生长曲线的测定
大肠杆菌生长曲线测定
大肠杆菌生长曲线测定一、目的要求了解大肠杆菌生长曲线的基本特征，从而认识微生物在一定条件下生长、繁殖的规律。
二、基本原理一定量的微生物，接种在适合的新鲜液体培养基中，在适宜的温度下培养，以菌数的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，做出的曲线叫生长曲线。
一般可分为延迟期、对数期、稳定期和衰亡期四个时期。
不同的微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。
因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。
测定微生物生长曲线的方法很多，有血球计数法、平板菌落计数法、称重法、比浊法等。
本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可利用光电比色计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测得的光密度值（OD值）与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。
现已有直接用试管就可以测定OD值的光电比色计（图Ⅶ-10），只要接种一支试管，定期用它测定，便可做出该菌的生长曲线。
三、器材培养18—20小时的大肠杆菌培养液，盛有5ml肉膏蛋白胨液体培养基的大试管12支；72型或72．1型分光光度计，自控水浴振荡器或摇床，无菌吸管等。
四、操作步骤1．编号取11支盛有肉膏蛋白胨液体培养基的大试管，用记号笔标明培养时间，即0、1．5、3、4、6、8、10、12、14、16、20小时。
2．接种用1ml无菌吸管，每次准确地吸取0．2ml大肠杆菌培养液，分别接种到已编号的11支肉膏蛋白胨液体培养基大试管中，接种后振荡，使菌体混匀。
3．培养中心以化工行业技术需求和科技进步为导向，以资源整合、技术共享为基础，分析测试、技术咨询为载体，致力于搭建产研结合的桥梁。
以“专心、专业、专注“为宗旨，致力于实现研究和应用的对接，从而推动化工行业的发展。
将接种后的11支试管置于自控水浴振荡器或摇床上，37℃振荡培养。
分别在0、1．5、3、4、6、8、10、12、14、16、20小时将编号为对应时间的试管取出，立即放冰箱中贮存，最后一同比浊测定光密度值。
生曲
乳酸菌生长曲线的测定（预实验）一、测定指标（0~40h，每隔4h）：pH值、OD600、活菌计数二、准备菌株（活化第二代后用生盐或PBS调整OD600 0.6—0.8，再接种2%至第三代）；MRS液体培养基5mL？*2支平行*11次*菌株数1= ；MRS固体培养基20mL*2支平行*3个梯度*2个梯度平行*11次*菌株数1= ；生盐9mL*2支平行*（平均）8个稀释梯度*11次*菌株数1= ；试管60+180支；培养皿60套；移液枪；枪头=菌株数2*2*10次= ；废液缸；722型分光光度计（预热30min）、比色皿（新旧程度一致）、pH计（用前校准。
温度计）、滤纸、漩涡混匀器、洗瓶调菌①取两管菌液（二代），混匀后在超净台里吸取3mL置于比色皿，测OD，记录。
将剩余菌液转入50mL离心管。
②根据所测得的OD值向离心管加入空白培养基或菌液。
③从离心管中吸取3mL调整过浓度的菌液置于比色皿，再测OD值。
重复以上步骤，直至OD值在0.6—0.8。
④用离心管中的菌液进行后续试验。
三、步骤1.接种（接种量2%）后置于37℃培养2.培养至预先设定的时长后，每株菌取出2支培养液并在试管上标明培养时间3.活菌计数（30—300）吸取1mL混匀（吸吹）的菌液置于装有9mL灭菌生盐的试管，依次梯度稀释至10-9。
取10-3、10-4、10-5？三个稀释倍数的菌液1mL加入平皿，倒入约20mL MRS固体培养后混匀（震荡、“8”字）。
置于37℃培养24h后观察计数。
4.OD600（3mL）（1）用未接种的MRS液体培养基作空白对照（调零）。
（2）将混匀的培养液倒入比色皿，测定OD600，记录数据（3）细胞密度大的培养液需用MRS液体培养基稀释后测定（分光光度计有效范围0.2—0.8）。
稀释后的数据计算（菌液：空白培养基=？：？）5.测定pH值：将剩余菌液混匀后倒入10mL离心管，测pH值。
实验6-2酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定
实验酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定1 目的要求（1）了解酵母菌、细菌等单细胞微生物生长曲线的特点及测定原理；（2）学习用血球计数板计数法和比浊法分别测定酵母和细菌的生长曲线。
2 基本原理生长曲线是单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。
测定时一般将一定数量的微生物纯菌种接种到一定体积的已灭菌的适宜的新鲜培养液中，在适温条件下培养，定时取样测定培养液中菌的数量，以菌数的对数为纵坐标，生长时间为横坐标，绘制得到生长曲线。
不同的微生物其生长曲线不同，同一微生物在不同培养条件下其生长曲线亦不同。
但单细胞微生物的生长曲线规律基本相同，生长曲线一般分为延迟期、对数期、稳定期和衰亡期四个时期。
测定一定培养条件下的微生物的生长曲线对科研和实际生产有一定的指导意义。
测定生长曲线时需要对生长的单细胞微生物定时取样计数，对于酵母细胞和比较大的细菌细胞可采用血球计数板计数法计数，亦可采用比浊法计数，但对于小的细菌细胞一般采用比浊法。
比浊法是根据培养液中菌细胞数与混浊度成正比，与透光度成反比的关系，利用光电比色计测定菌悬液的光密度值（OD值），以OD值来代表培养液中的浊度即微生物量，然后以培养时间为横坐标，以菌悬液的OD值为纵坐标绘出生长曲线。
此方法所需设备简单，操作简便、迅速。
血球计数板法是利用一块血球计数板来进行计数的。
血球计数板是一块特制的厚玻璃片，中央平台比两边平台低0.1mm，上有两个被精细刻化为400个小方格的格网，面积为1mm2，加盖盖玻片后即构成0.1 mm3体积的计数室。
血球计数板有两种规格：一种是将1 mm2面积的网格划分为25个大格，每个大格再分成16个小格，既25´16；另一种为16´25。
计数时只需无菌操作将稀释到适宜浓度的菌悬液取一滴从盖玻片一侧渗入到计数室，待静置平衡后于显微镜高倍镜下计数，用下面公式算出菌液中细胞数。
单细胞微生物细胞数/mL=5个中格内细胞数¸5´25（或16）´104´菌液稀释倍数3 实验材料3．1 菌种酵母菌和大肠杆菌。
MTT法测定细胞生长曲线
MTT法测定细胞生长曲线
1、取生长状况良好的细胞，常规消化制成单细胞悬液并计数，调整细胞成六个浓度梯度，依次为：5x103、1x104、2x104、3x104、4x104、5x104/ml，均匀接种细胞于96孔细胞培养板，每孔加细胞悬。
液200ul，每个浓度组设6个复孔,共接种7块培养板，37℃、5%C02浓度，饱和湿度培养箱中连续孵育24/48/72/96/120/148/172小时后。
2、每孔加入20ulMTT溶液(smg/m1用PBS<ph=7.4>配)，继续孵育4h后终止培养。
3、快速翻转培养板,弃去上清液,每孔加入150ulDMSO,振荡10min，使MTT蓝紫色结晶完全溶解。
4、用酶联免疫检测仪于490nm处检测各孔的吸光值(OD值)，并以未接种细胞只加培养基孔的吸光值为空白对照调零，取6孔平均值。
5、实验重复3次，以培养“时间”为横轴，“吸光值”为纵轴绘制细胞生长曲线。
MRC-5体外培养细胞生长曲线测定 - 详细
MRC-5体外培养细胞生长曲线测定一．实验目的认识细胞接种和传代培养中细胞生长增殖规律。
二．实验原理在培养接种或每一次传代培养过程中，培养物都要经历相似的恢复和生长过程。
细胞生长曲线反映的是培养细胞从接种到传代之前的生长状况，也是判定细胞活力的重要指标。
一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，紧接着进入大量分裂的指数生长期。
在细胞达到饱和密度后，停止生长，进入平台期，然后退化衰亡。
为了准确描述整个过程中细胞数目的动态变化，典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，斜率较大的指数生长期，呈平台状的平台期及退化衰亡4个部分。
以培养时间为横坐标、细胞密度为纵坐标绘制细胞的生长曲线坐标图。
三．实验准备3.1实验人员用品工作服、帽子、口罩、手套、肥皂、医用手臂消毒桶、0.1%新洁尔灭消毒液；3.2消毒和灭菌用品电炉、高压蒸汽灭菌锅、铝盒、24孔细胞培养板、移液管、枪头、洗耳球、离心管（规格：1.5mL/5mL/10mL）；3.3药品和试剂DMEM细胞培养液（10%血清）、0.25%胰蛋白酶-0.53Mm EDTA、PBS(-)；3.4 细胞MRC-5人二倍体细胞；3.5设备与器材CO2培养箱、离心机、移液枪（规格：1000uL、200uL）、二级生物安全柜、血细胞计数板、显微镜、记号笔、废液瓶；四．实验步骤4.1细胞接种4.1.1选择生长良好的MRC-5人二倍体细胞，移液管移除原细胞培养液至废液瓶中；4.1.2 DPBS润洗三次，每次5mL；4.1.3 吸管吸取1mL胰蛋白酶溶液浸润培养层细胞，37℃恒温消化2～10min；4.1.4用含10%血清的DMEM培养液4mL终止消化；4.1.5将终止消化后的细胞悬液用移液管转移至离心管中，1000r/min离心8min，弃上清；4.1.6吸管吸取2mL DMEM细胞培养液悬浮细胞；4.1.7对细胞悬浮液进行细胞计数；4.1.8调整悬浮液的细胞浓度分别为5×103个/mL(A) 、2×104个/mL(B)、 5×104个/mL(C)3种不同的细胞浓度（细胞理论数：1.575×104个）；4.2 细胞培养4.2.1依次将浓度为5×103个/mL(A) 、2×104个/mL(B)、 5×104个/mL(C)的细胞悬液分装于3个有盖的24孔细胞培养板，分别按每孔接种1mL，每种浓度各接21孔，进行细胞的悬浮培养；4.3 细胞换液细胞接种培养后，分别按照每间隔3d和5d换液一次。
放线菌769抑菌谱及液体培养生长曲线的测定
丫·虱担‘ｌ哥叫２０１０ｍ７ｍＣＨＩＮＡＰＬＡＮＴＰＲＯＴＥＣＴＩＯＮ２０１０，Ｖ０１．３０．Ｎｏ．７培养条件和生长、繁殖规律进行了研究，测定其生长曲线。
为放线菌７６９的进一步开发利用奠定了重要的理论和实践基础。
１材料和方法１．１材料１）菌株。
以公主岭霉素产生菌７６９（实验室保存）为试验菌株；以水稻稻瘟病病菌［Ｍａｇｎａｐｏｒｔｈｅｇｒｉｓｅａ（Ｈｅｂｅｒｔ）Ｂａｒｍｏｖ］、大葱紫斑病病菌［Ａ／ｔｅｒｎａｒ／ａｐｏｒｒｉ（Ｅｌｌｉｓ）Ｃｉｆ］、大豆灰斑病病菌（ＣｅｒｃｏｓｐｏｒａｓｏｊｉｎａＨａｒａ）等病原真菌２１个菌株（来自由本实验室保存及吉林农业大学杨信东教授、高洁教授等惠赠。
表１）为指示菌株。
２）培养基液体培养基：①胰胨豆汤（ＴＳＢ，下称）。
组成成分：Ｏｘｏｉｄ胰胨豆汤粉（ＣＭｌ２９）３０．０ｇ、蒸馏水１０００ＩＩｌｌ。
②ＹＥＭＥ培养基（下简称ＹＥＭＥ）。
组成成分：Ｄｉｆｃｏ酵母膏３．０ｇ、Ｄｉｆｃｏ蛋白胨５．０ｇ、Ｏｘｏｉｄ麦芽膏３．０ｇ、葡萄糖１０．０ｇ、蔗糖３４０．０ｇ、蒸馏水１０００ｍｌ。
高压灭菌后加入ＭｇＣｌ２·６Ｈ２０（２．５ｍｏｌ／Ｌ）２ｍｌ／Ｌ。
③ＳＤＹ培养基（下简称ＳＤＹ）。
组成成分：蛋白胨２ｇ、酵母粉２ｇ、葡萄糖６ｇ、蒸馏水２００ｍｌ。
ｐＨ７．０。
④７６９．１。
组成成分：蛋白胨５ｇ、氯化钠５ｇ、葡萄糖１０ｇ、可溶性淀粉１０ｇ。
加水到１０００ｍｌ。
⑤７６９．２。
组成成分：蛋白胨２ｇ、酵母粉１ｇ、牛肉膏ｌｇ、葡萄糖１０ｇ、可溶性淀粉１０ｇ。
加水到１０００ｍｌ。
固体培养基：①ＰＤＡ。
取去皮的马铃薯２００ｇ。
加９００ｍｌ自来水，煮沸１５～２０ｍｉｎ，４层纱布过滤，滤液定容至１０００ｍｌ，并在其中加入２０ｇ葡萄糖，ｐＨ自然，１２１℃灭菌。
配制固体ＰＤＡ培养基时加入１．７％的琼脂。
②高氏１号培养基。
组成成分：Ｋ２ＨＰＯ，０．５ｇ、ＮａＣｌ０．５ｇ、ＫＮ０３ｌｇ、ＦｅＳ０４·７Ｈ２００．０１ｇ、Ｍｇｓ０４·７Ｈ２００．５ｇ、可溶性淀粉２０ｇ、琼脂２０ｇ、蒸馏水１０００ｍｌ。
实验4测定细菌生长曲线
仪器：
摇床、分光光度计、取液器。
微生物材料
大肠杆菌菌液、枯草杆菌菌液
培养基
肉汤蛋白胨液体培养基
用具
玻璃比色皿，三角瓶，酒精灯，接种环。
2021/6/16
6
五、准备步骤
准备菌种：将大肠杆菌和枯草杆菌分别接到于肉汤 蛋白胨液体培养基中，37℃振荡培养14-18h。 另准备大肠杆菌和枯草杆菌斜面种子各1支。
• 将所测的光密度值（OD）与其对应的培养时间作图， 即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线（注意：由于 光密度表示的是培养液的总数，包括活菌与死菌所测 的生长曲线衰亡期不明显）。
2021/6/16
4
微生物的典型生长曲线图 Ⅰ.延滞期，Ⅱ.指数期，Ⅲ.稳定期，Ⅳ.衰亡期
2021/6/16
5
四、实验仪器、材料和用具
细菌的生长曲线分为：迟缓期、对数期、稳定期和 衰退期。其表示细菌从开始生长到死亡全过程的动 态。测定微生物的生长曲线对于了解和把握生物的
生长规律是很有帮助的。
2021/6/16
3
• 测定微生物生长曲线的方法有血球计数法、平板菌落 计数法、称重法和比浊法等。
• 比浊法：由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比。故可 用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。
接种：分别取5ml大肠杆菌或枯草杆菌液接种到装有 100ml培养液的三角瓶中，放摇床37℃，200rmp振 荡培养。同时分别从大肠杆菌或枯草杆菌斜面取菌 接种于100ml培养液中，同样条件培养。
2021/6/16
7
测定（OD）
每小时吸取200ul培养液到2800ul蒸馏水中摇匀， 以蒸馏水为对照，选420nm波长进行光密度（OD值） 的测定（注意应测定0h的光密度值）。
大肠杆菌生长曲线的测定概要
大肠杆菌生长曲线的测定一、基本原理生长曲线是微生物在液体培养基中所表现出来的生长、繁殖的规律，不同的微生物表现为不同的生长曲线，而即使是同一种微生物在不同培养条件下，其生长曲线也不同。
因此测定微生物的生长曲线对于了解，掌握微生物的生长规律是有帮助的。
由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此可利用光电比色计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。
本实验是以活菌计数法与光电比浊法相对应来测定大肠杆菌在不同培养条件下的生长曲线，从而观察分析大肠杆菌在这些培养条件下的生长情况。
二、器材培养了20小时的大肠杆菌悬液；肉汤蛋白胨培养基（液体、固体）；浓缩的肉汤蛋白胨液体培养基（浓缩5倍）；无菌酸溶液（甲酸：乙酸：乳酸＝3：1：1）。
1毫升及5毫升无菌吸管；无菌试管；无菌生理盐水；无菌平皿；血球计数器；显微镜；光电比色计；无菌离心管；离心机等。
三、操作步骤1．将经20小时培养的大肠杆菌培养物，倒入无菌离心管内离心（3000r.p.m×10），以无菌生理盐水洗涤三次后，制成约9亿毫升的菌悬液（用显微镜直接计数法），作为种子。
上述过程都必须注意严格无菌操作。
2．取盛有200毫升培养基经灭菌的三角瓶三瓶，分别标明A、B、C，按5%接种量，将上述种子接入，置37℃振荡培养。
在B瓶培养了4小时后取出，加入10毫升无菌酸溶液，然后继续振荡培养。
在C瓶培养了6小时后取出，加入10毫升无菌浓缩肉汤蛋白胨液，再继续振荡培养。
3．间隔一定时间，即0、2、4、6、8、10、12、14、16、18、20小时后，从A、B、C三角瓶中各取5毫升菌液放于无菌试管中，置冰浴。
并作适当稀释，使菌悬液的光密度控制在0.0－0.4范围内，再置光电比色计中进行比浊测定（400－440毫微米波长），用未接种的肉汤蛋白胨液为空白对照。
记下光密度值。
另外，A管在比浊测定以前，以无菌操作吸取0.1毫升菌液于肉汤蛋白胨琼脂平板上，用玻璃刮棒涂抹均匀后，置37℃培养30小时后计数。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
实验日期：2017.11.1 实验班级：生物技术指导教师：张建丽
姓名：高熹学号：1120152430
测定细菌生长曲线
一．实验目的
1.通过对大肠杆菌生长曲线的测定，了解细菌生长的特点，综合训练微生物实验的基本实验技能。
2.巩固培养基的配制、灭菌、仪器的包扎、倒平板。
3.掌握用比浊法测定细菌的生长曲线。
二．实验原理
将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，一定时间测定培养液中的菌量，以菌量的数量作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。
它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。
依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、生长期、稳定期和衰亡期。
将每一种一定量的细菌转入新鲜液体培养基中，在适宜的条件下培养细胞要经历延迟期、对数生长期、稳定期和衰亡期四个阶段。
延迟期：又叫调整期。
细菌接种至培养基后，对新环境有一个短暂适应过程（不适应者可因转种而死亡）。
此期曲线平坦稳定，因为细菌繁殖极少延迟期长短因素种、接种菌量、菌龄以及营养物质等不同而异，一般为1～4小时。
此期中细菌体积增大，代谢活跃，为细菌的分裂增殖合成、储备充足的酶、能量及中间代谢产物。
对数生长期：又称指数期。
此期生长曲线上活菌数直线上升。
细菌以稳定的几何级数极快增长，可持续几小时至几天不等（视培养条件及细菌代时而异）。
此期细菌形态、染色、生物活性都很典型，对外界环境因素的作用敏感，因此研究细菌性状以此期细菌最好。
抗生素作用，对该时期的细菌效果最佳。
稳定期：该期的生长菌群总数处于平坦阶段，但细菌群体活力变化较大细菌浓度达到最大即环境最大容纳量。
由于培养基中营养物质消耗、毒性产物（有机酸、过氧化物等）积累PH下降等不利因素的影响，细菌繁殖速度渐趋下降，相对细菌死亡数开始逐渐增加，此期细菌增殖数与死亡数渐趋平衡。
细菌形态、染色、生物活性可出现改变，并产生相应的代谢产物如外毒素、内毒素、抗生素、以及芽孢等。
衰亡期：随着稳定期发展，细菌繁殖越来越慢，死亡菌数明显增多。
活菌数与培养时间呈反比关系，此期细菌变长肿胀或畸形衰变，甚至菌体自溶，难以辩认其形。
生理代谢活动趋于停滞。
故陈旧培养物上难以鉴别细菌。
体内及自然界细菌的生长繁殖受机体免疫因素和环境因素的多方面影响，不会出现象培养基中那样典型的生长曲线。
掌握细菌生长规律，可有目的地研究控制病原菌的生长，发现和培养对人类有用的细菌。
这4个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所不同。
因此通过测定微生物的生长曲线，可了解个菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。
测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。
本实
验用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与光密度（OD值）成正比，因此可利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测的OD值与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线，此法快捷、简单。
三．实验设备及材料
准备好的大肠杆菌和枯草杆菌菌液、营养肉汤培养基、紫外可见分光光度计、比色皿、恒温摇床、培养箱、高压蒸汽灭菌锅、电子天平、酒精灯、电炉、接种环、试管架、锥形瓶、无菌吸管、烧杯、乳胶头、报纸、胶塞、玻璃棒等。
四．实验方法步骤及注意事项
实验步骤: 配制营养肉汤培养基→营养肉汤培养基灭菌→配制大肠杆菌菌液标记→接种→培养→测定→绘制生长曲线
1.配制营养肉汤培养基:以1000ml记，牛肉膏:3.0g、蛋白胨:10.0g、NaCl:5.0g、水:1000ml、pH:7.4-7.6
2.营养肉汤培养基灭菌:将步骤一包好的培养基置于高压蒸汽灭菌锅121℃灭菌15min.
3.接种:用1mL无菌移液管分别移取1mL大肠杆菌菌液和1ml的枯草杆菌菌液至锥形瓶中，并充分震荡均匀.
4.培养:将锥形瓶置于37℃下在恒温摇床上培养（150r/min）。
然后分别按对应时间将锥形瓶取出，待培养结束时测定OD值。
5.测定:将培养的大肠菌群菌液用无菌移液管移取到比色皿中，选用600nm分光光度计上调节零点，用蒸馏水作为空白对照，并对不同时间培养液从0起依次进行测定，对浓度大的菌悬液用自来水适当稀释后测定，使其OD值大约在0.2-0.8之间，经稀释后测得的OD值要乘于稀释倍数，才是培养液实际的OD值。
6.绘制生长曲线:对所得数据进行生长曲线的绘制，分析实验结果。
五．实验结果
六．实验结果分析
绘制大肠杆菌生长曲线
绘制枯草杆菌生长曲线
1.随着培养时间的增加，培养基里的液体变得越来越混浊，所散发出来的味道也越来越浓，大肠杆菌培养瓶味道很难闻，是因为大肠杆菌增长迅速，后来数量达到顶峰，此时培养基内的营养物质已被消耗殆尽，大肠杆菌进行营养和空间的竞争，有些大肠杆菌死亡，最后数量不断减少，直至变为0。
2.通过对大肠杆菌生长曲线的测定，了解了细菌生长的特点，是:刚开始时细菌缓慢增长，后来增长迅速，呈“J”型，最后细菌生长缓慢，数量达到顶峰，在一段时间内保持不变。
3.由实验结果来看，两个菌培养菌在对数期，未到衰亡期，考虑到测量的时间太短，10个小时左右，因此，未到衰亡期。
七．思考题
1.绘制大肠杆菌和枯草杆菌在两种接种方法下的生长曲线。
（标出生长曲线中
四个时期的位置和名称）
答：绘制出了生长曲线，只观察到了平缓期和对数期，大肠杆菌观察到即将开始平稳期。
2.为什么用比浊法测定的细菌生长只是表示细菌的相对生长状况？
答：因为比色法只能判断菌的相对密度，而没有办法区分活菌和死菌，因此只能表示细菌的相对生长状况。
3.生长曲线中为什么会出现稳定期和衰退期？在生产实践中怎样缩短延迟期？怎样延长对数期及稳定期？怎样控制衰退期？
答：培养基的营养有限，在菌的数量达到环境允许最大值时，同种菌之间竞争剧烈，故出现稳定期，随着营养的进一步消耗，菌没有足够的营养，出现死亡，所以出现了衰退期。
缩短延迟期，可以采用营养成分与原来相近的培养基，或者采用该种菌原来类似的生长条件与营养。
延长对数期和稳定期，恒化器可以将微生物保持在对数期进行研究，恒浊器可以使细菌连续生长。
控制衰退期可以及时补充营养，分离出死菌。
4.接种时种子在什么条件下为宜，液体种子比斜面种子为什么优越？
答：左手持皿用拇指、食指和中指将皿盖揭开约20-30度左右,角度越小遭空气污染的可能性越小,并靠近酒精灯附近操作。
右手持接种环，先在酒精灯灭菌，然后取菌液，将沾菌接种环在培养基的边缘划原始线，而后使接种环在指力作用下作轻快的滑移动作，从培养皿的一个边缘滑向另一个边缘，滑动时用力要均匀，切勿将接种环嵌入培养基内。
主要是活化菌种，调整菌种的生理生化状态。
液体培养比固体发酵通气效果好，利于大量菌体生长。
八．实验反思
1.应用一台仪器和一个比色皿测量，消除系统误差。
2.在比色皿中加液时，稀释时应该用枪头吹打均匀。