樟子松赤枯病拮抗真菌的筛选
常见植物真菌性病害拮抗酵母菌的筛选与鉴定

2020年5月第35卷第3期 JOURNALOFLIGHTINDUSTRY Vol.35No.3May2020 收稿日期:2020-02-07作者简介:马伟东(1972—),男,河南省镇平县人,南阳市镇平县农业推广站高级农艺师,主要研究方向为土壤肥料研究与实践.通信作者:张俊杰(1984—),男,河南省汝州市人,郑州轻工业大学副教授,博士,主要研究方向为功能微生物生态与应用.引用格式:马伟东,李硕,王晨晨,等.常见植物真菌性病害拮抗酵母菌的筛选与鉴定[J].轻工学报,2020,35(3):11-18.中图分类号:TS255.1;TS41 文献标识码:A DOI:10.12187/2020.03.002文章编号:2096-1553(2020)03-0011-08常见植物真菌性病害拮抗酵母菌的筛选与鉴定Screeningandidentificationofcommonplantfungaldiseaseantagonisticyeast关键词:植物真菌性病害;拮抗酵母菌;平板对峙法Keywords:plantfungaldisease;antagonisticyeast;plateconfrontationmethod马伟东1,李硕2,王晨晨2,刘溢彩2,张畅2,吴昊2,田寅2,张俊杰2MAWeidong1,LIShuo2,WANGChenchen2,LIUYicai2,ZHANGChang2,WUHao2,TIANYin2,ZHANGJunjie21.南阳市镇平县农业推广站,河南南阳474250;2.郑州轻工业大学食品与生物工程学院,河南郑州4500011.ZhenpingCountyAgriculturalExtensionStationinNanyangCity,Nanyang474250,China;2.CollegeofFoodandBioengineering,ZhengzhouUniversityofLightIndustry,Zhengzhou450001,China摘要:针对黄瓜枯萎病病原菌(黄瓜尖孢镰刀菌)、烟草赤星病病原菌(赤星霉菌)和紫云英根腐病病原菌(紫云英根腐病菌)3种常见植物真菌性病害,采用平板对峙法,从已分离保存的81株酵母菌中筛选出具有较强拮抗作用的10株酵母菌,通过形态学特征、生理生化特征、基因测序分析以确定其分类学地位.结果表明:酵母菌WYCCW10371对黄瓜尖孢镰刀菌拮抗效果最好,其抑菌率为46.2%,该菌株被鉴定为Hanseniasporavineae;酵母菌WYCCW10196对赤星霉菌拮抗效果最好,其抑菌率为30.6%,该菌株被鉴定为Starmerellabacillaris;酵母菌WYCCW11142对紫云英根腐病菌拮抗效果最好,其抑菌率为20.7%,该菌株被鉴定为Pichiaterricola.·11· 2020年5月第35卷第3期Abstract:For3commonplantfungaldiseasesofcucumberfusariumwiltpathogen(cucumberfusariumoxys porum),tobaccobrownspotpathogen(redstarmould)andChinesemilkvetchrootrotpathogen(Chinesemilkvetchrootrotfungus),10yeaststrainswithstrongantagonisticeffectwerescreenedoutfrom81isolatedandpreservedyeaststrainsbyplateconfrontationmethod.Theclassificationstatusoftheyeaststrainswasdeterminedbyanalyzingmorphologicalcharacteristics,physiologicalandbiochemicalcharacteristicsandgenesequencinganalysis.TheresultsshowedthatWYCCW10371hadthebestantagonisticeffectagainstthecucumberfusariumoxysporum,itsbacteriostaticratewas46.2%,whichwasidentifiedasHanseniasporavineae;WYCCW10196hadthebestantagonisticeffectagainsttheredstarmould,itsbacteriostaticratewas30.6%,whichwasidentifiedasStarmerellabacillusaris;WYCCW11142hadthebestantagonisticeffectagainsttheChinesemilkvetchrootrotfungus,itsbacteriostaticratewas20.7%,whichwasidentifiedasPichiaterricola.0 前言由真菌引起的植物病害在全球范围内都较为常见[1].针对植物病害的主要防治手段是施加化学农药[2-6],而这一措施会造成致病菌产生抗药性、农药残留等问题[7],因此,生物防治的理念越来越受到业界的重视.生物防治主要是利用拮抗微生物及其代谢产物对植物病害病原菌产生抑制作用,从而削弱病原菌致病力,达到防治效果[8].生物防治由于具有不污染环境、不使致病菌产生抗药性等优点而成为近年来农作物病虫害防治的研究热点[9-11].果蔬等在生长、采摘、运输、贮藏等过程中若处理不当,易腐烂变质,而真菌性病原菌是引起果蔬等腐烂的主导因素[12-13].黄瓜枯萎病是由黄瓜尖孢镰刀菌引起的土传真菌性病害,可严重影响黄瓜的水分含量[14],进而影响黄瓜的品质和产量[15].目前已报道的对黄瓜枯萎病病原菌(黄瓜尖孢镰刀菌)具有生物防治潜力的微生物主要有假单胞菌属、链霉菌[10]、芽孢杆菌[16]、细菌[17]等.烟草赤星病(又称赤斑病)是一种由半知菌亚门链格孢属赤星霉菌侵染引起的主要危害烟叶的真菌性病害[18-20].目前已报道的对烟草赤星病病原菌(赤星霉菌)具有生物防治潜力的微生物主要有芽孢杆菌、放线菌等[21-23].在田间,生物防治菌剂对烟草赤星病已具有很好的应用效果[24].紫云英根腐病是由紫云英根腐病病原菌(紫云英根腐病菌)引起的一种真菌性病害,是造成紫云英产量减少的重要病症之一.酵母菌对植物真菌性病原菌具有拮抗效果,同时具有防治效果好、不污染环境、繁殖速度快、遗传稳定、不威胁人类健康等优点[12,25-26].农作物果实采摘后,使用酵母菌替代化学农药防治植物真菌性病害,已成为二战后世界各国农作物病虫害防治的研究热点之一.拮抗酵母菌、植物真菌性病害病原菌与宿主植物可相互影响,同时,拮抗酵母菌的生物防治效果也是多种机制共同作用的结果[27]:一是拮抗酵母菌通过与病原菌展开空间与资源的竞争,抑制病原菌的生长[28-30];二是拮抗酵母菌通过诱导植物,产生抑制病原菌的拮抗物质[31];三是拮抗酵母菌自身也能产生具有抑菌能力的代谢物质[32],该代谢物质具有重要的病原菌拮抗作用.另外,不同酵母菌对不同植物真菌性病害病原菌的拮抗效果也有所不同.张俊杰等[33]从分离自葡萄果皮的酵母菌中,筛选出一株对黄瓜尖孢镰刀菌具有明显拮抗作用的酵母菌,并证明了该酵母菌对黄瓜尖孢镰刀菌具有潜在的生物防治效果.目前,鲜见拮抗酵母菌对赤星霉菌和紫云英根腐病菌具有潜在的生物防治效果的相关报道[6].近年来,由于分子生物学的快速发展,利用rDNA鉴定菌株的技术被广泛应用于酵母菌的·21·马伟东,等:常见植物真菌性病害拮抗酵母菌的筛选与鉴定分类鉴定,很多模式菌株的26SrDNAD1/D2区,5.8S-ITS区和18SrDNA区的序列被公布在GenBank/EMBL国际核酸序列中,这使得酵母菌的分类鉴定更加快速和精确,也标志着酵母菌鉴定从传统的表型性状鉴定跨入现代遗传信息特性鉴定的新阶段.基于此,本文拟选择黄瓜尖孢镰刀菌、赤星霉菌和紫云英根腐病菌作为研究对象,采用平板对峙法,从81株酵母菌中筛选出对3种常见植物真菌性病原菌具有较强拮抗作用的酵母菌菌株,通过形态学特征、生理生化特征、基因测序分析确定其分类学地位,以期为植物真菌性病害的生物防治提供参考.1 材料与方法1.1 材料1.1.1 供试菌株 黄瓜枯萎病病原菌(黄瓜尖孢镰刀菌),由河南农业大学提供;烟草赤星病病原菌(赤星霉菌),由郑州轻工业大学提供;紫云英根腐病病原菌(紫云英根腐病菌),由中国农业大学提供;酵母菌,由郑州轻工业大学食品与生物工程学院微生物资源分类实验室分离并保存.1.1.2 主要试剂 Ezup柱式基因组DNA抽提试剂盒(酵母菌);26SrDNA引物:NL-1(5′ GCATATCAATAAGCGGAGGAAAAG 3′)和NL-4(5′ GGTCCGTGTTTCAAGACGG 3′);5.8S-ITS引物:ITS1(5′ TCCGTAGGTGAACCTGCGG 3′)和ITS4(5′ TCCTCCGCTTATTGATATGC 3′).以上试剂均由上海生工生物工程股份有限公司提供.1.1.3 主要培养基 PDA培养基:马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂粉20g,去离子水定容至1000mL.YEPD培养基:酵母粉10g,蛋白胨20g,葡萄糖20g,去离子水定容至1000mL.其中,固体培养基加琼脂粉20g.WL鉴别培养基[34]:酵母粉4g,胰蛋白胨5g,葡萄糖50g,KH2PO40.55g,KCl0.425g,CaCl20.125g,MgSO40.125g,MnSO40.0025g,FeCl30.0025g,琼脂粉20g,溴甲酚绿0.022g,去离子水定容至1000mL,调pH值至6.5.以上培养基均在121℃条件下高压蒸汽灭菌25min.1.1.4 仪器与设备 SW-CJ-2D型超净工作台,苏州安泰空气技术有限公司产;HH-S型恒温水浴锅,江苏省金坛市医疗器械有限公司产;TGL-16G型台式离心机,上海安亭科学仪器厂产;DH-600型生化培养箱,北京中兴伟业仪器有限公司产;JY023型紫外分析仪,北京君意东方电泳设备有限公司产;C1000型聚合酶链式反应扩增仪,美国BIO RAD公司产.1.2 实验方法1.2.1 酵母菌的活化与纯化 将保存于郑州轻工业大学食品与生物工程学院微生物资源分类实验室菌库(WYCCW)中的81株酵母菌(分离自霞多丽葡萄果皮和葡萄酒酿造过程中)进行活化:吸取20μL酵母菌菌液,置于YEPD培养基上,于28℃条件下培养3d,待菌落长出后即为活化完成;挑取培养基中的单菌落,在YEPD培养基上经过3次划线接种培养,获得纯化后的酵母菌菌株.1.2.2 植物真菌性病害病原菌的活化 用直径5mm的打孔器在有黄瓜尖孢镰刀菌的PDA培养基上打出菌块,将菌块倒扣在PDA培养基的中央,使病原菌表面与培养基表面尽可能接触,于28℃条件下正向放置培养1d,再倒置培养,待菌落长出后即为活化完成.赤星霉菌和紫云英根腐病菌的活化方法同上.1.2.3 拮抗酵母菌的初筛 借鉴参考文献[16]的方法,分别在3个PDA培养基平板的背面十字划线,将每个平板分为4个相等的区域;取生长良好的3种病原菌菌饼(半径为5mm),·31· 2020年5月第35卷第3期分别倒扣在3个PDA平板的十字交叉中心,并在每个区域内距中心菌饼3cm处划线接种酵母菌,使酵母菌生长区域保持一致;每个病原菌做3次平行,同时以不接种酵母菌的PDA培养基平板作阴性对照,将所有平板用密封条密封好后,于28℃条件下正向培养1d后,再倒置培养4d;待培养结束后,与阴性对照组进行对比,将对3种病原菌有抑制作用的酵母菌初步筛选出来,用精度为0.02mm的游标卡尺测量病原菌直径.对峙平板中的病原菌直径越小,表明抑制作用越强,酵母菌的拮抗作用越好.1.2.4 拮抗酵母菌的复筛 进一步对初次筛选得到的拮抗酵母菌进行复筛,以确定酵母菌拮抗效果的强弱.根据1.2.3的方法(1个平板上只接种1株酵母菌)进行复筛,并计算抑菌率.计算公式如下:抑菌率=对照组菌落直径-实验组菌落直径对照组菌落直径×100%抑菌率越高,表明酵母菌抑菌作用越强,拮抗作用越好.1.2.5 拮抗酵母菌的初步鉴定 将复筛得到的拮抗酵母菌,划线接种至WL鉴别培养基上,于28℃条件下暗培养5d.在暗室用白炽灯作为唯一光源(以保证结果的一致性),观察菌落形态特征[35-36](菌落的大小、色泽等),对筛选得到的酵母菌进行初步鉴定.挑取单菌落,接种于YEPD液体培养基中,于180r/min,28℃条件下培养24h,在40倍光学显微镜下观察酵母菌细胞的形态学特征[37].1.2.6 拮抗酵母菌的基因测序 将复筛得到的拮抗酵母菌接种于YEPD液体培养基中,于180r/min,28℃条件下过夜培养,按照酵母菌基因组DNA试剂盒的说明提取酵母菌基因组DNA.26SrDNAD1/D2区段使用正向引物NL-1(5′ GCATATCGGTAAGCGGAGGAAAAG 3′)和反向引物NL-4(5′ GGTCCGTGTTTCAA GACGG 3′)进行扩增.5.8S-ITS区段使用正向引物ITS1(5′ TCCGTAGGTGAACCTGCGG 3′)和反向引物ITS-4(5′ TCCTCCGCTTATT GATATGC 3′)进行扩增.PCR体系和扩增程序参见文献[24].对PCR产物进行琼脂糖(质量分数为1%)凝胶电泳检测,电泳参数为电压100V,定时30min.初步判断扩增片段的大小和质量,并将扩增后的PCR产物送上海生工生物工程股份有限公司进行测序[33].1.2.7 拮抗酵母菌的系统发育分析 用Mega7.0软件对PCR产物测序结果进行序列修正,在NCBI数据库中利用BLAST工具对修正后的26SrDNAD1/D2区段序列和5.8S-ITS区段序列进行序列相似性比对,并下载序列相似性最高的已知种群序列作为参比序列,建立系统发育树[38].2 结果与分析2.1 拮抗酵母菌的筛选结果经过初步筛选,从81株酵母菌中得到对黄瓜尖孢镰刀菌、赤星霉菌和紫云英根腐病菌具有明显拮抗作用的10株酵母菌,分别编号为WYCCW10140,WYCCW10196,WYCCW10371,WYCCW10452,WYCCW10453,WYCCW10457,WYCCW10986,WYCCW11029,WYCCW11079和WYCCW11142.再用这10株酵母菌对3种病原菌做平板对峙实验,进行拮抗酵母菌的复筛,抑菌效果见表1.由表1可知,对黄瓜尖孢镰刀菌拮抗效果最佳的酵母菌是WYCCW10371,其次是WYC CW11029和WYCCW11079,对应的抑菌率分别为46.2%,46.1%和44.6%;对赤星霉菌拮抗效果最佳的酵母菌是WYCCW10196,其次是WYCCW10371和WYCCW10986,对应的抑菌·41·马伟东,等:常见植物真菌性病害拮抗酵母菌的筛选与鉴定表1 拮抗酵母菌对3种病原菌的抑菌效果Table1 Antibacterialeffectofantagonisticyeaststrainsagainstthreepathogenicbacteria拮抗酵母菌黄瓜尖孢镰刀菌平均直径/cm抑菌率/%赤星霉菌平均直径/cm抑菌率/%紫云英根腐病菌平均直径/cm抑菌率/%对照组5.691—5.201—5.506—WYCCW104574.24625.44.19419.44.40220.1WYCCW103713.06246.23.85225.94.41019.9WYCCW104524.30724.33.96523.84.55717.2WYCCW104534.06128.63.99823.14.37620.5WYCCW101963.79233.43.60730.64.64415.7WYCCW110293.07046.14.56812.24.48718.5WYCCW111423.48938.74.06820.84.36920.7WYCCW109864.04628.93.96125.84.39520.2WYCCW110793.15344.64.23818.54.84012.0WYCCW101404.11927.64.8716.34.70314.6率分别为30.6%,25.9%和25.8%;对紫云英根腐病菌拮抗效果最好的酵母菌是WYCCW11142,其次是WYCCW10453和WYCCW10986,对应的抑菌率分别为20.7%,20.5%和20.2%.2.2 拮抗酵母菌的初步鉴定结果对筛选得到的10株拮抗酵母菌进行形态学鉴定,其在WL鉴定培养基上的菌落形态和显微细胞形态如图1所示,表型聚类结果如表2所示.2.3 拮抗酵母菌的系统发育分析结果2.3.1 基于26SrDNAD1/D2区段的系统发育分析 基于26SrDNAD1/D2区段的拮抗酵母菌菌株系统发育树如图2所示.由图2可以看出,WYCCW11029和WYCCW11079与Han seniasporaguilliermondii和Hanseniasporaopunti ae聚为同一分支;类似地,WYCCW10371与Lachanceathermotolerans和Hanseniasporavineae聚为同一分支;WYCCW11142和WYCCW10140与Issatchenkiaterricola,Pichiaterricola和Torulasporadelbrueckii聚为同一分支;WYCCW10457,WYCCW10452,WYCCW10453和WCCWY10196与Candidazemplinina和Starmerellabacil laris聚为同一分支.但以上9种拮抗酵母菌菌WYCCW11079WYCCW11029WYCCW10453WYCCW10452WYCCW10196WYCCW10457WYCCW10371WYCCW10986WYCCW11142WYCCW10140图1 拮抗酵母菌在WL鉴定培养基上的菌落形态(左)和显微细胞形态(右)Fig.1 ThecolonycharacteristicsonWLmedium(theleftpicture)andcellmicroscopiccharacteristics(therightpicture)oftheantagonisticyeaststrains株均同时与不同的菌株聚为同一分支,因此不能在种的水平上进行划分.WYCCW10986和Kodamaeaohmeri聚为同一分支,且序列相似性·51· 2020年5月第35卷第3期表2 拮抗酵母菌在WL鉴定培养基上的表型聚类结果Table2 ClusteringanalysisresultofantagonisticyeaststrainsonWLmediumbasedonphenotypes拮抗酵母菌菌落颜色菌落形态显微细胞形态WYCCW10457白边,绿圈,白顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明椭圆形,单生,单端芽殖WYCCW10371白边,浅蓝顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明柠檬形,单生,两端芽殖WYCCW10452白边,绿圈,白顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明梭形,单生,单端芽殖WYCCW10453白边,绿圈,浅绿顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明椭圆形,单生,单端芽殖WYCCW10196白边,绿圈,浅绿顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明椭圆形,单生,单端芽殖WYCCW11029白边,深绿顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明梭形,单生,单端芽殖WYCCW11142白边,白顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明椭圆形,单生,单端芽殖WYCCW10986白边,白顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明椭圆形,单生,单端芽殖WYCCW11079黄边,深绿顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明柠檬形,单生,单端芽殖WYCCW10140黄边,绿圈,白顶光滑,有光泽,湿润,突起,不透明椭圆形,单生,单端芽殖0050 .Hanseniaspora opuntiae YLL14(MF979222)Hanseniaspora guilliermondii YLL5(MF979214)WYCCW11029WYCCW11079WYCCW10371Hanseniaspora vineae20TASL15(KX421391)WYCCW11142WYCCW10140WYCCW10457WYCCW10453WYCCW10452WYCCW10196WYCCW10986Torulaspora delbrueckii WQGB52(DQ869079)Lachancea thermotolerans SLDY-053(MH748632)Starmerella bacillaris SF2-210-2II4(MH04893)Candida zemplinina A9-4-5(EU386755)Kodamaea ohmenri64(MK026222)Pichia terricola Y2-20(KY996739)Issatchenkia terricola KDLYH3-5(KJ506735) 100100100100100100719963图2 基于26SrDNAD1/D2区段的拮抗酵母菌菌株系统发育树Fig.2 Phylogenetictreeofantagonisticyeaststrainsbasedon26SrDNAD1/D2regionsequences为100%,因此,可将WYCCW10986鉴定为Kodamaeaohmeri.2.3.2 基于5.8S-ITS区段的系统发育分析 基于5.8S-ITS区段的拮抗酵母菌菌株系统发育树如图3所示.由图3可以看出,WYC CW10371与Hanseniasporavineae聚为同一分支,序列相似性为100%,因此,可将WYC CW10371鉴定为Hanseniasporavineae;WYC CW11079和WYCCW11029与Hanseniasporaopuntiae聚为同一分支,序列相似性为100%,因此,可将WYCCW11079和WYCCW11029鉴定为Hanseniasporaopuntiae;WYCCW11142与Pichiaterricola聚为同一分支,序列相似性为100%,因此,可将WYCCW11142鉴定为Pichiaterricola;WYCCW10457,WYCCW10452,WYC CW10453和WYCCW10196与Starmerellabacil laris聚为同一分支,序列相似性为100%,因此,可将WYCCW10457,WYCCW10452,WYC CW10453和WYCCW10196鉴定为Starmerellabacillaris.3 结论本研究选取郑州轻工业大学食品与生物工程学院微生物资源分类实验室分离筛选得到的·61·马伟东,等:常见植物真菌性病害拮抗酵母菌的筛选与鉴定图3 基于5.8S-ITS区段的拮抗酵母菌株系统发育树Fig.3 Phylogenetictreeofantagonisticyeaststrainsbasedon5.8S-ITSregionsequences81株酵母菌,经过平板对峙法进行初筛和复筛,得到10株对黄瓜尖孢镰刀菌、赤星霉菌和紫云英根腐病菌具有较好拮抗作用的酵母菌.其中,对黄瓜尖孢镰刀菌拮抗效果最好的酵母菌是WYCCW10371,其抑菌率为46.2%,该菌株被鉴定为Hanseniasporavineae;对赤星霉菌拮抗效果最好的酵母菌是WYCCW10196,其抑菌率为30.6%,该菌株被鉴定为Starmerellabacil laris;对紫云英根腐病菌拮抗效果最好的酵母菌是WYCCW11142,其抑菌率为20.7%,该菌株被鉴定为Pichiaterricola.该研究结果确定了酵母菌对上述3种植物真菌性病原菌具有一定的生物防治效果,为发展绿色农业提供了一定的指导.然而,在大田中需要考虑的因素众多,对于拮抗酵母菌在土壤条件下的抑菌效果、拮抗因子,尚需进行代谢产物的分离检测,以及相应的盆栽和大田试验[39].参考文献:[1] 杜欣谊.植物病害生防微生物的研究进展[J].现代化农业,2016(6):30.[2] 王倡宪,王艳,张志.不同磷浓度条件下地表球囊霉对黄瓜枯萎病抗性和抗氧化酶活性的影响[J].江苏农业科学,2019,47(18):129.[3] 马晓凤.黄瓜枯萎病综合防控[J].西北园艺(综合),2019(5):51.[4] 刘淼.0.3%四霉素水剂防治黄瓜枯萎病田间药效试验报告[J].农民致富之友,2019(10):141.[5] 王芳,王晓倩,王莹,等.6种杀菌剂对黄瓜尖孢镰刀菌的毒力测定试验[J].中国农学通报,2019,35(9):143.[6] 朱宇航,黄思洋,陈华保,等.烟草赤星病防治药剂的筛选[J].烟草科技,2019,52(5):14.[7] 张乃芹,郝明慧,贾海慧,等.PGPR多功能菌剂防治黄瓜枯萎病及对黄瓜产量影响的研究[J].现代园艺,2019,42(17):24.[8] 杨侃侃,刘晓虹,陈宸,等.黄瓜枯萎病研究进展[J].湖南农业科学,2019(6):121.[9] 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植物病原真菌拮抗细菌的筛选鉴定及活性成分分析

J i a n j u n ( B e i j i n g F o r e s t r y U n i v e r s i t y ,B e i j i n g 1 0 0 0 8 3 , P,R .C h i n a ) ;S h i G u a n g l u ,G a p Me i j u a n ( B e i j i n g U n i v e r s i t y o f
褐 腐 病 菌 的抑 制 率 较 大 , 分别为 8 7 . 3 1 %和 8 0 . 1 5 %( P < 0 . 0 5 ) ; 对棉 花 红 腐病 菌 、 辣椒炭疽病菌的抑制率低 于 4 0 % ( P< O . 0 5 ) 。R N 一 6 1与枯 草芽孢杆 菌相似 度 最高, 为9 9 %, 确 定其为 芽孢杆 菌属 的枯草 芽孢杆 菌 ( B a c i l l u s s u b t i l k R N一 6 1 ) , N C B I 登 录号为 G e n B a n k a c c e s s i o n n o .K C 8 4 0 6 6 8 。菌株 R N 一 8 8与 P s e u d o mo n a s , z ∞ s c e 瑚F 1 1 3等相似度 为9 9 %, 确定其为假 单胞菌属 的荧光假 单胞 杆菌( P s e u d o m o n a s l f u o r e s c e n s R N 一 8 8 ) 。对不 同盐浓度提取 的菌株 R N 一 6 1 抗 茵蛋 白 活性 研 究发 现 , 效果最好的是饱和度为 8 0 %的( N H ) , S 0 溶 液 提 取 的 蛋 白。 蛋 白原 液 对 桃 褐 腐 病 菌 的抑 茵 活 性 最 强 , 9 6 h后 的 病 原 真 菌 直 径 为 2 9 . 0mm( P < 0 . 0 5 ) 。 关键 词 拮抗 细菌 ; 枯草 芽孢杆菌 : 荧光假 单胞 菌杆 菌; 抑菌蛋 白 分 类号 ¥ 7 6 3 . 1 3
松树落叶病赤枯病防治

一、病原及症状病原:松树落叶病的病原为松散斑菌、日本落叶松球腔菌。
症状:针叶病初生淡绿色斑,很快呈现为鲜黄色斑点,再发展成段斑。
斑间生成淡黑褐色横线,使松针变黄脱落。
二、病害发生规律病菌通常侵害2年生针叶,每年发生1次。
即病菌在脱落至地面的病针里过冬,3月-4月形成子囊孢子,4月-5月借风传播,由气孔进入松针,6月-7月出现症状。
4月-5月湿度大时,适于孢子散发和萌生,有利于该病发生和流行。
过于干旱缺水时,林木抗病力降低,很容易染病;当年移栽的弱势植株,也容易染病;同一林地杂草丛生的地方病重,多形成发病中心(或中心病株),病菌易向周围植株蔓延。
三、化学防治3月病菌尚未传播之前,可用晶白多菌灵500倍液细致喷洒树冠下有病针叶的地方。
4月下旬,用叶库600倍液喷洒预防;5月中旬,用叶库600倍液加光合素混合液喷洒,可以起到保护、治疗和增强树势的作用;6月中旬,用双佳杀菌剂600倍液喷洒治疗。
在病原孢子飞散盛期(4-5月),利用百菌清杀菌烟剂每公顷15千克,对已郁闭的林分进行防治,具有明显的防治效果。
放烟是要求天气晴朗、无风,在日落后或日出前气流稳定时进行。
一、病原及症状病原:松树赤枯病病原菌为枯斑盘多毛孢子。
病症:病菌一般危害当年生嫩叶,少数老叶也会受害。
受害初期,针叶尖端呈褐色或黄棕色状,叶面有黄褐色病斑,边缘褐色。
病部与健康组织间常有一暗红色环圈,病部断掉后,红圈仍然会保留。
以后针叶尖端出现细棕色症状并向针叶中下部转移,使整条或整束整梢的针叶变成红棕色,这时针叶会停止生长。
二、病害发生规律赤枯病菌的分生孢子和菌丝在树上没有脱落的病叶中越冬,在落地病叶上越冬的极少。
分生孢子在次年春天月平均气温16℃以上时(临汾市区约在4月份)开始发病,11月份基本停止。
分生孢子借风雨传播,从气孔或伤口进入针叶。
气温高于20℃时,产生分生孢子,侵入针叶进行再侵染,一年当中可以发生3次之多。
在高温———降水———高温———晴朗的情况下,病害极易暴发。
樟子松常见的病虫害防治措施

樟子松常见的病虫害防治措施作者:韩冬来源:《科学与财富》2019年第09期摘要:樟子松产于我国黑龙江省大兴安岭海拔400-900米山地及海拉尔以西、以南一带砂丘地区。
常绿乔木,树冠椭圆形或圆锥形,生长较快,材质好,适应性强,形态美观,可作庭园观赏及绿化树种,是东北大兴安岭山区及西部砂丘地区的常用造林树种。
关键词:樟子松;形态特征;病虫害;防治措施1.樟子松的形态特征常绿乔木,胸径一般达80厘米、高可达25米;幼树的树冠尖塔形,老树一般呈平顶或圆顶,树冠稀疏;针叶2针一束,硬直,常扭曲,长4-9厘米,径1.5-2毫米,先端尖,边缘有细锯齿,两面均有气孔线;雄球花呈圆柱状卵圆形,长5-10毫米,聚生新枝下部,长约3-6厘米;雌球花有短梗,淡紫褐色,当年生小球果长约1厘米,下垂。
球果卵圆形或长卵圆形,长3-6厘米,径2-3厘米,成熟前绿色,熟时淡褐灰色,熟后开始脱落;种子黑褐色,长卵圆形或倒卵圆形,微扁,长4.5-5.5毫米,连翅长1.1-1.5厘米;子叶6-7枚,长1.3-2.4厘米;初生叶条形,长1.8-2.4厘米,上面有凹槽,边缘有较密的细锯齿,叶面上亦有疏生齿毛。
花期5-6月,球果第二年9-10月成熟。
2.樟子松常见病虫害及防治措施2.1松苗立枯病此种病害发生在1-2年生幼苗上,也有发生在3年生大苗上的,但以一年生的发病率最高。
病害症状随着苗木生长时日增加而变化,一般表现出以下四种类型:烂芽型立枯病、猝倒型立枯病、茎叶腐烂型立枯病和根腐型立枯病。
防治措施:(1)注意苗圃地的选择。
苗圃地应选在排水良好的砂质土壤为宜。
要避开低洼、粘重的土壤。
如在盐碱地育苗,可先用硫酸亚铁或明矾酸化土壤。
方法是在播种前3-7天,向土壤喷洒1-3%硫酸亚铁或明矾水溶液,用量为4-5kg每平方米。
选择育苗时,还要注意上茬作物的茬口,不要在种植过马铃薯、棉花、茄子、瓜类等作物的土地上育苗。
(2)做好种子处理。
育针叶苗木时,最好使用已经隔冬埋藏处理的种子。
樟子松重要病虫害的防治和治疗

松梢象甲:捕杀成虫,修剪病枝
捕杀成虫
人工捕捉成虫,减少繁殖源。
修剪病枝
及时修剪被害的枝条,减少虫害的传播和繁 殖。
05
樟子松病虫害的防治策略
综合防治方案:多种方法相结合
化学防治
使用农药进行病虫害防治,包 括杀虫剂、杀菌剂等。
物理防治
采用物理方法,如灯光诱杀、 人工捕捉等。
生物防治
利用天敌、寄生性昆虫等生物 方法进行防治。
生物防治
利用天敌,如寄生蜂、瓢虫等,以减少 松毛虫的繁殖和蔓延。
VS
化学防治
使用化学药剂,如杀螟松、辛硫磷等,直 接喷洒在虫害发生区域,以杀死幼虫。
松突圆蚧:加强检疫,控制传播
要点一
加强检疫
要点二
控制传播
对外来苗木进行严格检疫,发现带虫植株及时处理,防止 虫害传播。
对发生虫害的林区进行隔离,防止虫害蔓延到其他区域。
对于个体较大的病虫害,如松毛 虫、天牛等,可以采取人工捕杀 的方法进行防治。
阻隔法
对于传播速度较慢的病虫害,可 以在树干上涂抹粘虫剂或设置阻 隔带,阻止害虫的爬行和扩散。
生物防治:天敌控制与微生物利用
天敌控制
利用天敌对病虫害进行控制,如寄生蜂、寄生蝇等寄生性天敌,以及捕食性天敌 如瓢虫、蜘蛛等。
微生物利用
分类
樟子松病虫害可根据病因分为病原微 生物引起的病害和害虫引起的虫害两 类。
常见病虫害及其症状
病害
常见的有立枯病、猝倒病、叶斑病等。症状表现多样,如立枯病会导致树木枯 死,猝倒病会使树干倾斜,叶斑病则会使叶片出现斑点并逐渐扩大。
虫害
主要有松梢螟、松毛虫、松突园蚧等。虫害会导致树木枝叶受损,严重时甚至 造成树木死亡。
松树病害防治

松树落叶病【分布为害】世界性病害,分布河北、河南、江苏、安徽、江西、陕西等地,为害油松、白皮松、华山松、马尾松、樟子松等多个松树品种。
【症状】松树落叶病病菌以浸染两年生针叶较多,一年生针叶也有发生。
发病初针叶出现淡绿色小斑纹,渐变为鲜黄色,病斑逐渐扩大,变为淡褐色至灰色;后期针叶上产生许多黑色横隔断线和椭圆形病斑,全叶枯黄,并产生许多小黑粒,为病原物的分生孢子器(松针赤枯病针端先受病,多为端部变为赤褐色,与健康组织界限明显,发病部逐渐干缩),发病株早期落叶,生长缓慢。
【病原】病原为大散斑壳(lophodermium maximum B.Z.He et Yang),隶属子囊菌亚门、盘菌纲、星裂盘菌目、散斑壳属。
发病规律:落针病以病菌及菌丝体在落叶或树枝上病叶中过冬,4—5月形成子囊盘产生子囊孢子,通过风雨传播。
病菌由气孔侵入针叶后,经40—90天出现分生孢子器,再经50—180天才形成子囊盘。
每年夏季孢子借风雨传播侵染,子囊孢子散发期长达60天。
土壤板结以及土壤瘠薄时发病重,地势低洼、排水不良和栽植过深植株感病率高,生长在花草中浇水过多、湿度大时发病重。
【防治】1.清除病原秋冬清除落地病叶,剪除树上发病枝叶、枯死枝叶、稠密重叠枝,及时作深埋和销毁处理,以减少病菌来源。
2.加强养护管理对板结土壤进行松土,加施有机肥,可用经发酵腐熟的鸡粪加硫酸亚铁加尿素混合(5:0.5:0.125),施肥后浇透水,栽植松树时不应过深,平时也应结合实际情况合理灌水和施肥增加植株抗病力。
3.4月中旬开始,子囊孢子入侵前喷洒1:2:160的波尔多夜或50%福美甲胂500~~800倍液或75%百菌清800倍液,连喷3~~4次。
松赤枯病【分布为害】松赤枯病是松树幼林的一种重要叶部病害,主要为害马尾松、油松、黑松、华山松、云南松、湿地松等,凡松林分布地区,只要遇到多雨高湿的天气,就容易发生该病。
【症状】松赤枯病主要为害幼林新叶,少数老叶也有受害,受害叶初为褐色或淡黄色段斑,也有少数呈浅绿到浅灰绿色,后变淡棕红色或棕褐色,最后呈灰白色或暗灰色,稍缢缩凹陷或不凹陷的病斑,边缘褐色。
樟子松病虫害的防治
汇报人: 2024-01-06
目录
• 樟子松病虫害概述 • 樟子松病虫害的病因分析 • 樟子松病虫害的防治方法 • 樟子松病虫害防治的实践与案
例 • 樟子松病虫害防治的未来展望
01
樟子松病虫害概述
定义与特点
定义
樟子松病虫害是指在樟子松生长过程 中,受到各种病菌、害虫的侵害,导 致生长受阻、木材质量下降甚至死亡 的现象。
特点
樟子松病虫害种类繁多,分布广泛, 危害程度因地域、季节、树龄等因素 而异,防治难度较大。
病虫害的种类与分布
主要病害
包括松树枯梢病、松树落针病、松树腐烂病等,这些病害主要分布在北方地区 ,尤其是辽宁、吉林、黑龙江等省份。
主要虫害
包括松毛虫、松突圆蚧、松材线虫等,这些害虫主要分布在南方地区,尤其是 浙江、福建、广东等省份。
提高公众对樟子松病虫害防治的认识与参与度
1 2
科普宣传
通过媒体、宣传册、展览等方式,向公众普及樟 子松病虫害防治的知识,提高公众的认识水平。
社会参与
鼓励社会团体、企业和个人积极参与樟子松病虫 害防治工作,形成全社会共同参与的良好氛围。
3
教育培训
加强对林业工作者和农民的培训,提高他们的防 治技能和意识,为樟子松病虫害防治工作提供人 才保障。
的发生和蔓延。
生物农药
02
使用生物农药,如微生物杀虫剂、昆虫性信息素等,有效防治
病虫害,同时减少对环境的污染。
增强树体抗性
03
通过增强树体本身的抗性,使其更能抵抗病虫害的侵袭。可以
通过合理施肥、改善树体营养状况等措施来实现。
化学防治
科学用药
根据病虫害发生规律,选择合适 的药剂和施药时机,进行科学防
樟子松栽培技术与病虫害防治
樟子松栽培技术与病虫害防治内蒙古自治区赤峰市克什克腾旗联丰林场 国友琴摘要:樟子松是当前重要的人工造林树种之一,具备显著的耐干旱性、耐寒性、适应性强等特征。
为充分发挥出樟子松在实际栽植期间的各项优势,需要从选地、整地、种子处理、播种、苗期管理等方面入手,制定出专项可靠的栽培管控机制。
结合樟子松病虫害种类及特征,优化病虫害防治方案。
本文就针对此,对樟子松栽植过程及重要栽植技术进行概述,提出樟子松各类病虫害防治要点,以供参考。
关键词:樟子松;栽培技术;病虫害防治中图分类号:S859 文献标识码:A 文章编号:2096-4595(2020)50-0089-0002樟子松在林业生产中占据了重要地位,为进一步提升樟子松栽植水平,确保樟子松能够在防风固沙、增强林业经济收入中发挥重要作用,还需要加强樟子松种植管控力度,做好樟子松育苗地选择、施肥及改土、播种期间管理工作。
重点关注樟子松生长期间的病虫害防治工作,基于不同病虫害种类制定出专项可行的预防方案,为樟子松营造更加良好的生活环境。
一、樟子松栽培技术(一)樟子松采种天然樟子松可在春秋两季开展采种工作。
春季多为3月上旬至4月中下旬、秋季则为9月中旬、下旬至11月上旬、中旬。
受到采种树木年龄影响,采种量以及球果内部粒种数量存在一定差异。
由于樟子松球果较为坚硬,不易开裂,在后期种子调制期间的难度更大[1]。
为有效缩短球果脱粒时间,需要在采种时使用室内烘干方式,要求烘干期间应当每日翻动球果五六次,确保室内温度及通风量符合球果脱粒要求。
经过实际调查研究发现,普通球果的出种率为1%~2%。
在经过动翅筛选后,球果的出种率可达90%。
(二)樟子松育苗在樟子松育苗前,应当结合樟子松幼苗的生物学特征,选择土质疏松、排水性良好、地下水位较低的种植区域。
要求区域内部土壤应当呈现中性或微酸性,内部肥力较为丰富。
在条件允许的情况下,可以选择前茬为柞木的育苗地。
由于在柞木种植后,该育苗地土壤内部含有大量对樟子松苗有益的菌类,可促进苗木良好生长,在一定程度的预防苗木病虫害问题。
樟子松主要病害及其防治研究进展
樟子松主要病害及其防治研究进展作者:程坤来源:《中国新技术新产品》2010年第04期摘要:本文主要讨论了樟子松的主要病害,樟子松枯梢病、红斑病和针锈病的病原菌、发生发展规律,并总结了防治策略,在此基础上,对未来的研究方向进行了探讨。
关键词:樟子松;枯梢病;红斑病;针锈病樟子松(Pinus sylvestris var. mongolic)具有耐干旱、耐脊薄、抗寒、速生等特点,而且材质优良,用途广泛,是用材林、防护林以及绿化的优良树种。
同其它植物一样,樟子松也面临病虫害的威胁,不同时期对樟子松病害的报道也不尽相同,其中1959年记载樟子松病害4种;1987年记载樟子松病害12种。
其后又陆续报道了樟子松丛枝病、壳针孢叶枯病、叶枯病[1]。
樟子松主要病害包括:樟子松枯梢病、樟子松红斑病和樟子松针锈病,下面逐一介绍:1 樟子松枯梢病樟子松枯梢病是世界性传染病害,病原菌为Sphaeropsis sapinea Kieks,目前有27个国家报道了该病害的发生,并且对病害症状、病原菌、侵染机制、发病规律及防治措施进行了研究。
Sphaeropsis sapinea在PDA培养基上生长最佳,最佳pH=5;最佳C源为蔗糖;最佳N源为蛋白胨,全光最适其生长,并能产生分生孢子器和分生孢子樟子松枯梢病病原菌分生孢子的萌发与通气条件关系不大,无需外界供给养料,孢子的萌发主要取决于温度和湿度条件,在水中,孢子萌发的温度范围为15~35℃,最佳温度为25℃,在25℃条件下,孢子在4h以内即可萌发,在相对湿度达90%以上时,孢子萌发率随湿度增大而升高,但随湿度降低,萌发率逐渐下降[2][3]。
樟子松枯梢病是一种寄主主导性病害[4]。
病原菌具腐生性,为兼性寄生菌,健康的樟子松上广泛地存在潜伏侵染现象,只有在寄主生长衰退时病菌侵染引起枯梢病[5]。
病原菌可在历年病树上的针叶、芽、梢、杖和果实上越冬,又可在健康树上的针叶、芽、梢、枝和果实上潜伏侵染。
樟子松主要病虫害的防治
樟子松病虫害对林业生产的影响
生长受阻
遭受病虫害侵袭的樟子松,生长 速度明显变慢,甚至停滞不前, 导致林分生长周期延长,影响到
林业生产的效益。
材质下降
受到病虫害的侵害,樟子松的材质 质量下降,严重时甚至不能作为木 材使用,降低了林产品的经济价值 。
生态失衡
大规模的樟子松病虫害发生,会导 致生态失衡,影响森林生态系统的 稳定和健康。
樟子松病虫害防治的重要性
经济意义
樟子松是南方地区重要的经济林 木之一,防治其病虫害对于保护 农民和林业生产者的经济利益具
樟子松毛虫
完善虫情监测体系
完善的虫情监测体系是有效防治樟子松毛虫的关键。应定期在樟子松林区内进行虫害调查,一旦发现樟子松毛虫种群密度超 过经济阈值,应立即采取防治措施,防止虫害进一步扩散和危害。
樟子松长足大蚜
合理施肥,提高树势
樟子松长足大蚜对树势较弱的树木更喜欢攻击。因此,合理施肥,保证树木养分供应充足,提高树势 ,是防治樟子松长足大蚜的重要措施之一。施肥应以有机肥为主,适量配合无机肥,避免过量施肥导 致树木生长过旺,从而引发其他病虫害。
樟子松长足大蚜
利用天敌进行生物防治
VS
利用天敌进行生物防治是控制樟子松 长足大蚜种群的有效手段。可引入或 保护利用本地天敌,如瓢虫、草蛉等 ,这些天敌能够捕食樟子松长足大蚜 ,达到自然控制的效果。同时,可在 林区内种植一些诱饵植物,吸引天敌 定居,提高天敌的控制效果。
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樟子松病虫害防治策略与措施
物理防治
利用物理手段如修剪、清除病虫害部位,减少病虫害的发 生和传播。这种方法适用于小面积防治,但大面积应用时 工作量大。
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中国森林病虫 2017年5月 第36卷第3期 樟子松赤枯病拮抗真菌的筛选 徐阳 ,赵贺新 ,宋义前 ,于庆帆 ,刘雪峰 (1.新疆生产建设兵团农四师农业科学研究所,新疆伊宁市835000;2.东北林业大学,黑龙江哈尔滨150040) 摘要:在健康的樟子松针叶上分离得到25种真菌,从中选出具有生防潜能的11种用于控制樟子松 赤枯病的病原菌拮抗菌株的筛选。拮抗真菌与病原茵的平板对峙试验结果表明:长枝木霉 - choderma longibrachiatum、血红毛壳Chaetomium cruentum和印度毛壳C.indicum能有效抑制该病 原茵,其中长枝木霉对病原菌茵丝的抑制效果最强,抑制率为72.81%,后2种的抑制率分别为 49.16%和42.36%。 关键词:樟子松赤枯病;病原茵;拮抗真菌;抑制率 中图分类号:¥763.15文献标志码:A文章编号:1671—0886(2017)03—0001—04
Screening of antagonistic fungi of Pinus sylvestris var.mongolia red b ̄ght/XU Yang,et a1.(Agri— cultural Research Institute of The Fourth Division of Xinjiang Production and Construction Corps, yining 835000,China) Abstract:Twenty—five species of fungi were isolated from healthy needles of Pinus sylvestris Var.mongolica,and of which 1 1 species with biocontrol po ̄ntial were tested for screening the antago— nistic against the pathogen of red blight in Pinus sylvestris Var.mongolica.The result of confrontation test showed that Trichoderma longibrachiatum,Chaetomium cruentum and C.indicum could effectively inhibite the growth of the pathogen,among them, longibrachiatum had the highest antagonistic effect on the pathogen hypha,its inhibiting rate was 72.8 1%,followed by C.cruentum and C.indicum, which were 49.16%and 42.36%respectively. Key words:Pinus sylvestris Var.mongolica red blight;pathogen;antagonistic fungi;restrained rate
樟子松Pinus sylvestris Var.mongolica赤枯病在 世界广泛分布,主要危害杉、柏苗木及多种松树的针 叶,樟子松苗木和大树均可受害。何秉章…等人首 次在黑龙江省帽儿山林场的樟子松上发现病害症 状,经鉴定该病害由两种病原菌引起,即拟盘多毛孢 属Pestalotiopsis sp.和截盘孢Truncatella sp.真菌。 近年来,随着樟子松栽植面积不断扩大,樟子松赤枯 病的危害越来越严重,不仅引起针叶枯死,树势减 弱,而且引起林产品品质下降,造成重大经济损失。 据王桂珍 调查,辽宁省沈阳东陵铁路林场一年生 樟子松苗发病率30%以上,重者苗木枯死,对苗木 生产威胁很大。目前该病害主要靠化学防治来控 制,但因容易造成环境污染而受到限制,寻找科学的 防治方法是亟待解决的新问题。近年来随着防治技 术的迅速发展,森林植物病害的生物防治技术在生 产上受到广泛重视。以细菌、放线菌和真菌为生物 源的生物防治 ,对土传病害、叶部病害和枝干病 害均取得了较好的防治效果。真菌病害生防制剂已 经开发成商品并大面积推广应用的有木霉,线虫病 害的生防菌有厚垣轮枝霉、淡紫拟青霉等。为寻找控 制樟子松赤枯病具有开发价值的生防菌株,作者进行 了从樟子松叶上分离并筛选拮抗菌株的研究。
1材料与方法 1.1 供试材料樟子松赤枯病病原菌柠檬拟盘多 毛孢Pestalotiopsis citrina(MeAipine)Nag Raj从哈 尔滨帽儿山实习林场的樟子松病叶上分离得到,保 存于东北林业大学林学院森林病理实验室。植物材
收稿日期:2016—05—25;修回日期:2016—07—15 基金项目:新疆兵团第四师科技项目(2016)“伊犁地区地下真菌的 筛选与块菌(松露)的引种栽培” 作者简介:徐阳(1988一),女,助理研究员,硕士,主要从事林果病虫 害及森林病理学方面的研究,E—mail:31476214@qq.com 通信作者:刘雪峰,研究员,主要从事森林病理学及真菌分类方面的 研究。E—mail:liuxuefeng63@sina.corn。 ・2・ Forest Pest and Disease May 2017 No.3 料为帽儿山实习林场的樟子松1—3年生针叶。 PDA培养基:马铃薯200 g,葡萄糖20 g,琼脂 2O g,水1000 mL,pH自然,121 oC高压灭菌 30 Inin[ 。
1.2叶栖真菌分离及纯化将健康的1年生、2年
生和3年生樟子松针叶剪成0.5 cm左右的小段,用 纱布包起放入漂白粉(1:14)消毒液中消毒30 S,取 出用无菌水漂洗3次,用吸水纸吸干。接至PDA培 养基上,每皿5段,放人25℃培养箱中避光培养。 每个处理6次重复。
分离率(%)= ×100 当接种材料周围生出明显的菌丝时,采用尖端 菌丝挑取法和单孢分离法 一 挑取形态不同的菌落, 接人PDA培养基内,20—25℃避光培养。最后转到 PDA斜面保存,用以进一步鉴定及后续试验。 1.3形态鉴定将分离、纯化所得的真菌接种在 PDA培养基上,25℃培养数日后,对已经产孢的真 菌,直接挑取孢子,制成水载片;产生子实体的真菌 做徒手切片,制成水载片;在显微镜下观察子实体、 分生孢子梗、产孢细胞以及孢子的形态特征,结合其 培养特性及菌落特征,参考相关真菌分类资料进行 形态学鉴定 。 1.4樟子松赤枯病病原菌的拮抗菌筛选 拮抗菌 株初筛采用平板对峙法¨ 。将培养8 d的病原菌、 11种内生真菌,用7 mill打孔器切取等质量的菌饼, 采用两点对峙法,分别接至PDA培养基的中心两 侧,两点相距4 cm,一侧接入病原菌,另一侧接入待 测的内生真菌菌株;以接7 mm的水琼脂的菌饼与 病原菌的为对照;放入25℃培养箱中避光培养。每 个处理重复5次。24 h后测量,每24 h测量1次。 每日记录、观察l1种待测菌株与病原菌的生长情 况。并分别测量记录内生真菌菌株指向病原菌的半 径、病原菌指向内生菌菌株的半径以及对照病原菌 的半径,5 d后开始计算内生菌菌株对病原菌的抑 制率。若两菌落相交,要观察并记录内生真菌菌株 对病原菌的抑制、包围,以及病原菌对拮抗菌株包 围、侵占的反作用。抑菌率的计算公式如下: 相对抑菌率(%)=(病原菌对照菌落半径一病 原菌菌落指向对峙菌的半径)÷病原菌对照菌落半 径×100 被抑菌率(%)=(拮抗菌菌落半径一与病原菌 对峙菌的趋向半径)÷拮抗菌菌落半径×100 根据参考文献[12]的拮抗系数、抑菌率和被覆 盖程度筛选出适合的生防菌株。拮抗系数的分级标 准见表1。 表1 拮抗系数的分级标准 级数 I Ⅱ Ⅲ Ⅳ V 分级标准 拮抗菌株菌丝占满平皿 拮抗菌株菌丝占平皿>2/3 拮抗菌株菌丝占平皿>1/3—2/3 拮抗菌株菌丝占平皿≤1/3 病原菌菌丝占满平皿 2结果与分析 2.1 叶栖真菌群落组成经形态学鉴定,从校园健 康樟子松针叶上分离到的叶栖真菌共25种,其中, 子囊菌3种为血红毛壳Chaetomium cruentum、印度 毛壳c.indicum和散囊菌Eurotium sp.,接合菌1 种为根霉Rhizopus sp.,其余21种为半知菌,以Pen— icillium sp.,Alternaria sp.,Paecilomyces sp.瓤Pes— talitioposis sp.为优势种,分离率依次为19.7%, 15.2%,15.5%和10%,这些优势种在不同年龄的 针叶上分离频率差异较大(表2)。 表2樟子松叶栖真菌分离率 %
注:一表示没有分离到该菌株。 樟子松针叶真菌群落物种较丰富,1年生的针 叶分离鉴定出真菌12种,2年生针叶上的真菌16 中国森林病虫 201 7年5月 第36卷 第3期 种,3年生针叶卜的真 18种 . 川年龄松针 I 菌组成和分离频率差异也较大,随苻针叶年龄增』Jf1 真菌种类增多。在不同年龄针叶 叶柄真菌 /fr 6种,占总数的28%,为链格孢 、芽枝锩属、敞囊先 属、青霉属、拟青霉属和色串他 。共有 (种)链 格孢属、散囊壳属和色串孢属真闲随针叶年龄增大 分离率逐渐增大, 有属(种)肯撼和拟 多毛孢 的真菌随针I:If‘年龄增大分离剑的次数减少,共有 (种)芽枝霉属从针叶中分离到的次数lft大剑小依 次为:1年生,3年生,2年牛。1年、2年, 的针口f一肯 霉属真菌排第1位,3年 的针f叶拟青霉 真 排 第1位。 2.2拮抗真菌筛选 从分离、纯化的真 一_}1选… 1 1种真菌与樟子松赤枯病病原菌柠檬拟艇多毛孢 Pestalotiopsis citrina对峙培养,结果见 3。这1 1 种真菌对柠檬拟盘多毛他菌丝体均有 程度的抑 制作用,其中长枝木霭Trichoderma longibrachiatum KM菌株3 d后将病原菌完令役盖,完企【 领r痫 原菌全部营养空问,拈抗系数和覆盖率都达到最商。 血红毛壳和印度毛先在4 d后对柠檬拟艇多毛孢的 抑制作用逐渐增强,有明 的抑 带,川抑 牢、拈 抗系数和覆盖率3个指标米评价 札红毛先IZ ̄I]度毛 壳的抑菌效果更叫妊..散囊 属Eurotium sp. I链 格孢属Scytalidium sp.小但对柠檬拟髓多毛孢产tt ・3・ 拈抗作川较小,反而被柠檬拟盘多毛孢所抑制,说明 这 种生防菌没有抑制病原菌的作用,反而能在一 定程度一I 促进病原菌菌丝的生长。在柠檬拟盘多毛 他的f{我埘峙中,发现柠檬拟盘多毛孢并没有相互 融合,而足自我抑制,出现明显的抑菌带,并且抑制 效果也卡H对较为明显。而青霉Penicillium sp.、拟盘 多毛孢Pestalotiopsis sp.、茎点霉Phoma sp.、枝顶孢 Acremonium sp.、鹰壳孢Dichomera sp.和盾壳霉 Coniothyrium sp.埘柠檬拟盘多毛孢的抑制效果不 【9】 ,抑菌率较低。 表3拮抗菌株与樟子松赤枯病病原菌对峙培养 8 d的抑菌率、覆盖程度