亚;任晓东因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
环介导等温扩增技术在典型食源性致病菌检测中的应用进展

环介导等温扩增技术在典型食源性致病菌检测中的应用进展梁玉林;刘秀;丁梦璇;刘远远;尹建军
【期刊名称】《食品研究与开发》
【年(卷),期】2017(038)018
【摘要】环介导等温扩增(Loop-mediated isothermal amplification,LAMP)技术是一种新颖的核酸恒温扩增方法.因其具有简单、快速、特异性强的特点,在国外已经成功应用于多个行业,并在其中发挥着越来越重要的作用.阐述LAMP技术在大肠杆菌O157、沙门氏菌、志贺氏菌和金黄色葡萄球菌4种食源性致病菌检测中的最新研究进展,将近年来针对4种细菌建立的LAMP方法中的靶基因、灵敏度和特异性进行汇总比较,对LAMP试验常见问题进行分析,展望其在中国食源性致病菌检测领域的研究和应用发展前景.
【总页数】6页(P219-224)
【作者】梁玉林;刘秀;丁梦璇;刘远远;尹建军
【作者单位】中国食品发酵工业研究院,北京100015;中国食品发酵工业研究院,北京100015;中国食品发酵工业研究院,北京100015;中国食品发酵工业研究院,北京100015;中国食品发酵工业研究院,北京100015
【正文语种】中文
【相关文献】
1.环介导等温扩增技术检测食源性致病菌的研究进展 [J], 彭乃才;徐明悦;卢可可
2.环介导等温扩增技术在肠杆菌科致病菌检测中的研究进展 [J], 何晓华;顿玉慧;卢力;李可;刘斌
3.环介导等温扩增技术及其在食源性吸虫感染检测中的应用 [J], 戴婷婷;周本江;王红
4.环介导等温扩增技术在致病菌检测中的应用 [J], 贺尔娜;蔡挺;张顺
5.环介导等温扩增技术在食源性沙门氏菌检测中的应用研究进展 [J], 魏桢元
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石英晶体微天平-环介导快速检测大肠杆菌O157特异基因方法的建立

2 T eHea o yT cn l yC .Ld, hnzo 50 8 hn) . h nnC r eh o g o, t.Z egh u 4 0 4 , ia e o C
A js d 【 bet eT eojcv ftes d st d vl u  ̄ rs l c aae (C 一l p m da d dut :O jc v ]h bet eo t yi o ee paq a zc t mblne Q M) o — eit e i i h u o y a mi o e i tem l mpictnL MP m to , r ai eet no seicgn o atr m o 1 7【 to ] t d c s h r a a l ao (A ) ehdf pddtco f p c e e rm B ce u clO 5 .Me d I r u e o i f i or i i f f i i h no teq a zc s l coaac ( C t h o g nteb s ftelo - e ie ste a a l ctn( MP h u  ̄ r t rblne Q M)e n l yo ai o h op m da d i hr l mpi a o L y a mi c o h s t o m i f i A )
t c n lg l t r Us h h o e g n lc l sa s mby meh d t x o e o e fu r r i h o p me it d e h oo y p af m. e t e t ilr a e tmoe u e se l t o o f n ft o r i s n t e l o - d a e o i h p me
i t metot t eu nycagsol eaddt iew e e eL MPrat nOcr,hrb digiO17 n r n t e q ec h ne ni n ee n ht rt su sf r n m r h h A ci cus teeyj gn 5 e o u f
简述食品中大肠杆菌的快速检测方法相关研究进展

科技文苑Sep 2020 CHINA FOOD SAFETY67大肠杆菌是两端钝圆、无芽孢且能运动的革兰氏阴性短杆菌,其寄生部位主要是生物的大肠内,约占肠道菌的1%。
大肠杆菌可合成维生素B、K,正常栖居条件下无致病的可能性。
但是,食物在生产加工过程中被粪便中的大肠杆菌直接或间接污染,人们食用被污染的食品后就会影响身体健康,严重时还会致死。
因此,为保障国人身体健康,有必要对食品中大肠杆菌的快速检测方法展开研究。
1 食品中大肠杆菌传统检测方法1.1 多管发酵法该方法是以大肠菌群可发酵乳糖产酸产气的特征为依据来检测大肠菌群——大肠菌群阳性管在44.5℃培养基内持续培养24h 后会产生荧光产物,培养基在紫外光源照射下会有荧光出现。
具体方法步骤为:将一定量水样加入土壤蛋白胨培养液内,随后分步骤展开初发酵实验、平半分利、复发酵试验鉴定;然后参照最可能数(MPN)表,结合各稀释度发酵管数,对每升或每10mL 水样内的大肠菌群数进行收集。
多管发酵法无需耗费太多成本,且实验要求相对简单;不足之处在于其他因素极易对其构成影响,检测结果缺乏准确性。
1.2 平板计数法该方法首先需要稀释食品样本,即将其中的微生物分散为单个细胞组织,减少一定量的稀释液,以便通过肉眼观察,并计算稀释液浓度与样本数量来得到菌落数量。
菌落通常为紫红色,经培养后会有气泡产生,表示大肠杆菌阳性。
平板计数法不但能将大肠杆菌数量计算出来,还可对其特征进行观察,操作相对简单。
但是,该检测方法会使样本中的大肠杆菌肉眼辨识度偏低,需借助放大镜进行。
1.3 测试片法该方法是在国外纸片检测技术的运用下对大肠杆菌进行检测,国内外学者围绕测试片进行了深入研究。
蔡军[1]对平皿计数法与测试片法进行了对比试验,结果发现测试片法特异性较强,且检出限度较低,诊断效率接近于平板计数法。
文霞等[2]采用3M Petrifilm TM大肠菌群测试片法对大肠菌群进行了检测,发现3M Petrifilm TM 大肠菌群测试片法在计数方面与传统平皿计数结果相比无差异。
大肠杆菌O157∶H7的高灵敏度快速检测方法的研究

华东师范大学2010届硕一I:学位论文
摘
要
大肠杆菌(E.Coli)0157:H7感染性腹泻是近年来新发现的危害严重的肠道 传染病。自1982年美国首次发现该病以来,先后在同本等40多个国家有不同程 度的暴发流行,死率较高。大肠杆菌0157:H7的感染已成为世界性的问题。世 界卫生组织已将其列入新的食源性疾病的病原菌。目前,检测大肠杆菌0157:H7 的方法很多,但是大多方法存在时间较长,需要一些特殊的仪器设备,或准确率 不够高的缺点。因此寻找一种便捷灵敏的检测大肠杆菌0157:H7的方法对相关 疾病的预防和治疗十分重要。 本研究首先利用免疫磁珠富集大肠杆菌0157:H7菌体,即选择llam和200nm 两种不同尺度的磁珠,研究磁珠的大小和浓度对富集效率的影响,筛选并确定出 最佳的反应条件为:1.2pL的200nm的磁珠富集lmL的10‘6的大肠杆菌0157:H7
enrichment efficiency.And then
using 1.21tL of 200nm low
choose the best reaction
conditions.The results show,
a
magnetic
bead to enrich lmL of the E.coli 01 57:H7 with
关键词:大肠杆菌0157:H7;检测;免疫磁珠;DNA纯化;LAMP;
华东师范大学2010届硕十学位论文
Abstract
Diarrhea caused by E.coli 01 57:H7 is Since E coli 0157:H7 WaS first
环介导等温扩增技术快速检测鲜切蔬菜中的大肠杆菌

环介导等温扩增技术快速检测鲜切蔬菜中的大肠杆菌袁光宇;龚维瑶;谢体波;冯才伟;贾玲玲【摘要】为鲜切蔬菜快速检测的市场化应用提供理论基础,利用大肠杆菌的特异性基因rfbE基因设计LAMP引物,通过对10株菌株进行特异性检测,建立利用环介导等温扩增技术检测鲜切蔬菜中的大肠杆菌O157∶H7的方法,并进行验证检测.结果表明:检测鲜切蔬菜样品特异性为93.3%,准确度为96.5%,检测大肠杆菌灵敏度达1.69 CFU/mL.建立的快速检测方法可满足市场化应用的需要.【期刊名称】《贵州农业科学》【年(卷),期】2018(046)007【总页数】3页(P149-151)【关键词】鲜切蔬菜;大肠杆菌;环介导等温扩增;快速检测;农产品质量检测【作者】袁光宇;龚维瑶;谢体波;冯才伟;贾玲玲【作者单位】贵州勤邦食品安全科学技术有限公司,贵州贵阳550009;贵州安为天检测技术有限公司,贵州贵阳550009;贵州勤邦食品安全科学技术有限公司,贵州贵阳550009;贵州勤邦食品安全科学技术有限公司,贵州贵阳550009;贵州安为天检测技术有限公司,贵州贵阳550009【正文语种】中文【中图分类】S63大肠埃希氏菌(Escherichia coli,E. coli)又称为大肠杆菌,是寄生在人体肠道和动物肠道的革兰氏阴性菌,多数不具有致病性。
其中,肠出血性大肠杆菌(Enterohemorrhagic E. coli, EHEC)亚型为主要致病菌株O157:H7,被感染者常引起感染性腹泻、呕吐,出血性结肠炎溶血性贫血、溶血性尿毒症等症状[1]。
随着大肠杆菌引起的食物危害受到关注,大肠杆菌检测已成为食品中微生物病原检测的必要检测项目。
根据大肠杆菌的生化指标建立的国家标准检测方法耗时长,操作繁琐。
而一些基于酶联免疫方法的胶体金免疫技术、磁珠免疫具有快速简便的特点,但检出特异性不高,容易出现假阳性[2-3]。
随着分子生物学技术的发展,其在病原性微生物的检测方面也得到较快发展,由PCR方法衍生的多重PCR技术[4]、实时荧光定量PCR技术[5]、等温扩增技术[6]、基因芯片技术[7]和生物传感器技术[8]等也被应用于病原性微生物的检测之中。
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环介导等温核酸扩增技术快速检测食物中的大肠杆菌O157王丽;徐振波;赵喜红;钟青萍【摘要】The specificity and sensitivity of a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method was developed and evaluated for rapid detection of the food-borne Escherichia coli O157 strains. Six primers, including outer primers, inner primers and loop primers, were specially designed for recognizing eight distinct sequences on three targets, which were rfbE, stxl and stx2. The detection limits were found to be 100, 100 and 10 fg DNA/tube for rfbE, stxl and stx2, respectively. Application of LAMP assays were performed on 417 food-borne E. coli strains, the sensitivity of LAMP assays for the rfbE, stxl and stx2 was 100% , 95.3% and96.3% , and the negative predictive value (NPV) was 100%, 96.7% and97.1% respectively; with a 100% specificity and positive predictive value (PPV) for all three targets. The results showed that the LAMP assay has proven high specificity, sensitivity and easy operation features in the detection of Escherichia coli 0157. It also implied that the assay owned good application prospect in food safety detection.%建立了环介导等温核酸扩增技术(LAMP)检测食源大肠杆菌O157,并对该方法的灵敏度和特异性进行了评价。
分别针对大肠杆菌0157三个特异基因frbE,stx1和stx2的8个独立靶区域设计了外引物、内引物和环引物进行LAMP扩增检测,同时将检测结果与PCR方法做比较。
研究结果表明,frbE,stx1和stx2基因的LAMP方法检测限分别为100,100和10fgDNA/管,灵敏度是PCR方法的10倍以上;将建立的环介导等温扩增法用于417株食物分离的大肠杆菌的检测,发现LAMP检测frbE,stx1和st【期刊名称】《食品与发酵工业》【年(卷),期】2011(037)005【总页数】5页(P146-150)【关键词】环介导等温核酸扩增(LAMP;大肠杆菌O157;快速检测【作者】王丽;徐振波;赵喜红;钟青萍【作者单位】华南农业大学食品学院,广东广州510642;华南理工大学轻工与食品学院,广东广州510640;华南理工大学轻工与食品学院,广东广州510640;华南农业大学食品学院,广东广州510642【正文语种】中文【中图分类】TS207.4志贺毒素大肠杆菌是一种重要的病原菌,其中大肠杆菌O157:H7是最为人们熟知和研究较多的一种重要血清型。
该致病菌传播途径复杂多样,主要经食品传播,被感染者出现腹泻、呕吐、剧烈腹痛、出血性结肠炎溶血性贫血、溶血性尿毒症等临床症状[1]。
大肠杆菌O157:H7产生的志贺毒素主要包括志贺毒素1(Stx1)和志贺毒素2(Stx2),已报道的Stx2变种与Stx1在物理化学、免疫学和分子遗传学方面具有不同的特征。
大肠杆菌O157引起的危害受到广泛关注,是我国进出口食源性产品必检的致病菌之一[1]。
基于国家标准的分离培养、生化及血清学鉴定需要耗费大量的时间,达几天之久。
还有一些快速检测方法,比如应用较广泛的酶联免疫技术,其中,免疫磁珠技术[2-3]和胶体金免疫层析技术[4]具有易操作和快速的特点,但是,检测样品特异性不够高,容易出现误判。
PCR技术和实时定量PCR技术在过去几十年里被大量用于病原菌的检测,灵敏度高和特异性较传统方法有较大提高,但是,PCR 方法必须有精密的温度循环装置,且仅限于实验室操作,另外反应过程容易受污染物影响,假阳性较高,从而使其无法满足实地检测的需要[5]。
因此,亟需开发建立灵敏、快速的检测技术实现对大肠杆菌O157:H7及其志贺毒素的高效检测。
而新型的核酸扩增技术,环介导恒温核酸扩增技术(LAMP技术)就具有诸多优越性[6]。
该技术依赖Bst DNA聚合酶在恒温条件下实现靶基因的自循环链置换合成反应,引物能识别基因的6个或8个独立区域,特异性较PCR大大提高,反应原理如图1所示。
另外,反应的温度处于恒温条件60~65℃,普通水浴锅就可以满足扩增的需求,节省了检测费用。
检测结果可以方便地通过目视判别,大量目标DNA合成的同时伴随有白色的副产物焦磷酸镁沉淀产生。
目前,LAMP技术在食品安全检测、疾病诊断及环境安全等方面有成功应用的报道[7-9]。
本研究,将以志贺毒素基因为研究对象,建立环介导等温核酸扩增反应实现对大肠杆菌O157:H7的检测,并对一大批食物分离的样品进行检测,以验证其灵敏度和特异性。
研究结果和方法将为其他食源致病细菌的快速检测提供理论基础。
1.1 菌种34株参考菌株,包括不同菌种种类的革兰氏阴性菌和革兰氏阳性菌在本研究中用于检测LAMP方法的灵敏度和特异性,菌株信息及携带基因信息如表1所列。
417株食物分离的大肠杆菌菌株,其中154株为大肠杆菌O157菌株,263株为非O157大肠杆菌菌株。
这些菌株是2003-2007年从各种不同的食物样品中分得,现保存于中山市质量计量监督检验所临床微生物学实验室。
1.2 引物设计针对大肠杆菌的特异基因rfbE基因、志贺毒素基因stx1和stx2分别设计引物。
选择基因的保守区域,针对8个独立区域,分别设计一对内引物(包括前内引物FIP和后内引物BIP)、一对外引物(包括F3和B3)以及环引物(包括LF和LB,加速反应进行),如表2所列。
前内引物FIP包括互补序列F1,一个T-T-T-T链桥和F2;后内引物包括B1C,一个T-T-T-T链桥和互补序列B2C;外引物F3和B3分别位于F2和B2区域的外侧;环引物分别位于F2和F1之间,B1和B2之间。
1.3 LAMP方法和PCR方法的建立34株参考菌株的DNA提取方法按照参考文献进行[10-11]。
为了验证 LAMP 方法和 PCR方法的检测限,将大肠杆菌O157 WF01201的模板DNA进行十倍系列稀释,分别用于rfbE基因、stx1基因和stx2基因的检测。
25 μL的 LAMP反应体系包括各1.6 μmol/L的引物FIP和BIP,各0.2 μmol/L的引物 F3和 B3,各0.8μmol/L的引物 LF 和 LB,1.6 mmol/L 的 dNTP,6 mmol/L的 MgSO4,1 mol/L 甜菜碱(sigma),1 ×恒温缓冲液 (New England Biolabs),8 U/μL的Bst大片段DNA聚合酶以及一定数量的靶基因组DNA。
将混合物置于65℃恒温反应60 min,最后在80℃下5 min结束反应。
设阴性对照和阳性对照,防止反应过程中的交叉污染。
LAMP的外引物F3和B3用于PCR反应扩增。
50 μL PCR 反应体系包括:1 μL DNA 模板、各 30 pmol外引物、1.25U Taq DNA聚合酶、10 mmol/L dNTP 2 μL 和5 μL 的l×thermopol buffer。
扩增循环条件为:94℃ 预变性5 min,之后94℃变性30 s;50℃退火30 s;72℃延伸1 min,共30个循环,最后延伸7 min。
取PCR产物5 μL,在1.5%琼脂糖凝胶电泳上100 V电泳20 min,EB染色后在凝胶成像系统下照像检测。
1.4 应用LAMP方法检测食物分离的大肠杆菌利用以上建立的LAMP方法和PCR方法分别检测从食物中分离的417株大肠杆菌。
大肠杆菌的模板利用简易煮沸法制备,具体为:采用培养过夜的细菌培养物用含有1 mmol/LEDTA的10 mmol/L Tris-HCl溶液进行10倍稀释,悬液煮沸10 min后置于冰上,然后12,000 g离心 3 min,上清液用于 LAMP 和PCR反应的模板。
LAMP反应结果检测,一是通过凝胶电泳检测:65℃ 恒温反应60 min后,产物在2%琼脂糖凝胶上100 V电泳分离25 min,加样量为7μL/上样孔,阳性反应会在凝胶上产生梯型条带。
凝胶置于EB中染色10 min,在凝胶成像系统下照像检测。
同时,利用目视观察(为了方便LAMP技术用于现场快速、方便检测,利用目视观察就能区别结果是最简便的一种手段)。
扩增反应结束后,观察反应小管混合液的外观变化,向各反应小管中加入1 μL(1∶100)的SYBR Green I荧光染料。
SYBR Green I染料与双链DNA结合会发绿色荧光,所以,在自然光下目视观察,如果染料颜色由开始的橙色变为绿色则为阳性,同时将染色结果放置在紫外灯下,阳性结果有荧光产生。
同时用PCR方法对比验证LAMP检测方法的灵敏度和特异性。
以上检测过程均重复2次,以验证方法的重现性。
2.1 LAMP方法用于检测大肠杆菌O157 WF01201的灵敏度和特异性将一系列稀释的大肠杆菌O157 WF01201用煮沸法简易提取DNA分别用于LAMP反应和PCR反应,检测结果如图2。
LAMP方法对rfbE基因的检测限是100 fg DNA/管,PCR为10 pg DNA/管;LAMP方法对stx1基因的检测限是100 fg DNA/管,PCR为10 pg DNA/管;LAMP方法对stx2基因的检测限是100 fg DNA/管,PCR 为100 pg DNA/管,表明,LAMP 方法的检测灵敏度是PCR方法检测灵敏度的10倍以上。
为了验证引物的特异性,将LAMP方法用于27株革兰氏阴性菌和7株革兰氏阳性菌的检测,未发现假阳性结果的产生,说明建立的LAMP方法具有高特异性。