补体实验报告
最新补体实验报告
最新补体实验报告补体系统是免疫系统中的一个重要组成部分，它通过一系列级联反应增强抗体的效力，促进炎症反应，并参与清除免疫复合物和细胞残骸。
本次实验旨在评估补体系统的激活状态及其在疾病发生中的作用。
实验材料：1. 人血清样本2. 补体成分C3、C4、C5检测试剂盒3. ELISA板4. 微孔板阅读器5. 标准曲线所用的补体蛋白标准品6. 缓冲液和其他实验耗材实验方法：1. 从健康志愿者中收集血液样本，分离血清并储存于-80°C条件下直至使用。
2. 根据试剂盒说明书，对C3、C4、C5进行定量检测。
将血清样本稀释至适当浓度后，加入到预先包被有相应抗体的ELISA板中。
3. 孵育一段时间后，洗涤去除未结合的物质，加入底物并启动酶反应。
4. 在规定时间内，使用微孔板阅读器测定各孔的吸光度，根据标准曲线计算样本中补体成分的浓度。
实验结果：实验数据显示，与健康对照组相比，患有某种疾病的患者血清中C3和C4的水平显著降低，而C5水平则显著升高。
这表明补体系统的激活与疾病的发展密切相关。
讨论：补体系统的激活通常伴随着炎症反应的加剧和免疫复合物的清除。
在本研究中观察到的C3和C4水平的降低可能反映了补体成分的消耗，而C5水平的升高可能是由于补体激活途径的增强。
这些变化可能与疾病相关的炎症过程和组织损伤有关。
未来的研究需要进一步探索补体系统在疾病中的具体作用机制，并评估其作为潜在治疗靶点的可能性。
结论：本实验报告总结了补体系统在疾病中的激活状态及其潜在的临床意义。
通过定量分析补体成分的水平，我们能够更好地理解补体系统在疾病发生和发展中的角色，并为未来的治疗策略提供科学依据。
补体溶血实验报告
补体溶血实验报告补体溶血实验报告引言：补体溶血实验是一种常用的实验方法，用于检测补体在免疫反应中的功能活性。
本次实验旨在通过补体溶血实验，探究补体的溶血作用及其对不同细胞类型的影响。
实验材料与方法：1. 实验材料：- 补体：本实验采用人补体C3和C5。
- 靶细胞：实验中选取了两种不同细胞类型，分别是红细胞和白细胞。
- 试剂：溶血缓冲液、PBS缓冲液、EDTA抗凝液等。
- 实验仪器：离心机、显微镜、比色皿等。
2. 实验方法：- 准备红细胞和白细胞悬液：分别采集新鲜的全血和白细胞悬液，经过离心分离得到红细胞和白细胞悬液。
- 补体溶血实验：将一定浓度的红细胞和白细胞悬液分别与补体C3和C5混合，孵育一段时间后，离心沉淀，观察溶血情况。
- 比色测定：将上述实验得到的上清液取出，用比色皿进行比色测定，得到溶血率。
实验结果与讨论：1. 红细胞溶血实验：在补体C3和C5的作用下，红细胞溶血率明显增加。
随着补体浓度的增加，溶血率呈现逐渐增加的趋势。
这表明补体对红细胞的溶血作用具有浓度依赖性。
此外，红细胞的溶血率还与孵育时间有关，溶血率随孵育时间的延长而增加。
这可能是由于补体在孵育过程中逐渐结合到红细胞表面，导致红细胞膜的破坏。
2. 白细胞溶血实验：与红细胞不同，补体对白细胞的溶血作用较弱。
在补体C3和C5的作用下，白细胞溶血率相对较低，且不随补体浓度的增加而明显增加。
这可能是由于白细胞表面的膜结构与红细胞不同，使得补体与白细胞的结合和破坏较为困难。
此外，白细胞的溶血率也与孵育时间有关，但相对于红细胞溶血率的增加幅度较小。
结论：通过补体溶血实验，我们得出了以下结论：1. 补体对红细胞的溶血作用具有浓度依赖性，且溶血率随孵育时间的延长而增加。
2. 补体对白细胞的溶血作用较弱，且溶血率不随补体浓度的增加而明显增加。
实验的局限性与展望：本次实验仅选取了红细胞和白细胞作为靶细胞，未涉及其他细胞类型。
未来可以进一步研究不同细胞类型对补体溶血作用的差异，并探究其机制。
补体溶血反应实验报告
一、实验目的1. 了解溶血反应的原理。
2. 掌握补体溶血反应的基本操作方法。
3. 学习利用补体溶血反应测定血清补体活性。
二、实验原理补体系统是一组存在于人和动物血清中的蛋白质，具有多种生物学功能，如溶解细胞、促进吞噬作用、清除免疫复合物等。
补体溶血反应是指抗体与红细胞表面抗原结合，激活补体系统，导致红细胞溶解的现象。
本实验采用绵羊红细胞（SRBC）作为抗原，家兔抗SRBC抗血清作为抗体，通过测定一定量的抗体和补体作用下，绵羊红细胞的溶血程度，来评估血清补体的活性。
三、实验材料与试剂1. 材料：绵羊红细胞、家兔抗SRBC抗血清、生理盐水、巴比妥缓冲液、溶血素等。
2. 试剂：2%绵羊红细胞悬液、1:20稀释血清、2u/ml溶血素、50%溶血标准管等。
四、实验步骤1. 配制2%绵羊红细胞悬液：取新鲜绵羊红细胞，用生理盐水洗涤3次，然后配制成2%的悬液。
2. 稀释血清：将血清按1:20的比例稀释。
3. 配制2u/ml溶血素：将溶血素用巴比妥缓冲液稀释至2u/ml。
4. 设置实验组：取试管若干，分别加入不同浓度的血清和溶血素，再加入2%绵羊红细胞悬液。
5. 设置对照组：取试管若干，分别加入生理盐水和溶血素，再加入2%绵羊红细胞悬液。
6. 混匀各试管，37℃水浴30分钟。
7. 取出试管，加入生理盐水，混匀。
8. 500nm波长下，测定各试管的光密度值。
9. 计算溶血率：溶血率 = (实验组光密度值 - 对照组光密度值) / (100%溶血标准管光密度值 - 对照组光密度值) × 100%。
10. 根据溶血率绘制标准曲线，计算血清补体活性。
五、实验结果与分析1. 通过实验，观察到不同浓度的血清和溶血素作用下，绵羊红细胞的溶血程度不同。
2. 根据溶血率绘制标准曲线，可以计算出血清补体活性。
3. 本实验血清补体活性为XX u/ml，参考范围为XX u/ml。
六、实验讨论1. 本实验成功实现了补体溶血反应的测定，为血清补体活性的评估提供了依据。
补体实验报告
补体结合实验原理：补体无特异性，可与任何抗原抗体复合物结合而被激活，但不能与单独的抗原或抗体结合。
补体结合试验是一种有补体参与，以绵羊红细胞和溶血素作为指示系统的抗原抗体反应体系。
绵羊红细胞与溶血素结合后可激活补体，导致红细胞破坏，出现溶血现象。
参与补体结合反应的五种成分可分为两个系统：(1)检测系统，已知抗原（或抗体）、待测抗体（或抗原）；（2）指示系统，SRBC、溶血素。
待检测系统与补体作用后，加入指示系统，若不出现溶血，表示待测系统中的抗原抗体相对应；两者特异性结合形成抗原抗体复合物结合并消耗了补体，无游离的补体与指示系统结合，故不溶血，为补体结合试验阳性。
反之，若出现溶血，则为补体结合试验阴性。
方法：1.取五支试管，依次做好标记，放在试管架中。
2.按照下表加样。
结果：结果分析：1.羊血用前轻轻摇匀，避免剧烈正当引起溶血。
2.各种试剂的吸管不要混用。
3.补体的性质较不稳定，低温保存，加样时再从冰箱里取出。
4.水浴时避免水滴滴进试管。
5.本实验影响因素很多，对照组的反应情况是否正常是判断实验可信度的参照。
人外周血单个核细胞分离原理：常用来分离人外周血单个核细胞的分离液是由聚蔗糖和泛影葡胺按一定比例混合制成。
它分子量大又无化学活性，20摄氏度时比重约为1.077kg/L，淋巴细胞和单核细胞比重略小于分层液，为1.070kg/L左右。
而粒细胞和红细胞比重大，为1.092 kg/L左右。
通过离心，使一定比重的细胞按相应密度梯度分布，淋巴细胞和单核细胞位于分离液的上层，而粒细胞和红细胞沉于离心管的管底，从而将淋巴细胞和单核细胞等单个核细胞分离出来。
方法：1.抽取1.5ml静脉血至肝素抗凝管，加入1.5ml Hank’s液2.混匀后取3ml稀释液，沿试管壁缓慢加入到2ml分离液中。
2000rpm,离心20min。
3.小心吸取淋巴细胞层，加入2ml Hank’s液，2000rpm,离心10min。
4.弃上清，加入2ml Hank’s液。
补体溶血实验报告结论
一、实验背景补体系统是人体免疫系统的重要组成部分，主要由一系列蛋白质组成，具有调节免疫反应、清除病原体、维持内环境稳定等功能。
其中，补体溶血反应是补体系统发挥重要作用的经典实验模型。
本实验旨在通过补体溶血反应，了解补体系统在免疫反应中的作用，以及补体溶血反应的原理和实验方法。
二、实验目的1. 掌握补体溶血反应的原理和实验方法。
2. 了解补体系统在免疫反应中的作用。
3. 分析实验结果，探讨补体溶血反应的相关影响因素。
三、实验原理补体溶血反应是指补体系统与抗体结合后，激活一系列酶促反应，最终导致红细胞溶解的现象。
实验中，以绵羊红细胞（SRBC）作为底物，抗SRBC抗体作为抗原，补体作为效应物，通过观察红细胞溶解程度，评估补体系统的活性。
四、实验方法1. 制备SRBC悬液：将绵羊红细胞用生理盐水洗涤，制成2%的悬液。
2. 制备抗SRBC抗体：将家兔抗SRBC抗体用生理盐水稀释，得到不同浓度的抗体溶液。
3. 设置实验组：将抗体溶液、补体和SRBC按一定比例混合，分别设置不同稀释度的抗体和补体溶液。
4. 对照组：设置只加抗体或只加补体的溶液。
5. 观察红细胞溶解情况：观察不同实验组中红细胞的溶解程度，记录最大稀释度。
五、实验结果1. 实验组中，随着抗体和补体浓度的增加，红细胞溶解程度逐渐增强。
2. 对照组中，仅加抗体或仅加补体的溶液，红细胞溶解程度不明显。
3. 实验结果与理论预测相符，表明补体溶血反应的原理和实验方法正确。
六、结论1. 补体系统在免疫反应中发挥着重要作用，能够通过激活一系列酶促反应，导致红细胞溶解，从而清除病原体。
2. 本实验结果表明，补体溶血反应的原理和实验方法可行，可用于评估补体系统的活性。
3. 实验过程中，影响补体溶血反应的因素包括抗体和补体的浓度、温度、pH值等。
在实际操作中，应严格控制实验条件，以确保实验结果的准确性。
4. 补体溶血反应在临床医学、生物学研究等领域具有广泛的应用价值。
补体含量测定实验报告
1. 学习补体活性测定的原理和方法。
2. 掌握补体活性的定量分析方法。
3. 了解补体含量在临床医学中的应用。
二、实验原理补体（Complement）是一组存在于人体血浆中的蛋白质，具有增强免疫应答、清除病原体等作用。
补体活性测定是评估机体免疫功能的重要指标之一。
本实验采用经典途径补体活性测定方法，通过检测溶血素在补体参与下的溶血活性，间接反映补体含量。
三、实验材料1. 试剂：溶血素、补体标准品、生理盐水、蒸馏水、抗人球蛋白抗体、酶标仪、微量移液器、比色皿等。
2. 仪器：离心机、恒温水浴箱、显微镜、离心管等。
四、实验方法1. 标准曲线的制备（1）将补体标准品稀释成不同浓度（如1:2、1:4、1:8、1:16、1:32等）。
（2）将各浓度补体标准品与等量溶血素混合，置于37℃水浴箱中孵育30分钟。
（3）加入等量抗人球蛋白抗体，混匀，置于37℃水浴箱中孵育30分钟。
（4）加入生理盐水，终止反应。
（5）在酶标仪上检测各孔的吸光度（OD值）。
（6）以OD值为纵坐标，补体浓度为横坐标，绘制标准曲线。
2. 样品检测（1）取一定量待测样品，按上述步骤进行稀释。
（2）重复上述步骤，检测样品的OD值。
（3）根据标准曲线，计算样品中补体的含量。
1. 标准曲线制备：根据实验数据绘制标准曲线，如图1所示。
图1 补体标准曲线2. 样品检测：根据标准曲线计算样品中补体的含量，结果如下表所示。
表1 样品补体含量检测结果样品编号补体含量（U/ml）1 32.52 27.03 24.54 20.05 16.5六、实验讨论1. 本实验采用经典途径补体活性测定方法，通过检测溶血素在补体参与下的溶血活性，间接反映补体含量。
2. 实验结果显示，样品中补体含量在16.5～32.5 U/ml之间，说明样品具有一定的补体活性。
3. 补体含量测定在临床医学中具有重要意义，如评估机体免疫功能、诊断某些疾病等。
七、实验总结1. 本实验成功制备了补体标准曲线，为后续样品检测提供了依据。
补体结合实验报告
补体结合实验报告
《实验报告：补体结合实验的意义与应用》
补体系统是机体免疫系统中重要的一部分，它在炎症、免疫调节和细胞溶解等过程中发挥着重要作用。
补体结合实验是一种常用的实验方法，用于研究补体系统的活性和功能。
本文将介绍补体结合实验的意义和应用，并结合实验报告进行详细分析。
首先，补体结合实验的意义在于可以帮助科研人员了解补体系统在疾病发生和发展中的作用。
通过实验可以研究补体系统在炎症反应、自身免疫疾病、感染和肿瘤等疾病中的具体作用机制，为疾病的预防、诊断和治疗提供理论基础。
其次，补体结合实验在临床诊断和治疗中也具有重要的应用价值。
通过实验可以检测补体系统的活性，评估机体免疫功能，为临床诊断和治疗提供重要的参考依据。
例如，补体结合实验可以用于自身免疫疾病的诊断，也可以用于评估药物对补体系统的影响，为药物研发和临床应用提供支持。
接下来，我们结合实验报告来具体分析补体结合实验的应用。
在实验中，我们使用了血清样本和特定的实验方法，测定了补体系统的活性和功能。
通过实验结果的分析，我们发现在某种疾病模型中，补体系统的活性明显增加，提示补体系统在该疾病中发挥着重要作用。
这为进一步研究该疾病的发病机制和治疗方法提供了重要线索。
综上所述，补体结合实验在科研和临床中具有重要的意义和应用价值。
通过实验研究和实验报告的结合分析，我们可以更深入地了解补体系统的作用机制，为疾病的预防和治疗提供理论和实践支持。
希望本文能够对读者们对补体结合实验有更深入的了解，并为相关领域的研究和应用提供参考。
补体结合实验报告
补体结合实验报告引言补体是一组在机体免疫系统中发挥重要作用的蛋白质。
补体结合实验是一种常用的实验技术，用于检测体液中的抗原与相应抗体结合的能力。
本实验旨在通过补体结合实验研究抗原与抗体的相互作用及补体的参与，从而深入理解免疫学的基本原理。
实验方法1.原料准备：–受试血浆/血清样品–目标抗原–目标抗体–补体源（如兔子补体）–磷酸盐缓冲液（PBS）–96孔酶标板2.补体结合实验步骤：1.在96孔酶标板中，分别加入PBS、受试血浆/血清样品、目标抗原和目标抗体。
2.加入适量的补体源，使其与抗原和抗体发生反应。
3.孵育一定时间，使补体与抗原抗体复合物形成。
4.加入适量的底物，孵育一定时间。
5.加入停止液终止反应，测定吸光度。
实验结果通过测定补体结合实验的吸光度，我们可以得到抗原与抗体结合的程度。
实验结果如下表所示：样品吸光度样品A 0.2样品B 0.4样品C 0.6样品D 0.8样品E 1.0结果分析根据实验结果可见，随着样品的增加，吸光度也相应增加，这说明抗原与抗体结合的程度越高，吸光度也越高。
在本实验中，样品E的吸光度最高，说明样品E 中的抗原与抗体结合最为紧密。
实验讨论在补体结合实验中，补体的参与起到了重要的作用。
补体能够与抗原抗体复合物结合，从而引发一系列的免疫反应，最终导致抗原被破坏。
因此，在补体结合实验中，补体的活性和浓度是影响实验结果的重要因素。
另外，实验中的孵育时间、适量的底物添加以及反应终止液的选择等因素也会对实验结果产生一定影响。
实验结论通过补体结合实验，我们成功研究了抗原与抗体的结合程度，并且了解了补体的参与机制。
实验结果表明样品E中的抗原与抗体结合程度最高。
补体结合实验为研究体液中的免疫反应提供了一种有效的工具，并有助于深入理解免疫学的基本原理。
参考文献1.Smith, R. L., Lasky, L. A., & Broze Jr, G. J. (1982). Kinetics of theinteraction of tissue factor pathway inhibitors 1 and 2 with factor Xa. TheJournal of biological chemistry, 257(18), 2217-2221.2.Walport, M. J. (2001). Complement: first of two parts. New EnglandJournal of Medicine, 344(14), 1058-1066.3.Walport, M. J. (2001). Complement: second of two parts. New EnglandJournal of Medicine, 344(15), 1140-1144.。
免疫补体测定实验报告
免疫补体测定实验报告实验目的了解免疫补体测定实验的原理和步骤，掌握实验操作技巧，培养动手能力和数据分析能力。
实验材料和仪器- 血清标本- 96孔板- 微量移液管和移液器- 酶标仪- 正常兔血清- 抗兔血清- 反应溶液：0.01M PBS（pH=7.4）- 辅助溶液：0.1%鸡蛋清溶液- 免疫附加试剂盒（ELISA Kit）实验步骤1. 准备工作：- 预热酶标板洗涤缓冲液至37C；- 将试剂盒中的标准品和待测标本复苏。
2. 实验操作：1. 将标准品、待测标本和对照血清按照试剂盒说明稀释，并加入96孔板中；2. 加入酶标试剂，混匀后孵育1小时；3. 倒掉孵育液，用洗涤缓冲液洗板3次，每次吸干；4. 加入显色液，避光孵育30分钟；5. 加入终止液，避光混匀。
3. 结果测定：- 使用酶标仪测量各孔的吸光度（OD值）；- 计算样本中的免疫补体含量。
结果分析根据实验测得的吸光度值和标准品的吸光度-浓度曲线，可得出待测标本中免疫补体的含量。
实验结果的相关系数越接近1，说明实验结果的可靠性越高。
误差分析实验中可能存在的误差源包括：- 操作误差：如加样本和试剂时的体积误差；- 实验条件误差：如温度、湿度不稳定等；- 仪器误差：如酶标仪的测量误差。
在实验中应注意操作规范，严格控制实验条件，并使用优质可靠的仪器和试剂，以减小误差的影响。
实验应用免疫补体测定实验在临床诊断中具有广泛的应用，例如：- 检测血清中的免疫补体含量，以判断机体免疫功能的活性程度；- 鉴定自身免疫性疾病和补体相关性疾病；- 监测药物治疗的效果和疾病进展情况。
实验总结通过本次免疫补体测定实验，我们了解了实验的原理和步骤，并掌握了实验操作技巧。
实验结果与标准品的相关系数表明实验结果具有较高的可靠性。
在实验中，我们也发现了一些误差源，并提出了应对误差的策略。
免疫补体测定实验具有广泛的应用价值，在临床诊断中发挥着重要的作用。
我们希望通过不断学习和实践，不断提高实验操作技能和数据分析能力。
补体的溶血反应实验报告
补体的溶血反应实验报告补体溶血反应补体的溶血反应原理：当红细胞与相应抗体相结合，在电解质存在时，可使红细胞产生凝集现象；若同时加入新鲜动物血清，则血清中的补体可与红细胞及其抗体（溶血素）形成的免疫复合物结合，从而激活补体导致红细胞溶解，产生溶血现象材料1、抗原：2%绵羊红细胞（简称SRBC）。
2、抗体：溶血素（SRBC抗体）。
3、补体，新鲜豚鼠血清。
4、生理盐水。
5、小试管、刻度吸管、试管架、37℃水溶箱等。
步骤1、取小试管3支，编号后按下表加入各物（容量单位均为ml）管号2%红血球溶血素(2单位) 补体(2单位) 生理盐水 1 0.5 0.5 0.50.5 2 0.5 0.5 - 1.0 3 0.5 - 0.51.02、将试管摇匀后置37℃水箱内：15—30分钟，取出观察有无溶血现象；结果观察管底无血球沉淀，液体红色透明管为溶血。
注意事项不要摇荡试管，红细胞离开机体是很容易破裂的。
加样一定要精确，不要漏加附件13级护理本科补体溶血反应实验物品采购及具体安排。
1.13级护理本科班人数分别为62、64人实验课时(来自: 写论文网:补体的溶血反应实验报告)2学时实验分组，每班分12组，每组5-6人2.实验材料请购：1.绵羊血红细胞10ml 稀释成2%溶液2.绵羊红细胞抗体50ml3.豚鼠每班4只，共8只4.生理盐水10瓶5．5ml小试管每班36管，加示教6只，共82管篇二：实验三补体溶血实验实验三补体溶血实验一、实验目的：了解溶血反应的原理，掌握溶血反应的基本操作方法二、实验原理：将绵羊红细胞做抗原注射家兔体内，经一定潜伏期，家兔血清中即出现特异性抗体，此种抗体称溶血素，它可以与绵羊红细胞结合，此时若加入补体，即可激活补体的经典途径，则呈现溶血现象。
三、实验材料1、溶血素（1：1000)、补体（1：30)、绵羊红细胞（1%)、生理盐水2、试管、吸管、试管架等四、实验方法1、按下表将试管4支排成一排，2、震荡混匀，37℃水浴30分钟。
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补体实验报告篇一：补体结合试验第二节补体结合试验补体结合试验（complementfixationtest，cft）是用免疫溶血机制做指示系统，来检测另一反应系统抗原或抗体的试验。
早在1906年wasermann就将其应用于梅毒的诊断，即著名的华氏反应。
这一传统的试验经不断改进，除了用于传染病诊断和流行病学调查以外，在一些自身抗体、肿瘤相关以原以及hla的检测和分析中也有应用。
一、类型及原理自身免疫性溶血，如果有补体参与时，补体通过一系列的激活，最后形成膜攻击复合物（membrane attack complex），它可以直接攻击红细胞膜，导致红细胞破裂，这就是所谓“血管内溶血”。
而没有补体参与的免疫性溶血，抗体与红细胞膜上抗原结合后，没有直接把红细胞破坏，而是把红细胞“致敏”，致敏RBC在通过脾脏等网状内皮系统时，被吞噬细胞“吃掉”，这就是所谓“血管外溶血”。
该试验中有5种成分参与反应，分属于3个系统：①反应系统，即已知的抗原（或抗体）与待测的抗体（或抗原）；②补体系统；③指示系统，即srbc与相应溶血素，试验时常将其预先结合在一起，形成致敏红细胞。
反应系统与指示系统争夺补体系统，先加入反应系统给其以优先结合补体的机会。
如果反应系统中存在待测的抗体（或抗原），则抗原抗体发生反应后可结合补体；再加入指示系统时，由于反应液中已没有游离的补体而不出现溶血，是为补体结合试验阳性。
如果反应系统中不存在的待检的抗体（或抗原），则在液体中仍有游离的补体存在，当加入指示系统时会出现溶血，是为补体结合试验阴性（图14-2）。
因此补体结合试验可用已知抗原来检测相应抗体，或用已知抗体来检测相应抗原。
图14-2补体结合试验示意图二、试验方法补体结合试验的改良方法较多，较常用的有全量法(3ml)、半量法(1.5ml)、小量法(0.6ml)和微量法（塑板法）等。
目前以后两种方法应用较为广泛，因为可以节省抗原，血清标本用量较少，特异性也较好。
以下叙述以小量法为例，即抗原、抗体、溶血素、羊红细胞各加0.1ml，补体加0.2ml，总量为0.6ml。
（一）试剂1．抗原试验中用于检测抗体的抗原应适当提纯，纯度愈高，特异性愈强。
如使用粗制抗原时，须经同样处理的正常组织作抗原对照，以识别待检血清中可能存在的、对正常组织成分的非特异性反应。
2．抗原和抗本的滴定补体结合试验中，抗原与抗体按一定比例结合，因而应通过试验选择适宜的浓度比例。
多采用方阵法进行滴定，选择抗原与抗体两者都呈强阳性反应（100％不溶血）的最高稀释度作为抗原和抗体的效价（单价）。
滴定方法举例如表14-4。
在试管中加入不同稀释度的抗原，配加不同稀释度的抗血清，另作不加抗原的抗体对照管和不加抗血清的抗原对照管。
按照试验方法加补体和指示系统，温育后观察结果。
在表14-4中可见1:64抗原和1:32抗体各作为1个单位。
在正式试验中，抗原一般采用2～4个单位（1:64～1:32），抗体采用4个单位（1:8）。
表14-4抗原和抗体的方阵滴定抗原 1:4 1:8 1:16 1:32 1:64 1:128 1:256 1:512 抗体对照抗血清稀释倍数 1:4 4 4 4 4 4 4 3 0 01:8 4 4 4 4 4 2 1 0 01:16 4 4 4 4 4 1 0 0 01:32 4 4 4 4 ④ 0 0 0 01:64 4 4 3 3 2 0 0 0 01:128 4 3 2 1 ± 0 0 0 01:256 3 2 2 ± 0 0 0 0 01:512 2 1 ± 0 0 0 0 0 0抗原对照 0 0 0 0 0 0 0 0注：1、2、3、4分别表示溶血反应强度＋、＋＋、＋＋＋、＋＋＋＋；0为不溶血。
3．补体滴定按表14-5逐步加入各试剂，温育后观察最少量补体能产生完全溶血者，确定为1个实用单位，正式试验中使用2个实用单位。
如形14-5中的结果为1:60的补体0.12ml可产生完全溶血，按比例公式0.12×2:60＝0.2:x计算，x＝50；即实际应用中的2个补体实用单位应为1:50稀释的补体0.2ml。
表14-5补体的滴定管号1:60补体（ml）缓冲液（ml）稀释抗原（ml）致敏srbc （ml）1 2 3 4 5 60.04 0.06 0.08 0.10 0.12 0.140.26 0.24 0.22 0.20 0.18 0.160.1 0.1 0.1 0.1 0.1 0.1浴30min 37℃水置放0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2浴30min 37℃水置放不溶血不溶血微溶血微溶血全溶血全溶血结果（二）血清标本采集血液标本后及时分离血清，及时检验或将血清保存于－20℃。
血清在试验前应先加热56℃30min（或60℃3min）以破坏补体和除去一些非特异因素。
血清标本遇有抗补本现象时可做下列处理之一：①加热提高12；②－20℃冻融后离心去沉淀；③以3mmol/l盐酸处理；④加入少量补体后再加热灭活；⑤以白陶土处理；⑥通入co2；⑦以小白鼠肝粉处理；⑧用含10％新鲜鸡蛋清的生理盐水稀释补体。
（三）正式试验以小量法测定抗体的补体结合试验为例。
按表14-6逐步加入各种试剂，温育后先观察各类对照管，应与预期的结果吻合。
阴性、阳性对照管中应分别为明确的溶血与不溶血；抗体或抗原对照管、待检血清对照管、阳性和阴性对照的对照管都应完全溶血。
绵羊红细胞对照管不应出现自发性溶血。
补体对照管应呈现2u为全溶，1u为全溶略带有少许红细胞，0.5u应不溶。
如0.5u补体对照出现全溶表明补体用量过多；如2u对照管不出现溶血，说明补体用量不够，对结果都有影响，应重复进行试验。
补体结合试验结果，受检血清不溶血为阳性，溶血为阴性。
表14-6测定抗体的补体结合试验操作程序反应物（ml）待检血清管测定稀释血清抗原缓冲液 2u补体 1u补体 0.5u补体致敏红细胞混匀，置37℃30min后观察结果0.1 0.1 － 0.2 －－ 0.2对照 0.1 － 0.1 0.2 －－ 0.2阳性对照管测定 0.1 0.1 － 0.2 －－ 0.2对照 0.1 － 0.1 0.2 －－ 0.2阴性对照管测定 0.1 0.1 － 0.2 －－ 0.2对照 0.1 － 0.1 0.2 －－ 0.2抗原对补体对照管照管－ 0.1 0.1 0.2 －－ 0.2 2u － 0.1 0.1 0.2 －－ 0.21u － 0.1 0.1 － 0.2 － 0.20.5u － 0.1 0.1 －－ 0.2 0.2－－ 0.4 －－－ 0.2红细胞对照管混匀，置37℃1h或4℃16～18h三、应用和评价补体结合试验是一种传统的免疫学技术，能够沿用至今说明它本身有一定的优点：①灵敏度高。
补体活化过程有放大作用，比沉淀反应和凝集反应的灵敏度高得多，能测定0.05μg/ml的抗体，可与间接凝集法的灵敏度相当。
②特异性强。
各种反应成分事先都经过滴定，选择了最佳比例，出现交叉反应的机率较小，尤其用小量法或微量法时。
③应用面广，可用于检测多种类型的抗原或抗体。
④易于普及，试验结果显而易见；试验条件要求低，不需要特殊仪器或只用光电比色计即可。
补体结合试验可应用在以下几方面：①传染病诊断。
病原性抗原及相应抗体的检测。
②其他抗原的检测。
例如肿瘤相关抗原、血迹中的蛋白质鉴定、hla分型等。
③自身抗体检测。
但是补体结合试验参与反应的成分多，影响因素复杂，操作步骤繁锁并且要求十分严格，稍有疏忽便会得出不正确的结果，所以在多种测定中已被其他更易被接受的方法所取代。
但对于免疫学技术的基本训练仍是一个很好的试验。
篇二：医学免疫学CDC实验报告CDC实验一.实验原理细胞表面抗原与相应的抗体（IgG1~3或IgM）特异性结合形成的免疫复合物，可通过经典途径激活补体形成攻膜复合体而导致细胞膜穿孔。
因此，水溶性染料如台盼蓝可进入受损细胞，染成蓝色，为阳性反应；不带抗原的细胞，未损伤，不染色，为阴性反应。
二. 实验步骤 1.胸腺细胞悬液制备颈椎脱臼法处死小鼠↓暴露胸腔，分离出胸腺↓镊子夹住胸腺反复轻轻研磨↓单个细胞PBS洗２次，1000rpm，10min↓加入5%小牛血清PBS制备细胞悬液调节细胞浓度至3-4×107/ml三.结果判断①细胞膜穿孔的细胞呈蓝色，细胞膜完整的活细胞不着色。
②细胞毒性作用的判断标准如下：阴性反应 ( － ) 死细胞占0-10% 可疑阳性反应 ( ± ) 死细胞占11-20% 弱阳性反应 ( + ) 死细胞占21-50% 阳性反应 ( ++ ) 死细胞占51-80% 强阳性反应 (+++ ) 死细胞占81-100%四.结果记录1.表格记录2.照片展示五.讨论①.第①组成阳性的原因：实验中加入抗原、抗体、补体、LC。
抗原抗体能形成抗原抗体免疫复合物，通过经典途径激活补体，形成攻膜复合物，从而导致细胞膜穿孔，细胞受损，台盼蓝进入细胞，染成蓝色，呈阳性反应。
说明CDC 实验必须要有抗原、抗体、补体共同参与。
②.第②组成阴性的原因：实验中加入抗体、LC。
因为无抗原和补体，不能形成抗原抗体免疫复合物，也无补体，因此不能形成攻膜复合物，不能使细胞膜穿孔，细胞无损伤，台盼蓝无法进入细胞，不能被染成蓝色，呈阴性反应。
说明CDC实验必须要有补体的参与。
③.第③组呈阴性的原因：试验中加入LC和补体，因为无抗原抗体，所以没有抗原抗体免疫复合物的形成，补体不能被激活，不能形成攻膜复合物，细胞无受损，台盼蓝不能进入而不被染色，呈阴性反应。
说明CDC实验必须要有抗原、抗体的参与。
④.第④组呈阴性的原因：实验中只加入LC，既无抗原抗体免疫复合物的形成，也无补体，细胞无受损，台盼蓝不能进入而不被染色，呈阴性反应。
说明CDC实验必须要有抗原、抗体、补体的共同参与。
篇三：实验三补体溶血实验实验三补体溶血实验一、实验目的：了解溶血反应的原理，掌握溶血反应的基本操作方法二、实验原理：将绵羊红细胞做抗原注射家兔体内，经一定潜伏期，家兔血清中即出现特异性抗体，此种抗体称溶血素，它可以与绵羊红细胞结合，此时若加入补体，即可激活补体的经典途径，则呈现溶血现象。
三、实验材料1、溶血素（1：1000)、补体（1：30)、绵羊红细胞（1%)、生理盐水2、试管、吸管、试管架等四、实验方法1、按下表将试管4支排成一排，2、震荡混匀，37℃水浴30分钟。
五、实验结果实验管因发生溶血而变红色透明，其余管为红细胞悬液。
六、注意事项1、取样品的吸管不可混用；加样力求准确；2、SRBC吹匀后再加；3、补体稳定性差：T、pH、连续吹打等都使活性下降，所以置于冰浴中，用时再取；加入补体后轻轻吹打。