利用粳稻基因组DNA和Cot-1 DNA探针对普通野生稻和亚洲栽培稻的比较分析

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长雄野生稻地下茎及耐冷性状功能基因组学及比较转录组学分析

长雄野生稻地下茎及耐冷性状功能基因组学及比较转录组学分析

长雄野生稻地下茎及耐冷性状功能基因组学及比较转录组学分析一、概述长雄野生稻,作为稻属的重要成员,其独特的地下茎无性繁殖特性及耐冷性状一直是科研人员关注的焦点。

地下茎作为多年生性的理想供体,不仅为水稻的遗传改良提供了宝贵的遗传资源,同时也为多年生稻的培育开辟了新的途径。

另一方面,长雄野生稻对低温等非生物胁迫的抗性,为培育抗逆水稻新品种提供了重要的基因资源。

功能基因组学和比较转录组学作为现代生物学的重要研究手段,为我们深入解析长雄野生稻地下茎及耐冷性状的分子机制提供了有力工具。

通过构建地下茎茎尖的均一化cDNA文库,并进行测序分析,我们可以获得大量与地下茎发育相关的功能候选基因。

同时,利用基因芯片及转录组测序等技术平台,我们可以对地下茎发育及耐冷性进行系统的比较转录组学分析,从而揭示水稻耐冷胁迫调控的分子遗传机制。

本研究旨在通过功能基因组学和比较转录组学的分析方法,全面解析长雄野生稻地下茎及耐冷性状的遗传基础与分子机制。

我们期望通过这项研究,不仅能够为水稻的遗传改良和抗逆育种提供新的策略和思路,同时也能够为理解禾本科植物的进化与多年生性提供重要的理论依据。

1. 野生稻资源的重要性及长雄野生稻的特点野生稻作为水稻的近缘野生种,拥有着丰富的遗传变异和优异的农艺性状,对于现代农业中的遗传育种和资源保护具有不可替代的重要性。

它们不仅为栽培稻的遗传改良提供了宝贵的基因库,还为我们理解水稻的生物学特性、适应机制和进化历程提供了重要的线索。

在众多野生稻种中,长雄野生稻(Oryza longistaminata)以其独特的生物学特性和遗传资源而备受关注。

长雄野生稻起源于非洲,具有与亚洲栽培稻相同的AA基因组,这使得它们之间的基因交流和遗传改良成为可能。

长雄野生稻还展现出多种优良的农艺性状,如地下茎无性繁殖、对低温等非生物胁迫的抗性,以及对白叶枯病和稻瘟病等病害的抗性,这些都为通过遗传工程手段培育抗逆、高产的水稻新品种提供了丰富的基因资源。

野生稻与栽培稻之间的遗传分化

野生稻与栽培稻之间的遗传分化

野生稻与栽培稻之间的遗传分化
森岛启子;王象坤
【期刊名称】《农业考古》
【年(卷),期】1998()1
【摘要】野生稻与栽培稻之间的遗传分化日本国立遗传研究所森岛启子,王象坤译一、栽培稻──野生稻复合体的分类现状稻属有两个栽培种和大约20个野生种(Vauehan,1989)。

全世界普遍栽培的普通稻是亚洲栽培稻(Oryzasativa),而另一个栽培稻是局限于西...
【总页数】7页(P30-35)
【关键词】野生稻;栽培稻;非随机组合;同工酶;基因库;普通野生稻;普通栽培稻;亚洲栽培稻;遗传分化;数量性状
【作者】森岛启子;王象坤
【作者单位】日本国立遗传研究所
【正文语种】中文
【中图分类】S511.9
【相关文献】
1.普通野生稻和亚洲栽培稻叶绿体DNA的籼粳分化 [J], 孙传清;吉村淳
2.野生稻与栽培稻之间第6染色体的遗传比较 [J], Sano,Y;徐宗俦
3.杂草稻、栽培稻及野生稻的遗传多样性比较 [J], 王黎明;李战胜;高旭华;沈雪峰;方越;陈勇
4.从普通野生稻DNA的籼粳分化看亚洲栽培稻的起源与演化 [J], 孙传清;王象坤;李自超
5.一个AA基因组特异的串联重复序列的克隆及其在中国普通野生稻和栽培稻中的分化特征 [J], 王振山;陈浩;李小兵;梁承志;王象坤;朱立煌
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普通栽培稻遗传改良现状及其发展趋势

普通栽培稻遗传改良现状及其发展趋势

普通栽培稻遗传改良现状及其发展趋势
陆峰;赵伟;黄群策;张博
【期刊名称】《农业科技通讯》
【年(卷),期】2023()2
【摘要】概述了我国第一代杂交水稻育种的艰难探索历程及其主要研究成果,对第一代杂交水稻育种的技术特点进行了评述。

袁隆平先生的研究成果主要体现在3个方面,即正式揭开了利用水稻杂种优势的实际性技术探索的研究序幕并建立了杂交水稻育种学科、在全球范围大力推广应用杂交水稻育种成果并产生巨大的社会效益和经济效益、建立了普通栽培稻杂种优势利用的学科框架并指明了其未来的发展方向。

在染色体组多倍化水平上寻找新的技术突破口是稻属植物遗传改良的重要发展方向。

【总页数】4页(P4-6)
【作者】陆峰;赵伟;黄群策;张博
【作者单位】桂林市农业生态与资源保护站;广西智友生物科技股份有限公司;郑州大学离子束生物工程重点实验室;广西星火原生物科技有限责任公司
【正文语种】中文
【中图分类】S51
【相关文献】
1.用SSR标记比较亚洲栽培稻与普通野生稻的遗传多样性
2.普通野生稻和亚洲栽培稻核心种质遗传多样性的检测研究
3.栽培稻与普通野稻杂交杂种优势和农艺性
状的遗传分析4.转Cry1Ac/CpTI栽培稻外源基因渗入普通野生稻中可稳定的遗传和表达5.普通野生稻(Oryza rufipogon)DNA导入栽培稻后代主要性状的遗传变异
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中国普通野生稻遗传多样性研究进展

中国普通野生稻遗传多样性研究进展

中国普通野生稻遗传多样性研究进展杨庆文;黄娟【期刊名称】《作物学报》【年(卷),期】2013(039)004【摘要】普通野生稻是亚洲栽培稻的祖先,中国作为亚洲栽培稻的起源地之一,蕴藏着丰富的普通野生稻资源.为了揭示中国普通野生稻的遗传多样性分布状况,探索普通野生稻的遗传变异规律、居群遗传结构以及演化途径等,为亚洲栽培稻的起源进化研究、品种改良和普通野生稻保护提供科学依据,国内外学者对中国普通野生稻开展了大量的遗传多样性研究,获得了丰富的研究结果.本文分别从遗传多样性研究方法、普通野生稻与亚洲栽培稻遗传多样性的比较、普通野生稻遗传多样性与地理分布和生态环境的关系、保护措施和栽培稻基因渗入对遗传多样性的影响等几个方面的研究结果进行了综述,总结了中国普通野生稻遗传多样性的主要特征,提出了未来我国普通野生稻遗传多样性的研究方向.%Common wild rice (Oryza rufipogon Griff.) is recognized to be the ancestor of Asian cultivated rice (Oryza sativa L.).As one of the origins of Asian cultivated rice,China is rich of genetic resources of common wild rice.In order to provide scientific bases for studies on the origin,evolution and variety improvement of Asian cultivated rice as well as the conservation of common wild rice,a lot of studies on genetic diversity of common wild rice in China have been carried out to reveal the distribution of genetic diversity,population structure and evolutionary way of common wild rice for the last decades.This paper introduced the research methods and the applicationhistory of markers used in genetic diversity studies of common wild rice,systematically summarized the main characteristics of genetic diversity of common wild rice in China in several aspects including the abundance of genetic diversity of common wild rice,comparison of genetic diversity between common wild rice and Asian cultivated rice,the influence of geographic conditions and environments as well as gene flow from cultivated rice to the common wild rice.Based on the analyses of present studies,the authors provided their own opinion about the key points in the future research on genetic diversity of common wild rice in China.【总页数】9页(P580-588)【作者】杨庆文;黄娟【作者单位】中国农业科学院作物科学研究所,北京100081;中国农业科学院作物科学研究所,北京100081;广西壮族自治区农业科学院水稻研究所,广西南宁530007【正文语种】中文【相关文献】1.中国与东南亚三国(越、老、柬)普通野生稻遗传多样性的比较研究 [J], 孙希平;杨庆文2.中国普通野生稻(Oryza rufipogon Griff.)原生境保护与未保护居群的遗传多样性比较 [J], 王家祥;陈友桃;黄娟;乔卫华;张万霞;杨庆文3.中国不同牛种DGAT1基因遗传多样性及经济性状关联分析研究进展 [J], 王思伟;王学清;王昆4.中国油豆角种质资源遗传多样性的研究进展 [J], 肖靖; 管洪波; 陈树良; 王喜山;鄂成林; 石晓华5.中国普通野生稻的原地保护及其遗传多样性研究进展 [J], 李小湘;段永红;王淑红;刘勇因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

水稻Pib基因及其连锁RFLP标记在栽培稻、药用野生稻和玉米中的比较物理

水稻Pib基因及其连锁RFLP标记在栽培稻、药用野生稻和玉米中的比较物理

水稻Pib基因及其连锁RFLP标记在栽培稻、药用野生稻和玉
米中的比较物理
水稻Pib基因及其连锁RFLP标记在栽培稻、药用野生稻和玉米中的比较物理定位
比较遗传学研究表明,禾本科不同基因组之间存在着广泛的同线性和共线性.对水稻(Oryza sativa L.)这一模式植物与其他禾本科植物的原位杂交定位可以揭示禾本科植物基因组的共同特点和进化规律,为建立禾本科遗传大体系积累资料.实验以图位克隆法分离的水稻Pib 基因(10.3 kb)和与之连锁的RFLP标记为探针, 研究了Pib及与其连锁的RFLP标记在供试种中的同源性和物理位置. Southern杂交结果表明,Pib在玉米(Zea mays L.)基因组中有同源序列.进一步利用单色和双色荧光原位杂交技术确定了Pib在栽培稻(O.sativa ssp. indica cv. Guangluai 4)、玉米和药用野生稻(O. officinalis Wall ex Watt)染色体上的物理位置.定位结果表明,Pib基因和与之连锁的RFLP标记在这3个供试种基因组中具有同线性.
作者:李霞宁顺斌金危危宋运淳作者单位:武汉大学植物发育生物学教育部重点实验室,武汉,430072 刊名:植物学报 ISTIC SCI英文刊名:ACTA BOTANICA SINICA 年,卷(期):2002 44(1) 分类号:Q943 关键词:水稻 RFLP标记双色荧光原位杂交 Pib 比较物理定位 rice RFLP markers double-color FISH ?Pib? comparative physical mapping。

药用野生稻基因组DNA_提取方法比较

药用野生稻基因组DNA_提取方法比较

药用野生稻基因组DNA提取方法比较毕继安1,王芳1,张国芳1,朱宏芬1,沈岚1,郑红英2,严成其1∗㊀(1.宁波市农业科学研究院生物技术研究所,浙江宁波315101;2.宁波大学植物病毒学研究所,浙江宁波315201)摘要㊀以药用野生稻为试验材料,分别选用传统的CTAB提取法㊁CTAB改良方法㊁碱裂解法㊁磁珠法㊁吸附柱法㊁尿素提取法及酶消化法7种方法提取水稻叶片组织DNA,7种方法分别标记为A G㊂通过比较这些方法提取出DNA的浓度和纯度,分析这些方法的优劣势㊂7种方法均能获得较好的基因组,按获得DNA浓度表现为A>B>F>C>G>E>D,纯度表现为D>E>C>G>B>F>A㊂综合考量DNA的纯度㊁浓度㊁提取时间㊁成本㊁安全无毒等方面因素,若对基因组的质量要求不高,只是做简单的检测且考虑成本问题,可以选择CTAB提取法㊁CTAB改良方法和尿素提取法;若需要高纯度基因组,可以选择磁珠法㊁吸附柱法㊁碱裂解法;若考虑安全无毒㊁快速提取及成本可控,可以选择磁珠法㊁吸附柱法;若样品稀有,可以选用CTAB提取法和CTAB改良法㊂关键词㊀药用野生稻;叶片;基因组;提取方法;有利基因中图分类号㊀S511㊀㊀文献标识码㊀A㊀㊀文章编号㊀0517-6611(2023)14-0086-04doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2023.14.021㊀㊀㊀㊀㊀开放科学(资源服务)标识码(OSID):ComparisonofDifferentExtractionMethodsofGenomicDNAfromOryzaofficinalisBIJi⁃an,WANGFang,ZHANGGuo⁃fangetal㊀(InstituteofBiotechnology,NingboAcademyofAgriculturalScience,Ningbo,Zhejiang315101)Abstract㊀WithOryzaofficinalisastestmaterial,sevenmethodswereusedtoextractthegenomicDNAfromtheOryzaofficinalis,includingtraditionalCTABmethod,improvedCTABmethod,alkalinelysismethod,magneticbeadmethod,adsorptioncolumnmethod,ureaextractionmethodandenzymedigestionmethod.ThesevenmethodsarelabeledA-G,respectively.BycomparingtheconcentrationandpurityofDNAextractedbythesemethods,theadvantagesanddisadvantagesofthesemethodswereanalyzed.AllsevenmethodscanobtaingenomicDNA.TheorderofconcentrationfromhightolowisA>B>F>C>G>E>D,andtheorderofpurityfromhightolowisD>E>C>G>B>F>A.Consideringthepurity,concentration,extractiontime,cost,safetyandnon⁃toxicityoftheextractionprocess,CTABorCTABimprovementextractionandureaextractionmethodmaybepreferredaccordingtothecostandpurity.Themagneticbead,adsorptioncolumnandalkalinelysismethodispreferredwhenhigh⁃purityarerequired.Themagneticbeadandadsorptioncolumnmethodispreferredwhensafety,non⁃toxicity,rapidextrac⁃tionandcostlittlearerequired,whiletheCTABandCTABmodificationmethodisrecommendedforlimitedsamples.Keywords㊀Oryzaofficinalis;Leaf;Genome;Extractionmethod;Favorablegenes基金项目㊀宁波市农业科学研究院院长基金项目(2022NKYP005);宁波市科技创新2025重大专项(2021Z106);宁波市科技创新2025重大专项(2019B10004)㊂作者简介㊀毕继安(1987 ),男,山东青岛人,博士,从事抗病育种研究㊂∗通信作者,研究员,博士,从事抗病育种研究㊂收稿日期㊀2022-08-08㊀㊀药用野生稻多生长于海拔600 1100m丘陵山坡中下部的冲积地和沟边,为喜暖㊁喜雨㊁喜潮湿的短日照植物,适宜在阴蔽㊁腐殖质丰富㊁pH为6左右的肥沃砂壤土上生长㊂药用野生稻在稻属22个种中长势最强,是普通栽培稻的20倍以上,在进化过程中,药用野生稻形成了丰富的遗传多样性,药用野生稻因长期处于野生环境,经受各种自然灾害和地理生态因素的考验,形成了较强的抗性和耐受不良环境因素等方面的优异性状,是天然的基因库㊂药用野生稻农艺性状具有大穗㊁宽叶片㊁粗茎秆等性状,为遗传改良提供了良好的资源条件㊂因此,深入挖掘药用野生稻的优良基因对于新种质创新具有重要意义㊂①大量的抗病基因㊂有研究人员通过对抗病基因的克隆以及高抗条纹叶枯病水稻材料的获得,使药用野生稻资源得到了充分利用,更进一步推动了药用野生稻抗病基因的开发与研究[1]㊂水稻白叶枯病是水稻生长发育过程中常见的病害,而药用野生稻具有大量的优异抗性基因,因此从药用野生稻中挖掘抗白叶枯病基因并加以利用,得到了广大科研工作者的高度重视㊂研究发现,云南药用野生稻多个居群类型对4种主要病害存在一定抗性[2-3],云南药用野生稻种质资源对当地一定时期流行的白叶枯病小种及国内外部分强致病菌整体抗性较好[4],这些研究为药用野生稻的有效抗病基因挖掘奠定了基础㊂②创制新种质资源㊂研究发现,利用构建药用野生稻TAC文库筛选有利基因并通过克隆㊁遗传转化方法及结合育种技术,有望实现药用野生稻在新种质资源上的创制[5-7]㊂同时,栽培稻与药用野生稻种间杂种体内异源基因组重组引起的DNA甲基化变异规律为不对称体细胞杂交的基因融合奠定了基础[8],有研究发现,将药用野生稻总DNA通过穗茎注射法导入恢复系R225可以创制耐阴㊁耐光氧化的水稻新种质[9]㊂③优异内源基因的挖掘㊂有研究表明,云南药用野生稻净光合速率较高,其在羧化效率和光饱和点上所表现出的高光效潜能为探索机体高光效基因提供了理论依据[10-11]㊂药用野生稻中淀粉合成酶基因在同属内的自然进化规律的探索,也为水稻的遗传育种和品质改良提供科学依据[12-13]㊂④抗逆途径基因挖掘㊂有研究人员通过基于药用野生稻干旱胁迫转录组数据分析探索ADF基因对药用野生稻非生物胁迫的影响[14],同时还有研究表明,药用野生稻中LEA蛋白在植物抗逆反应起着重要的作用,这为水稻遗传改良提供重要的理论依据[11,15]㊂上述研究说明药用野生稻中药用野生稻中存在大量㊁有利㊁可挖掘的基因,是种质创新的有利基因库,而组织样品的提取方法还不够完善与全面,这将会导致存在部分有利基因片段获取不够完整,因此选择一种合适的方法提取药用野生稻基因组DNA对于有利基因的深入挖掘至关重㊀㊀㊀安徽农业科学,J.AnhuiAgric.Sci.2023,51(14):86-89要㊂药用野生稻因其生理结构特征比栽培稻较为复杂,其基因组提取相对困难,提取质量相对偏低,因此对药用野生稻DNA提取方法进行探索,优化提取步骤,为获得更加合适㊁更加完整的基因组结构提供理论依据㊂笔者以药用野生稻为素材,综合采用7种方法来提取植物的基因组,比较各种方法所提取的基因组含量与纯度,旨在为后序深入挖掘药用野生稻的有利基因提供技术依据㊂1㊀材料与方法1.1㊀试验材料㊀药用野生稻为该试验培育,准备药用野生稻相同叶位的7组样品,每组样品准确称取0.6g,然后三等分㊂主要试剂:聚乙烯吡咯烷酮(生工生物工程(上海)股份有限公司,中国),β-巯基乙醇(索莱宝生物科技有限公司,中国),ProteinK(索莱宝生物科技有限公司,中国),磁珠(美国Promega公司,US),DNA提取试剂盒(QIAGEN,Germany),R-淀粉酶(美国Sigma公司,US)㊂主要仪器:组织研磨仪(Tissuelyser-96,上海净信实业发展有限公司),离心机(5424R,德国艾本德股份公司),恒温水浴锅(DK-8D,上海一恒科学仪器有限公司),超微量紫外分光光度计(NanoDropOneC,US)㊂1.2㊀试验方法1.2.1㊀基于CTAB的经典DNA提取方法㊂①取0.2g水稻叶片组织于液氮中研磨成细粉状,并将粉末快速转移到2mL离心管中㊂②加入500μL提取缓冲液[2%CTAB,100mmol/LTris-HCl(pH7.4),50mmol/LEDTA(pH8.0),1.4mol/LNaCl,0.2%β-巯基乙醇],颠倒混合均匀离心管,将混合物置于65ħ水浴中孵育30min,每隔10min颠倒混匀一次㊂③将离心管置于离心机中,12000r/min离心15min㊂转移离心管中上层液体到新的1.5mL离心管中㊂④加入200μL苯酚ʒ氯仿ʒ异戊醇(25ʒ24ʒ1)到离心管中并颠倒混合均匀,于室温静置5min,将离心管置于离心机中,12000r/min离心10min,转移离心管中上层液于新的1.5mL离心管中㊂⑤加入200μL氯仿ʒ异戊醇(24ʒ1)溶液轻轻颠倒混匀,于室温静置5min后,将其置于离心机中,12000r/min离心10min,转移离心管的上层液体到新的1.5mL离心管中㊂⑥加入2倍体积的冷乙醇(预先于-20ħ保存),轻混匀,并转移到-20ħ冰箱中静置30min㊂⑦将离心管置于离心机中,14000r/min离心2min,弃上清㊂⑧加入洗涤缓冲液(70%乙醇,10mmol/L醋酸铵),重悬沉淀,12000r/min离心1min,弃上清㊂重复该操作步骤一次㊂⑨将沉淀置于空气中干燥并用100μL超纯水将其溶解,并将其置于37ħ水浴锅中孵育30min㊂最后将其置于-20ħ冰箱中备用或用于后续试验[16-17]㊂1.2.2㊀基于CTAB提取DNA方法的改良㊂①取0.2g水稻叶片和0.1g聚乙烯吡咯烷酮于液氮中研磨成粉末㊂②将粉末转移至2mL离心管中㊂随后将1mL预冷提取缓冲液(100mmol/LTris-HCl㊁50mmol/LEDTA㊁500mmol/LNaCl和2%β-巯基乙醇,最终调节pH至8.0)加入离心管中,涡旋振荡混合物,并在室温下静置10min㊂然后将离心管于4ħ12000r/min下离心10min,弃上清㊂③将沉淀悬浮于1mL预热的提取缓冲液中(3%CTAB㊁1.4mmol/LNaCl㊁100mmol/LTris-HCl㊁0.5mol/LEDTA和2%β-ME,pH为8 0),与此同时加入20μLProteinK并将混合物于65ħ水浴下孵育至少1h,同时每隔20min颠倒混匀一次,然后将混合物于4ħ12000r/min下离心10min㊂④将上清液转移到新的2mL离心管中,然后向离心管中加入等体积的氯仿ʒ异戊醇(24ʒ1)㊂颠倒混匀后置于室温下静置10min,然后于4ħ12000r/min离心10min㊂⑤将水相转移到新的2mL离心管中㊂加入大约1/10体积的2.5mol/LKAC溶液(pH5.2)㊂⑥将上层水相转移到另一个新的2mL管中,加入1/3体积的冰异丙醇溶液㊂将离心管静置于-20ħ冰箱中30min,随后在4ħ12000r/min下离心10min㊂⑦弃上清,用多糖㊁多酚洗涤缓冲液(含50mmol/LTris-HCl㊁5mmol/LEDTA㊁350mmol/L山梨糖醇,pH8.0)洗涤1次㊂⑧弃掉上清液,将含有DNA的白色沉淀用70%乙醇洗涤2次,自然环境干燥㊂⑨将最终的DNA沉淀用100μL超纯水溶解[18-19]㊂1.2.3㊀碱裂解法㊂①取0.2g水稻叶片组织于液氮中研磨成细粉状,接着将其转移到2mL离心管中㊂②在离心管中加入100μL碱性裂解试剂[25mmol/LNaOH和0.2mmol/LEDTA(PH8.0)],随后添加100μL缓冲试剂[40mmol/LTris-HCl(pH5)]并混匀,静置2min㊂③将离心管置于离心机中12000r/min离心5min,取上清液㊂④上清液中加入20μL蛋白酶K(20mg/mL)及5μLRNase(10mg/mL)后于37ħ水浴锅中孵育30min,再将其置于65ħ水浴锅孵育10min㊂⑤加入200μL氯仿ʒ异戊醇(24ʒ1)溶液并轻轻颠倒混匀,静置5min后,将其置于离心机中,12000r/min离心10min,转移离心管中的上层液体到新的1.5mL离心管中㊂⑥加入2倍体积的冷乙醇(预先于-20ħ保存),轻混匀,并于-20ħ冰箱中静置30min㊂⑦将离心管置于离心机中,14000r/min离心2min,弃上清㊂⑧加入70%乙醇溶液重悬沉淀,12000r/min离心1min,弃上清;重复该操作步骤1次㊂⑨室温条件下晾干沉淀,加入100μL超纯水充分溶解,保存于-20ħ冰箱中待用[20]㊂1.2.4㊀磁珠法㊂①取0.2g水稻叶片组织于液氮中研磨成粉末,并将粉末转移到2mL离心管中,并加入1mL裂解缓冲液(2%CTAB㊁2.5mmol/LNaCl㊁0.1mol/LTris-HCl㊁20mmol/LEDTA),颠倒混匀㊂②将上述混合物通过0.22μm过滤器,转移到新2mL离心管中,在滤液中加入800μL异丙醇和50μL蛋白酶K,充分混匀㊂③在滤液中加入20μL磁珠原液并涡旋3 4min,静置1min㊂④将混合物置于磁力架沉淀磁珠,弃去上清中不含磁珠的液体㊂⑤磁珠用1mLCW1缓冲液(含7mol/L盐酸胍的50%异丙醇溶液)进行清洗㊂⑥磁珠再用1mLCW2缓冲液(75%乙醇)洗涤2次㊂随后室温放置5min以蒸发残留的乙醇㊂⑦将30μL洗脱缓冲液(10mmol/LTris-HCl,pH8.5,预热至55ħ)加入磁珠中,随后在55ħ水浴锅中孵育5min,孵育期间每隔1min涡旋20s㊂⑧将混合物置于磁力架上,吸取上清液备用[21-23]㊂7851卷14期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀毕继安等㊀药用野生稻基因组DNA提取方法比较1.2.5㊀吸附柱法㊂①取0.2g水稻叶片组织置于研钵中,同时加入液氮充分研磨㊂②加入440μL缓冲液AP1,颠倒混匀材料,再加4μLRNase后,剧烈涡旋混匀㊂③将上述混合物在65ħ下温浴15min,每隔5min轻轻颠倒试管2 3次㊂④加入130μL缓冲液AP2后,轻柔颠倒混匀,并将其置于冰上静置5min㊂⑤将离心管置于离心机中,14000r/min离心5min,缓慢吸取上层液体(500μL)置于MiniSpinColum(柱)中,14000r/min离心1min㊂⑥将上一步中的滤液(450μL)缓慢转移至一新的离心管中,并在溶液中缓慢加入1.5倍体积(675μL)的缓冲液AP3㊂⑦将上一步中混合液(包括形成的沉淀)转移至MiniSpinColum(柱)中,14000r/min离心1min,丢弃废液㊂⑧在MiniSpinColum(柱)中加入500μL缓冲液AW,放置3 5min,12000r/min离心1min,弃掉废液㊂重复洗涤1次㊂⑨在MiniSpinColum(柱)中加入500μL无水乙醇,放置3 5min,12000r/min离心3min,丢弃废液和收集管㊂⑩在MiniSpinColum(柱)下置1.5mL离心管,吸取100μL超纯水加到Dneasy膜上㊂65ħ水浴锅中静置5min,14000r/min离心1min得到DNA㊂1.2.6㊀尿素提取法㊂①利用液氮将0.2g水稻叶片组织研磨成粉末,并转移到2mL离心管中㊂②在离心管中加入600μL尿素提取液(42g尿素㊁7mL5mol/LNaCl㊁5mL1mol/LTris-HClpH8.0㊁4mL0.5mol/LEDTApH8.0和5mL20%Na-N-月桂酰肌氨酸,加入无菌蒸馏水调整最终体积至100mL,温度不高于70ħ)涡旋混匀,于室温下静置1h㊂③将离心管置于离心机中,以12000r/min离心5min㊂④取上清,加入等体积的苯酚ʒ氯仿(1ʒ1)溶液,涡旋混匀离心管㊂⑤将离心管置于预冷的4ħ离心机中,12000r/min离心5min㊂⑥取上清液,加入等体积的异丙醇溶液,颠倒混匀,于4ħ环境静置1h㊂⑦将离心管置于预冷的4ħ的离心机中,12000r/min离心5min㊂⑧弃上清,真空干燥沉淀2min㊂⑨用100μLTE缓冲液(1mL1.0mol/LTris-HCl和0.2mL0.5mol/LEDTA,调节pH到8.0,并用无菌水定容至100mL)溶解沉淀,待用[24-25]㊂1.2.7㊀酶消化法㊂①取0.2g水稻组织叶片在液氮中充分研磨后加入300μL缓冲液[含0.1mol/LTris-HCl(pH8.0)和0.1mol/LNaCl],并涡旋振荡混匀㊂②在上述溶液中加入10μLR-淀粉酶(Sigma,US),颠倒混匀,于80ħ恒温金属浴中孵育1h㊂③加入33μL2%SDS㊁20μLProteinK和1μLRNaseA,并将其置于55ħ恒温金属浴中孵育1h㊂④加入300μL苯酚ʒ氯仿ʒ异戊醇(25ʒ24ʒ1)溶液,剧烈涡旋振荡2min㊂⑤将上述溶液于15000r/min离心1min,转移上清溶液至2.0mL离心管中,随后加入2倍体积预冷乙醇并置于冰上静置15min㊂⑥将离心管置于预冷的离心机中,4ħ15000r/min离心15min,弃上清㊂⑦离心管中加入500μL预冷的70%乙醇,洗涤沉淀,4ħ,15000r/min离心1min㊂重复1遍㊂⑧弃上清,室温下风干沉淀,加入100μL超纯水溶解沉淀,待用[26-28]㊂2㊀结果与分析2.1㊀水稻基因组浓度㊀采用7种方法得到水稻叶片的基因组后,利用超微量紫外分光光度计测量其浓度,具体数值见表1,不同提取方法得到的DNA浓度存在差异,浓度由高到低依次为A>B>F>C>G>E>D,通过CTAB法获得的基因组DNA可能存在与植物组织中少量的糖类及淀粉或其他物质结合,因此在测量过程中存在一定偏差,导致浓度偏高;而通过磁珠法提取的基因组,因其是在外磁场的作用下纳米磁性微球与核酸结合,磁场大小及磁性微球的特性决定其结合能力,因此浓度偏低一些㊂2.2㊀水稻基因组纯度㊀核酸纯度一般用A260/A230和A260/A280来表示㊂其中,260nm是核酸最高吸收峰的吸收波长,230nm是碳水化合物最高吸收峰的吸收波长,280nm是蛋白最高吸收峰的吸收波长㊂高纯度的DNA其A260/A280比值大于1.8,如果比值小于1.8,表示受到蛋白(芳香族)或酚类物质的污染,需要对样品进行纯化;同时DNA纯度的另一个指标为A260/A230,如果A260/A230的比值大于1.8,说明纯度较高,如果小于1.8,表示样品被碳水化合物(糖类)㊁盐类或有机溶剂污染,需要对样品进行纯化㊂根据测定结果来看,这些方法提取的DNA纯度均较高,纯度表现为D>E>C>G>B>F>A(表1)㊂从纯度数据来看,利用磁珠法提取的基因组纯度最高㊂表1㊀不同提取方法的样品浓度及纯度比较Table1㊀Comparisonofconcentrationandpuritybydifferentextrac⁃tionmethodsofsample提取方法Extractionmethod样品平均浓度Averageconcentrationofsamplesʊng/μLA260/A230A260/A280A1816.2861.8501.878B1603.5771.9051.896C1585.3021.9851.936D1131.6672.0232.133E1249.0241.9782.005F1587.4991.8761.868G1328.3691.9611.9063㊀讨论对以上7种方法提取的基因组DNA浓度及纯度进行测定,发现经典CTAB提取方法提取的浓度及纯度较高,适合一般性试验需要,但在试验过程中会用到含有氯仿的有毒试剂,且耗时较长,这需要试验人员规范操作;基于CTAB的改良方法,提取过程中会使用蛋白酶K,这样会有效酶解与核酸结合的组蛋白,使DNA游离在溶液中,且EDTA等螯合剂均不能使之失活,这样提取出的DNA纯度会更高一些;利用碱裂解法提取的叶片组织效果和CTAB相差不大,在裂解植物组织方面效果较好,尤其是在提取纤维素较多的根部㊁茎部优势较为明显;磁珠法提取基因组DNA在前期裂解上使用的是CTAB试剂,但是在纯化的过程中利用了磁珠的优势,使其能在微观界面上与核酸分子特异性地识别和高效结合,并利用二氧化硅包被的纳米磁性微球的超顺磁性,在88㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀安徽农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀2023年Chaotropic盐(盐酸胍㊁异硫氰酸胍等)和外加磁场的作用下,能从样本中分离出纯度较高的基因组DNA,可用于后续分子杂交试验,但是价格较昂贵㊂吸附柱法是在离心吸附柱内使用一种硅基质滤膜,这种滤膜在低pH㊁高浓度盐存在的条件下,可以选择性吸附DNA片段,而蛋白和其他杂质不会被吸附㊂通过这种方法提取出的DNA浓度相对其他方法较低,有一定量的DNA损失,但是纯度相对较高,减少了有毒试剂的使用,提取时间也相对较短;尿素提取法操作过程比较温和,不需要剧烈的振荡及高温的处理,不易造成DNA变性降解;酶消化法提取的DNA可以轻松地去除植物组织中的淀粉和糖原,用这种方法提取的DNA能避免了基因组中淀粉及糖原的干扰,使DNA的纯度会更高一些,利于基因组获取更加全面与完整㊂因此,需要根据试验材料㊁目的以及后续研究需要综合评估选用适宜的提取纯化方法,在得率与纯度间取得平衡㊂该研究比较了7种不同DNA提取方法,为后续开展药用野生稻基因组的分离及其功能研究奠定基础㊂4 结论药用野生稻作为我国的主要野生稻物种,因其体内含有大量未知功能的有利基因,近些年得到了较为广泛的研究㊂笔者比较了不同提取野生稻基因组DNA方法,综合各方面因素考量,若只需简单的检测且考虑成本问题,可以选择CTAB提取法㊁CTAB改良方法和尿素提取法,但在使用过程中会用到较毒的有机试剂,提取过程需小心谨慎;如需要高纯度基因组可以选择磁珠法㊁吸附柱法㊁碱裂解法;若考虑安全无毒㊁快速提取及成本可控可以选磁珠法㊁吸附柱法;若样品稀有可以选用CTAB提取法和CTAB改良法㊂通过比较这些方法的优劣势,可以为满足不同试验需要选择高效㊁简便㊁安全无毒㊁低成本的最优DNA提取方法提供了一定理论依据,同时也为指导水稻不同组织部位DNA的提取提供了参考价值,进一步为开发与优化快速提取药用野生稻基因组DNA提供理论指导㊂参考文献[1]董岩,钱长根,张维林,等.药用野生稻体细胞杂交后代对条纹叶枯病的抗性鉴定[J].生物技术通讯,2013,24(5):682-684.[2]杨雅云,张敦宇,陈玲,等.云南药用野生稻对四种水稻主要病害的抗性鉴定[J].植物病理学报,2019,49(1):101-112.[3]杨士杰药用野生稻杂交后代对稻瘟病的抗性[J].湖北农业科学,2017,56(3):415-417.[4]陈玲,张敦宇,陈越,等.云南药用野生稻种质资源的白叶枯病抗性评价[J].南方农业学报,2019,50(7):1417-1425.[5]刘蕊,张欢欢,陈志雄,等.筛选和转化药用野生稻TAC克隆获得耐旱水稻[J].中国农业科学,2014,47(8):1445-1457.[6]苏龙,徐志健,乔卫华,等.广西药用野生稻遗传多样性分析及SSR引物数量对遗传多样性结果的影响研究[J].植物遗传资源学报,2017,18(4):603-610.[7]张霞,景翔,周光才,等.药用野生稻GBSS基因的系统发育及组织特异性表达[J].植物学报,2019,54(3):343-349.[8]何平,疏冕,蔡晓丹,等.栽培稻ˑ药用野生稻种间杂种基因组DNA甲基化的遗传与变异研究[J].华北农学报,2017,32(4):19-31.[9]韩义胜,严小微,唐清杰,等.利用药用野生稻培育耐光氧化和耐荫水稻新种质的研究[J].广东农业科学,2014,41(8):22-25.[10]柯学,殷富有,肖素勤,等.云南药用野生稻的高光效特性[J].中国稻米,2015,21(4):72-76.[11]张大燕,李红梅,李培纲,等.药用野生稻OoLEA1基因的克隆和生物信息学分析[J].分子植物育种,2017,15(5):1597-1602.[12]景翔.药用野生稻中淀粉合成酶基因家族的进化[D].曲阜:曲阜师范大学,2016.[13]郭辉,陈灿,张晓丽,等.广西野生稻耐冷性鉴定与遗传纯合研究[J].西南农业学报,2017,30(6):1245-1250.[14]李培纲,李红梅,张帅,等.药用野生稻ADF基因的克隆及其抗逆性分析[J].华北农学报,2017,32(6):37-44.[15]王玲仙,王波,陈越,等.云南药用野生稻幼穗离体培养研究[J].中国稻米,2020,26(2):49-53.[16]OHTSUBOK,SUZUKIK,HARAGUCHIK,etal.Novelmethodforprepa⁃rationofthetemplateDNAandselectionofprimerstodifferentiatethematerialricecultivarsofricewinebyPCR[J].JBiochemBiophysMeth⁃ods,2008,70(6):1020-1028.[17]李娥贤,殷富有,张敦宇,等.云南药用野生稻高质量染色体DNA的制备[J].作物杂志,2020(5):103-109.[18]ABDEL⁃LATIFA,OSMANG.ComparisonofthreegenomicDNAextrac⁃tionmethodstoobtainhighDNAqualityfrommaize[J].PlantMethods,2017,13:1-9.[19]WENGQ,LIJ,LIUXH,etal.ExtractionoftotalDNAandoptimizationoftheRAPDreactionsysteminDioscoreaoppositaThunb.[J].GenetMolRes,2014,13(1):1339-1347.[20]NARUSHIMAJ,KIMATAS,SOGAK,etal.RapidDNAtemplateprepara⁃tiondirectlyfromaricesamplewithoutpurificationforloop⁃mediatediso⁃thermalamplification(LAMP)ofricegenes[J].BiosciBiotechnolBio⁃chem,2020,84(4):670-677.[21]YUANQB,HUANGYM,WUWB,etal.Redistributionofintracellularandextracellularfree&adsorbedantibioticresistancegenesthroughawastewatertreatmentplantbyanenhancedextracellularDNAextractionmethodwithmagneticbeads[J/OL].EnvironInt,2019,131[2022-03-14].https://doi.org/10.1016/j.envint.2019.104986.[22]TAKAHASHIH,TAKAKURAC,KIMURAB.Aquantitativereal⁃timePCRmethodformonitoringClostridiumbotulinumtypeAinricesamples[J].JFoodProt,2010,73(4):688-694.[23]WANGXF,CHENY,CHENXY,etal.AhighlyintegratedsystemwithrapidDNAextraction,recombinasepolymeraseamplification,andlateralflowbiosensorforon⁃sitedetectionofgeneticallymodifiedcrops[J].AnalChimActa,2020,1109:158-168.[24]YIG,CHOIJH,LEEJH,etal.Rapidandsimpleprocedureforhomoge⁃nizingleaftissuessuitableformini⁃midi⁃scaleDNAextractioninrice[J].PrepBiochemBiotechnol,2005,35(3):257-261.[25]MUTOUC,TANAKAK,ISHIKAWAR.DNAextractionfromriceendo⁃sperm(includingaprotocolforextractionofDNAfromancientseedsam⁃ples)[J].MethodsMolBiol,2014,1099:7-15.[26]BOJANGKP,KUNAA,PUSHPAVALLISNCVL,etal.EvaluationofDNAextractionmethodsformoleculartraceabilityincoldpressed,solventextractedandrefinedgroundnutoils[J].JFoodSciTechnol,2021,58(9):3561-3567.[27]DUANYB,ZHAOFL,CHENHD,etal.AsimplifiedgenomicDNAex⁃tractionprotocolforpre⁃germinationgenotypinginrice[J].GenetMolRes,2015,14(2):6369-6375.[28]SAGIN,MONMAK,IBEA,etal.Comparativeevaluationofthreediffer⁃entextractionmethodsforrice(OryzasativaL.)genomicDNA[J].JAgricFoodChem,2009,57(7):2745-2753.9851卷14期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀毕继安等㊀药用野生稻基因组DNA提取方法比较。

中国普通野生稻与栽培稻种SSR多样性的比较分析

中国普通野生稻与栽培稻种SSR多样性的比较分析
作物学报 ACTA AGRONOMICA SINICA 2008, 34(4): 591-597 ISSN 0496-3490; CODEN TSHPA9
http:///zwxb/ E-mail: xbzw@
DOI: 10.3724/SP.J.1006.2008.00591
Abstract: Forty-eight SSR markers were used to compare genetic diversity in 288 accessions of common wild rice (O. rufipogon
Griff.) and cultivated rice (O. sativa L.) in China. There were 505 alleles at the 48 loci investigated. The average number of alleles per locus (Na) was 10.5 with a range from 5 to 20. Total Nei’s genetic diversity index of Nei per locus (He) varied widely from 0.384 (RM409) to 0.905 (RM206) with an average value of 0.731. By comparison of the genetic changes in Na and He, the genetic diversity of common wild rice was obviously higher than that of cultivated rice. Na and He of cultivated rice was only about 70.2% and 88.2% of common wide rice, respectively. In cultivated rice, Na of landraces and improved varieties were 65.4% and 53.0% of common wild rice respectively, and Na of improved varieties was 81.1% of landraces. Analysis of molecular variance (AMOVA) indicated that 10.3% of the variation was from differences between species. Using locus-by-locus AMOVA procedure, there were 43 loci with significant differentiation. The highest genetic differentiation was 46.3% (RM427) with a range from 0.7% to 46.3%. A cluster analysis showed japonica was the main trend for most of common wild rice in China. In addition, only a few of accessions from Guangdong and Hainan showed tendency towards indica type. Keywords: Common wild rice (O. rufipogon); Cultivated rice (O. sativa); Landrace; Improved variety; Genetic diversity; Analysis of molecular variance

第二届中国杂交粳稻科技创新研讨会资料

第二届中国杂交粳稻科技创新研讨会资料
• 松尾孝岭(Matsuo 1952)把栽培稻分为A型(日 本型粳稻)、B型(印尼型或籼粳中间型)、C型 (印度型籼稻)。
• 冈彦一(Oka 1953)把栽培稻分为大陆型(印度、 印尼、中国南部、中部)及海岛型,海岛型又分 为温带海岛型(日本、朝鲜)和热带海岛型(爪 哇)。
• 张德慈分为籼亚种(indica)、粳亚种(japonica) 和爪哇亚种(Javanica),并进一步演化成各种 生态型。
• 汤圣祥、闵绍楷、佐藤洋一郎根据:①极大部分粳稻遗址分布在 长江中下游地区,其中4个年代最古老的粳稻遗址罗家角、河姆 渡、仙蠡墩、草鞋山(距今6000~7000年,3个点籼、粳混合并 存)全分布在太湖流域;②江苏吴江龙南遗址第四层出土的炭化 稻谷和米粒,经水稻植物蛋白石分析,绝大部分是粳稻硅酸体 (距今5000年左右);③安徽的塘稻、江苏连云港稆稻不是原始 型的粳稻,也是具有粳稻特性的杂草稻(普通野生稻与原始栽培 稻渐渗杂交的后代),推认我国粳稻独立起源于偏粳的普通野生 稻,籼、粳稻是平行演化的,我国粳稻最重要的起源地是长江中 下游的平原沼泽地带,其中心区域位于太湖流域。
• 染色体组的确定主要根据F1植株的染色体配对情 况。
谢思特里(shastry,1960) 对水稻在减数分裂粗线期染色体长度的观察:
编号
1 2 3 4 5 6
长度 (um)
79 47.5 47.0 38.5 30.5 27.5
编号
7 8 9 10 11 12
长度
26.0 23.0 21.0 21.0 20.5 18.0
• 另外非洲野生稻、光身野生稻、长药野生稻也是 栽培稻关系密切的种。
稻属中有两个栽培种,即:
亚洲栽培稻
和 非洲栽培稻
普通栽培稻
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第31卷第2期 2012年6月 中南民族大学学报(自然科学版) 

Journal of South-Central University for Nationalities(Nat.Sci.Edition) Vo1.31 No.2 

Jun.2012 

利用粳稻基因组DNA和C。 一 DNA探针 对普通野生稻和亚洲栽培稻的比较分析 覃瑞 ,李智 ,刘 虹 ,陈雁 ,蔡朝晖 ,李 刚 (1中南民族大学生命科学学院,南方少数民族地区生物资源保护与综合利用联合工程中心,武汉430074; 2咸宁学院化学与生命科学学院,咸宁437100) 

摘 要 以粳稻日本晴基因组DNA和C t—J DNA为探针,分别对日本晴、籼稻广陆矮4号和普通野生稻的染色体 组进行了基因组原位杂交(GISH)和C t—J DNA荧光原位杂交(FISH)分析,并对3种染色体组进行了同源聚类和 比较研究.结果表明:粳稻基因组DNA和C t—J DNA探针信号在3种水稻染色体组中的分布状况和覆盖率相似, C。t—J DNA的覆盖率分别为(47.13±0.18)%、(45.89±0.22)%、(44.24±0.21)%,3种水稻基因组同源性高,亲 缘关系接近.C。t—j DNA在3种水稻染色体上的杂交信号分布各有特点,中高度重复序列的变异在普通野生稻向栽 培稻进化和亚洲栽培稻籼、粳分化过程中具有重要意义,中高度重复序列含量较低的2、5、8号染色体是水稻染色 体组进化过程中相对活跃的成分. 关键词C t一 DNA;基因组;核型;水稻;普通野生稻 中图分类号 Q813.4 文献标识码A文章编号 1672-4321(2012)02-0024-05 

Comparative Analysis of Oryza rufipogon Griff.and Oryza sativa with Nipponbare Genomic DNA and C t.1 DNA Probes Qin Rui ,Li Zhi ,Liu Hong ,ChenYan ,Cai zhaohui ,Li 昭 (1 Engineering Research Center for Protection and Utilization of Bioresource in Ethnic Area of Southern China College of Life Sciences,South—Central University for Nationalities,Wuhan 430074,China; 2 Chemical and Life Sciences College of Xianning University,Xianning 437100,China) 

Abstract Using genomic DNA and C。t—J DNA of Nipponbare as probes,GISH(genimic in situ hybridization)and C t J 

DNA FISH(fluorescence in situ hybridization)were adopted to analyse the genomes of japonica Nipponbare,indica Guangluai 4 and Oryza rufipogon Grif.karyotype.Homologous clustering and comparative study of the above 3 genomes were also made.The results indicated that the distribution and coverage of genomic DNA and C t—J DNA probes in 3 rice genomes were very similar.The coverage percentage of C。t—J DNA in Nipponbare,Guangluai 4 and Oryza rufipogon Grif. 

were(47.13±0.18)%,(45.89- ̄-0.22)%and(44.24±0.21)%respectively,demonstrating the high homology and close relationship among them.The highly and moderately repetitive DNA sequences played an impo ̄ant role in the evolution of rice species and indica-japonica genetic differentiation,since their hybridization signal distribution had their own characteristics.The chromosomes which contain less highly and moderately repetitive DNA sequences(No.2、5、8)are more active in rice genome’S evolution. Keywords C。t—J DNA;genome;karyotype;rice;Oryza rufipogon Grif. 

稻属(Oryza L.)隶属禾本科(Gramineae)稻族 (Oryzeae Dumortier),含有2个栽培稻种和20多个 野生稻种…,广泛分布于全球热带和亚热带地区. 籼稻(indica)和粳稻(japonica)代表了栽培稻中2个 

收稿日期2012-03-22 通讯作者李刚(1968一),男,副教授,研究方向:植物遗传资源,E-mail: 作者简介覃瑞(1971一),男,教授,研究方向:植物细胞遗传,E-mail:qinrui19722003@yahoo.con 基金项目 湖北省自然科学基金资助项目(2008CDB392) 

lg863@yahoo.com.an 

en 第2期 覃瑞,等:利用粳稻基因组DNA和Cof一』DNA探针对普通野生稻和亚洲栽培稻的比较分析 25 具有一定生殖隔离的基因库,是亚洲栽培稻(Oryza sativa L.)分化最深刻和最主要的2个方向.因此, 籼粳分化是水稻起源研究的一个重要方面 ],利用 其遗传差异进行杂交获得较高的杂种优势是实现水 稻超高产育种目标的有效途径 J. 基因组原位杂交(GISH)是基于荧光原位杂交 (FISH)发展起来的一种原位杂交技术,它能快速、 有效地鉴定基因组结构和各基因组之间的亲缘关 系L4 J.C。t一 DNA主要为中高度重复序列,包含卫星 DNA,微卫星DNA,核糖体DNA及端粒、着丝粒等 重复序列.C。t- DNA FISH即利用一个基因组或种 的C。t— DNA为探针与另一个基因组或种的染色体 进行荧光原位杂交,通过中高度重复序列在自身或 者另一个物种基因组染色体上的分布情况 ],反映 物种基因组之间的关系.同时在杂交后洗脱时调整 洗脱严谨度,将那些同源性不高的探针从基因组 DNA上去除以分辨同源性高者. 前人曾利用基因组中的重复序列研究水稻基因 组遗传分化,如R.Shishido 等利用SSR标记,对 取自缅甸的16种普通野生稻个体进行了分类. Huang 等发现转座子插入多态性导致籼粳稻在基 因组上约14%的差异.虽然上述研究利用了基因组 中的重复序列,但均为重复序列中的特定种类,个性 强而共性不足,不能完全体现重复序列在不同基因 组上的变化,故本文利用能代表基因组中所有中高 度重复序列的C。t— DNA为探针,结合GISH和 FISH手段对日本晴、籼稻广陆矮4号和普通野生稻 的染色体组进行比较基因组学分析,探讨中高度重 复序列在水稻籼粳分化中所起作用. 1材料与方法 1.1材料、试剂和仪器 栽培稻籼稻“广陆矮4号”由湖北省农业科学 院曾左葵研究员提供.栽培稻粳稻“日本晴”和中国 普通野生稻由武汉大学生命科学学院何光存教授提 供.中期染色体制片参照Yan¨8 和Songl9 的方法. 琼脂糖凝胶(Sepharose CL-6B)、核酸酶(2U/l ̄g DNA,Promega),平移试剂盒(Nick Translation Kit, Roche),生物素化dUTP(bio-11一dUTP,华美生物工 程公司),甲酰胺、TritonX-100(Sigma),硫酸葡聚糖 (Amresco),纤维素酶(Celluiase Onuzuka R一10,中科 院上海生化所),果胶酶(Serva),链亲和素一Cy3 (Streptavidin—Cy3,Rockland). Coo1.1300QS CCD相机(含Case Data Manager Expo 2.1。1软件,VDS,Germany),BX51、BX61荧光 显微镜(Olympus). 1.2 C t— DNA的制备 CTAB法提取栽培稻“日本晴”总DNA,参照文 献[10]改良C t— DNA制备参照Zwickl11]等的方 法.将总DNA于0.14Mpa高压下灭菌3~15min,打 断成800~1500bp长的片段.根据C t- DNA动力 学公式C。t=cDNA(mol/L)× (C。t=1, =1/ c。 ),计算C。t一 DNA完全复性所需的时间.C。t— DNA完全复性后,用s1核酸酶37 ̄C酶解1h,平衡 酚抽提,无水乙醇沉淀过夜,12000r/min离心 10min,70%乙醇洗涤,最后于TE溶液中溶解得所 需C。t一,DNA. 1.3探针标记与检测 C t. DNA采取切刻平移试剂盒方法标记. 50txl反应体系中含有dNTPs、bio-11一dTUP、DNase I、 DNA聚合酶I和0.2~0.5Ixg探针DNA,15oC下标 记3.5h后,6O℃水浴10min终止反应,Sepharose CL-6B纯化,抗生物素蛋白的碱性磷酸酶点印迹法 检测标记效果. 1.4荧光原位杂交及检测 GISH和FISH分别参考文献[12]和[13]改良. 染色体制片于6O℃下烤片l h,RNase A/2×SSC (1OIxg/mL,含0.15 moL/L NaC1和0.015 mol/L柠 檬酸钠)37oC处理1h;2×SSC室温漂洗10min; lOmmol/L胃蛋白酶,5mg/L HC1 37cI=处理7~8min; 2×SSC室温漂洗10min;70%甲酰胺64℃下变性 4min(普通野生稻68oC,4min);一20℃70%、95% 和无水乙醇各洗脱5 min,室温晾干.每张片子杂交 液含100 ng标记的探针DNA、50%去离子甲酰胺、 8%硫酸葡聚糖、10%2×SSC、0.1%SDS、21xg鲑鱼 精DNA,37℃杂交过夜. 杂交信号的荧光检测:42℃用30~40%甲酰胺 (据Meinkoth&Wahl的严谨度公式,增加甲酰胺、 降低SSC比例,可增加洗脱严谨度 14]),2×SSC, 0.2×SSC各洗脱10min;0.1%TritonX一100处理 5min,PBS洗脱10min;晾干后每张片子加链亲和素一 Cy3,37℃保温皿中温育l h.PBS洗3次,每次5min. 40 L DAPI(1Omg/L)复染,荧光显微镜观察并 摄图. 1.5软件分析 用SPOT advanced软件测量染色体长度和计算 杂交信号区域面积,用FISH View EXPO 2.0软件进 行图片处理和核型分析¨ ,用Auto CAD 2008软件

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