翻译:MtPAR MYB转录因子作为一个开关参与苜蓿原花色素的合成
猴樟CbMYB308转录因子基因克隆及生物信息学分析

猴樟CbMYB308转录因子基因克隆及生物信息学分析胡甜叶苏梅郝瑷滢王艺润韩浩章*张颖王晓李张丽华(宿迁学院,江苏宿迁223800)摘要为研究猴樟CbMYB308蛋白的序列结构和功能,该文克隆猴樟CbMYB308基因CDS序列,进行生物信息学分析。
结果表明,克隆得到的序列具有1个942bp完整的ORF框,编码313个氨基酸,与沉水樟中收录的RWR91885.1基因序列一致性达97.29%,系统进化树的结果表明,猴樟CbMYB308蛋白具有较高的保守性;猴樟CbMYB308蛋白生物信息学分析结果表明,CbMYB308蛋白具有PLN03091家族结构域,为R2R3-MYB型转录因子,CbMYB308蛋白化学分子式为C1496H2356N432O489S11,相对分子量34.57kDa,理论等电点6.12,结构不稳定,无序化特征明显,为脂溶性和亲水性蛋白,磷酸化氨基酸位点有53个,亚细胞定位预测为细胞核。
关键词猴樟;转录因子;基因克隆;生物信息学分析中图分类号S792.23文献标识码A文章编号1007-7731(2023)03-0014-04猴樟(Cinnamomun bodinieri Levl.)为樟科樟属常绿乔木,主要分布于我国南方地区,是我国重要的精油加工树种、绿化树种和林用树种。
我国关于猴樟的研究主要集中于精油资源、林用特性、组培技术和引种栽培等方面,近年来的研究表明,猴樟的生长速度和抗寒性优于香樟[1],可以替代香樟在我国北方地区推广应用。
很早就进行了香樟新品种选育工作,相继选育出涌金、霞光、御黄等彩叶品种[2-4],然而,关于猴樟彩叶新品种选育较少。
研究表明,花青素种类、组成及其代谢调控是植物叶片呈色的关键因素,而花青素代谢主要受转录因子MYB、bHLH、WD40及其复合物的调控[5],其中MYB 类转录因子调控功能研究最受关注,本研究基于转录组数据筛选出调控植物花青素合成的转录因子,并分析其特性,以期为猴樟新品种选育提供基因资源。
南方型紫花苜蓿根系盐胁迫应答转录因子鉴定与分析

浙江农林大学学报,2016,33(2):201-208Journal of Zhejiang A&F Universitydoi:10.11833/j.issn.2095-0756.2016.02.003南方型紫花苜蓿根系盐胁迫应答转录因子鉴定与分析马进,郑钢,裴翠明,张振亚(浙江农林大学风景园林与建筑学院,浙江临安311300)摘要:转录因子可以调节众多下游基因的表达,在植物抗逆境中起重要的调节作用。
为了解析转录因子在南方型紫花苜蓿适应盐胁迫环境的分子机制,以南方型紫花苜蓿Medicago sativa‘Millennium’为材料,以正常培养(WT_ck1)和氯化钠(盐)胁迫(WT_N1)条件下的2个样品根系进行转录组分析,鉴定紫花苜蓿根系盐胁迫应答转录因子基因。
同时,随机挑选4个转录因子差异表达基因进行实时荧光定量qRT-PCR(3次重复),验证转录组测序技术(RNA-Seq)结果的可靠性。
结果表明:紫花苜蓿根系在250mmol·L-1氯化钠胁迫下72h,共检测到31907个基因表达量发生了改变,表达量差异达到2倍以上的基因共2758个。
其中,隶属于38个转录因子家族199个转录因子在盐胁迫下差异表达,上调表达104个,下调表达95个。
在各转录因子家族中,盐胁迫应答基因数量最多的是MYB基因家族,其后分别是AP2-EREBP,bHLH,WRKY,NAC和GRAS基因家族,这暗示了紫花苜蓿根系对盐胁迫响应可能是多种转录因子家族共同参与的应答过程。
qRT-PCR分析表明:4个随机选择的基因在胁迫前后的表达特点与表达谱测序结果一致。
此外,MsERF-2b,MsbHLH,MsbZIP,MsGRAS,MsNAC,MsMGT-3a和MsWRKY等转录因子被选为与盐胁迫应答相关的候选转录因子。
该研究结果为阐明植物对盐胁迫的应答机制提供了新的线索。
图3表3参36关键词:植物育种学;南方型紫花苜蓿;转录因子;根转录;盐胁迫中图分类号:S722.3文献标志码:A文章编号:2095-0756(2016)02-0201-08Identification and characterization of salt-responsive transcriptionfactors in roots of southern type alfalfaMA Jin,ZHENG Gang,PEI Cuiming,ZHANG Zhenya(School of Landscape Architecture,Zhejiang A&F University,Lin’an311300,Zhejiang,China)Abstract:Transcription factors(TFs),which can regulate downstream gene expression,play an important role in plant stress responses.In order to investigate the molecular mechanism of salt tolerance,the TFs of southern type alfalfa,in this study with250mmol·L-1NaCl stress,Illumina RNA-sequencing was performed to evaluate the expression spectrum of transcription factors in roots of the southern alfalfa cultivar“Millennium”.Then to verify the expression of four randomly selected genes,Quantitative Reverse-Transcriptase Polymerase Chain Reaction(qRT-PCR)(three repeated)was used.Results showed31907differentially expressed genes,2758 of which showed a difference of over two fold.Among these genes,199transcription factors belonging to38TF families were up-regulated and95were down-regulated.Genes from the MYB family were observed most,fol-lowed by AP2-EREBP,bHLH,WRKY,NAC,and GRAS.The qRT-PCR assay of four randomly selected genes confirmed the results of RNA-Seq analysis.In addition,candidate genes such as MsERF-2b,MsbHLH,Ms-bZIP,MsC2H2,MsGRAS,MsNAC,MsMGT-3a,and MsWRKY that may be involved in salt stress responses were identified.This study indicated that multiple TF families were involved in salt stress responses in the root of southern alfalfa types,and it provided new information for further study of the mechanism of a plant’s re-sponse to salt stress.[Ch,3fig.3tab.36ref.]收稿日期:2015-04-25;修回日期:2015-07-19基金项目:国家自然科学基金资助项目(31272494);浙江省自然科学基金资助项目(LY16C170003)作者简介:马进,副教授,博士,从事植物逆境生理研究。
myb和myc转录因子

myb和myc转录因子
MYB和MYC转录因子是一类在植物中广泛存在的保守的转录因子。
MYB转录因子由三个不完全的重复组成,形成螺旋-转角-螺旋结构,每个重复中存在3个保守的色氨酸残基,有助于形成二级结构并提供一个有功能的MYB结构域。
而MYC转录因子含有两个相连的基本亚区,其中碱性氨基酸与DNA结合有关,螺旋-环-螺旋区参与二聚体的形成。
在植物中,MYB类转录因子可以分为三类。
第一类只含有一个MYB结构的MYB蛋白亚类,用于维持染色体结构和调节。
第二类含有两个MYB结构的R2R3亚类,参与次生代谢调节和细胞分化。
第三类含有三个MYB结构的RIR2R3亚类,参与细胞周期控制和分化。
不同的MYB蛋白与其靶基因的启动子中的不同顺式元件结合。
此外,MYC/MYB转录因子是一类依赖ABA调控系统中的转录因子,能够上调非生物胁迫下应答基因的表达。
例如,在拟南芥逆境胁迫下ABA诱导的基因中过表达35S:AtMYC2和35S:AtMYB2和35S:AtMYC2+AtMYB2,转基因植株表现出ABA过敏表型,其干旱胁迫耐受性也明显提高。
综上所述,MYB和MYC转录因子在植物中具有多种功能和作用机制,涉及染色质结构调节、次生代谢、细胞周期控制、ABA调控和非生物胁迫应答等多个方面。
黄花苜蓿MfMYB3R-3基因克隆及结构与功能的生物信息学分析

黄花苜蓿MfMYB3R-3基因克隆及结构与功能的生物信息学
分析
柴华;杨曌;申忠宝;李莎莎;王晓龙;徐艳霞;吴玥
【期刊名称】《种子》
【年(卷),期】2024(43)5
【摘要】MYB转录因子是植物中分布最广的转录因子家族之一,在植物响应生物及非生物胁迫,调控逆境胁迫相关基因表达方面起着重要的作用。
本研究基于黄花苜
蓿转录组数据,鉴定和克隆了黄花苜蓿MfMYB3R-3基因,并进行了生物信息学分析。
结果表明,MfMYB3R-3基因CDS区长1701 bp,编码566个氨基酸,具有SANT保守结构域,为MYB3R型转录因子;MfMYB3R-3蛋白化学分子式为
C_(2690)H_(4314)N_(796)O_(873)S_(20),理论等电点为8.75,该蛋白是亲水性不
稳定偏碱性非分泌蛋白,不具有信号肽,无跨膜结构,亚细胞定位预测在细胞核。
系统进化分析发现,黄花苜蓿MfMYB3R-3蛋白与蒺藜苜蓿的MYB3R-3的亲缘关系最近。
【总页数】7页(P33-39)
【作者】柴华;杨曌;申忠宝;李莎莎;王晓龙;徐艳霞;吴玥
【作者单位】黑龙江省农业科学院博士后科研工作站;黑龙江省农业科学院畜牧兽
医分院;黑龙江省农业科学院草业研究所
【正文语种】中文
【中图分类】Q781
【相关文献】
1.黄花苜蓿LEA3基因片段克隆与生物信息学分析
2.黄花苜蓿黄酮醇合成酶基因(MfFLS1)的克隆及生物信息学分析
3.黄花苜蓿Mfβ-Hex1基因的克隆及生物信息学分析
4.杨树UGT198基因的生物信息学分析、基因克隆及功能初探
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
蒺藜苜蓿MtbHLH 148转录因子的克隆与转化及其功能分析

西北植物学报,2019,39(6):0963-0973A c t aB o t .B o r e a l .GO c c i d e n t .S i n.㊀㊀d o i :10.7606/j .i s s n .1000G4025.2019.06.0963㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀h t t p ://x b z w x b .a l l jo u r n a l .n e t 收稿日期:2019G03G13;修改稿收到日期:2019G04G25基金项目:中国农业科学院科技创新工程(A S T I P GI A S 14);国家牧草产业技术体系(C A R S G35G04)作者简介:王菊萍(1992-),女,在读硕士研究生,主要从事牧草遗传育种研究.E Gm a i l :1484715585@q q.c o m ∗通信作者:康俊梅,副研究员,主要从事牧草遗传育种的研究.E Gm a i l :K a n g ju n m e i @c a a s .c n 蒺藜苜蓿M t b H L H 148转录因子的克隆与转化及其功能分析王菊萍,王㊀珍,张铁军,龙瑞才,杨青川,康俊梅∗(中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京100193)摘㊀要:b H L H (B a s i ch e l i x Gl o o p Gh e l i x ,b H L H )转录因子家族是植物最大的转录因子家族之一,广泛参与植物生长发育和盐胁迫应答机制.该研究利用同源克隆的方法克隆蒺藜苜蓿(M e d i c a go t r u n c a t u l a )的M t b H L H 148基因,采用q R T GP C R 方法分析M t b H L H 148基因在蒺藜苜蓿中的表达特性,构建超表达载体并通过农杆菌侵染法转化拟南芥(A r a b i d o p s i s t h a l i a n a ),对转基因拟南芥的耐盐性相关功能进行分析研究.结果显示:(1)从蒺藜苜蓿中获得M t b H L H 148基因,该基因c D N A 全长1343b p ,包含开放阅读框为603b p,编码201个氨基酸,蛋白分子量22.7k D ,等电点为11.76;蛋白结构分析显示,该蛋白无跨膜结构域,无信号肽,为亲水性蛋白;含有精氨酸/赖氨酸残基的保守结构域和典型的b H L H 结构域;二级结构以αG螺旋和无规则卷曲为主.(2)亚细胞定位表明,M t b H L H 148蛋白定位在细胞核.(3)进化树分析表明,M t b H L H 148与大豆(G l y c i n em a x )的亲缘性最近;启动子分析发现,该基因启动子区域含有光响应元件㊁MY B 结合位点以及A B A 应答元件A B R E ,可能参与非生物胁迫.(4)q R T GP C R 分析发现,M t b H L H 148基因在蒺藜苜蓿的茎中表达量最高,叶中表达量最低,且M t b H L H 148基因受A B A (100μm o l /L )诱导并在盐胁迫(200m m o l /L N a C l )处理8h 内表达量上调,而在低温(4ħ)处理时表达量明显下调.(5)成功构建超表达载体p C AM B I A 3301GM t b H L H 148并转化拟南芥获得16个抗性株系,经鉴定有12个过表达株系,其中表达量最高的转基因株系为O E 8;对O E 8株系耐盐性功能分析发现,转基因拟南芥植株的发芽率明显高于野生型,盐胁迫下转基因拟南芥的根长是野生型的1.5倍,表明其耐盐性得到了增强.研究表明,M t b H L H 148基因可能在盐胁迫调节机制中具有一定的调控作用.关键词:蒺藜苜蓿;转录因子;盐胁迫中图分类号:Q 785;Q 786文献标志码:AC l o n i n g a n dA n a l y s i s o f aB a s i cH e l i x Gl o o pGh e l i x (b H L H )T r a n s c r i pt i o nF a c t o r M t b H L H 148f r o m M e d i c a g o t r u n c a t u l a L .WA N GJ u p i n g ,WA N GZ h e n ,Z H A N G T i e j u n ,L O N G R u i c a i ,Y A N G Q i n gc h u a n ,K A N GJ u n m e i ∗(I n s t i t u t e o fA n i m a l S c i e n c e s o fC h i n e s eA c a d e m y o fA g r i c u l t u r a l S c i e n c e s ,B e i j i n g 100193,C h i n a )A b s t r a c t :T h e b H L Ht r a n s c r i p t i o n f a c t o r f a m i l y ,o n e o f t h e l a r g e s t t r a n s c r i pt i o n f a c t o r f a m i l i e s i n p l a n t s ,h a s b e e n r e p o r t e d t o i n v o l v e i n p l a n t g r o w t ha n ds a l t s t r e s s r e s p o n s e .I n t h i s s t u d y ,h o m o l o g o u s c l o n i n gw a s u s e d t o a c q u i r e t h eM t b H L H 148g e n e f r o mb a r r e l c l o v e r (M e d i c a g o t r u n c a t u l a ).q R T GP C Rw a s u s e d t o a n a l y z e t h ee x p r e s s i o n p a t t e r no f M t b H L H 148g e n e i nb a r r e l c l o v e r .T h eo v e r e x pr e s s i o nv e c t o rw a s c o n s t r u c t e d a n d t r a n s f o r m e d i n t o A r a b i d o ps i s t h r o u g h a g r o b a c t e r i u mi n f e c t i o n ,s o a s t o a n a l y z e t h e r e l a t e df u n c t i o n so f s a l t t o l e r a n c e o ft r a n sg e n i c A r a b i d o p s i s.Th e r e s u l t s h o w s:(1)t h e f u l ll e n g t h o f M t b H L H148c D N A w a s1343b p,W hi c hc o n t a i n e d603b p o p e nr e a d i n g f r a m ea n de n c o d i n g201a m i n o a c i d s.T h e t h e o r e t i c a l p Io f M t b H L H148p r o t e i n w a s11.76a n dw h o e sm o l e c u l a rw e i g h tw a s22.7k D.P r o t e i ns t r u c t u r e a n a l y s i s s h o w e d t h a t t h e p r o t e i nh a dn o t r a n s m e m b r a n e d o m a i n,n o s i g n a l p e p t i d e a n d i t w a s ah y d r o p h i l i c p r o t e i n.T h i s g e n ec o n t a i n e dh i g h l y c o n s e r v e db H L H d o m a i n s.A se x p e c t e d,t h es e cGo n d a r y s t r u c t u r ew a s p r e d o m i n a t l yαGh e l i xa n dr a n d o mc u r l.(2)S u b c e l l u l a r l o c a l i z a t i o nr e s u l t ss h o w e d t h a t t h e p r o t e i n sw e r e l o c a t e i nt h en u c l e u s.(3)P h y l o g e n e t i ca n a l y s i sr e v e a l e dt h a t M t b H L H148w a s c l o s e l y r e l a t e d t o G l y c i n em a x A n a l y s i so f t h e c i sGr e g u l a t o r y e l e m e n t d e m o n s t r a t e d t h a t t h e p r o m o t e r so f M t b H L H148c o n t a i n e d l i g h t,h o r m o n e a n ds t r e s s r e s p o n s e e l e m e n t s,s u g g e s t i n g t h e i r i n v o l v e m e n t i n t h e b i o l o g i c a l p r o c e s s e s.(4)q R TGP C Ra n a l y s i s o f t h e e x p r e s s i o n p a t t e r no f t h e M t b H L H148i nb a r r e l c l o v e r s h o w e d t h a t t h eh i g h e s t l e v e l i ns t e ma n d t h e l o w e s t l e v e l i n l e a f.F o r t r e a t m e n t,t h e g e n e sw e r e i n d u c e d b y A B A(100μm o l/L),a n dw e r e r e p r e s s e d b y c o l d(4ħ)b u t u pGr e g u l a t e d b y N a C l(200m m o l/L)w i t h i n t h e f i r s t8h.(5)T h e p C AM B I A3301GM t b H L H148o v e r e x p r e s s i o n v e c t o rw a s s u c c e s s f u l l y c o n s t r u c t e d a n d t r a n s f o r m e di n t o A r a b i d o p s i s.W eo b t a i n e d16r e s i s t a n tl i n e sa n di d e n t i f i e d12o v e rGe x p r e s s e dl i n e s.A m o n g t h e s e o v e rGe x p r e s s e d l i n e s,t h e t r a n s g e n i c l i n eO E8h a d t h eh i g h e s t e x p r e s s i o n l e v e l.A n a l y s i so f s a l tGt o l e r a n c e f u n c t i o no fO E8s h o w e d t h a t a s i g n i f i c a n t l y h i g h e r g e r m i n a t i o n r a t ew a s o b s e r v e d i n s p i t e o f t h e i r i n d i s c e r n i b l e p h e n o t y p i c d i f f e r e n c e f r o m w i l d t y p e.S t a t i s t i c a l a n a l y s i s s h o w e d t h a t t h e r o o t l e n g t ho f t h e t r a n s g e n i c s e e d l i n g so v e rGe x p r e s s i n g M t b H L H148w a sa b o u t1.5t i m e so f t h en o nGt r a n s g e n i c p l a n t s, s u g g e s t i n g e n h a n c e d s a l t t o l e r a n c e.B a s e do n t h e s e r e s u l t s,w e i n f e r t h a t M t b H L H148m a yp l a y a r e g u l aGt o r y r o l e i n p l a n t r e s p o n s e t o s a l i n i t y.K e y w o r d s:M e d i c a g o t r u n c a t u l a;t r a n s c r i p t i o n f a c t o r s;s a l t t o l e r a n c e㊀㊀盐胁迫是一种常见的非生物胁迫,是造成苜蓿产量和品质下降的一个关键因素.通过遗传改良提升抗盐性是目前苜蓿耐盐性研究的有效方法.该方法既能避免资源浪费,又能增加苜蓿的产量,提高牧民的收入,有利于农业经济的可持续发展.转录因子(T F s)是一种结构蛋白,能够识别并结合基因启动子区域中的顺式作用元件,进一步调控下游基因的表达[1].在高等植物中,与盐胁迫相关的转录因子家族常见的有b Z I P㊁WR K Y㊁A P2/E R E B P和MY B四大类[2],b H L H转录因子家族在植物中仅次于MY B家族[3],但b H L H(B a s i ch e l i xGl o o pGh e l i x,碱性螺旋G环G螺旋)转录因子家族研究较少[4].M tGb H L H148属于b H L H转录因子,b H L H转录因子含有2个保守区域[5]:一个是碱性区域,分布在多肽链的N端,含有大量碱性氨基酸,与D N A结合相关[6],另一个为H L H区域,分布在C端,由疏水氨基酸残基构成,利于b H L H之间相互作用形成二聚体[7].b H L H/H L H蛋白主要参与调控植物生长发育(如光信号传递[8]㊁植物激素信号[9G10]㊁器官发育[11]等)和逆境胁迫(干旱㊁低温㊁盐等[12]).相关研究主要集中在拟南芥和水稻[13],苜蓿中该基因的相关研究较少,而盐胁迫相关的研究更少[14].研究表明,拟南芥器官发育相关的b H L H转录因子A I F2㊁A I F3和A I F4过表达的植株都表现出了明显的矮化现象,表现为圆形的㊁深绿色的叶片和短叶柄[15].与拟南芥A I F s同源的番茄转录因子C u b H L H1,过表达番茄同样出现了矮化表型;外源乙烯或赤霉素(G A)处理后,改变了胡萝卜素在果皮中的含量,其可能与次级代谢产物相关,参与成熟柑橘类胡萝卜素的代谢[16].此外,与次级代谢产物相关的花青素合成基因D F R在b H L H基因(Dc a31716)表达缺失的情况下,抑制下游花青素合成通路相关基因的表达[17].另外有研究表明, b H L H转录因子S P A T U L A[18]和A L C与雌蕊发育相关[19],AM S则与花粉粒发育相关[20].干旱胁迫时,O s b H L H148通过参与茉莉酸信号途径对水稻的干旱耐受性起调节作用.用茉莉酸甲酯㊁脱落酸以及干旱㊁高盐㊁低温和机械损伤等非生物胁迫处理水稻时,O s b H L H148的转录水平迅速增加.进一步研究表明:O s b H L H148的过表达后会引起O s D R E B㊁O s J A Z等参与逆境应答和茉莉酸信号途径的相关基因上调[21].研究发现CGr e p e a t结合因子(C B F)调控通路在对冷应激反应中起着重要作用,在冷处理(4ħ)中,转N t b H L H123基因烟草的耐寒性显著增强,转基因植株的存活率和生物量显著提高[22].近期研究中发现了一种耐盐的核内钙结合蛋白R S A1并确定了其相互作用的蛋白R I T F1(拟南芥b H L H转录因子A I F2).在拟南芥469西㊀北㊀植㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀39卷中过表达R I T F1能够增强转基因植株的耐盐性.同时R S A1和R I T F1调节了由盐胁迫产生的活性氧解毒作用相关基因的转录,调控了S O S1基因的表达,同时进一步实验证明,该基因对盐胁迫耐受性很重要[23].蒺藜苜蓿是豆科模式植物,对其进行研究有助于深入研究紫花苜蓿及其他豆科牧草的耐盐特性.本研究克隆了蒺藜苜蓿M t b H L H148基因,分析了其在蒺藜苜蓿中的表达特性.构建了p C AMGB I A3301GM t b H L H148超表达载体并转化拟南芥,通过对转基因拟南芥耐盐性相关功能的研究,以期为蒺藜苜蓿抗逆育种提供理论参考.1㊀材料和方法1.1㊀材料与处理蒺藜苜蓿野生型R108种子购于诺贝尔研究所,拟南芥野生型c o lG0本实验室保存.蒺藜苜蓿R108种子除硬实,春化3d后,置于人工气候室中培养(生长条件为16h光照/8h黑暗,25ħ光照/22ħ黑暗).待萌发至根长约3c m后,移至1/2霍格兰营养液中水培(培养条件相同),取根㊁茎㊁叶和花提取R N A,反转录成c D N A,进行组织差异性表达分析,试验设3次重复.以上述同样的方法,选取生长3周且长势一致的蒺藜苜蓿幼苗进行胁迫处理,分别为200m m o l/LN a C l㊁100μm o l/LA B A和低温(4ħ),具体操作步骤如下:200m m o l/L N a C l 胁迫处理后,分别在0㊁1㊁2㊁8㊁12㊁16和24h取地上部分,立刻放入液氮中速冻,于-80ħ保存备用.每个处理至少3个重复.同样的方法,100μm o l/L A B A胁迫处理后,分别在0㊁2㊁4㊁6㊁8㊁12和24h取地上部分,立刻放入液氮中速冻,于-80ħ保存备用.低温(4ħ)的取样方法和时间点与A B A胁迫处理相同,-80ħ保存.1.2㊀实验方法1.2.1㊀蒺藜苜蓿总R N A的提取和c D N A的合成㊀参照T a K a R a总R N A提取试剂盒提取蒺藜苜蓿总R N A.以上述总R N A为模板,用T a K a R a反转录试剂盒反转录成c D N A,-20ħ保存备用.1.2.2㊀M t b H L H148的克隆㊀以蒺藜苜蓿R108的c D N A为模板,利用P r i m e r5.0在线软件分别设计出上游引物148F和下游引物148R(表1),进行P C R扩增.将P C R产物在0.8%的琼脂糖凝胶上进行电泳分离㊁切胶回收,将目的片段与p E A S YGT5载体在25ħ连接20m i n,然后转化大肠杆菌感受态细胞(T r a n sGT1),用枪头吸取100μL菌液顺时针方向涂布于含有卡那霉素(50m g/m L K a n a)的L B固体培养基上,37ħ㊁倒置培养12h后挑单克隆菌斑,然后37ħ㊁200r/m i n转速孵育5h,菌液P C R后选取阳性克隆送至北京天一辉远生物公司测序,选取测序结果正确的菌液保菌(40%的甘油菌,-80ħ保存)备用.1.2.3㊀M t b H L H148的生物信息学分析㊀利用D N AMA N在线软件对测序结果进行分析.利用E X P A S Y软件(h t t p s://w e b.e x p a s y.o r g/c g iGb i n/ p r o t p a r a m/p r o t p a r a m)分析编码氨基酸的数目,蛋白相对分子量㊁等电点等理化性质.通过S O P MA表1㊀本研究所用的引物序列T a b l e1㊀P r i m e r s e q u e n c e su s e d i n t h i s s t u d y引物名称N a m e o f p r i m e r引物序列P r i m e r s e q u e n c e(5ᶄң3ᶄ)148F C T A T T C C A A C T C A A C C A C C T T C A C T148R C A G G C C C A A A A C C A A A A G T G T A T C T3301GF A G A A A A T C T T C G T C A A C A T G G T G G A3301GR T T C C T G A T T A T T G A C C C A C A C T T T G3301G148F G A A C A C G G G G G A C T C T T G A C A T G A C A T C A C C A T C T A C T A C A 3301G148R A A G G A G A A A A A C T A G A A A T T T A T C A A C C G G A A C T G A C G C C G 1302G148F C T T G A C C A T G G T A G A T C T A T G A C A T C A C C A T C T A C T A C A A 1302G148R A G T T C T T C T C C T T T A C T A G T A C C G G A A C T G A C G C C G G C G CA c t i nF G A A A T C A C A G C A C T T G C A C CA c t i nR A A G C C T T T G A T C T T G A G A G CM tGA c t i nF A C A C T G T G C C A A T C T A T G A G G GM tGA c t i nR T T G T C C A T C A G G A A G T T C A T A G T T T 5696期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀王菊萍,等:蒺藜苜蓿M t b H L H148转录因子的克隆与转化及其功能分析(h t t p s://n p s aGp r a b i.i b c p.f r/c g iGb i n/s e c p r e d_s o pGm a.p l)在线分析软件预测蛋白质二级结构.用在线软件S i g n a l P4.0S e r v e r(h t t p://w w w.c b s.d t u.d k/s e r v i c e s/S i g n a l PG4.0/)预测信号肽.利用在线软件P S O R TI IP r e d i c t i o n对M t b H L H148蛋白进行了亚细胞定位预测.利用在线软件T MHMM S e r v e r(h t t p://w w w.c b s.d t u.d k/s e r v i c e s/T MGHMMG2.0/T MHMM2.0.g u i d e.h t m l)对蛋白进行了跨膜结构预测.利用M E G A5.0构建系统进化树.用在线软件P l a n t C A R E(h t t p://b i o i n f o r m a tGi c s.p s b.u g e n t.b e/w e b t o o l s/p l a n t c a r e/h t m l/)对转录起始位置A T G上游长度为2K b启动子的序列进行分析.1.2.4㊀M t b H L H148在蒺藜苜蓿中的表达分析㊀以蒺藜苜蓿R108的根㊁茎㊁叶和花的R N A反转录的c D N A为模板,M tGA c t i nF和M tGA c t i nR为内参基因引物,参照T a K a R a公司的S Y B R T BG r e e n Ⅱ说明书进行操作,每个样品3次重复以减小误差.在7300荧光定量P C R仪上进行定量分析,采用2-ΔΔC t法计算该基因的组织差异性表达水平;以上述同样方法,分析200m m o l/L N a C l㊁100μm o l/L A B A和低温(4ħ)胁迫处理下,M tGb H L H148基因的表达量.1.2.5㊀超表达载体的构建及拟南芥的遗传转化㊀参照无缝克隆试剂盒,利用S n a p g e n e㊁P r i m e r5.0软件设计引物,目的基因两端含有15~25b p与线性化载体同源的碱基,引物分别为3301G148F和3301G148R.利用D N A快速内切酶N c oⅠ和B g lⅡ酶切p C A M B I A3301载体质粒,经连接酶50ħ连接15m i n,连接产物转化大肠杆菌后测序,含有正确序列的菌液保菌并提取质粒,命名为p C AM B I A3301GM t b H L H148.将该质粒转化农杆菌G V3101后,采取花絮侵染法,侵染拟南芥,并收获拟南芥T0代种子,置于含有草铵膦(4m g/LP P T)的1/2M S的培养基中筛选抗性苗.1.2.6㊀转基因拟南芥中M t b H L H148基因的鉴定及表达量分析㊀在含有草铵膦培养基中筛选幼苗,提取D N A,以148F和3301GR为引物进行P C R阳性鉴定,共获得12株T1代转M t b H L H148基因拟南芥.以A c t i nF和A c t i nR为内参基因引物,鉴定不同转基因株M t b H L H148基因的表达量.1.2.7㊀转基因拟南芥耐盐性鉴定㊀将野生型拟南芥WT和T2代转基因拟南芥种子消毒后(H g C l2消毒10m i n,d d H2O冲洗6~10遍),置于1/2M S 固体培养基春化2d,然后移至人工气候培养箱培养,在0m m o l/L N a C l㊁125m m o l/L N a C l㊁150m m o l/LN a C l的1/2M S固体培养基上统计发芽率(每皿种100粒,3次重复).同样的方法在1/2M S 固体培养基萌发种子,待根长至2~3c m时,选取长势一致的拟南芥幼苗移至含有浓度分别为0m m o l/ LN a C l㊁100m m o l/LN a C l和125m m o l/LN a C l的1/2M S固体培养基上,培养2~3周,观察拟南芥的生长状况.1.2.8㊀G F P表达载体p C A M B I A1302GM t b H L H148的构建和亚细胞定位㊀以p C AM B I A3301GM tGb H L H148质粒为模板,以1302G148F和1302G148R 为引物扩增目的基因.利用D N A快速内切酶B gGl I I和S p e1酶切p C AM B I A1302载体质粒.P C R 产物和经过双酶切的p C AM B I A1302线性化载体切胶回收后,连接生成M t b H L H148GG F P融合表达载体,转化大肠杆菌㊁菌液P C R后送测序,选择序列正确的菌液保菌备用.首先制备拟南芥原生质体,然后将p C AMGB I A1302GM t b H L H148融合表达载体和p C AMGB I A1302空载体分别转入拟南芥原生质体中[24],黑暗培养18h后,在激光共聚焦显微镜检测G F P荧光信号[25].2㊀结果与分析2.1㊀M t b H L H148的克隆与生物信息学分析利用同源克隆法获得蒺藜苜蓿M t b H L H148基因的C D S序列,全长1343b p,开放阅读框全长603b p.利用E X P A S Y软件分析表明M t b H L H148基因编码201个氨基酸,蛋白分子量为22.7k D,等电点为11.76,蛋白的不稳定指数为45.29,脂肪系数为77.61,平均亲水指数为-0.690.蛋白二级结构以αG螺旋(52.24%)为主;其次是无规则卷曲(39.30%);延长链(4.98%);β转角(3.48%).利用S i g n a l P4.0软件对蛋白进行信号肽预测,分析表明该蛋白无信号肽(图1,A),利用P r o t s c a l e软件进一步分析蛋白的亲疏水性,该蛋白为亲水性蛋白(图1,B).T MHMM分析未预测到跨膜结构区(图1,C).P S O R TI IP r e d i c t i o n亚细胞定位分析表明其在细胞核分布概率为78.3%;细胞骨架为8.7%;线粒体4.3%;细胞质为4.3%,分泌小泡为4.3%.表明M t b H L H148蛋白可能定位在细胞核.蛋白结构分析表明,该蛋白含有精氨酸/赖氨酸残基的保守区,且含有典型H L H区域(图2).669西㊀北㊀植㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀39卷A.信号肽预测;B .蛋白的疏水性预测;C .跨膜结构预测图1㊀生物信息学分析A.S i g n a l p e p t i d e p r e d i c t i o n ;B .H y d r o p h o b i c i t ypr e d i c t i o n ;C .T r a n s m e m b r a n e s t r u c t u r e p r e d i c t i o n F i g .1㊀B i o i n f o r m a t i c s a n a l ys i s V v b H L H 147.细菌(X P _002279307.1);V v b H L H 148.细菌(R VW 71594.1);G m b H L H 147.大豆(X P _003529517.1);G m b H L H 148.大豆(X P _003550916.1);M t b H L H 147.蒺藜苜蓿(X P _003594718.1);M t b H L H 148.蒺藜苜蓿(X P _003609794.1);M t b H L H 149.蒺藜苜蓿(X P _013469073.1);A t b H L H 147.拟南芥(N P _566567.1);A t b H L H 148.拟南芥(N P _566287.1);A t b H L H 149.拟南芥(N P _563839.1);A t b H L H 150.拟南芥(N P _566260.1);O s b H L H 148.水稻(X P _015629277.1);O s b H L H 149.水稻(X P _015645583.1);O s b H L H 150.水稻(X P _015628117.1);黑色虚线框代表含有精氨酸/赖氨酸残基的保守区,可能与D N A 结合相关;白色矩形下面的区域代表蛋白基本区;黑色矩形下面的区域代表螺旋区;两者之间的黑线代表循环区;∗代表高度保守的区域图2㊀M t b H L H 148与其他物种b H L H 蛋白保守性分析V v b H L H 147.V i t i s v i n i f e r a (X P _002279307.1);V v b H L H 148.V i t i s v i n i f e r a (R VW 71594.1);G m b H L H 147.G l yc i n em a x (X P _003529517.1);G m b H L H 148.G l y c i n em a x (X P _003550916.1,);M t b H L H 147.M ed i c a go t r u n c a t u l a (X P _003594718.1);M t b H L H 148.M e d i c a g o t r u n c a t u l a (X P _003609794.1);M t b H L H 149.M e d i c a g o t r u n c a t u l a (X P _013469073.1);A t b H L H 147.A r a b i d o ps i s (N P _566567.1);A t b H L H 148.A r a b i d o p s i s (N P _566287.1);A t b H L H 149.A r a b i d o p s i s (N P _563839.1);A t b H L H 150.A r a b i d o ps i s (N P _566260.1);O s b H L H 148.O r y z a s a t i v a (X P _015629277.1);O s b H L H 149Gl i k e .O r y z a s a t i v a (X P _015645583.1);O s b H L H 150Gl i k e .O r yz a s a t i v a (X P _015628117.1);T h e b l a c kd o t t e db o x r e p r e s e n t s t h e c o n s e r v e d r e g i o n c o n t a i n i n g A r g /L y s r e s i d u e s ,w h i c hm a y be i n v o l v e d i nD N A b i n d i n g .T h e a r e ab e l o wt h ew h i t e r e c t a n g l e r e p r e s e n t s t h e b a s i c r e g i o nof t h e p r o t e i n ;T h e a r e ab e l o wt h e b l a c k r e c t a ng l e r e pr e s e n t s t h eh e l i xm o t i f ;T h e b l a c k l i n e b e t w e e n t h e t w o r e c t a n g l e s r e p r e s e n t s t h e l o o p r e g i o n ;∗R e p r e s e n t s ah i g h l y c o n s e r v a t i v e r e gi o n F i g .2㊀C o n s e r v e da n a l y s i sb e t w e e n M t b H L H 148p r o t e i na n db H L H s o f o t h e r s pe c i e s 7696期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀王菊萍,等:蒺藜苜蓿M t b H L H 148转录因子的克隆与转化及其功能分析㊀㊀根据N C B I 在线软件B l a s t 到的亲缘关系接近且物种不同的蛋白,用邻接法构建系统进化树,研究其相互关系,系统发育树分析表明,M t b H L H 148与大豆(b H L H 147Gl i k e ㊁b H L H 148Gl i k e )的亲缘关系最近,其次是拟南芥,其中一致性较高的是拟南芥的A I F 2和A I F 3基因(图3).蒺藜苜蓿M t b H L H 148启动子序列分析表明(图4;表2),该基因的启动子区中含有启动子和增强子区域常见顺式作用元件C A A T Gb o x 以及核心启动子元件T A T A Gb o x ;作用元件中光响应元件数量最多,表明该蛋白响应光等外界环境信号;其次是MY B 结合位点;A B A 应答元件A B R E ,该蛋白可能在激素胁迫响应信号通路中占有重要的作用;除此之外,还含有参与细胞周期调节顺式作用元件,可能G m b H L H 147Gl i k e .大豆(X P _003529517.1);G m b H L H 148Gl i k e .大豆(X P _003550916.1);M t b H L H 147.蒺藜苜蓿(X P _003594718.1);M t b H L H 148.蒺藜苜蓿(X P _003609794.1);M t b H L H 149.蒺藜苜蓿(X P _013469073.1);A t b H L H 147.拟南芥(N P _566567.1);A t b H L H 148.拟南芥(N P _566287.1);A t b H L H 149.拟南芥(N P _563839.1);A t b H L H 150.拟南芥(N P _566260.1);O s b H L H 148.水稻(X P _015629277.1);O s b H L H 149Gl i k e .水稻(X P _015645583.1);O s b H L H 150Gl i k e .水稻(X P _015628117.1);Z m b H L H 149.玉米(P W Z 06386.1);Z b H L H 150.玉米(X P _008673629.1)图3㊀M t b H L H 148与其他植物的系统进化树分析G m b H L H 147Gl i k e .G l y c i n e m a x (X P _003529517.1);G m b H L H 148Gl i k e .G l y c i n em a x (X P _003550916.1);M t b H L H 147.M e d i c a go t r u n c a t u l a (X P _003594718.1);M t b H L H 148.M e d i c a g o t r u n c a t u l a (X P _003609794.1);M t b H L H 149.M e d i c a g o t r u n c a t u l a (X P _013469073.1);A t b H L H 147.A r a b i d o p s i s (N P _566567.1);t b H L H 148.A r a b i d o p s i s (N P _566287.1);A t b H L H 149.A r a b i d o p s i s (N P _563839.1);A t b H L H 150.A r a b i d o p s i s (N P _566260.1);s b H L H 148.O r y z a s a t i v a (X P _015629277.1);O s b H L H 149Gl i k e .O r y z a s a t i v a (X P _015645583.1);O s b H L H 150Gl i k e .O r yz a s a t i v a (X P _015628117.1);Z m b H L H 149.Z e am a ys (P W Z 06386.1);Z b H L H 150.Z e am a ys (X P _008673629.1)F i g .3㊀P h y l o g e n e t i c t r e e a n a l ys i s o fM t b H L H 148a n db H L H s o f o t h e r s pe c i e s 参与了细胞周期的调控.因此,M t b H L H 148蛋白能够响应光等环境信号和激素信号来调控蒺藜苜蓿的生长发育.2.2㊀亚细胞定位分析如图(图5)所示,空载的G F P 在整个细胞都有荧光信号,而M t b H L H 148GG F P 在细胞核具有强烈的荧光信号,这也进一步说明了M t b H L H 148定位在细胞核.2.3㊀M t b H L H 148的表达分析利用q R T GP C R 分析M t b H L H 148在不同组织中的表达分析,该基因在蒺藜苜蓿各组织中均有表达,叶中的表达量最低(以此为对照);在茎中的表达量最高,是叶的3.6倍;花中的表达量次之,是叶的2.2倍;根是叶的1.8倍(图6,A ).200m m o l /LN a C l 胁迫下,地上部分表达量有一定的波动,在8h 表达量达到最高,是对照组的2倍.12h 达到最低,是对照组的0.5倍(图6,B ).100μm o l /LA B A处理下,M t b H L H 148的表达量上调,在12h 的表达量最高,是对照组的4倍(图6,B ).4ħ处理M t Gb H L H 148表达量显著下调,处理24h 的表达量最低,是对照组的0.1倍(图6,B ).2.4㊀转基因拟南芥T 1代阳性鉴定及表达分析经筛选,共获得16个抗性株系,经鉴定共获得12图4㊀M t b H L H 148启动子区序列以及标记的重要顺式作用元件F i g .4㊀S e q u e n c e o f M t b H L H 148p r o m o t e r r e g i o n a n d t h em a r k e d i m p o r t a n t c i s Ga c t i n g el e m e n t s 869西㊀北㊀植㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀39卷表2㊀M t b H L H 148的启动子序列分析T a b l e 2㊀P r o m o t e r s e qu e n c e o f M t b H L H 148顺式作用元件C i s Ga c t i n g el e m e n t 核心序列C o r e s e q u e n c e 功能F u n c t i o nC A A T Gb o x C A A T /C A A A T启动子和增强子区域常见顺式作用元件C o m m o n c i s Ga c t i n g e l e m e n t i n p r o m o t e r a n de n h a n c e r r e gi o n s T A T A Gb o x T A T A T A A /A T T A T A /T A T A转录起始区的核心启动子元件C o r e p r o m o t e r e l e m e n t a r o u n d G30o f t r a n s c r i p t i o n s t a r t A B R E A C G T G /C A C G T G 脱落酸响应元件C i s Ga c t i n g e l e m e n t i n v o l v e d i n t h e a b s c i s i c a c i d r e s p o n s i v e n e s s M S A Gl i k e T C C A A C G G T 参与细胞周期调节的顺式作用元件C i s Ga c t i n g e l e m e n t i n v o l v e d i n c e l l c y c l e r e g u Gl a t i o n C C A A T Gb o x C A A C G G MY B H v 1结合位点MY B H v 1b i n d i n g s i t e MY Br e c o gn i t i o n s i t e C C G T T GMY B 结合位点MY Br e c o gn i t i o n s i t e G A Gm o t i f A T A G A T A A 光响应元件P a r t o f a l i g h t r e s p o n s i v e e l e m e n t G A T A Gm o t i f A A G A T A A G A T T 光响应元件P a r t o f a l i g h t r e s p o n s i v e e l e m e n t I Gb o xG A T A A G G G T 光响应元件P a r t o f a l i g h t r e s p o n s i v e e l e m e n t B o x I I C C A C G T G G C光响应元件P a r t o f a l i g h t r e s po n s i v e e l e m e n t G Gb o xC A C G T G /C T T C C A C G T G G C A/G C C A C G T G G A光响应元件C i s Ga c t i n g r e g u l a t o r y e l e m e n t i n v o l v e d i n l i g h t r e s po n s i v e n e ss B r i g h t .明场下细胞的状态;C h l o r o p h yl l .叶绿体自发荧光;G F P .激光下G F P 自发荧光;M e r ge .三者叠加效应显示细胞中发出G F P 荧光的位置图5㊀M t b H L H 148的亚细胞定位B r i g h t .T h e s t a t e o f c e l l s i n t h e f i e l d ;C h l o r o p h y l l .C h l o r o p h y l l s p o n t a n e o u s f l u o r e s c e n c e ;G F P .S po n t a n e o u s f l u o r e s c e n c e o fG F P u n d e r l a s e r ;M e r g e .T h e s u p e r po s i t i o ne f f e c t o f t h e t h r e e f a c t o r s i n d i c a t e s t h e l o c a t i o no fG F P f l u o r e s c e n c e i nc e l l s F i g.5㊀S u b c e l l u l a r l o c a l i z a t i o no fM t b H L H 148p r o t e i n 个过表达株系(图7,A ),对T 1代转基因拟南芥叶片中M t b H L H 148基因的表达量进行q R T GP C R 检测,选取其中表达量最高的转基因株系O E 8作为后续的实验材料用于基因的功能验证(图7,B ).2.5㊀转基因拟南芥耐盐性分析在盐胁迫下,对野生型拟南芥和T 2代转Mt Gb H L H 148基因拟南芥种子进行发芽率测定;结果表明在0m m o l /LN a C l 条件下,转M t b H L H 148基因拟南芥和野生型拟南芥(WT )最终发芽率基本一致,盐胁迫处理下,转基因苗和WT 的发芽率都受到了不同程度的抑制,125m m o l /LN a C l 胁迫处理下转基因拟南芥发芽率大于W T ,150m m o l /LN a C l 胁迫处理下转基因苗发芽率明显大于W T (图8).取1/2M S 固体培养基上萌发后生长5d 且长势一致的幼苗,进行盐胁迫处理16d .对幼苗进行胁迫处理并统计根长,0m m o l /L N a C l 条件下,转基因苗和WT 长势一致.胁迫处理下转基因苗长势较好,侧根数量较多,根长明显大于W T (图9).在9696期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀王菊萍,等:蒺藜苜蓿M t b H L H 148转录因子的克隆与转化及其功能分析A.M t b H L H 148组织差异性表达,∗表示与根相比差异显著(P <0.05);B .M t b H L H 148不同处理条件下的表达分析,∗表示相同的处理条件下与0h 相比差异显著(P <0.05)图6㊀M t b H L H 148基因在蒺藜苜蓿中的表达分析A.E x p r e s s i o na n a l y s i s i nd i f f e r e n t t i s s u e s ,∗m e a n s s i g n i f i c a n t d i f f e r e n c e c o m pa r e dw i t h r o o t (P <0.05);B .A n a l y s i s o f t h e e x p r e s s i o n p a t t e r no f t h eM tb H L H 148u n d e r d i f f e r e n t t r e a t m e n t s ,∗m e a n s s i gn i f i c a n t d i f f e r e n c e c o m pa r e dw i t h0hu n d e r t h e s a m e t r e a t m e n t (P <0.05)F i g .6㊀A n a l y s i s o f t h e e x pr e s s i o n p a t t e r no f t h eM t b H L H 148i n M .t r u n c a t u la A.D N A 水平鉴定B .R N A 水平鉴定;O E 1~O E 16为过表达株系,含有P C AM B I A 3301GM t b H L H 148的质粒为正对照(C K+),拟南芥野生型为负对照(C K G)图7㊀转基因拟南芥阳性鉴定A.D N Al e v e l i d e n t i f i c a t i o n ;B .T r a n s c r i pt i o n a l l e v e l i d e n t i f i c a t i o n ;O E 1~O E 16w e r e t r a n s g e n i c A r a b i d o p s i s ,p l a s m i d c o n t a i n i n gpC AM B I A 3301GM t b H L H 148w e r e u s e d a s p o s i t i v e c o n t r o l (C K+),w i l d Gt y p e GA r a b i d o p s i s w e r e u s e d a s n e ga t i v e c o n t r o l s (C K G)F i g.7㊀P o s i t i v e i d e n t i f i c a t i o no f M t b H L H 148Go v e r e x p r e s s i n g t r a n s g e n i c p l a n t s i n A r a b i d o ps i s 125m m o l /LN a C l 胁迫处理下,转基因苗的根长大于对照组,长度为对照组的1.5倍(图10),表现出了明显的抗盐性.3㊀讨㊀论本研究从蒺藜苜蓿中克隆到M t b H L H 148基因,蛋白与大豆同源性最近且含有典型的b H L H 结构域,属于b H L H 转录因子家族.B u r l e y 等[26]研究发现,b H L H 转录因子含有保守的精氨酸/赖氨酸残基结构域,该结构域在识别D N A 序列并与之结合过程中发挥着重要作用;此外,A d r i a n 等[27]发现b H L H 转录因子含有典型的b H L H 结构域(有助于蛋白的二聚化以及识别靶D N A 序列),该结构域高度保守.这与本研究结果一致.M t b H L H 148亚细胞定位分析结果表明,该基因与大多数转录因子一致[28],定位在细胞核[29].本研究用4ħ处理蒺藜苜蓿36h 后,M t b H L H 148基因表达量显著下调.S o n g 等[30]研究发现冷处理12h 后,白菜B r a b H L H 148的表达量是对照组的20倍以上,B r a b H L H 148可能在寒冷中发挥重要的正向调控作用.本研究结果表明低温处理后蒺藜苜蓿M t b H L H 148基因与上述结果相反,可能该基因在冷胁迫中发挥负向调控作用.在不同物种中,该基因具有不同的表达响应,说明不同物种具有生物特异性,需要针对特定物种进行分析.植物激素脱落酸(A B A )控制着植物的一系列生理过程[31],能够调节水分平衡和渗透胁迫耐受性[32],使植物细胞即使在应激条件下也能保持稳态[33].S e o 等[21]研究发现,A B A 胁迫处理时,水稻O s b H L H 148基因的表达量上调,这与本研究结果相079西㊀北㊀植㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀39卷A.0m m o l /LN a C l ;B .125m m o l /LN a C l ;C .150m m o l /LN a C l 图8㊀不同浓度盐胁迫下转基因拟南芥的发芽率A.0m m o l /LN a C l ;B .125m m o l /LN a C l ;C .150m m o l /LN a C lF i g .8㊀G e r m i n a t i o n r a t eu n d e r s a l t t r e a t m e n t o f t r a n s g e n i c A r a b i d o ps is WT.野生型拟南芥;O E 8.T 2代转基因拟南芥图9㊀野生型和转基因拟南芥在不同盐浓度下的长势WT.W i l d t y p e A r a b i d o p s i s ;O E 8.T 2t r a n s g e n i c A r a b i d o ps i s F i g .9㊀G r o w t ho fw i l da n d t r a n s g e n i c A r a b i d o ps i s u n d e r d i f f e r e n t s a l t c o n c e n t r a t i o n s t r e a t m e n ts ∗表示相同盐浓度下O E 8与WT 相比差异显著(P <0.05)图10㊀不同浓度盐胁迫下转基因拟南芥的根长∗m e a n s s i g n i f i c a n t d i f f e r e n c e c o m pa r e dO E 8w i t h WT a t t h e s a m e s a l t t r e a t m e n t (P <0.05)F i g .10㊀R o o t l e n gt hu n d e r s a l t t r e a t m e n t o f t r a n s g e n i c A r a b i d o ps i s 同.同时启动子分析显示,M t b H L H 148基因启动子区含有典型的A B A 应答元件A B R E ,A B A 处理后表达量呈现上升趋势,该基因可能参与了A B A 胁迫响应途径.本研究用200m m o l /L N a C l 处理蒺藜苜蓿,M t b H L H 148基因在盐胁迫后初期表达量升高,该基因可能参与盐胁迫响应途径.M u s aK a v a s 等[13]研究发现盐处理后,P v b H L H 148在菜豆根组织和叶组织中均上调,表达水平较对照高,这与本研究结果相同.生物信息学分析表明,M t b H L H 148与拟南芥的A I F 2的同源性最近.在盐胁迫处理6h 后,拟南芥中A I F 2基因的表达量明显上调[23],这同样与本研究结果一致.由此表明,该基因参与盐胁迫响应途径.Q i n gm e i 等[23]还发现过表达A I F 2基因同样能够增强转基因拟南芥的耐盐性.在本研究中,通过对转基因拟南芥以及野生型拟南芥耐盐性分析发现,125m m o l /L N a C l 胁迫处理下,与野生1796期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀王菊萍,等:蒺藜苜蓿M t b H L H 148转录因子的克隆与转化及其功能分析型相比,转M t b H L H148基因拟南芥发芽率及根长明显增加,进一步说明了转基因拟南芥耐盐性得到提高.因此,M t b H L H148基因可能在拟南芥盐胁迫调节机制中起到一定的调控作用.该基因是转录因子,后续实验应深入分析其在豆科模式植物蒺藜苜蓿中的抗盐反应机理,以期为苜蓿的抗逆育种服务.参考文献:[1]㊀刘晓月,王文生,傅彬英.植物b H L H转录因子家族的功能研究进展[J].生物技术进展,2011,1(6):391G397.L I U X Y,WA N G W S,F U B Y.R e s e a r c h p r o g r e s so f p l a n tb H L Ht r a n sc r i p t i o n f a c t o r f a m i l y[J].C u r r e n t B i o t e c h n o l o g y,2011,1(6):391G397.[2]㊀J O L MA A,Y I N Y M,N I T T A K R,e t a l.D N AGd e p e n d e n tf o r m a t i o no f t r a n s c r i p t i o n f a c t o r p a i r s a l t e r s t h e i r b i n d i ng s p eGc i f i c i t y J].N a t u r e,2015,527(7578):384G388.[3]㊀F E L L E R A,MA C H E M E R K,B R A U N E L,e t a l.E v o l uGt i o n a r y a n dc o m p a r a t i v ea n a l y s i so f MY B a nd b H L H p l a n t t r a n s c r i p t i o n f a c t o r s[J].T he P l a n t J o u r n a l:f o r C e l l a n dM oGl e c u l a rB i o l og y,2011,66(1):94G116.[4]㊀罗赛男,杨国顺,石雪晖,等.转录因子在植物抗逆性上的应用研究[J].湖南农业大学学报(自然科学版),2005,31(2):219G223.L U OSN,Y A N GGS,S H I X H,e t a l.O n t h e a p p l i c a t i o n o f t r a n s c r i p t i o n f a c t o r t o p l a n t s t r e s s r e s i s t a n c e[J].J o u r n a l o fH u n a nA g r i c u l t u r a lU n i v e r s i t y(N a t u r a lS c i e n c e s),2005,31(2):219G223.[5]㊀MA P C,R O U L D M A,W E I N T R A U B H,e t a l.C r y s t a l s t r u c t u r eo fM y o Db H L Hd o m a i nGD N Ac o m p l e x:P e r s p e c t i v e s o nD N Ar e c o g n i t i o n a n d i m p l i c a t i o n s f o r t r a n s c r i p t i o n a l a c t i v aGt i o n[J].C e l l,1994,77(3):451G459.[6]㊀N A I RS K,B U R L E Y S K.R e c o g n i z i n g D N Ai nt h e l i b r a r y [J].N a t u r e,2000,404(6779):715G717,718.[7]㊀A T C H L E Y W R,T E R HA L L E W,D R E S SA.P o s i t i o n a l d eGp e n d e n c e,c l i q u e s,a n d p r e d i c t i v em o t i f s i n t h eb H L H p r o t e i nd o m a i n[J].J o u r n a l o f M o le c u l a rE v o l u t i o n,1999,48(5):501G516.[8]㊀C A S T E L A I N M,L E H I R R,B E L L I N IC.T h en o nGD N AGb i n d i n g b H L H t r a n sc r i p t i o nf a c t o rP R E3/b H L H135/A T B S1/T MO7i s i n v o l v e d i nt h e r e g u l a t i o no f l i g h t s i g n a l i n gp a t h w a y i n A r a b i d o p s i s[J].P h y s i o l o g i aP l a n t a r u m,2012,145(3):450G460.[9]㊀A B E H,U R A O T,I T O T,e ta l.A r a b i d o p s i s A t MY C2(b H L H)a n dA t MY B2(MY B)f u n c t i o na s t r a n s c r i p t i o n a l a c t iGv a t o r s i na b s c i s i c a c i ds i g n a l i n g[J].T h eP l a n tC e l l,2003,15(1):63G78.[10]㊀F R I E D R I C H S E N D M,N E MHA U S E RJ,MU R AM I T S U T,e ta l.T h r e er e d u n d a n tb r a s s i n o s t e r o i de a r l y r e s p o n s eg e n e se n c o d e p u t a t i v eb H L H t r a n s c r i p t i o nf a c t o r sr e q u i r e df o r n o r m a lg r o w t h[J].G e n e t i c s,2002,162(3):1445G1456.[11]㊀P I R E SN,D O L A NL.O r i g i na n dd i v e r s i f i c a t i o no f b a s i cGh eGli xGl o o pGh e l i x p r o t e i n s i n p l a n t s[J].M o l e c u l a rB i o l o g y a n dE v o l u t i o n,2010,27(4):862G874.[12]㊀王㊀翠,兰海燕.植物b H L H转录因子在非生物胁迫中的功能研究进展[J].生命科学研究,2016,20(4):358G364.WA N GC,L A N H Y.R e s e a r c h p r o g r e s s e so nf u n c t i o n so fp l a n t b H L Ht r a n s c r i p t i o n f a c t o r s i n v o l v e d i na b i o t i c s t r e s s e s[J].L i f e S c i e n c eR e s e a r c h,2016,20(4):358G364.[13]㊀B A I L E YPC,MA R T I NC,T O L E D OGO R T I ZG,e t a l.U pGd a t eo nt h eb a s i che l i xGl o o pGh e l i xt r a n s c r i p t i o nf a c t o rg e n ef a m i l y i n A r a b i d o p s i s t h a l i a n a[J].T h e P l a n t C e l l,2003,15(11):2497G2502.[14]㊀S U N X,WA N G Y,S U IN.T r a n s c r i p t i o n a lr e g u l a t i o no fb H L Hd u r i n gp l a n t r e s p o n s e t os t r e s s[J].B i oc h e m i c a l a n dB i o p h y s i c a l R e s e a r c hC o m m u n i c a t i o n s,2018,503(2):397G401.[15]㊀I K E D A M,M I T S U D A N,O HM EGT A K A G IM.A T B S1I NGT E R A C T I N G F A C T O R s n e g a t i v e l y r e g u l a t e A r a b i d o p s i sc e l le l o n g a t i o ni n t h et r i a n t a g o n i s t i c b H L H s y s t e m[J].P l a n t S i g n a l i n g&B e h a v i o r,2013,8(3):e23448.[16]㊀E N D O T,F U J I IH,S U G I Y AMA A,e t a l.O v e r e x p r e s s i o n o f a c i t r u s b a s i c h e l i xGl o o pGh e l i x t r a n s c r i p t i o n f a c t o r(C u b H L H1),w h i c hi sh o m o l o g o u st o A r a b i d o p s i sa c t i v aGt i o nGt a g g e db r i1s u p p r e s s o r1i n t e r a c t i n g f a c t o r g e n e s,m o d uGl a t e s c a r o t e n o i d m e t a b o l i s mi nt r a n s g e n i c t o m a t o[J].P l a n tS c i e n c e:a nI n t e r n a t i o n a lJ o u r n a lo f E x p e r i m e n t a l P l a n tB i o l o g y,2016,243:35G48.[17]㊀T O T S U K A A,O K AM O T OE,M I Y A HA R A T,e t a l.R eGp r e s s e d e x p r e s s i o no f a g e n e f o r ab a s i ch e l i xGl o o pGh e l i x p r oGt e i nc a u s e s aw h i t e f l o w e r p h e n o t y p e i n c a r n a t i o n[J].B r e e dGi n g S c i e n c e,2018,68(1):139G143.[18]㊀H E I S L E R M G,A T K I N S O N A,B Y L S T R A Y H,e t a l.S P A T U L A,a g e n e t h a t c o n t r o l s d e v e l o p m e n t o f c a r p e lm a rGg i n t i s s u e s i n A r a b i d o p s i s,e n c o d e s a b H L H p r o t e i n[J].D eGv e l o p m e n t(C a m b r i d g e,E n g l a n d),2001,128(7):1089G1098.[19]㊀R A J A N IS,S U N D A R E S A N V.T h e A r a b i d o p s i s m y c/b H L H g e n eA L C A T R A Ze n a b l e sc e l l s e p a r a t i o n i n f r u i td eGh i s c e n c e[J].C u r r e n tB i o l o g y:C B,2001,11(24):1914G279西㊀北㊀植㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀39卷。
蒺藜苜蓿MtFVE基因功能初步解析

蒺藜苜蓿MtFVE基因功能初步解析王瑞良;张鹏程;牛丽芳;朱昊;李学森;王兴春;林浩【摘要】拟南芥(Arabidopsis thaliana)中自主通路成员FLOWERING LOCUS VE(FVE)主要通过表观遗传学机制抑制其下游开花抑制子FLOWERING LOCUS C(FLC)的表达从而促进开花,但有研究发现蒺藜苜蓿(Medicago truncatula)中没有FLC的同源基因,因此,蒺藜苜蓿中FVE同源基因调控开花时间的分子作用机理还有待研究.通过生物信息学方法在蒺藜苜蓿中筛选到2个拟南芥FVE的同源蛋白,将其分别命名为MtFVEa和MtFVEb.经氨基酸序列比对发现,2个蛋白均具有典型的WD40蛋白结合结构域.随后通过qRT-PCR和半定量RT-PCR检测MtFVEa和MtFVEb基因组织表达特异性,发现2个基因在花和营养生长期的茎尖具有较高水平的表达.经酵母双杂实验进一步分析发现,MtFVEa蛋白与MtFLD[拟南芥FLOWERING LOCUS D(FLD)的同源蛋白]和MtHDA6[拟南芥histone deacetylase 6(HDA6)的同源蛋白]均发生蛋白互作,表明MtFVE可能同样形成FVE-FLD-HDA6三元复合体参与蒺藜苜蓿开花调控.研究结果为进一步探索蒺藜苜蓿MtFVE基因的功能提供了研究思路和理论支持.【期刊名称】《生物技术进展》【年(卷),期】2019(009)002【总页数】9页(P152-160)【关键词】蒺藜苜蓿;MtFVE;FVE-FLD-HDA6【作者】王瑞良;张鹏程;牛丽芳;朱昊;李学森;王兴春;林浩【作者单位】山西农业大学生命科学学院,山西太谷030801;中国农业科学院生物技术研究所,北京100081;中国农业科学院生物技术研究所,北京100081;新疆畜牧科学院草业研究所,乌鲁木齐830000;新疆畜牧科学院草业研究所,乌鲁木齐830000;山西农业大学生命科学学院,山西太谷030801;中国农业科学院生物技术研究所,北京100081【正文语种】中文开花是高等植物实现世代交替的重要环节。
我农业科研人员发现MYB3转录因子调控苯丙氨酸合成新分子机制

·25·2017年第6期25行业发展近日,中国农业科学院生物技术研究所在植物次生代谢物生物合成调控机制研究方面取得新进展,发现了MYB3转录因子调控苯丙氨酸合成新分子机制。
相关研究成果于5月8日在线发表在国际著名的植物学杂志《植物生理学(Plant Physiology)》上。
植物能够合成各种次生代谢物,包括生物碱、萜类、黄酮类、硫代葡萄糖苷等。
这些次生代谢物在植物适应环境的过程中扮演着非常重要的角色,它们参与调控植物的品质、生长发育、生物和非生物胁迫等各种生理生化过程,而R2R3-MYB 类转录因子在调控苯丙烷类次生代谢生物合成中起到重要的作用。
在拟南芥MYB 转录因子中,第4亚类的MYB3、MYB4、MYB7、MYB32转录因子因含有EAR 抑制基序而具有转录抑制活性,但是其调控基因表达的分子机理尚未阐述清楚。
研究团队前期的研究结果发现了MYB4、MYB7、MYB32因子与细胞核膜蛋白SAD2相互作用,定点突变分析发现了MYBs 蛋白保守基序GY/FDFLGL 的天冬氨酸(Asp,D)在蛋白相互作用中起到了重要作用,这种互作使得MYBs 蛋白能够进入细胞核从而调控基因的表达,这一结果发表在《植物杂志(The Plant Journal)》上。
在前期的基础上,进一步研究发现,MYB3的调控机制与MYB4、MYB7、MYB32完全不一样,酵母双杂交实验发现MYB3能够与LNK 蛋白家族成员LNK1和LNK2相互作用,这种互作依赖于LNK 蛋白C 端的保守基序R1和R2,定点突变发现保守基序R1和R2中的天冬氨酸(Asp,D)在互作中起到重要的介导作用,转录激活检测分析证明了LNK1和LNK2通过其N 端的ENT 结构域来调控MYB3的抑制子功能,上述研究工作深入揭示了MYB 抑制子调控植物次生代谢物生物合成的分子机制,为植物代谢工程和品质改良提供了重要的理论基础。
该论文以生物所为第一完成单位,周美亮副研究员为第一作者,周美亮副研究员和吴燕民研究员为共同通讯作者。
9.植物的光形态建成

(三)ZTL/FKF1/LKP2受体 ZTL(ZEITLUPE)/FKF1 (FLAVIN-BINDING, KELCH REPEAT, F-BOX 1)/LKP2
(LOV KELCH PROTEIN 2)或简称ZTL是同一家族基因编码的蛋白,N端都含有单个 LOV结构域和F-box结构域,LOV结构域与生色团FMN结合。因为具有F-box区域,使 ZTL具有泛素连接酶(E3)的活性,被认为是通过蛋白降解反应介导生物钟反应和 光周期调控的开花的蓝光受体。
从图9-7可见,Pr和Pfr在小于700nm的
各种光波下都有不同程度的吸收,有相当多
的重叠。在活体中,这两种类型光敏色素的
含量取决于光源的光波成分。总光敏色素 (Ptot= Pr+Pfr) 。在一定波长下,具生理 活性的Pfr浓度和Ptot浓度的比例就是光稳定 平衡值(photostationary equilibrium, φ 值,即 φ= Pfr/ Ptot) 。不同波长的混合光 下能得到各种φ值。例如,白芥幼苗在饱和红 光(660nm)下的φ值是0.8,就是说,总光敏
从第三章内容我们了解到,光合作用是 将光能转变为化学能的过程;而在光形态 建成过程中,光只作为一个信号去激发受 体,传递光信号,推动细胞内一系列反应, 最终表现为形态结构的变化。最终表现为 形态结构的变化。一些光形态建成反应所 需红闪光的能量与一般光合作用补偿点的 能量相差10个数量级,甚为微弱。给黄化 幼苗一个微弱的闪光,在几小时之内就可 以观察到一系列光形态建成的去黄化反应, 如茎伸长减慢、弯钩伸展,子叶打开、合 成叶绿素等。不仅是去黄化,光形态反应 涉及植物的整个生长发育过程(图9-2)。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
MtPAR MYB转录因子作为一个开关参与苜蓿原花色素的合成 摘要:MtPAR(蒺藜苜蓿原花色素调节子)是myb蛋白家族的转录因子,在模式豆科植物苜蓿的原花色素(PA)的合成中起关键调控作用。MtPAR在种皮中表达,pa积累的部位。功能缺陷的Par突变体种皮中的pa含量比野生型低很多,然而花色素和其他专门的代谢物水平是正常的。相反,当MtPAR在转基因苜蓿的毛状根中异常表达时,pa却大量积累。对par突变体和MtPAR表达的毛状根进行转录分析,结合酵母单杂交分析,发现MtPAR很可能通过激活WD40-1,从而正向调控编码类黄酮到pa合成途径中的酶的基因。MtPAR在牲畜饲料的紫花苜蓿中表达,导致根中含有可观察到的pa含量,突出了这一潜在增加牧草植物中pa含量的基因生物技术的战略,降低以此为食的反刍动物的气胀。 原花色素(pa,也成缩合单宁)是黄烷-3 -醇单元的低聚物,pa复合物在种皮,叶,果实,花,许多植物的树皮中都有分布。Pa,儿茶素,表儿茶素是对人体健康有益的抗氧化剂,包括保护心脏,抗癌,消炎。牧草植物中的Pa与蛋白结合,减慢在反刍动物的瘤胃的发酵,降低了微生物产生的甲烷含量,从而使动物免受可能致死的气胀病的危害。牧草植物中等水平的pa含量,可以改善氮素营养,减少尿氮排泄,有利于抵抗肠道寄生虫。不幸的是,很多豆科植物,包括世界上最重要的牧草植物,紫花苜蓿,没有足够多的pa来抵抗食草动物的胀气病。因此,提高苜蓿和其他饲料豆科植物根中pa含量成为生物技术的一个重要目标。 Pa的合成和调控在非豆科植物的模式植物拟南芥中已研究清楚。拟南芥中pa的合成知识大部分来自于tt突变体,表现为种子色素沉着较少。20个tt基因已被鉴定,它们编码参与pa合成及储存或者调控pa产量的蛋白的酶或者转运子。转运子包括一系列的转录因子:tt2,myb家族的转录因子;tt8, bHLH转录因子;ttg1,WD40蛋白,共同组成一个调控花色素还原酶转录的三聚体。 最近,已经从模式豆科植物苜蓿中分离和鉴定了参与pa合成的几个关键的基因/酶和一个转运子的前体。然而,我们对苜蓿和其他豆科植物pa的生物合成知之甚少,,只有一个WD40重复结构的转录因子有牵连,在紫花苜蓿种子的正调控pa的合成。 苜蓿的全基因组转录因子研究和其他在种子发育过程中被激活的基因中,锁定了超过30个诱导种子的转录因子用于反向遗传学功能鉴定。其中一个编码调控苜蓿种子pa合成的myb蛋白家族的转录因子。这个基因在转基因毛状根的异常表达导致pa合成和积累。因此,这个myb转录因子具有提高牧草单宁水平的潜力。 结论:
MtPAR编码一个在种皮中特异表达的myb转录因子 图1:MtPAR基因的表达。MtPAR在种子发育不同阶段和在种子不同组织中的表达情况。
我们使用了苜蓿的基因表达谱来筛选诱导种子的转录因子基因用于遗传鉴定。其中之一,MtPAR,编码一个假定的R2R3类的myb转录因子,基于其蛋白N末端高度保守的R2和R3 myb DNA结合结构域。MtPAR仅在种子中表达,授粉后24天表达量最高。定量rt-pcr表明这个基因在种皮中特异表达,在胚和成熟种子的胚乳中不表达。距离分析,没有发现MtPAR和参与花青素或者pa合成的myb转录因子之间有密切联系。最接近同源的MtPAR是大豆里一个功能未知的myb蛋白。 Par突变体在种皮pa积累中是有缺陷的 我们通过转座子插入MtPAR基因分离了四个独立的突变体。群体中在NF4419的第二个外显子中,NF2466,NF1358,NF3308的第三个外显子中发现了Tnt-1插入。与野生型相比,这四个插入突变体分离得到的纯合株系的成熟种子色素沉着减少。在发育种子中,四个突变体的MtPAR转录水平不到野生型的5%。 图2:苜蓿par突变体分析 A:不同的Tnt-1插入MtPAR的位置和相应的突变体株系的名称。线表示内含子,矩形表示外显子。 B: NF4419突变体株系中突变对种子色素沉着的影响。在另一个突变体株系中也观察到了相似的表型变化。 C:NF2466突变体株系成熟种子的dmaca染色 D:提取物中pa水平(可溶的和不可溶的)与各自相应的对照。
Dmaca染色表明,与野生型相比,突变体的成熟种子中pa含量降低。发育种子的Dmaca染色表明,在授粉后10天到16天中,突变体和野生型pa含量都呈现出相似的,逐渐积累。授粉后20-24天,突变体和野生型之间的差异开始明显,这个现象与野生型的MtPAR在授粉后24天后表达量最高相一致。电镜观察突变体和野生型种子dmaca染色的横切面,很大程度上局限在种皮,表明MtPAR表达的组织特异性。par突变体种子的可溶解的和不可溶解的pa水平都低于各自的对照,突变体可溶解的pa含量比对照低50%,不溶解的pa含量比对照低80%。高效液相色谱分析表明,par突变体和野生型的各种pa二聚体分布相似。花青素的分光光度分析表明,par突变体和野生型种子没有明显差异。结论,MtPAR调控的是种子中pa,而不是花青素。 MtPAR异常表达诱导pa合成
图3:在苜蓿毛状根中过表达MtPAR A:过表达MtPAR转化株的毛状根的表型。左:gfp作为转化标记。中和右:dmaca未染色和染色的毛状根 B:在14个不停毛状根转化体中可溶pa和花青素浓度与MtPAR表达水平的相关。 为了探究MtPAR在pa合成中的作用,我们使用了组成型表达启动子35S结合MtPAR的cDNA来转化苜蓿的毛状根。利用土壤农杆菌来转化含有使转化的毛状根可见的gfp标记和 p35S:: Mt PAR载体到苜蓿中。通过qRT-PCR检测苜蓿毛状根中MtPAR的异常表达。观察最初的未染色的毛状根发现,与转化p35S::GUS的毛状根相比,p35S::Mt PAR的红色较浅。在根生长和其他形态学特征中没有观察到p35S::GUS和对照有明显的差异。然而,随后用dmaca染色后观察,发现p35S::Mt PAR和p35S::GUS有了明显的差异,前者用dmaca染色后电镜显示为蓝绿色,暗示pa的存在,然而对照却没有。 可溶的pa水平在对照p35S::GUS转基因植物的毛状根中含量很低,但比p35S::Mt PAR含量高100倍以上。此外,可溶的pa浓度和MtPAR的转录水平成正相关。相反,不溶解的pa水平在对照转基因植株毛状根中含量很低,并没有因为MtPAR的表达而增加。花青素浓度在对照转基因植株毛状根中含量高,但是在p35S::Mt PAR株系中,随着可溶的pa水平增加,花青素浓度降低。 MtPAR调节pa合成基因的表达 为了研究MtPAR引发pa生物合成的机制,我们使用基因芯片对突变体和野生型种子,p35S::Mt PAR和p35S::GUS转化的根进行转录组分析。比较授粉后20天种子的转录水平,发现了49个在par突变体和野生型差异表达的基因。其中,与野生型相比,par突变体38个基因的转录水平低,11个基因的转录水平高。根据GeneBins ontology,14个在突变体中被抑制的基因编码参与原花色素合成的酶。有些事pa和花青素合成都需要的(例如,查尔酮合酶,chs;类黄酮-3-羟化酶,f3h;花色素合酶,ans),然而其他基因在ans下游起调控作用,只调节pa的合成。在突变体中表达水平高的基因大多功能未知。 在转p35S::Mt PAR的苜蓿毛状根中,171个基因表达水平明显不同于对照p35S::GUS。其中,115个基因表达水平高于对照。115个基因中的11个编码类黄酮合成的假定的酶。 为了确定MtPAR直接调控的基因,我们把突变体中被抑制的基因与转化p35S::Mt PAR植株中被诱导的基因进行了比较。12个基因同时满足两个条件,8个编码参与pa和花青素合成途径的酶。这些编码ans和anr的基因,表茶儿酸合成的最后两步,影响苜蓿中pa的合成。使用突变体种子和毛状根的异常表达的转录本数据,综合分析类黄酮合成途径中所有基因家族成员的表达。此分析确定了MtPAR对类黄酮合成途径中两个中心酶(chs和f3h),一个特殊调节pa和花青素合成的开关的酶ans的调控作用。
图4:MtPAR在类黄酮途径调控中的作用。 A:类黄酮生物合成途径到pa和花青素的流程图。*表示转录水平在突变体株系和过表达株系中都受到显著影响的酶。 B:授粉后20天的par突变体种子和过表达株系中参与类黄酮合成的假定基因的渐增表达情况。 C:相比野生型对照,par突变体成熟种子中显著变化的代谢物含量。 为了评价par突变体在类黄酮代谢途径的影响,我们使用uplc和ms进行了代谢物分析。成熟种子中鉴别出74个有关的代谢物,与野生型相比,par突变体的19个代谢物变化显著。这些代谢物主要属于四类复合物:香豆酸和香豆素化合物,三萜皂苷,表儿茶酸和类黄酮配糖类,分别有2个,8个,2个和7个。尽管各自的皂苷类代谢物在par突变体中不同,突变体和对照的皂苷类的总量并没有显著差别。香豆素和香豆酸也是同样情况。相反,突变体的表茶儿酸含量比野生型低了45.9%,类黄酮配糖含量比野生型高23.2%。在par突变体中表儿茶酸减少的量反映了可溶解pa水平的降低。 总之,遗传学,转录本和代谢分析的结果表明,苜蓿的MtPAR在pa合成中起着正调控作用。 MtPAR作用于WD40-1上游 之前,在苜蓿中发现一个WD40重复结构蛋白,与拟南芥TTG1基因同源,称为MtWD40-1.苜蓿WD40-1突变体的可溶和不溶pa含量急剧下降。然而,在苜蓿毛状根中过表达MtWD40-1,花青素浓度升高,pa浓度没有受到影响。我们读MtWD40-1突变体和par突变体进行了对比。相比野生型对照,par突变体有38个基因在授粉后20天的种子中下调,,wd40-1突变体有16个基因在授粉后16天种子中下调。此外,这16个基因中有14个与花青素合成有关。为了检验Mtpar和MtWD40-1是否通过一个共同的途径诱导目标基因,我们做了定量pcr来检测par突变体中WD40-1的表达。显然,授粉后20天的种子,不同的par突变体的wd40-1的转录水平比野生型低15-50倍。相反,在授粉后16天种子中,par转录水平并没有因为wd40-1的突变而受到影响。此外,过表达MtPAR诱导了苜蓿毛状根中MtWD40-1的表达。我们随后做了酵母单杂交来研究par,wd40-1和anr启动子之间的直接互作。MtPAR激活了wd40-1启动子的转录,而不是anr启动子。
图5:par激活WD40-1的表达 A:不同突变体株系中授粉后20天种子中MtWD40-1的表达情况。 B:毛状根转化体中MtWD40-1的表达情况。AB:两个看家基因MSC27和PDF2的表达情况。 C:酵母单杂交分析。上:酵母单杂交实验中使用的报告基因表达盒。MtWD40-1启动子和MtPAR启动子克隆岛报告基因AUR1-C前,在酵母中具有aba抗性。中:没有在酵母中发现WD40-1启动子和anr启动子的本底表达。下:在携带par效应子表达盒的质粒转化酵母单杂交报告株系后酵母的生长情况。