小麦育种研究进展.ppt
实验一小麦穗分化观察
学习观察和记录实验数据的方法
01
采用显微镜观察和拍照记录小麦穗分化过程，记录各个阶段的 时间节点。
02
学习使用表格或电子数据记录表，记录观察到的形态特征、生
长数据和实验条件。
分析实验数据，了解小麦穗分化过程中的生长规律和影响因素。
03
培养实验操作技能和科学探究精神
学习实验操作技巧，如取样、固 定、制作临时装片和显微镜操作
实验一：小麦穗分化观察
contents
目录
• 实验目的 • 实验材料 • 实验步骤 • 实验结果与分析 • 结论与展望
01 实验目的
了解小麦穗分化的过程
观察小麦从孕穗期到 抽穗期的生长变化， 了解穗分化的各个阶 段特征。
掌握小麦穗分化与生 长激素、营养物质积 累等生理变化的关系。
学习识别不同分化阶 段的叶片、茎秆和花 序的形态特征。
对实验中存在的问题和不足进行反思
问题
在实验过程中，我们发现对小麦 穗分化过程中某些细微变化的观 察不够细致，导致部分数据记录 不够准确。
不足
在实验操作过程中，我们发现对 实验材料的处理不够规范，影响 了实验结果的可靠性。
对未来实验的展望和建议
展望
未来我们计划进一步研究小麦穗分化的分子机制，探索基因表达与穗分化之间的联系，以期为小麦育种提供更多 理论支持。
等。
通过实验操作培养动手能力和观 察力，提高对生物学现象的敏感
度。Байду номын сангаас
培养科学探究精神，对实验结果 进行归纳、分析和推理，提出假
设并进行验证。
02 实验材料
小麦幼苗
01
选取健康、生长状况良好且处于 穗分化阶段的小麦幼苗，确保幼 苗无病虫害，生长环境良好。
小麦转基因研究进展
转基因小麦研究进展及前景摘要：自第一株转基因小麦报道以来，小麦转基因育种研究发展迅速，通过转基因技术实现的小麦遗传转化弥补了经典小麦育种的不足，突破了可利用基因库的限制，取得了可喜的进展。
简要介绍了基因枪法、农杆菌介导法和花粉管通道法等基因转化方法在小麦遗传转化中的应用，讨论了转基因技术在获得抗除草剂、抗病虫、抗逆、改良品质和雄性不育转基因小麦植株等方面的应用现状及其存在的主要问题与对策。
关键词：小麦；转基因；分子育种；进展采用远缘杂交技术将小麦野生近缘物种中的有益外源基因导入小麦栽培品种，对其抗性、品质、产量的提高发挥了重要作用。
但由于双亲亲缘关系较远造成杂交不结实、杂种不育、杂种后代长期分离、预见性差，使该技术在小麦遗传改良上的应用受到一定限制。
植物转基因技术被证明是进行外源基因定向转移独特而有力的手段，一定程度上补充或改进了传统的育种方法。
通过植物遗传转化技术，可以按照需要，将有遗传信息的DNA 片段即目的基因进行人工重组，在离体条件下转入宿主细胞进行复制、表达，定向改造植物，可以打破基因流的界限，而且大大缩短育种周期。
小麦是举世公认的最难转化的重要农作物之一，且转基因研究起步较晚，经过许多学者十几年的不懈努力，取得了长足的进展。
目前，几乎所有的作物都开展了转基因研究，育种目标涉及到高产、优质、高效、兼抗性及多用途等诸多方面，一批抗逆性（如抗病、抗虫、抗除草剂）转基因作物已进入商品化生产阶段。
美国研制成功的世界第一例抗草甘磷除草剂转基因小麦已经通过安全性试验；抗草胺膦转基因小麦、抗咪唑啉酮转基因小麦、高蛋白转基因小麦、抗虫和耐镇草宁除草剂转基因小麦、抗蚜虫转基因小麦、抗小麦黄花叶病毒转基因小麦，以及抗白粉病、赤霉病和黄矮病的转基因小麦正在田间释放[1,2]；高分子量谷蛋白亚基转基因小麦[3]、转Trx-S 基因抗穗发芽小麦新品系已进入中试阶段[4]。
近年来，中国在小麦转基因方面也取得了初步的进展，并获得了一批具有抗病虫、抗逆境及改善品质的转基因小麦新材料，部分品系已经进入环境释放阶段。
18_园艺植物育种学--绪论ppt课件
一致性：品种内个体间特征特性整齐一致。
2023/11/19
4
稳定性：经过特定的繁殖方法和在特定的 繁殖周期内，其特征特性保持相对不变。 地区性：品种的生物学特性适应一定地区 生态环境和农业技术的要求。 时间性：使用周期。
3. 良种的作用：良种是优良品种的简称。
1978年Melchers等人首次获得了马铃薯和番茄的属
间体细胞杂种。他们将培育的二倍体马铃薯和番茄叶
片细胞进行融合，所产生的杂交株被称为“马铃薯番茄
”(Melchers等,1978)。பைடு நூலகம்大多数杂种一样，杂交株同时
具有马铃薯和番茄的形态特征。其中一些株形成了“类
似块茎的生殖根”，但是没有产生可结实的花、果实以
自然选择是使有利于其本身生存和繁殖后代的 变异，逐代得到积累加强，不利的变异逐代淘汰， 从而形成新物种、变种、类型以及对其所处环境 条件的适应性。
自然进化是自然变异和自然选择的结果。选 择的主体是人以外的生物和非生物的自然条件。
2023/11/19
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3.2人工进化和农业发展 野生植物——自然选择和人工选择——栽培植物。
2023/10/10
1
植物育种学既是科学又是艺术，是二者的 综合。因此要求植物育种家不仅需要有科学的 造诣，而且也要求有艺术的修养。由于植物有 机体过于复杂，迄今尚有许多未知的领域，因 此育种的成就不仅依赖于科学，也往往依赖于 尚未上升到理论的经验，甚至机遇。
育种学的任务是改变植物的遗传模式，即 基因型，而不是改变其表现性。育种学要改变 的遗传模式是与经济用途有关的遗传模式，即 重视育种的实际意义及其在生产上的应用。
2023/11/19
小麦梭条斑花叶病毒病
2023-11-03
contents
目录
• 引言 • 病毒特征和症状 • 传播途径和发病因素 • 防治技术和措施 • 研究进展和展望 • 参考文献
01
引言
背景介绍
小麦梭条斑花叶病 毒病是一种全球性 病害，对小麦生产 造成严重威胁。
在世界各地，该病 害对小麦生产造成 了严重的经济损失 。
病毒特征
病原物
小麦梭条斑花叶病毒（ Wheat spindle streak mosaic virus，简称WSMV
）。
形态特征
WSMV是一种马铃薯Y病毒科（ Potyviridae）的病毒，具有球状 颗粒形态，直径约为800 nm。
传播途径
WSMV主要通过禾谷缢管蚜（ Rhopalosiphum padi）和非持久 性传毒媒介昆虫传播。
04
防治技术和措施
农业防治
种植抗病品种
选择对小麦梭条斑花叶病 毒具有抗性的品种，提高 作物的抗病能力。
加强田间管理
合理施肥、浇水、除草等 ，增强小麦的抵抗力，减 少病毒的感染。
轮作和休耕
避免连作，采取轮作或休 耕的方式，减少病毒在土 壤中的积累和传播。
化学防治
药剂拌种
01
使用抗病毒药剂对小麦种子进行拌种，减少病毒的传播途径。
喷洒杀虫剂
02
及时喷洒杀虫剂，消灭传播病毒的害虫，减少病毒的传播。
喷洒抗病毒药剂
03
在发病初期，喷洒抗病毒药剂，控制病毒的繁殖和扩散，减轻
病害。
生物防治
使用抗病毒疫苗
通过接种抗病毒疫苗，激发小麦的免疫系统，提高 抗病能力。
增加有益生物
增加农田中的有益生物，如寄生蜂、寄生蝇等，控 制害虫的数量和繁殖，减少病毒的传播。
小麦ERF_亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展
㊀山东农业科学㊀２０２４ꎬ５６(２):１７６~１８０ＳｈａｎｄｏｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ㊀ＤＯＩ:１０.１４０８３/ｊ.ｉｓｓｎ.１００１－４９４２.２０２４.０２.０２４收稿日期:２０２３－０３－０５基金项目:国家自然科学基金项目(３２００１５４５)ꎻ山东省农业良种工程项目(２０２１ＬＺＧＣ０１３)ꎻ山东省农业科学院农业科技创新工程项目(ＣＸＧＣ２０２３Ａ０１)ꎻ农业农村部黄淮北片小麦种质资源精准鉴定项目作者简介:崔德周(１９８７ )ꎬ男ꎬ山东惠民人ꎬ博士ꎬ助理研究员ꎬ主要从事小麦种质资源与遗传育种研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｄｅｚｈｏｕｃｕｉ＠１２６.ｃｏｍ王丽丽(１９８９ )ꎬ女ꎬ山东郓城人ꎬ山东大学人居环境研究中心特约研究员ꎬ主要从事植物种质资源研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:５６５９９３５７０＠ｑｑ.ｃｏｍ∗同为第一作者ꎮ通信作者:樊庆琦(１９７８ )ꎬ男ꎬ山东郓城人ꎬ博士ꎬ研究员ꎬ主要从事小麦种质创新研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｆａｎｑｉｎｇｑｉ＠１６３.ｃｏｍ小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展崔德周１ꎬ王丽丽２∗ꎬ陈祥龙３ꎬ李永波１ꎬ黄琛１ꎬ隋新霞１ꎬ楚秀生１ꎬ樊庆琦１(１.山东省农业科学院作物研究所/小麦玉米国家工程研究中心/农业农村部黄淮北部小麦生物学与遗传育种重点实验室/山东省小麦技术创新中心/济南市小麦遗传改良重点实验室ꎬ山东济南㊀２５０１００ꎻ２.山东省林草种质资源中心ꎬ山东济南㊀２５０１０２ꎻ３.山东鲁研农业良种有限公司ꎬ山东济南㊀２５０１００)㊀㊀摘要:小麦是中国三大粮食作物之一ꎬ其生长发育过程中会受到多种逆境胁迫的影响ꎮＡＰ２/ＥＲＥＢＰ是植物特有的一个庞大的转录因子超家族ꎬ普遍参与生长发育和逆境胁迫应答等生物学进程ꎮＥＲＦ类转录因子是ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子超家族的一个亚族ꎮ本研究结合国内外相关研究进展ꎬ简要综述了小麦ＥＲＦ亚族转录因子的结构特征与分布ꎬ重点阐述近年来小麦ＥＲＦ亚族转录因子响应高盐㊁干旱㊁低温㊁重金属㊁病原菌侵染等逆境胁迫的功能和机制研究进展ꎬ最后展望了ＥＲＦ亚族转录因子的研究方向和应用前景ꎮ关键词:小麦ꎻＥＲＦ亚族ꎻ转录因子ꎻ胁迫响应ꎻ研究进展中图分类号:Ｓ５１２.１㊀㊀文献标识号:Ａ㊀㊀文章编号:１００１－４９４２(２０２４)０２－０１７６－０５ＡｄｖａｎｃｅｓｉｎＲｅｓｅａｒｃｈｏｎＦｕｎｃｔｉｏｎｏｆＷｈｅａｔＥＲＦＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎＦａｃｔｏｒＳｕｂｆａｍｉｌｙｉｎＳｔｒｅｓｓＲｅｓｐｏｎｓｅＣｕｉＤｅｚｈｏｕ１ꎬＷａｎｇＬｉｌｉ２∗ꎬＣｈｅｎＸｉａｎｇｌｏｎｇ３ꎬＬｉＹｏｎｇｂｏ１ꎬＨｕａｎｇＣｈｅｎ１ꎬＳｕｉＸｉｎｘｉａ１ꎬＣｈｕＸｉｕｓｈｅｎｇ１ꎬＦａｎＱｉｎｇｑｉ１(１.ＣｒｏｐＲｅｓｅａｒｃｈＩｎｓｔｉｔｕｔｅꎬＳｈａｎｄｏｎｇＡｃａｄｅｍｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ/ＮａｔｉｏｎａｌＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇＲｅｓｅａｒｃｈＣｅｎｔｅｒｏｆＷｈｅａｔａｎｄＭａｉｚｅ/ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＷｈｅａｔＢｉｏｌｏｇｙａｎｄＧｅｎｅｔｉｃｓａｎｄＢｒｅｅｄｉｎｇｉｎＮｏｒｔｈｅｒｎＨｕａｎｇ￣ＨｕａｉＲｉｖｅｒＰｌａｉｎꎬＭｉｎｉｓｔｒｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅａｎｄＲｕｒａｌＡｆｆａｉｒｓ/ＳｈａｎｄｏｎｇＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙＩｎｎｏｖａｔｉｏｎＣｅｎｔｅｒｏｆＷｈｅａｔ/ＪｉｎａｎＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＷｈｅａｔＧｅｎｅｔｉｃＩｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔꎬＪｉｎａｎ２５０１００ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＳｈａｎｄｏｎｇＰｒｏｖｉｎｃｉａｌＣｅｎｔｅｒｏｆＦｏｒｅｓｔａｎｄＧｒａｓｓＧｅｒｍｐｌａｓｍＲｅｓｏｕｒｃｅｓꎬＪｉｎａｎ２５０１０２ꎬＣｈｉｎａꎻ３.ＳｈａｎｄｏｎｇＬｕｙａｎＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＣｏ.ꎬＬｔｄ.ꎬＪｉｎａｎ２５０１００ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ㊀ＷｈｅａｔｉｓｏｎｅｏｆｔｈｅｔｈｒｅｅｍａｊｏｒｇｒａｉｎｃｒｏｐｓｉｎＣｈｉｎａꎬｂｕｔｉｔｓｇｒｏｗｔｈａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｍｉｇｈｔｂｅａｆｆｅｃｔｅｄｂｙｍｕｌｔｉｐｌｅａｄｖｅｒｓｅｓｔｒｅｓｓｅｓ.ＡＰ２/ＥＲＥＢＰｉｓａｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｏｆｐｌａｎｔｓｐｅｃｉｆｉｃｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｗｈｉｃｈａｒｅｗｉｄｅｌｙｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｐｒｏｃｅｓｓｅｓｅｓｓｕｃｈａｓｇｒｏｗｔｈꎬｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅ.ＴｈｅＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｃｌａｓｓｉｓａｓｕｂｆａｍｉｌｙｏｆｔｈｅＡＰ２/ＥＲＥＢＰｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ.Ｈｅｒｅꎬｔｈｅｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓａｎｄｄｉｓ￣ｔｒｉｂｕｔｉｏｎｓｏｆＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｗｈｅａｔｗｅｒｅｂｒｉｅｆｌｙｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ.Ａｎｄｔｈｅｒｅｃｅｎｔｒｅｓｅａｒｃｈｐｒｏ￣ｇｒｅｓｓｅｓｏｆｔｈｅｆｕｎｃｔｉｏｎｓａｎｄｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｏｆＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｗｈｅａｔｗａｓｅｍｐｈａｓｉｚｅｄｉｎｒｅ￣ｓｐｏｎｓｅｔｏｓｔｒｅｓｓｅｓｓｕｃｈａｓｈｉｇｈｓａｌｔꎬｄｒｏｕｇｈｔꎬｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅꎬｈｅａｖｙｍｅｔａｌａｎｄｐａｔｈｏｇｅｎｉｎｆｅｃｔｉｏｎ.ＦｉｎａｌｌｙꎬｔｈｅｒｅｓｅａｒｃｈｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｎｄａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｐｒｏｓｐｅｃｔｏｆＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｗｅｒｅｐｒｏｓｐｅｃｔｅｄ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ㊀ＷｈｅａｔꎻＥＲＦｓｕｂｆａｍｉｌｙꎻＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒꎻＳｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅꎻＲｅｓｅａｒｃｈｐｒｏｇｒｅｓｓ㊀㊀小麦(ＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.)是世界上最重要的粮食作物之一ꎬ是全球三分之一以上人口的主食ꎮ中国是世界上最大的小麦生产国和消费国ꎬ小麦的高产稳产对保障国家粮食安全至关重要ꎮ小麦生长发育周期长ꎬ期间干旱㊁盐碱㊁低温㊁高温㊁重金属㊁病虫害等生物㊁非生物胁迫都会不同程度地威胁小麦的高产稳产ꎮ近年来ꎬ得益于小麦基因组学的飞速发展ꎬ小麦响应逆境胁迫的分子调控网络被逐步阐明ꎬ转录因子在功能基因表达调控中的关键作用进一步凸显[１－４]ꎮ根据ＤＮＡ结合域的特性ꎬ转录因子可分成若干家族ꎬ包括ＭＹＢ㊁ＷＲＫＹ㊁ｂＺＩＰ㊁ＮＡＣ㊁ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ等[５－７]ꎮＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子是植物特有的一类转录因子ꎬ广泛参与小麦逆境胁迫应答[８－１０]ꎮＥＲＦ转录因子是ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子超家族的一个亚族ꎬ最早从烟草中分离得到[１１]ꎮ本研究综述小麦ＥＲＦ亚族转录因子在逆境胁迫应答中的作用及可能机制ꎬ以期为深入研究小麦ＥＲＦ亚族的分子功能及其抗逆遗传改良提供参考ꎮ１㊀ＥＲＦ亚族转录因子的特征ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ是一个庞大的基因家族ꎬ因含有６０~７０个氨基酸组成的ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域而得名[１２]ꎮ在拟南芥中ꎬＳａｋｕｍａ等[１３]根据序列相似性和ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域的数量ꎬ将其分为５个亚族 ＥＲＦ亚族㊁ＤＲＥＢ亚族㊁ＲＡＶ亚族㊁ＡＰ２亚族和其他ꎮＡＰ２亚族含有２个ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域ꎬ主要在细胞生长发育过程中发挥调控作用[１４－１５]ꎻＲＡＶ亚族含有１个ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域和１个Ｂ３结构域ꎬ在乙烯㊁油菜素内酯和胁迫响应过程中发挥重要作用[１４ꎬ１６－１７]ꎻＤＲＥＢ亚族和ＥＲＦ亚族均属于ＥＲＥＢＰ型转录因子ꎬ都仅含１个ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域ꎬ在调控植物细胞发育及对病原菌㊁干旱㊁高盐㊁低温㊁激素等胁迫的应答反应中发挥作用[１４ꎬ１８－２２]ꎬ但ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ结构域的第１４位和第１９位氨基酸存在差异ꎬＤＲＥＢ亚族分别是缬氨酸和谷氨酸ꎬ而ＥＲＦ亚族则分别是丙氨酸和天冬氨酸ꎮＥＲＦ亚族转录因子还可与乙烯诱导顺式作用元件ＧＣＣ－ｂｏｘ结合ꎬ抵御植物逆境胁迫[２３－２６]ꎮ２㊀小麦ＥＲＦ亚族转录因子鉴定分析目前正式命名的小麦ＥＲＦ亚族转录因子基因只有８个ꎬ而从全基因组水平分析ꎬ符合ＥＲＦ亚族特征的基因则有上百个之多[２７－２８]ꎮＺｈｕａｎｇ等[２９]在全基因组水平鉴定到４７个小麦ＥＲＦ亚族转录因子成员ꎬ根据拟南芥和水稻同源基因分类ꎬ将其分为Ｂ１㊁Ｂ２㊁Ｂ３㊁Ｂ４和Ｂ６五个亚组ꎮ随着二代测序技术及小麦基因组学研究的飞速发展ꎬＲｉａｚ等[３０]鉴定到１３８个ＥＲＦ亚族转录因子成员ꎬ分为６个亚组ꎬ主要定位于细胞核ꎻＭａｇａｒ等[２]鉴定到２３８个成员ꎬ其中ꎬ１７４个基因不含内含子㊁３个基因含３个内含子ꎬ鉴定数量有了质的飞跃ꎮ李世姣等[３１]利用隐马尔可夫模型文件检索中国春数据库ꎬ筛选到２２９条小麦ＥＲＦｓꎬ通过分析Ａ/Ｂ/Ｄ同源关系ꎬ将其归为９６个ＥＲＦ亚族成员ꎮ此外ꎬＦａｒａｊｉ等[３２]在硬粒小麦中鉴定到１８５个ＥＲＦ亚族成员ꎮ３㊀小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的分子机制３.１㊀非生物胁迫越来越多的研究表明ꎬ大部分小麦ＥＲＦ亚族成员在对高盐㊁干旱㊁低温㊁重金属等非生物胁迫抗性调控中发挥重要作用(表１)ꎮ位于小麦７Ａ染色体上的ＴａＥＲＦ１ꎬ通过结合ＧＣＣ－ｂｏｘ和ＤＲＥ/ＣＲＴ元件㊁激活启动子区含ＧＧＣＣ－ｂｏｘ的ＰＲ蛋白(ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓｒｅｌａｔｅｄｐｒｏ￣ｔｅｉｎꎬ病程相关蛋白)㊁磷酸化ＴａＭＡＰＫ１等方式ꎬ参与干旱㊁高盐㊁低温等代谢途径ꎬ过表达ＴａＥ￣ＲＦ１可显著提高转基因拟南芥对干旱㊁高盐和低温的耐受能力[３３]ꎮＴａＥＲＦ２基因受干旱㊁高盐㊁低温和湿害强烈诱导ꎬ过表达后可提高转基因拟南芥对干旱㊁低温等非生物胁迫的抗性[３４－３５]ꎮＴａＥＲＦ３通过特异结合ＧＣＣ－ｂｏｘꎬ正向调控ＬＥＡ３㊁ＧＳＴ６等抗逆相关基因表达ꎬ过表达ＴａＥＲＦ３可增加叶片脯氨酸㊁叶绿素含量ꎬ降低过氧化氢含量ꎬ增强小麦对高盐㊁干７７１㊀第２期㊀㊀㊀㊀㊀㊀崔德周ꎬ等:小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展旱胁迫的耐受能力ꎻ而经病毒诱导基因沉默(ＶＩＧＳ)干扰后的小麦植株则表现为盐和干旱敏感[３６]ꎮＴａＥＲＦ４是一个具有ＥＡＲ基序的转录抑制因子ꎬ过表达ＴａＥＲＦ４抑制ＡｔＮＨＸ１㊁ＡｔＮＨＸ２等钠离子转运相关基因的表达ꎬ通过非ＡＢＡ依赖的信号通路降低拟南芥耐盐性[３７]ꎮＴａＥＲＦ５受高盐㊁渗透胁迫㊁乙烯㊁ＡＢＡ和茉莉酸甲酯诱导表达ꎬ遗传学证据显示ꎬＴａＥＲＦ５－Ｂ过表达增强了转基因水稻的耐盐性[３８]ꎮ叶片ＴａＥＲＦ７表达受温度和日照调控ꎬ进而影响小麦百农不育系育性[２７]ꎮＴａＥ￣ＲＦ８－２Ｄ的表达受高盐胁迫诱导持续上调ꎬ其分子机制有待进一步研究[３９]ꎮＺｈｕ等[４０]研究发现ꎬＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１通过激活乙烯合成基因ꎬ增强小麦对冷害胁迫的抗性ꎮＴａＥＲＦＬ１ａ受低温㊁高盐㊁干旱㊁ＡＢＡ等胁迫诱导表达ꎬＶＩＧＳ干扰该基因降低小麦对干旱胁迫的抗性[４１]ꎮＤｕ等[４２]研究表明ꎬＴａＥＲＦ８７通过与Ｔａ￣ＡＫＳ１互作ꎬ协同增强ＴａＰ５ＣＳ１和ＴａＰ５ＣＲ１的表达ꎬ提高脯氨酸的生物合成ꎬ进而增强小麦抗旱性ꎮ此外ꎬ在硬粒小麦(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂ￣ｓｐ.ｄｕｒｕｍ)中ꎬＴｄＥＲＦ１响应高盐和干旱胁迫[４３－４４]ꎬＴｄＳＨＮ１受高盐㊁干旱㊁低温㊁ＡＢＡ和重金属胁迫强烈诱导表达ꎬ过表达ＴｄＳＨＮ１可显著提高酵母对非生物胁迫的耐受性[４５－４６]ꎮ㊀㊀表１㊀参与非生物胁迫的小麦ＥＲＦ亚族转录因子基因结合元件分子功能参考文献ＴａＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ/ＣＲＴ提高拟南芥对干旱㊁高盐和低温的耐受能力[３３]ＴａＥＲＦ２ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＥＲＥ提高拟南芥对干旱㊁低温的耐受能力ꎬ响应小麦湿害胁迫[３４－３５]ＴａＥＲＦ３ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对高盐㊁干旱胁迫的耐受能力[３６]ＴａＥＲＦ４ 降低拟南芥对高盐胁迫的耐受能力[３７]ＴａＥＲＦ５ 提高水稻对高盐胁迫的耐受能力[３８]ＴａＥＲＦ６ 与ＴｄＥＲＦ１高度同源[４７]ＴａＥＲＦ７ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ/ＣＲＴ控制百农不育系小麦育性[２７]ＴａＥＲＦ８－２Ｄ 高盐胁迫下持续上调表达[３９]ＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对冷害胁迫的耐受能力[４０]ＴａＥＲＦＬ１ａ 提高小麦对干旱胁迫的耐受能力[４１]ＴａＥＲＦ８７ＧＣＣ－ｂｏｘ/Ｅ－ｂｏｘ提高小麦对干旱胁迫的耐受能力[４２]ＴｄＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ响应高盐和干旱胁迫[４３－４４]ＴｄＳＨＮ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ提高酵母对高盐㊁干旱㊁重金属胁迫的耐受能力[４５－４６]３.２㊀生物胁迫小麦生育期遭遇的生物胁迫主要包括病原菌侵染和植食性害虫啃食ꎬ而小麦响应生物胁迫的转录因子研究主要集中在前者ꎮ研究表明ꎬＥＲＦ亚族转录因子可以提高小麦对病原菌的抗性(表２)ꎮＴａＥＲＦ１的表达受白粉病菌侵入的诱导ꎬ过表达ＴａＥＲＦ１可提高转基因拟南芥对真菌㊁细菌病害的抗性[３３]ꎮ病原菌侵染下ꎬＴａＥＲＦ３可激活防御基因表达ꎬ其中ꎬ在白粉病菌侵染早期主要通过水杨酸途径ꎬ而在镰刀菌㊁纹枯病菌侵染晚期主要通过乙烯/茉莉酸途径[４８]ꎮ过表达ＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１可大量激活下游防卫基因的表达ꎬ进而提高小麦对纹枯病㊁根腐病的抗性[４０ꎬ４９]ꎮＣｈｅｎ等[５０]从中间偃麦草中分离了一个新的ＥＲＦ基因ＴｉＥＲＦ１ꎬ该基因主要通过依赖乙烯的信号转导途径激活病程蛋白相关基因的表达ꎬ提高转基因小麦对纹枯病的抗性ꎮ㊀㊀表２㊀参与生物胁迫的小麦ＥＲＦ亚族转录因子基因结合元件分子功能参考文献ＴａＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ/ＤＲＥ/ＣＲＴ提高拟南芥对真菌㊁细菌病害的抗性[３３]ＴａＥＲＦ３ＧＣＣ－ｂｏｘ参与对小麦白粉病菌㊁镰刀菌㊁纹枯病菌的防卫[４８]ＴａＰＩＥＰ１/ＴａＰＩＥ１ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对纹枯病㊁根腐病的抗性[４０ꎬ４９]ＴｉＥＲＦ１ＧＣＣ－ｂｏｘ提高小麦对纹枯病的抗性[５０]８７１山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５６卷㊀４㊀展望近年来ꎬ极端天气频发ꎬ低温㊁干旱㊁高盐等非生物胁迫及病原菌侵染等生物胁迫严重制约小麦的安全生产ꎬ给粮食安全带来了严峻挑战ꎮ作为ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子超家族的一个亚族ꎬＥＲＦ类转录因子连接上游信号和下游功能基因ꎬ在小麦抵御逆境胁迫中具有关键作用ꎮ基因组学分析表明ꎬ小麦ＥＲＦ亚族基因有２００余个ꎬ但目前只克隆鉴定了部分基因ꎬ并且已经投入育种应用的转基因材料也鲜有报道ꎬ后续仍需进一步深入挖掘具有重要抗逆功能的ＥＲＦ亚族基因ꎮ此外ꎬ目前的研究多集中在转录因子基因的克隆及转录调节功能的鉴定分析上ꎬＥＲＦ亚族转录因子自我调节的模式及其同其他转录因子间的相互作用关系尚未完全了解ꎮ相信随着基因组学㊁分子生物学技术的发展ꎬ对小麦ＥＲＦ亚族转录因子的抗逆网络解析会更加深入ꎬ从而为小麦抗逆遗传改良提供更坚实的理论依据和更强有力的基因工具ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[１]㊀ＧａｈｌａｕｔＶꎬＪａｉｓｗａｌＶꎬＫｕｍａｒＡꎬｅｔａｌ.Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｄｒｏｕｇｈｔｔｏｌｅｒａｎｃｅａｎｄｔｈｅｉｒｐｏｓｓｉｂｌｅｒｏｌｅｉｎｄｅｖｅｌｏ￣ｐｉｎｇｄｒｏｕｇｈｔｔｏｌｅｒａｎｔｃｕｌｔｉｖａｒｓｗｉｔｈｅｍｐｈａｓｉｓｏｎｗｈｅａｔ(Ｔｒｉｔｉｃ￣ｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.)[Ｊ].Ｔｈｅｏｒ.Ａｐｐｌ.Ｇｅｎｅｔ.ꎬ２０１６ꎬ１２９(１１):２０１９－２０４２.[２]㊀ＭａｇａｒＭＭꎬＬｉｕＨꎬＹａｎＧＪ.Ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆＡＰ２/ＥＲＦｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙｇｅｎｅｓｉｎｃｏｎｔｒａｓｔｉｎｇｗｈｅａｔｇｅｎｏｔｙｐｅｓｒｅｖｅａｌｓｈｅａｔｓｔｒｅｓｓ￣ｒｅｌａｔｅｄｃａｎｄｉｄａｔｅｇｅｎｅｓ[Ｊ].Ｆｒｏｎｔ.ＰｌａｎｔＳｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ１３:８５３０８６.[３]㊀ＸｉａｏＪꎬＬｉｕＢꎬＹａｏＹＹꎬｅｔａｌ.Ｗｈｅａｔｇｅｎｏｍｉｃｓｔｕｄｙｆｏｒｇｅｎｅｔ￣ｉｃｉｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔｏｆｔｒａｉｔｓｉｎＣｈｉｎａ[Ｊ].Ｓｃｉ.ＣｈｉｎａＬｉｆｅＳｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ６５(９):１７１８－１７７５.[４]㊀解亚蒙ꎬ赵晓蕾ꎬ白菁华ꎬ等.小麦ＮＦ－Ｙ家族基因ＴａＮＦ－ＹＡ１介导植株耐旱功能研究[Ｊ].河北农业大学学报ꎬ２０２３ꎬ４６(１):１－９.[５]㊀丰锦ꎬ陈信波.抗逆相关ＡＰ２/ＥＲＥＢＰ转录因子研究进展[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０１１(７):１－６ꎬ１１.[６]㊀王淑叶ꎬ伍国强ꎬ魏明.ＷＲＫＹ转录因子调控植物逆境胁迫响应的作用机制[Ｊ].生物工程学报ꎬ２０２４ꎬ４０(１):３５－５２. [７]㊀ＪａｖｅｄＴꎬＳｈａｂｂｉｒＲꎬＡｌｉＡꎬｅｔａｌ.Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｐｌａｎｔｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ:ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓａｎｄｐｏｔｅｎｔｉａｌｆｏｒｓｕｇａｒｃａｎｅｉｍ￣ｐｒｏｖｅｍｅｎｔ[Ｊ].Ｐｌａｎｔｓꎬ２０２０ꎬ９(４):４９１.[８]㊀ＹｕＹꎬＹｕＭꎬＺｈａｎｇＳＸꎬｅｔａｌ.ＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｉｃｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｗｈｅａｔＡＰ２/ＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｃｈａｒａｃ￣ｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆＴａＥＲＦ￣６￣３Ａｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｓａｌｉｎｉｔｙｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ２３(６):３２７２. [９]㊀ＫａｒａｍｉＭꎬＦａｔａｈｉＮꎬＬｏｈｒａｓｅｂｉＴꎬｅｔａｌ.ＲＡＶｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｒｅｇｕｌａｔｏｒｙｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｓａｌｔｓｔｒｅｓｓｉｎｔｗｏＩｒａｎｉａｎｗｈｅａｔｌａｎｄｒａｃｅｓ[Ｊ].Ｊ.ＰｌａｎｔＲｅｓ.ꎬ２０２２ꎬ１３５(１):１２１－１３６. [１０]洪林ꎬ杨蕾ꎬ杨海健ꎬ等.ＡＰ２/ＥＲＦ转录因子调控植物非生物胁迫响应研究进展[Ｊ].植物学报ꎬ２０２０ꎬ５５(４):４８１－４９６.[１１]Ｏｈｍｅ￣ＴａｋａｇｉＭꎬＳｈｉｎｓｈｉＨ.Ｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｉｎｄｕｃｉｂｌｅＤＮＡｂｉｎｄｉｎｇｐｒｏｔｅｉｎｓｔｈａｔｉｎｔｅｒａｃｔｗｉｔｈａｎｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｅｌｅｍｅｎｔ[Ｊ].ＰｌａｎｔＣｅｌｌꎬ１９９５ꎬ７(２):１７３－１８２.[１２]刘建光ꎬ王永强ꎬ张寒霜ꎬ等.ＥＲＦ转录因子在植物抗逆境胁迫的研究进展[Ｊ].华北农学报ꎬ２０１３ꎬ２８(增刊):２１４－２１８.[１３]ＳａｋｕｍａＹꎬＬｉｕＱꎬＤｕｂｏｕｚｅｔＪＧꎬｅｔａｌ.ＤＮＡ￣ｂｉｎｄｉｎｇｓｐｅｃｉｆｉｃ￣ｉｔｙｏｆｔｈｅＥＲＦ/ＡＰ２ｄｏｍａｉｎｏｆＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓＤＲＥＢｓｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ￣ａｎｄｃｏｌｄ￣ｉｎｄｕｃｉｂｌｅｇｅｎｅｅｘｐｒｅｓ￣ｓｉｏｎ[Ｊ].Ｂｉｏｃｈｅｍ.Ｂｉｏｐｈｙｓ.Ｒｅｓ.Ｃｏｍｍｕｎ.ꎬ２００２ꎬ２９０(３):９９８－１００９.[１４]张计育ꎬ王庆菊ꎬ郭忠仁.植物ＡＰ２/ＥＲＦ类转录因子研究进展[Ｊ].遗传ꎬ２０１２ꎬ３４(７):４４－５６.[１５]ＷａｎｇＹＹꎬＳｕｎＬＬꎬＷａｎｇＲꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＡＰ２ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓＴＯＥ１/ＴＯＥ２ｃｏｎｖｅｙＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓａｇｅｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎｔｏｅｔｈ￣ｙｌｅｎｅｓｉｇｎａｌｉｎｇｉｎｐｌａｎｔｄｅｎｏｖｏｒｏｏｔｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ[Ｊ].Ｐｌａｎｔａꎬ２０２２ꎬ２５７(１):１.[１６]ＦｕＭꎬＫａｎｇＨＫꎬＳｏｎＳＨꎬｅｔａｌ.ＡｓｕｂｓｅｔｏｆＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓＲＡＶｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓｍｏｄｕｌａｔｅｓｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｓａｌｔｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔｏｆＡＢＡ[Ｊ].ＰｌａｎｔＣｅｌｌＰｈｙｓｉｏｌ.ꎬ２０１４ꎬ５５(１１):１８９２－１９０４.[１７]ＬｕｏＹＸꎬＣｈｅｎＳＫꎬＷａｎｇＰＤꎬｅｔａｌ.Ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆｔｈｅＲＡＶｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎｗｈｅａｔａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆＴａＲＡＶ１ｉｎｓａｌｔｓｔｒｅｓｓ[Ｊ].Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.ꎬ２０２２ꎬ２３(１６):８８３４.[１８]于志晶ꎬ蔡勤安ꎬ刘艳芝ꎬ等.拟南芥抗逆基因ＤＲＥＢ２Ａ转化大豆的研究[Ｊ].大豆科学ꎬ２０１３ꎬ３２(５):６０６－６０８. [１９]ＺｈａｎｇＸＸꎬＴａｎｇＹＪꎬＭａＱＢꎬｅｔａｌ.ＯｓＤＲＥＢ２Ａꎬａｒｉｃｅｔｒａｎ￣ｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒꎬｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙａｆｆｅｃｔｓｓａｌｔｔｏｌｅｒａｎｃｅｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｓｏｙｂｅａｎ[Ｊ].ＰＬｏＳＯＮＥꎬ２０１３ꎬ８(１２):ｅ８３０１１.[２０]刘坤ꎬ李国婧ꎬ杨杞.参与植物非生物逆境响应的ＤＲＥＢ/ＣＢＦ转录因子研究进展[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０２２ꎬ３８(５):２０１－２１４.[２１]ＣｈｅｎｇＣꎬＡｎＬＫꎬＬｉＦＺꎬｅｔａｌ.Ｗｉｄｅ￣ｒａｎｇｅｐｏｒｔｒａｙａｌｏｆＡＰ２/ＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｆａｍｉｌｙｉｎｍａｉｚｅ(ＺｅａｍａｙｓＬ.)ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].Ｇｅｎｅｓꎬ２０２３ꎬ１４(１):１９４.[２２]阮航ꎬ多浩源ꎬ范文艳ꎬ等.ＡｔＥＲＦ４９在拟南芥应答盐碱胁迫中的作用[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０２３ꎬ３９(１):１５０－１５６. [２３]ＭüｌｌｅｒＭꎬＭｕｎｎé￣ＢｏｓｃｈＳ.Ｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒｓ:ａｋｅｙｒｅｇｕｌａｔｏｒｙｈｕｂｉｎｈｏｒｍｏｎｅａｎｄｓｔｒｅｓｓｓｉｇｎａｌｉｎｇ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓ￣ｉｏｌ.ꎬ２０１５ꎬ１６９(１):３２－４１.[２４]ＤｅｂｂａｒｍａＪꎬＳａｒｋｉＹＮꎬＳａｉｋｉａＢꎬｅｔａｌ.Ｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅ９７１㊀第２期㊀㊀㊀㊀㊀㊀崔德周ꎬ等:小麦ＥＲＦ亚族转录因子参与逆境胁迫的研究进展ｆａｃｔｏｒ(ＥＲＦ)ｆａｍｉｌｙｐｒｏｔｅｉｎｓｉｎａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓａｎｄＣＲＩＳＰＲ￣Ｃａｓ９ｇｅｎｏｍｅｅｄｉｔｉｎｇｏｆＥＲＦｓｆｏｒｍｕｌｔｉｐｌｅａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｔｏｌｅｒ￣ａｎｃｅｉｎｃｒｏｐｐｌａｎｔｓ:ａｒｅｖｉｅｗ[Ｊ].Ｍｏｌ.Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ.ꎬ２０１９ꎬ６１(２):１５３－１７２.[２５]赵曾强ꎬ郭文婷ꎬ张析ꎬ等.棉花抗枯萎病相关基因ＧｈＥＲＦ５￣４Ｄ的克隆及功能分析[Ｊ].生物技术通报ꎬ２０２２ꎬ３８(４):１９３－２０１.[２６]才晓溪ꎬ胡冰霜ꎬ沈阳ꎬ等.ＧｓＥＲＦ６基因过表达对水稻耐盐碱性的影响[Ｊ].作物学报ꎬ２０２３ꎬ４９(２):５６１－５６９. [２７]李紫良ꎬ张建朝ꎬ李政ꎬ等.小麦转录因子基因ＴａＥＲＦ７的克隆及其表达分析[Ｊ].西北植物学报ꎬ２０２０ꎬ４０(２):２１０－２１７.[２８]ＺｈａｎｇＬꎬＬｉｕＰꎬＷｕＪꎬｅｔａｌ.ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆａｎｏｖｅｌＥＲＦｇｅｎｅꎬＴａＥＲＦ８ꎬａｓｓｏｃｉａｔｅｄｗｉｔｈｐｌａｎｔｈｅｉｇｈｔａｎｄｙｉｅｌｄｉｎｗｈｅａｔ[Ｊ].ＢＭＣＰｌａｎｔＢｉｏｌ.ꎬ２０２０ꎬ２０(１):２６３.[２９]ＺｈｕａｎｇＪꎬＣｈｅｎＪＭꎬＹａｏＱＨꎬｅｔａｌ.Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙａｎｄｅｘｐｒｅｓ￣ｓｉｏｎｐｒｏｆｉｌｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆＡＰ２/ＥＲＦｆａｍｉｌｙｇｅｎｅｓｆｒｏｍＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍ[Ｊ].Ｍｏｌ.Ｂｉｏｌ.Ｒｅｐ.ꎬ２０１１ꎬ３８(２):７４５－７５３. [３０]ＲｉａｚＭＷꎬＬｕＪꎬＳｈａｈＬꎬｅｔａｌ.ＥｘｐａｎｓｉｏｎａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆＡＰ２/ＥＲＦｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.)[Ｊ].Ｆｒｏｎｔ.Ｇｅｎｅｔ.ꎬ２０２１ꎬ１２:６３２１５５. [３１]李世姣ꎬ张晓军ꎬ乔麟轶ꎬ等.小麦盐胁迫响应相关ＥＲＦ基因的分离和初步验证[Ｊ].核农学报ꎬ２０２１ꎬ３５(５):１０３９－１０４７.[３２]ＦａｒａｊｉＳꎬＦｉｌｉｚＥꎬＫａｚｅｍｉｔａｂａｒＳＫꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＡＰ２/ＥＲＦｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎＴｒｉｔｉｃｕｍｄｕｒｕｍ:ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｅｘ￣ｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｕｎｄｅｒｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｓａｌｉｎｉｔｙｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].Ｇｅｎｅｓꎬ２０２０ꎬ１１(１２):１４６４.[３３]ＸｕＺＳꎬＸｉａＬＱꎬＣｈｅｎＭꎬｅｔａｌ.Ｉｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒ￣ａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｔｈｅＴｒｉｔｉｃｕｍａｅｓｔｉｖｕｍＬ.ｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｆａｃ￣ｔｏｒ１(ＴａＥＲＦ１)ｔｈａｔｉｎｃｒｅａｓｅｓｍｕｌｔｉｐｌｅｓｔｒｅｓｓｔｏｌｅｒａｎｃｅ[Ｊ].ＰｌａｎｔＭｏｌ.Ｂｉｏｌ.ꎬ２００７ꎬ６５(６):７１９－７３２.[３４]宋桂成ꎬ周淼平ꎬ余桂红ꎬ等.小麦乙烯转录因子ＴａＥＲＦ２响应湿害胁迫的表达分析[Ｊ].核农学报ꎬ２０２２ꎬ３６(５):８７６－８８４.[３５]徐兆师.小麦抗逆相关ＤＲＥＢ/ＥＲＦ转录因子基因的克隆与鉴定[Ｄ].北京:中国农业科学院ꎬ２００５:１１４－１２１. [３６]ＲｏｎｇＷꎬＱｉＬꎬＷａｎｇＡＹꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒＴａＥＲＦ３ｐｒｏｍｏｔｅｓｔｏｌｅｒａｎｃｅｔｏｓａｌｔａｎｄｄｒｏｕｇｈｔｓｔｒｅｓｓｅｓｉｎｗｈｅａｔ[Ｊ].ＰｌａｎｔＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ.Ｊ.ꎬ２０１４ꎬ１２(４):４６８－４７９. [３７]ＤｏｎｇＷꎬＡｉＸꎬＸｕＦꎬｅｔａｌ.ＩｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆａｂｒｅａｄｗｈｅａｔｓａｌｉｎｉｔｙｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒ[Ｊ].Ｇｅｎｅꎬ２０１２ꎬ５１１(１):３８－４５.[３８]张蕾.小麦盐胁迫应答相关基因ＴａＥＲＦ５的功能研究[Ｄ].北京:中国农业科学院ꎬ２０１３:３２－３４.[３９]崔德周ꎬ李永波ꎬ隋新霞ꎬ等.小麦盐胁迫持续上调转录因子基因ＴａＥＲＦ８￣２Ｄ的克隆及其分析[Ｊ].山东农业科学ꎬ２０２１ꎬ５３(５):３２－３７.[４０]ＺｈｕＸＬꎬＱｉＬꎬＬｉｕＸꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅｗｈｅａｔｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃ￣ｔｏｒｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｐａｔｈｏｇｅｎ￣ｉｎｄｕｃｅｄＥＲＦ１ｍｅｄｉａｔｅｓｈｏｓｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｂｏｔｈｔｈｅｎｅｃｒｏｔｒｏｐｈｉｃｐａｔｈｏｇｅｎＲｈｉｚｏｃｔｏｎｉａｃｅｒｅａｌｉｓａｎｄｆｒｅｅｚｉｎｇｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌ.ꎬ２０１４ꎬ１６４(３):１４９９－１５１４.[４１]ＧａｏＴꎬＬｉＧＺꎬＷａｎｇＣＲꎬｅｔａｌ.ＦｕｎｃｔｉｏｎｏｆｔｈｅＥＲＦＬ１ａｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｉｎｗｈｅａｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｗａｔｅｒｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ[Ｊ].Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.ꎬ２０１８ꎬ１９(５):１４６５.[４２]ＤｕＬＹꎬＨｕａｎｇＸＬꎬＤｉｎｇＬꎬｅｔａｌ.ＴａＥＲＦ８７ａｎｄＴａＡＫＳ１ｓｙｎｅｒｇｉｓｔｉｃａｌｌｙｒｅｇｕｌａｔｅＴａＰ５ＣＳ１/ＴａＰ５ＣＲ１￣ｍｅｄｉａｔｅｄｐｒｏｌｉｎｅｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｔｏｅｎｈａｎｃｅｄｒｏｕｇｈｔｔｏｌｅｒａｎｃｅｉｎｗｈｅａｔ[Ｊ].ＮｅｗＰｈｙｔｏｌ.ꎬ２０２３ꎬ２３７(１):２３２－２５０.[４３]ＭａｋｈｌｏｕｆｉＥꎬＹｏｕｓｆｉＦＥꎬＭａｒａｎｄｅＷꎬｅｔａｌ.Ｉｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｍｏ￣ｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆＥＲＦ１ꎬａｎｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒｇｅｎｅｆｒｏｍｄｕｒｕｍｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂｓｐ.ｄｕｒｕｍ)ꎬｐｏｔｅｎｔｉａｌｌｙｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｓａｌｔ￣ｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].Ｊ.Ｅｘｐ.Ｂｏｔ.ꎬ２０１４ꎬ６５(２２):６３５９－６３７１.[４４]ＭａｋｈｌｏｕｆｉＥꎬＹｏｕｓｆｉＦＥꎬＰｉｒｒｅｌｌｏＪꎬｅｔａｌ.ＴｄＥＲＦ１ꎬａｎｅｔｈｙｌ￣ｅｎｅｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒａｓｓｏｃｉａｔｅｄｗｉｔｈｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎｄｕ￣ｒｕｍｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂｓｐ.ｄｕｒｕｍ)[Ｊ].ＰｌａｎｔＳｉｇｎａｌａｎｄＢｅｈａｖ.ꎬ２０１５ꎬ１０(１０):ｅ１０６５３６６.[４５]ＤｊｅｍａｌＲꎬＫｈｏｕｄｉＨ.ＩｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆａｎｏｖｅｌＷＩＮ１/ＳＨＮ１ｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒＴｄＳＨＮ１ｆｒｏｍｄｕｒｕｍｗｈｅａｔ(ＴｒｉｔｉｃｕｍｔｕｒｇｉｄｕｍＬ.ｓｕｂｓｐ.ｄｕ￣ｒｕｍ)[Ｊ].Ｐｒｏｔｏｐｌａｓｍａꎬ２０１５ꎬ２５２(６):１４６１－１４７３. [４６]ＤｊｅｍａｌＲꎬＫｈｏｕｄｉＨ.Ｔｈｅｅｔｈｙｌｅｎｅ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｏｆｄｕｒｕｍｗｈｅａｔꎬＴｄＳＨＮ１ꎬｃｏｎｆｅｒｓｃａｄｍｉｕｍꎬｃｏｐｐｅｒꎬａｎｄｚｉｎｃｔｏｌｅｒａｎｃｅｔｏｙｅａｓｔａｎｄｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｔｏｂａｃｃｏｐｌａｎｔｓ[Ｊ].Ｐｒｏｔｏｐｌａｓｍａꎬ２０２２ꎬ２５９(１):１９－３１.[４７]ＨａｇｈｉｒＳꎬＡｌｅｍｚａｄｅｈＡ.Ｃｌｏｎｉｎｇａｎｄｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａ￣ｔｉｏｎｏｆＴａＥＲＦ６ꎬａｇｅｎｅｅｎｃｏｄｉｎｇａｂｒｅａｄｗｈｅａｔｅｔｈｙｌｅｎｅｒｅ￣ｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒ[Ｊ].Ｍｏｌ.Ｂｉｏｌ.Ｒｅｓ.Ｃｏｍｍｕｎ.ꎬ２０１８ꎬ７(４):１５３－１６３.[４８]ＺｈａｎｇＺＹꎬＹａｏＷＬꎬＤｏｎｇＮꎬｅｔａｌ.ＡｎｏｖｅｌＥＲＦｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｃｔｉｖａｔｏｒｉｎｗｈｅａｔａｎｄｉｔｓｉｎｄｕｃｔｉｏｎｋｉｎｅｔｉｃｓａｆｔｅｒｐａｔｈｏｇｅｎａｎｄｈｏｒｍｏｎｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ[Ｊ].Ｊ.Ｅｘｐ.Ｂｏｔ.ꎬ２００７ꎬ５８(１１):２９９３－３００３.[４９]ＤｏｎｇＮꎬＬｉｕＸꎬＬｕＹꎬｅｔａｌ.ＯｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＴａＰＩＥＰ１ꎬａｐａｔｈｏｇｅｎ￣ｉｎｄｕｃｅｄＥＲＦｇｅｎｅｏｆｗｈｅａｔꎬｃｏｎｆｅｒｓｈｏｓｔ￣ｅｎｈａｎｃｅｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｔｏｆｕｎｇａｌｐａｔｈｏｇｅｎＢｉｐｏｌａｒｉｓｓｏｒｏｋｉｎｉａｎａ[Ｊ].Ｆｕｎｃｔ.Ｉｎｔｅｇｒ.Ｇｅｎｏｍｉｃ.ꎬ２０１０ꎬ１０(２):２１５－２２６.[５０]ＣｈｅｎＬꎬＺｈａｎｇＺＹꎬＬｉａｎｇＨＸꎬｅｔａｌ.ＯｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＴｉＥＲＦ１ｅｎｈａｎｃｅｓｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｔｏｓｈａｒｐｅｙｅｓｐｏｔｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｗｈｅａｔ[Ｊ].Ｊ.Ｅｘｐ.Ｂｏｔ.ꎬ２００８ꎬ５９(１５):４１９５－４２０４.０８１山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５６卷㊀。
小麦抗白粉病分子育种的研究现状及研究进展
小麦抗白粉病分子育种的研究现状及研究进展刘国圣【摘要】小麦白粉病成为小麦种植过程中主要病害之一,在防治该病时采用抗病品种是最为有效、经济的措施。
近年来,分子标记技术的研究与发展成为了抗白粉病技术中比较科学的技术,这种技术为抗白粉分子育种提供极大的便利。
基于此,从抗白粉病的分子育种研究现状出发,分析小麦抗性的三种类型及小麦抗白粉病的基因克隆,然后从基因定位角度探讨研究发展。
【期刊名称】《生物化工》【年(卷),期】2016(000)004【总页数】3页(P84-86)【关键词】小麦抗白粉病;分子育种;研究发展【作者】刘国圣【作者单位】河南大学生命科学学院【正文语种】中文【中图分类】S435.121.46小麦白粉病属于专性寄生白粉病菌造成的世界性病害［1］。
随着我国改善水肥条件，加大种植密度，种植矮秆品种，以及麦田比较遮蔽，白粉病的危害日渐严重，逐渐成为了危害小麦生产的最大病种。
采用化学控制确实有成效，但是极难应用到大面积中，而且防治成本较高，还会污染环境，对生态环境造成破坏。
所以，采用培育抗病品种是一种最有效、最经济的办法。
在这种形势下，研究小麦抗白粉病分子育种及研究发展具有实用价值。
1.1 抗性三种类型从小麦抗白粉菌表现的抗性，可以将此抗性划分成三种类型，针对这三种类型进行研究。
1.1.1 质量抗性这种质量抗性具体体现在对某个确定白粉菌的生理小种有效，对于其他小种却无效。
也就是符合Flor提出“基因对基因”的假说［2］，对于白粉菌表现的质量抗性主要是由单基因控制。
如今已经对小麦7个部分的同源染色体上进行定位，总共为24个位点，总共有35个抗白粉病的基因属于这种类型。
除开已经定位Pm基因之外，其中Mld基因就处于小麦品系的Hallel3471、H8810/47、MarisDove中4B染色体上，主要源于T.durum，而抗德国白粉菌的2号小种Abo、Courtot以及Aristide中都含有Mlar基因。
小麦全蚀病抗病性研究进展及其育种途径探讨(精)
收稿日期:2012-04-11基金项目:河南省重点科技攻关项目(112102110001作者简介:刘亚飞(1978-,男,河南沁阳人,助教,主要从事小麦遗传育种及作物定量化育种的研究和教学工作。
E -m a i l :l i u ya f e i 780507@126.c o m *通讯作者:郭瑞林(1960-,男,河南林州人,研究员,主要从事小麦遗传育种及作物定量化育种研究。
E -m a i l :gr l 6662002@y a h o o .c o m.c n 小麦全蚀病抗病性研究进展及其育种途径探讨刘亚飞1,刘振东2,郭瑞林1*(1.安阳工学院生物与食品工程学院,河南安阳455000;2.安阳工学院数理学院,河南安阳455000摘要:阐述了小麦全蚀病致病性遗传规律,并从黑麦、燕麦、冰草属、粗山羊草、簇毛麦和华山新麦草等6个近缘种属中抗全蚀病基因的发现,回顾了国内外小麦全蚀病抗性研究取得的成就。
在此基础上,提出了将小麦全蚀病抗性基因导入普通小麦的5条思路或途径。
关键词:小麦全蚀病;抗病性;育种;途径中图分类号:S 435.121.4文献标志码:A 文章编号:1004-3268(201209-0006-04R e s e a r c h P r o gr e s s o f W h e a t T a k e -a l l D i s e a s e R e s i s t a n c e a n d D i s c u s s i o n o n I t s B r e e d i n gA p p r o a c h e s L I U Y a -f e i 1,L I U Z h e n -d o n g 2,G U O R u i -l i n 1*(1.S c h o o l o f B i o l o g i c a l a n d F o o d E n g i n e e r i n g ,A n ya n g I n s t i t u t e o f T e c h n o l o g y ,A n y a n g455000,C h i n a ;2.S c h o o l o f M a t h e m a t i c s a n d P h y s i c s ,A n y a n g I n s t i t u t e o f T e c h n o l o g y ,A n y a n g455000,C h i n a A b s t r a c t :T h e p a p e r e l a b o r a t e s o n t h e ge n e t i c l a w of w h e a t t a k e -a l l d i s e a s e r e s i s t a n c e ,a n d r e v i e w s s o m e a c h i e v e m e n t s t h a t h a v e b e e n m a d e a t h o m e a n d a b r o a d f r o m t h e d i s c o v e r yo f r e s i s t a n c e g e n e s f r o m 6r e l a t i v e s p e c i e s ,s u c h a s r y e ,o a t ,A g r o p y r o n p l a n t s ,A e g i l o p s s q u a r r o s a ,H a yn a l d i a v i l l o s a a n d P s a t h y r o s t a c h y s h u a s h a i c a .B a s e d o n t h i s ,5i d e a s o r a p p r o a c h e s o f t r a n s f e r r i n gt a k e -a l l d i s e a s e r e s i s t a n c e g e n e s i n t o w h e a t a r e p r o po s e d .K e yw o r d s :w h e a t t a k e -a l l d i s e a s e ;d i s e a s e r e s i s t a n c e ;b r e e d i n g ;a p p r o a c h e s 小麦全蚀病是由禾顶囊壳菌(G a e u m a n n n o m y -c e s g r a m i n i s 侵染引起的小麦根基部病害,俗称“黑脚病”,又称小麦立枯病,是目前世界范围内最重要的小麦根部病害之一。
小麦花叶病毒病
化学防治方法
• 拌种：在播种前将药物与种子混合，防治病毒病的发生 • 叶面喷施：在小麦生长过程中，适时喷洒抗病毒药物， 控制病毒病的传播和侵染
小麦花叶病毒病的生物防治方法
生物防治方法
• 使用拮抗微生物，如放线菌、真菌等，抑制病毒复制和传播 • 使用植物源提取物，如生物碱、黄酮类物质等，提高小麦的抗病能力
抗性遗传研究
• 已通过遗传分析、分子标记等方法，研究小麦花叶病毒 病的抗性遗传机制 • 已定位多个抗病基因，为抗性育种提供分子标记和遗传 信息
小麦花叶病毒病的抗性育种方法与实例
抗性育种方法
• 杂交育种：通过杂交组合，将抗病基因导入优良品种中，提高抗病能力 • 基因工程：利用基因工程技术，将抗病基因导入小麦基因组，提高抗病能力
分子生物学检测
• 利用病毒特异性基因，通过聚合酶链反应（PCR）等方 法检测病毒 • 具有高灵敏度和高特异性，可检测病毒株系和基因变异
小麦花叶病毒病的快速检测技术
快速检测技术
• 免疫层析法：利用抗原与抗体之间的特异性结合，快速检测病毒 • 荧光定量PCR：利用荧光标记和实时定量技术，快速检测病毒核酸
• 病毒可在土壤中存活，通过土壤侵染植株根部，进而传 播至地上部分 • 土壤传播的途径包括根系接触和土壤中的害虫等
03 空气传播
• 病毒可通过空气传播，随风附着在植株表面，进入植株 体内 • 空气传播的途径包括气流传输和飞沫传播等
小麦花叶病毒病的侵染机制研究
传播过程
• 病毒通过宿主细胞的分泌和迁移等途径，传播至植株其他部位 • 病毒传播过程中需要宿主细胞和环境条件的参与
防治策略
• 选育抗病品种：选育具有高抗性的小麦品种，减少病毒侵染和发病 • 加强田间管理：采取合理的栽培管理措施，降低病毒传播和侵染风险 • 化学防治：在必要时采取化学防治措施，控制病毒病的发生和传播
矮败小麦育种技术研究进展_刘宏伟 (1)
26
中国农业科技导报
刘秉华创制的以矮秆基因标记太谷显性雄性核不 育基因，从而对太谷显性雄性核不育基因进行选 择。矮败小麦具有太谷核不育小麦雄性败育彻 底、不育性稳定，异交结实率高的优点，同时简化 了雄性不育育性依靠人工鉴定和标记的工作程 序，并克服了太谷显性核不育小麦轮选群体株高 随轮选世代增加逐渐升高的缺点，是小麦轮回选 择育种理想的育种工具。经过多年的研究与实 践，建立了方便高效的矮败小麦育种技术体系，为 突破小麦育种“瓶颈”开辟了新的途径。
以矮秆性状标记太谷显性雄性核不育基因， 使识别群体中可育株与不育株的工作程序简单可 靠，而且在群体中提供花粉的可育株高于接受花 粉的不育株，不仅有利于异交结实，同时避免轮选 群体株高随轮选世代增加逐轮渐升的弊端。在矮 败小麦群体中矮秆不育株的异交促进了基因的交 流与重组，高秆可育株的自交加速了基因的纯合 与稳定，因此矮败小麦群体具有异花授粉和自花 授粉的遗传特性，是理想的小麦轮回选择育种遗 传改良工具［1，4，10］，同时矮败小麦也可用于小麦育 种程序中的复合杂交、阶梯杂交、聚合杂交和远缘 杂交（ 图 1-B、C、D、E） 。
矮败小麦育种技术主要包括基础群体组建、 父母本选择与控制、优良基因交换重组和组建改 良群体。如此反复进行轮回选择，群体整体水平 就会不断得到改良，并从中选育出优良品种。矮 败小麦开展轮回选择的一般程序和方法如图 2 所示。 2． 1． 1 基础群体组建 基础群体的构建是小麦 轮回选择育种的首要工作，结合小麦育种的中长 期目标选择亲本 15 ～ 20 个，亲本的单个性状要突 出并互补，同时选用 3 ～ 5 个当地主栽品种，以增 加群体选育品种的适应性。具体组建群体方法为
小麦白穗的原因及防治方法
小麦白穗的原因及防治方法
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目录
• 小麦白穗的原因分析 • 小麦白穗的防治方法 • 小麦白穗的防治实例 • 小麦白穗的未来研究方向
01
小麦白穗的原因分析
病害原因
01
02
03
感染白粉病
白粉病是小麦生长过程中 的常见病害，可能导致小 麦穗部出现白色霉层，从 而形成白穗。
感染纹枯病
结合病害流行规律和预测研究成果，针对不同生态区和种植制度，选育适合当地环 境条件的抗病新品种，提高小麦的抗病性能。
深入研究生物防治方法，减少化学农药的使用
加强生物防治菌剂的研究，利用 有益微生物及其代谢产物对病原 菌进行拮抗、竞争等作用，降低
病害的发生和危害程度。
开展生物农药和抗生素等生物制 剂的研究和开发，替代化学农药 的使用，降低对环境和人类健康
病的目的。
利用天敌
利用小麦白穗病病原菌的天敌， 控制病原菌的数量和繁殖，降低
病害的发生率和危害程度。
生物农药
使用生物农药，如井冈霉素等， 对小麦白穗病进行防治，具有安
全、高效、环保等优点。
03
小麦白穗的防治实例
某地区小麦白穗的防治经验
选用抗病品种
针对当地病害发生情况，选用抗病性 较强的小麦品种，如X号、Y号等。
科学施肥
控制氮肥用量，增加有机肥和磷钾肥 的施用，改善土壤结构，提高土壤肥 力。
精量播种
合理控制播种量，避免过密或过稀， 保证田间通风透光良好。
药剂防治
在小麦抽穗前喷施杀菌剂，如三唑酮 、烯唑醇等，每隔7-10天喷一次， 连续喷2-3次。
某品Байду номын сангаас小麦抗白穗育种研究进展