不同动物肝脏中脂肪酸成分分析
鹅的营养价值 鹅的不同部位的功效
鹅的营养价值鹅的不同部位的功效还可补虚益气，暖胃生津，凡经常口渴、乏力、气短、食欲不振者，可常喝鹅汤，吃鹅肉，这样既可补充老年糖尿病患者营养，又可控制病情发展，还可治疗和预防咳嗽病症，尤其对治疗感冒和急慢性气管炎、慢性肾炎、老年浮肿;治肺气肿、哮喘痰壅有良效。
特别适合在冬季进补。
鹅肉的营养价值1、鹅肉蛋白质的含量很高，富含人体必需的多种氨基酸、多种维生素、微量元素，并且脂肪含量很低。
2、鹅肉营养丰富，脂肪含量底，不饱和脂肪酸含量高，对人体健康十分有利。
根据测定，鹅肉蛋白质含量比鸭肉、鸡肉、牛肉、猪肉都高，赖氨酸含量比肉仔鸡高。
3、鹅肉味甘平，有补阴益气、暖胃开津、祛风湿防衰老之效，是中医食疗的上品。
4、同时鹅肉作为绿色食品于2002年被联合国粮农组织列为21世纪重点发展的绿色食品之。
鹅肉的功效作用鹅肉性平、味甘;归脾、肺经。
具有益气补虚、和胃止渴、止咳化痰，解铅毒等作用。
1、适宜身体虚弱.气血不足，营养不良之人食用。
2、补虚益气，暖胃生津。
凡经常口渴、乏力、气短、食欲不振者，可常喝鹅汤，吃鹅肉，这样既可补充老年糖尿病患者营养，又可控制病情发展。
3、还可治疗和预防咳嗽病症，尤其对治疗感冒和急慢性气管炎、慢性肾炎、老年浮肿。
4、治肺气肿、哮喘痰壅有良效。
特别适合在冬季进补。
鹅血的营养价值1、中医认为鹅血性平、味咸、无毒，入心、肝、胃三经;2、有解毒通膈、软坚化瘀、益气补虚、暖胃开津和治虚羸消渴之功效;说到鹅你会想到什么，我想很多人是hi相待家禽或是鹅肉的，而鹅吃了鹅肉以外，它的血、肝等等很多部位也是可以吃的，并且也是有许多的功效的。
今天小编就为大家详细的介绍一下鹅的营养价值、功效与作用以及几种不同的做法吧!目录1、鹅的简介2、鹅肉的营养价值有哪些3、鹅肝的营养价值有哪些4、鹅的不同部位功效主治5、相关的鹅的10个附方6、鹅的食疗作用有哪些7、鹅的几种美味健康的做法8、鹅的食用注意事项鹅的简介鹅，被认为是人类驯化的第一种家禽，它来自于野生的鸿雁或灰雁。
水生动物营养基础—脂类营养
二、必需脂肪酸的生物学功能
• 2.EFA是合成类二十烷的前体物质。 • 类二十烷的作用与激素类似，但又无特殊的分泌腺，不能贮存于组织中， 也不随血液循环转移，而是几乎所有的组织都可产生，仅在局部作用以调 控细胞代谢,所以是类激素。 • 类二十烷包括前列腺素、凝血恶烷、环前列腺素和白三烯等EFA的衍生物。 二十碳五烯酸(C20:5ω3)不仅自身可衍生为类二十烷物质，而且对由花生四 烯酸衍生类二十烷物质具有调节作用，鱼油中富含C20:5ω3。
水生动物对脂类的利用特点
➢甘油三酯的消化部位主要在肠道前部，但脂肪酶主要来自于肝胰 腺。
➢对具有幽门盲囊的很多鱼来讲，幽门盲囊中的脂肪酶活性最高， 是脂类消化的主要部位。
➢这些脂肪酶来源于胰腺，脂肪酶需要作为辅助因子，并可能有其 他辅酶和胆盐参加。
➢脂类的吸收部位在回肠前部包括回肠盲囊，吸收的脂类主要包括 脂肪酸、甘油二酯、甘油、胆固醇、溶血磷脂等。
四、必需脂肪酸的需要量
• 水生动物对EFA的需要量一般占料的0.5%〜2.0%,依种类稍有差异。 • EFA的需要量除与水生动物种类有关外，还受饲料中脂肪含量的影响。随饲
料脂肪含量的增加，其EFA需要量也增加。但由于水生动物对EFA的需要量都 很低，若饲料中EFA超过了机体需要，不仅不利于饲料贮藏，而且还会抑制 水生动物生长。这种抑制作用在淡水鱼尤为明显。
五、必需脂肪酸缺乏症
• 1.生长减慢，死亡率增加； • 2.皮肤病；鳍条腐烂，有时全部尾鳍坏死脱落； • 3.心肌类，心脏心室表面白色隆起肿大； • 4.昏厥：受刺激时晕倒；（如称重时） • 5. 肝脏受损，色泽变淡、肿大； • 6.贫血； • 7.肌肉水分增加； • 8.鲤鱼、虹鳟、真鲷等缺乏时，生殖力下降。
脂肪酸代谢-2-xin
（二）合成原料
胆固醇的合成代谢 1分子胆固醇 18乙酰CoA + 36ATP + 16(NADPH+H+)
葡萄糖有氧氧化 乙酰CoA通过柠檬酸-丙酮酸循环出线粒体
磷酸戊糖途径
（三）合成基本过程 1. 甲羟戊酸的合成
胆固醇 的合成
代谢
合成胆固醇 的限速酶
2. 鲨烯的合成
胆固醇 的合成
代谢
HMG-CoA还原酶
脂肪酸的全合成与β-氧化的比较
β-氧化 线粒体内 CoA-SH 相互独立的多酶体系 乙酰CoA NAD+，FAD β-羟酰基为L-构型 C18以下脂肪酸
脂肪酸全合成 胞液
酰基载体蛋白ACP 复合体多酶体系 丙二酸单酰CoA NADPH·H+ β-羟酰基为D-构型 C16的软脂酸
脂肪酸合成的碳源 高等动物脂肪酸合成最活跃的组织是脂肪组织、肝脏和乳腺
二软脂酰胆碱－－肺泡
三、磷脂甘油的合成与降解 （二）甘油磷脂的降解
磷脂酶 (phospholipase , PLA)
磷脂酶A2(磷脂-2-酰基水解酶)
磷脂酶B：溶血 磷脂酰基水解酶
O R2-C－O－
磷脂酶A1(磷脂-1-酰基水解酶) O
CH2—O—C-R1 C-H
CH2—O—P－O－O X
磷脂酶C(磷脂酰胆碱 磷酸胆碱水解酶)
软脂酸合成的总反应:
CH3COSCoA +
7 HOOCH2COSCoA +
14NADPH+H+
脂肪酸的合成
CH3(CH2)14COOH +
7 CO2 +
6H2O +
8HSCoA +
脂肪酸的β-氧化
一、实验目的
（1）理解脂肪酸的β-氧化作 用。 （2）了解测定丙酮含量的原理。
二、实验原理
脂肪酸β-氧化是脂类分解代谢的主要途径，在动物肝脏中进行。 脂肪酸经β-氧化生成乙酰辅酶A。两分子乙酰辅酶A可再缩合成乙酰乙 酸。乙酰乙酸可脱羧生成丙酮，也可还原生成β-羟丁酸。乙酰乙酸、 β-羟丁酸和丙酮总称为酮体。 本实验用新鲜肝糜与丁酸保温，生成的丙酮可用碘仿反应测定，即用 过量的碘（定量）在碱性的条件下与丙酮反应，生成碘仿。以标准硫 代硫酸钠（Na2S2O3）溶液在酸性环境中滴加剩余的碘，从而可计算出 丙酮的生成量。反应式如下： 2NaOH+I2→NaIO+NaI+H2O CH3COCH3+3NaOI→CHI3（碘仿）+CH3COONa+2NaOH 剩余的碘，可用标准Na2S2O3溶液滴定。 NaIO+NaI+2HCl→I2+2NaCI+H2O I2+2Na2S2O3→Na2S4O6+2NaI 由（1）、（2）、（3）、（4）的化学反应方程式可得出： ICH3COCH3～3NaIO ～ 3I2 ～6 Na2S2O3 因此每消耗1mol的Na2S2O3相当于生成1/6mol的丙酮；根据滴定样品与滴 定对照所消耗的Na2S2O3溶液体积之差，可计算出由丁酸氧化生成丙酮 的量。
六、思考题：
1.生物体内脂肪酸是如何转变为酮体的？ 2.与正常生理状态相比，如果测定的血液 中酮体含量很高，说明什么问题？有何生 物学意义？
四、实验步骤
1、肝糜制备 （1）将家兔颈部放血处死，取出肝脏；用 0.9%NaCl溶液洗去污血；用滤纸吸去表面的水分。 （2）称取肝组织5g置研钵中，加少量0.9%NaCl 溶液，研磨成细浆。再加0.9%NaCl溶液至总体积 10ml，得肝组织糜。
不饱和脂肪酸和胆固醇的关系
不饱和脂肪酸和胆固醇的关系1.引言1.1 概述概述：在我们的日常生活中，我们经常听说关于脂肪酸和胆固醇的问题，这两者都是与我们的健康密切相关的物质。
不饱和脂肪酸和胆固醇之间存在着一种复杂而微妙的关系，这关系往往引起人们的争议和关注。
在本文中，我们将探讨不饱和脂肪酸和胆固醇之间的关系，并且进一步了解它们对我们健康的影响。
首先，我们将简要介绍不饱和脂肪酸的定义和特点。
不饱和脂肪酸是一种化学结构上存在双键的脂肪酸。
相对于饱和脂肪酸而言，不饱和脂肪酸具有较低的熔点和液态状态。
它们可以分为单不饱和脂肪酸和多不饱和脂肪酸两类。
人体无法自行合成不饱和脂肪酸，因此我们必须通过饮食来获取它们。
其次，我们将简单阐述胆固醇的定义和作用。
胆固醇是一种脂类物质，它在我们的体内起到许多重要的生理功能。
它是细胞膜的重要组成部分，同时也是许多激素和维生素的合成原料。
然而，过多的胆固醇摄入可能导致高胆固醇血症和心血管疾病等健康问题。
接下来，我们将展开讨论不饱和脂肪酸与胆固醇之间的关系。
一般认为，不饱和脂肪酸有助于降低血液中的胆固醇水平。
这是因为不饱和脂肪酸可以促使肝脏降低胆固醇的产生，并提高胆固醇的排泄。
同时，不饱和脂肪酸也可以影响胆固醇的吸收和代谢过程。
最后，我们将给出一些建议，帮助我们在日常饮食中更好地平衡不饱和脂肪酸和胆固醇的摄入。
合理的饮食结构应注重多饱和脂肪酸和单饱和脂肪酸的摄入，同时限制饱和脂肪酸和胆固醇的摄入量。
选择富含不饱和脂肪酸的食物，如鱼类、坚果和橄榄油等，有益于保持心脏健康和血液胆固醇水平的平衡。
通过本文的阐述，我们可以更好地了解不饱和脂肪酸和胆固醇之间的关系，并且明确了在日常饮食中如何合理摄入这两种物质，以维护我们的健康。
请继续阅读本文的下一部分，以更深入地了解不饱和脂肪酸和胆固醇的定义和作用。
1.2文章结构文章结构部分的内容可以包括以下内容：文章结构部分旨在介绍文章的整体结构和内容安排，主要包括以下几个方面。
探究不同生物胆汁对脂肪的乳化作用
探究不同生物胆汁对脂肪的乳化作用作者：李冬湖陈莹来源：《中学教学参考·理科版》2020年第05期[摘要]对现行人教版生物七年级下册第四单元第二章第二节《消化和吸收》中的小资料部分进行分析研究，通过问题启发，引导学生小组合作设计课外拓展性实验来探究不同生物膽汁对脂肪的乳化作用，不仅提升了学生的科学探究能力，还促进了学生形成“健康生活”的观念。
[关键词]胆汁;脂肪;乳化作用;健康生活[中图分类号] G633.91[文献标识码] A[文章编号] 1674-6058（2020）14-0077-03一、背景武汉市英格中学一分校位于湖北省农科院内，依托研究所的科研资源，可以开展丰富的课外拓展性实验。
现行人教版生物七年级下册第四单元第二章第二节《消化和吸收》中设置了“探究馒头在口腔中的变化”实验，旨在使学生基本理解消化的初始过程。
本节课以小资料的形式提到肝脏的功能——肝脏分泌的胆汁可以促进脂肪分解，但单靠资料介绍和生活经验，学生很难深刻理解胆汁的消化功能。
为此，有必要增设“探究不同生物胆汁对脂肪的乳化作用”拓展性实验，直观呈现胆汁的消化功能，让学生在实验中体验胆汁对脂肪的乳化作用，理解营养物质的消化过程，提升科学探究能力，加强对健康生活的认识。
二、实验原理及材料用具1.实验原理传统的胆汁乳化脂肪实验操作如下：取适量胆汁与脂肪混合后，经振动或搅拌使两者充分接触，通过观察脂肪微粒的呈现状态来判断乳化效果。
本实验则是借助省农科院的科研设备，将经高速冷冻离心处理后的胆汁与玉米油混合后，使用间歇式高剪切分散乳化均质机，通过转子高速中产生的剪切力迅速将混合物变成小颗粒，有效增加两者接触面积，提升乳化效果。
通过观察形成乳浊液的体积和维持稳定的时长，分别可以判断胆汁的乳化能力和乳化稳定性[1]。
2.材料用具移液枪、容量瓶、离心机、机械均质机、电子天平、数码相机、SDS（十二烷基硫酸钠）、胆酸钠、玉米油、猪胆汁、草鱼胆汁、蒸馏水。
脂肪酸合成酶(FAS)的研究综述
脂肪酸合成酶（FAS）的研究综述作者：张芮陈斯钰来源：《农村经济与科技》2018年第13期[摘要]脂肪酸合成酶（FAS）作为一种合成脂肪酸的关键酶，具有丰富的酶系统功能，在高低等动物身上它的存在形式不同，并且它在影响生物的能量代谢中发挥着极大作用。
近年来，有关于脂肪酸合成酶的研究成果越来越多。
从FAS 的生理功能、结构特性和未来应用等方面，梳理了近几年关于FAS的研究成果。
[关键词]脂肪酸合成酶；基因结构；生理功能；应用[中图分类号]F301.24 [文献标识码]A1 脂肪酸合成酶的结构特性脂肪酸合成酶（fatty acid synthase， FAS）的概念是在1957年由Wakil等初次提出并命名。
研究发现FAS基因有Ⅰ型和Ⅱ型2种类型。
植物中的存在的FAS属于Ⅱ型。
而哺乳类动物的FAS是Ⅰ型，它是由一条相对分子质量为250kDa的多肽链首尾相连，形成的以二聚体为主要存在形式的多功能酶，存在于细胞浆中。
脂肪酸合成酶的结构因物种不同而存在差异。
Clemente等通过研究得出人、鹅、鼠的FAS基因中都存在不翻译的外显子I。
人与鹅的相同序列为41%，人和鼠相同序列为65%，得出其外显子有较小的保守性。
Roy等发现鸡的FAS基因在18号染色体上。
后来Joshi等学者发现了由7512个核苷酸编码成2504个氨基酸组成的位于17q25上的人的FAS基因。
同年研究学者发现猪的FAS基因存在于12p1 .5。
Kameda等通过实验也测出鹅中的FAS基因全序列大约长度有50kb。
据东方网2008年9月9日《科技日报》报道，瑞士苏黎世工学院的科学家们通过利用保罗谢勒研究所所采集的数据，了解了哺乳动物中脂肪酸合成酶的原子构成，并在《科学》杂志上发表相关的研究成果。
科学家已经研究了很久，关于哺乳动物中FAS难于令分子合成的机理。
然而，截至目前，科学家们一直在努力通过使用孤立的细菌酶来探究脂肪酸的合成过程中的每个步骤。
第十一单元脂代谢 脂肪酸的分解代谢
第十一单元脂代谢28章脂肪酸的分解代谢29章脂类的生物合成脂肪酸的空间构象三酰甘油的结构示意图28章脂肪酸的分解代谢线粒体中脂肪酸氧化的化学步骤可分为三步：1 ）长链脂肪酸降解为两个碳原子单元--乙酰CoA2 ）乙酰CoA经过柠檬酸循环氧化成CO23 ) 从还原的电子载体到线粒体呼吸链的电子传递1 脂质的消化、吸收和传送2 脂肪酸的氧化3 不饱和脂肪酸的氧化4 酮体5 磷脂的代谢6 鞘脂类的代谢7 甾醇的代谢8 脂肪酸代谢的调节1 脂质的消化、吸收和传送1.1 脂肪的消化发生在脂质—水的界面处脂类先进行消化，在小肠内的各种脂类水解酶的作用下水解成较小的简单化合物--甘油和脂肪酸。
由于脂类是水不溶性的，而消化作用的酶却是水溶性的，因此脂类的消化是在脂质—水的界面处发生的。
消化的速度取决于界面的表面积。
在小肠蠕动的“剧烈搅拌下”，在胆汁盐的乳化作用下，消化量大幅增加。
1.2 胆汁盐促进脂类在小肠中被吸收包括胆酸、甘氨胆酸和牛黄胆酸胆汁盐对于脂类的乳化作用可以增加脂类的消化吸收。
脂类的消化产物，甘油单脂、脂肪酸、胆固醇、溶血磷脂可与胆汁酸乳化成更小的混合微团（20nm），这种微团极性增大，易于穿过肠粘膜细胞表面的水屏障，被肠粘膜的拄状表面细胞吸收。
1.3 吸收脂类的消化产物，甘油单脂、脂肪酸、胆固醇、溶血磷脂可与胆汁酸乳化成更小的混合微团（20nm），这种微团极性增大，易于穿过肠粘膜细胞表面的水屏障，被肠粘膜的拄状表面细胞吸收。
被吸收的脂类，在柱状细胞中重新合成甘油三酯，结合上蛋白质、磷酯、胆固醇，形成乳糜微粒（CM），经胞吐排至细胞外，再经淋巴系统进入血液。
在脂肪组织和骨骼肌毛细血管中，在脂蛋白脂肪酶（lipoprotein lipase,LPL)作用下，乳糜微粒中的三酰甘油被水解为游离脂肪酸和甘油，游离脂肪酸被这些组织吸收，甘油被运送到肝脏和肾脏，经甘油激酶和甘油-3-磷酸脱氢酶作用，转化为磷酸磷酸二羟丙酮2 脂肪酸的氧化2.1 脂肪酸的活化2.2 脂肪酸转入线粒体2.3 β-氧化2.4 脂肪酸氧化是高度的放能过程2.5 甘油的氧化2.1 脂肪酸的活化脂肪酸的分解（代谢）发生于原核生物的细胞溶胶及真核生物的线粒体基质中。
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不同动物肝脏中脂肪酸成分分析刘安军1，史建超，刘有志，张国蓉，刘玉江（天津科技大学食品工程与生物技术学院，天津300457）摘要：采用气相色谱法对7种动物肝脏中脂肪酸组成进行分析。
本研究以猪、羊、鸡、鸭、鲫鱼、草鱼和鹅的肝脏为材料，采用KOH-乙醇皂化，HCl-甲醇酯化的方法进行样品处理。
实验结果表明，猪肝中有16种脂肪酸，鸡肝中有12种脂肪酸，羊肝中有18种脂肪酸，鸭肝中有14种脂肪酸，鲫鱼肝中有20种脂肪酸，草鱼肝中有22种脂肪酸，鹅肝中有19种脂肪酸。
能快速、准确、可靠满足动物肝中脂肪酸检测分析要求。
关键词: 动物肝脏；脂肪酸；气相分析中图分类号：O623.61 文献标示码：AThe Analysis of Fatty Acid Composition in the Different Animals’ Livers Liu An-jun，Shi Jian-chao，Liu You-zhi，Zhang Guo-rong，Liu Yu-jiang(College of food engineering and biotechnology, Tianjin Science and Technology University, Tianjin 300457 ) Abstract: The analysis, on fatty acid of 7 kinds of animals’ livers, was carried through GC. The sample livers which are originally from pig, sheep, chicken, duck, crucian carp, grass carp and goose was saponified by using KOH-ethanol and esterified by HCl-methanol. The result shows that there are 16 kinds fatty acid in pig’s liver, 12 kinds fatty acid in chicken’s liver, 18 kinds fatty acid in sheep’s liver, 14 kinds fatty acid in duck’s liver, 20 kinds fatty acid in crucian carp’s liver, 22 kinds fatty acid in grass carp’s liver, 19 kinds fatty acid in goose’s liver. This is a rapid, accurate, confirmed method for analyzing the fatty acid of animal’s liver.Keyword: animal’s liver,fatty liver, GC analysis0 引言必需脂肪酸与维生素、蛋白质一样重要，必需脂肪酸的缺乏和不平衡会破坏机体调节机制，其失衡正是导致慢性疾病高发的原因之一[1]。
且人类临床试验已证明多不饱和脂肪酸能缓解慢性和急性炎性疾病，可在体内转变为一系列重要生理活性物质，它们在细胞代谢及各种活动中发挥重要的调节作用，人体自身不能合成多不饱和脂肪酸，只能从食物中摄取[2]。
而不饱和脂肪酸对降低人体血液中的胆固醇水平,减少胆固醇在心血管壁上的沉积,减轻与延缓动脉粥样硬化形成有重要作用，具有降血脂、软化血管，延缓衰老，防止心脑血管疾病发生的功效[3] 。
其中油酸，亚油酸和亚麻酸（C18:1，C18:2和C18:3）是广泛分布于动物体内的主要不饱和脂肪酸，亚油酸是一些动物生长中不可缺少的一种脂肪酸，亚麻酸及该系列的其他不饱和脂肪酸是生物体膜的重要组成，也是一些酶活性必不可少的，同时亚油酸C18:2在油脂转运中也起到重要作用[4]。
目前,市场商品不饱和脂肪酸的来源以深海鱼类为主[5]。
其实，陆生动物尤其是其内脏组织也含有丰富不饱和脂肪酸。
然而这部分重要资源的价值尚未被完全发掘出来，目前只有零星报道对少数几种动物肝脏1作者简介：刘安军（1963-）男，河北唐山人，天津科技大学食品工程与生物技术学院教授，博士，博士生导师，1991-1998年，日本北海道大学大学院农学研究科攻读食品科学博士学位，日本北海道齿学部生物化学研究科博士后研究，主要从事畜产（副产）品高附加值的开发利用及功能性食品研究等。
进行报道[1,6]，本文系统的对各种肝的脂肪酸成分进行分析对比，将有利于其价值的开发。
本研究采用甲酯化较完全的盐酸甲酯化的方法处理样品，利用气相色谱法对鲫鱼肝、草鱼肝、猪肝、羊肝、鸡肝、鸭肝和鹅肥肝的脂肪酸组成进行系统的分析检测。
以为其应用开发提供了必要的数据，为人们科学选用和利用动物肝脏作为营养素源和保健药物的开发提供有效的依据。
1 材料和方法1.1 材料仪器：GC-2010气相色谱（岛津）、RE-52AA旋转蒸发器（上海亚荣生化仪器厂）、XMTB恒温水浴锅（上海德兆仪器仪表有限公司）、超速生物冷冻离心机Heraeus（Kendro Laboratory Products GmbH）、ESJ205―4型电子天平（沈阳龙腾电子称量仪器有限公司）试剂：氢氧化钾、石油醚、盐酸、甲醇、乙醇、正己烷、氯仿、无水硫酸钠,均为分析纯；生理盐水为医用试剂；去离子水；氮气（纯度为99.999%）。
氯仿∶甲醇=2∶1（v∶v），1mol/L KOH-乙醇（5.6g KOH溶解在100mL乙醇），4%HCl-甲醇（4mL盐酸溶于100 mL甲醇）。
动物肝脏：鲫鱼、草鱼、鸡肝、鸭肝、羊肝和猪肝购于超市，鹅肥肝由天津宝鹅园提供。
脂肪酸标准品(SUPELCO Bellefonte, PA 16823-0048 USA)。
1.2 样品处理方法目前，对脂肪酸的处理方法有很多皆比较陈旧，本试验根据物质的状态、性质，通过对比采用了盐酸甲酯化的方法[7,8]，使样品甲酯化较完全。
1.2.1脂类皂化及分离分别称取鲫鱼、草鱼、猪、羊、鸡、鸭、鹅肝脏3g加入15mL体积的氯仿∶甲醇(2∶1,体积比)，再加入生理盐水3mL，充分匀浆。
静置30min，3000r/min离心10min，取下层氯仿相，旋转蒸发除去氯仿。
加入1mol/L 的KOH—乙醇溶液15mL，水浴加热，回流1h。
皂化后再次旋转蒸发，去除乙醇，生成的肥皂溶于20mL水中，加入乙醚20mL。
用分液漏斗提取下层不皂化物，重复此操作2次。
在下层水相中加入稀盐酸，调整pH值至2.0，使脂肪酸从肥皂中游离。
用石油醚20mL提取上相脂肪酸，重复此操作2次。
然后用无水Na2SO4干燥、保存。
1.2.2 盐酸甲酯化取上述脂肪酸混合物放入100mL烧瓶中，旋转蒸发去除石油醚，加入4%的HCl—甲醇30mL，60℃水浴加热30～60min，反应后静置至冷。
再加入正己烷15mL和水5mL，摇匀，3000r/min离心10min，水洗至中性（分液分层）将上层正己烷抽出，用无水Na2SO4干燥，并通入氮气吹干得总脂。
去除适量的溶剂，浓缩到用GC测定时能得到较高的灵敏度为止。
密封冷冻保存，留待进行气相色谱分析。
1.3 GC分析检测条件:气相色谱分析条件：岛津GC-2010气相色谱仪；色谱柱:CBP石英毛细管柱,50mm×0.25mm×0.25μm；检测器为FID；进样口温度250℃；检测器温度250℃；色谱柱升温程序：120℃保留5分钟，以3℃/min升至200℃，保留130min；载气为N2，流速为30mL/min。
2结果与分析按上述条件对鲫鱼、草鱼、鸡、鸭、羊、猪和鹅的肝脏进行皂化和甲酯化，将各种脂肪酸甲酯的标准样品的标准液与样品甲酯化后的溶液在相同条件下分别进样，进行气相色谱分析。
得到标准品与各样品的脂肪酸GC图，见图1～图8。
脂肪酸的确定参照标准品和保留时间来进行[9]，见表1。
采用面积归一化法计算出脂肪酸各组分的相对含量得到定量结果，结果见表2。
2.1脂肪酸标准品图谱及保留时间表：图1 脂肪酸标准品GC图Fig.1 the chromatogram of the standard fatty acid by GC表1 脂肪酸标准品保留时间Tab.1 Ret.Time of the standard fatty acidFA Ret.T (min) FA Ret.T (min) FA Ret.T (min) FA Ret.T (min) FA Ret.T (min)C4:0 6.336 C6:0 7.421 C8:0 9.854 C10:0 13.861 C11:0 16.226 C12:0 18.686 C13:0 21.124 C14:0 23.730C14:1 24.910C15:0 26.681C15:1 28.108C16:0 30.297C16:1 31.546C17:0 34.787C17:1 36.423C18:0 40.700C18:1 42.385C18:2 46.178C20:0 48.960C20:1 52.170C18:3 58.700C21:0 61.383C20:2 68.170C22:0 72.578C20:3(n6) 76.676C22:1 79.151C20:3(n3) 89.608C20:4 91.144C23:0 95.859C22:2 108.356C24:0 112.142C20:5 116.218C24:1 150.617C22:6 159.288注：FA为脂肪酸，Ret.T为保留时间。
2.2 各样品气相色谱图及含量表：图2 鲫鱼肝脂肪酸GC图Fig.2 the chromatogram of fatty acid of the crucian’s liver by GC图3 草鱼肝脂肪酸GC图Fig.3 the chromatogram of fatty acid of the herring’s liver by GC图4 鸡肝脂肪酸GC图Fig.4 the chromatogram of fatty acid of the chicken’s liver by GC图5 鸭肝脂肪酸GC图Fig.5 the chromatogram of fatty acid of the dark’s liver by GC图6 羊肝脂肪酸GC图Fig.6 the chromatogram of fatty acid of the sheep’s liver by GC图7 猪肝脂肪酸GC图Fig.7 the chromatogram of fatty acid of the pig’s liver by GC图8 鹅肝脂肪酸GC图Fig.8 the chromatogram of fatty acid of the goose’s liver by GC表2 各肝脏中脂肪酸的种类及相对百分含量（n=3）Tab.2 the category of fatty acid of each liver and relative percentage（n=3）序号脂肪酸名称各肝脏相对含量（%）鲫鱼草鱼鸭肝羊肝鸡肝猪肝鹅肝1 月桂酸(12:0)0.76±0.03 0.47±0.02 2.45±0.16 0.73±0.07 0.08±0.02 0.73±0.07 0.01±0.0042 十三碳酸(13:0)0.15±0.01 0.06±0.01 0.34±0.01 0.07±0.01 —0.05±0.01 —3 肉豆蔻酸(14:0) 2.55±0.05 2.39±0.18 2.07±0.24 1.96±0.03 0.39±0.05 1.45±0.10 1.11±0.024 肉豆蔻油酸(14:1)0.75±0.03 0.37±0.05 0.96±0.08 0.96±0.03 —0.16±0.02 0.13±0.025 十五碳酸(15:0)0.74±0.02 0.37±0.04 —0.92±0.01 —0.25±0.03 0.01±0.006 十五碳一烯酸(15:1)0.47±0.03 0.32±0.04 0.45±0.02 0.44±0.07 —0.14±0.01 —7 棕榈酸(16:0)21.38±1.13 20.62±0.34 22.46±0.90 16.35±0.46 22.41±1.22 18.87±1.55 31.42±1.478 棕榈油酸(16:1) 6.75±0.57 9.78±0.18 3.07±0.16 3.39±0.04 3.67±0.10 2.78±0.12 5.99±0.769 十七碳酸(17:0) 1.79±0.02 0.75±0.05 1.88±0.03 3.38±0.04 0.67±0.02 1.69±0.01 0.21±0.0310 十七碳一烯酸(17:1)0.26±0.02 0.28±0.02 —0.99±0.01 —0.35±0.09 0.03±0.0111 硬脂酸(18:0)10.08±0.65 4.28±0.38 16.53±0.65 22.72±1.69 17.29±0.57 18.88±1.31 13.19±0.4912 油酸(18:1)20.37±0.61 23.21±1.14 21.89±0.41 22.02±0.81 22.71±0.96 15.59±0.95 40.94±2.8213 亚油酸(18:2)18.24±0.49 17.67±0.65 13.26±0.41 13.47±1.31 22.01±1.22 27.72±1.46 5.95±0.6914 亚麻酸(18:3)—0.02±0.01 ————0.03±0.0115 花生酸(20:0)0.67±0.02 1.02±0.02 — 1.33±0.02 1.05±0.02 0.74±0.02 0.17±0.0516 花生一烯酸(20:1)0.13±0.02 0.08±0.01 —0.16±0.01 —0.05±0.01 0.01±0.00417 花生二烯酸(20:2) 1.08±0.11 2.74±0.15 1.37±0.03 1.18±0.01 0.55±0.01 —0.07±0.0218 花生三烯酸(20:3n3) 3.11±0.07 ——————19 花生三烯酸(20:3n6) 5.98±0.31 5.92±0.25 11.83±0.73 9.32±0.27 8.13±0.52 10.52±0.57 0.19±0.0720 EPA(20:5) 3.45±0.18 2.92±0.22 —————21 二十一碳酸(21:0) 1.28±0.08 2.49±0.03 ————0.32±0.0322 二十二碳烷酸(22:0) — 1.92±0.01 1.45±0.08 0.61±0.01 1.06±0.02 —0.01±0.00423 DHA(22:6)— 2.33±0.08 —————24 二十四烷酸(24:0)——————0.21±0.02饱和脂肪酸总量平均值39.41 34.37 47.18 48.07 42.95 42.66 46.66 不饱和脂肪酸总量平均值60.59 65.63 52.82 51.93 57.05 57.34 53.34不饱和/饱和 1.54 1.91 1.12 1.08 1.33 1.34 1.14 注：表中“—”表示为此种脂肪酸未检出。