酵母蛋白提取方法
Protein extraction from yeast(酵母蛋白质提取)
Protein extraction from yeast 1. Glass beads lysis Conzelmann A, Riezman H, Desponds C, Bron C. 1988. A major 125 kd membraneglycoprotein of Saccharomyces cerevisiae is attached to the lipid bilayer through aninositol-containg phospholipid. EMBO J 7: 2233± 2240. 2. rapid protein extraction in optimized SDS sample buffer HorwathA,RiezmanH. 1994.RapidproteinextractionfromSaccharomycescerevisiae. Yeast 10: 1305± 1310. Sample Buffer: 0.06M Tris-HCl, pH 6.8 10% (v/v) glycerol 2% (w/v) SDS 5% (v/v) 2-mercaptoethanol 0.0025% (w/v) bromophenol blue10 ml 0.6 ml 1M Tris 6.8
2 ml 50% glycerol 2 ml 10% SDS 0.5 ml 2-mercaptoethanol 0.1 ml Sat. Bromphenol blue 4.9 ml H2O Make sample Buffer fresh before use. Can store buffer frozen at—20 degrees for ~6 months. 1. Grow cells overnight (~1x107cells/ml; A600 = 0.7) and collect 1.5 ml cells (adjustvolumes according to cell density of cultures) in 1.5 ml microfuge tube (1 minute, 14000xg).It is important not to grow the cells to a high density. 10 microliters of a saturated overnight culture in YPD innoculated to 5 ml SD + essentialamino acids for ~16 hrs gives A600 of 0.5 to 1.0 for wild-type cells grown at 30 degrees150 microliters of YPD saturated culture diluted to 5 ml YPD and grown for ~5 hrs at 30degrees gives an A600 of ~ 0.8 for wild-type cells. 2. Wash cells 1X with water and collect again by centrifugation. 3. Resuspend cells in 100 microliters sample buffer. 4. Heat at 95 deg C for 5 minutes. 5. Centrifuge 14000xg for 5 minutes. Load 15 microliters per lane on an SDS PAG
酵母蛋白质提取对照品
酵母蛋白质提取对照品 酵母蛋白概述 酵母蛋白是存在于天然酵母中的一种优质完全蛋白。酵母是人类利用最早、最多、最广泛的一种单细胞微生物，在真菌分类系统中属于子囊菌纲、担子菌与半知菌类。酵母自古以来就被人们应用于日常生活中，如发面、酿酒、助消化等。 酵母的营养价值 酵母也是天然的营养来源和营养载体，其营养成分具有“三低四优”的特点，即低脂、低糖、不含胆固醇，富含优质完全蛋白质、完整的B族维生素、以生命结合态形式存在的多种矿物质和功能膳食纤维。 优点 酵母是补充优质蛋白质的最好来源。 1、酵母中含有丰富的蛋白质，高达40%～60%。 2、酵母中的蛋白质的消化率可达96%，净利用率达59%。 3、酵母含有完整的氨基酸群，包括人体必需的8种氨基酸，特别是在谷物蛋白中含量较少的赖氨酸，在酵母中含量较高。此外，酵母中的氨基酸比例接近联合国粮农组织(FAO)推荐的理想氨基酸组成值，故其营养价值较高。 4、酵母中还含有一些功能蛋白，例如金属硫蛋白（简称MT），它具有广泛的生物功能，在体内主要参与微量元素的贮存、运输和代谢、拮抗电离辐射、清除羟基自由基及重金属解毒等多种作用。酵母还含有丰富的助消化酶（酵素），能帮助日常饮食中的、酵母本身的、以及外源补充的营养更好地消化、吸收和利用。 5、酵母蛋白是酵母本身所含有的，而非多种蛋白来源的简单混合。 如何选择含有蛋白质的食物 选择蛋白质食物首先应考虑蛋白质含量的多少。如果食物中蛋白质含量太少，即使营养价值很高，也不能满足人体需要。在常见的每100克食物中，肉类含蛋白质10-20克，鱼类含15-20克，全蛋含13-15克，豆类含20-30克，谷类含8-12克，蔬菜、水果含1-2克。判断蛋白质的优劣主要有三点：一是人体消化吸收的程度，吸收得越彻底，其营养价值就越高；二是人体吸收后的利用程度，生物利用度（即蛋白质的生理价值）越高，其营养价值也越高；三是所含的必需氨基酸是否丰富、种类是否齐全、比例是否适当，种类齐全、数量充足、比例适当的完全蛋白质质量最高。
酵母蛋白快速提取试剂盒使用说明
酵?母蛋?白质快速微量提取试剂盒 Yeast Protein Miniprep Kit 常温运输、4℃保存（溶液B成分二需-20℃保存），有效一年。 自备酵母培养基 产品及特点 本产品用于快速提取微量酵母蛋白用于SDS-PAGE凝胶电泳和Western印迹分析。本产品结合玻璃珠破壁和化学法破壁两种方法，适合于各种形态的 各种酵母材料。本产品的其主要特点是： 1.破壁效率高，能达到80-90%。 2.可以处理各种酵母样品。 3.操作简单，得到的裂解液可以直接用于SDS-PAGE和Western印迹分 析。 规格及成分成份 50次包装 溶液A 100 mL 溶液B成分一 50 mL 溶液B成分二 1.5 g 玻璃珠，400μL 5 g 使用方法准备工作：将溶液B成分二（干粉）全部加到50mL溶液B成分一中，充分摇晃使之全部溶解，成为溶液B，然后分装成小分（体积根据每次实验的样 品数决定）并放-20℃长期保存。
1、 将酵母细胞接种到5mL YPD 培养基中，30℃摇晃（250rpm/分钟）过 夜培养使其OD600达到0.5～2.0。 2、 把酵母细胞培养物转到装有2mL 预冷溶液A 的10-15 mL 离心管中， 混匀。 3、 4℃ 5000g 离心5分钟沉淀酵母细胞，吸出上清液。 4、 用30μL 溶液B 悬浮酵母细胞，并快速转移到1.5mL 塑料离心管中。 5、 100℃下保温3分钟，使蛋白酶失活，样品存放于-20℃。 6、 加入0.1g 的玻璃珠。 7、 在旋涡振荡器上剧烈振荡混合2-10分钟。 8、 加入70 μl 溶液B，稍加振荡，置100℃保温1分钟。 9、 取5-20μl 抽提液上样直接进行SDS-PAGE 凝胶电泳。 关联推荐 4X 蛋白上样缓冲液 BCA 蛋白检测试剂盒 蛋白marker ECL 发光检测液
蛋白的酵母双杂交操作手册大全
蛋白的酵母双杂交实验 ——以钓饵蛋白筛选cDNA 文库研究蛋白相互作用 第一部分 系统简介 1. 实验原理 蛋白的酵母双杂交实验是以酵母的遗传分析为基础，研究反式作用因子之间的相互作用 对真核基因转录调控影响的实验。很早就已知道，转录活化蛋白可以和DNA 上特异的序列结合而启动相应基因的转录反应。这种DNA 结合与转录激活的功能是由转录活化蛋白上两个相互独立的结构域即DNA 结合结构域(Binding Domain, BD)和转录活化结构域(Activation Domain, AD)分别来完成的，并且这两个结构域对于基因的转录活化都是必须的。目前酵母双杂交实验采用的系统有LexA 系统和Gal4系统两种。在LexA 系统中，DNA 结合结构域由一个完整的原核蛋白LexA 构成，转录活化结构域则由一个88个氨基酸的酸性的大肠杆菌多肽B42构成，它在酵母中可以活化基因的转录; 在 Gal4系统中，BD 和AD 分别由Gal4蛋白上不同的两个结构域(1-147aa 与768-881aa)构成。在利用GAL4系统筛选cDNA 文库或研究蛋白间的相互作用时，DNA 结合结构域与靶蛋白即“诱饵”相结合，转录活化结构域与文库蛋白或要验证的蛋白相结合。一般情况下，单独的BD 可以与GAL4上游活化序列（GAL UAS ）结合但不能引起转录，单独的AD 则不能与GAL UAS 结合，只有当BD 与AD 分别表达的融合蛋白由于相互作用而导致两者在空间上相互靠近时，BD 与AD 才能与GAL UAS 结合并且引起报道基因的转录。在BD 与AD 要导入的酵母菌AH109中，通过基因工程的方法在GAL4 UASs 和启动子的下游构建了3个报道基因——ADE2，HIS3，MEL1（或LacZ ），因此可以通过营养缺陷筛选和酵母菌表型的改变来筛选或验证两个蛋白之间是否存在相互作用。GAL4系统的原理如图所示： 图一：酵母双杂交系统工作原理 Kan r Amp r pGBKT7-bait pACT2-cDNA
真菌胞内蛋白质提取方法的建立
［文章编号］ １６７１－５８７Ⅹ（２０１２）０３－０５９０－ ０５［收稿日期］ ２０１１－０８－ １５［基金项目］ 国家自然科学基金资助课题（３０９１０１０３９０３，３０７７０１２０ ）［作者简介］ 王 爽（１９７６－） ，女，吉林省长春市人，主治医师，医学博士，主要从事真菌分子学鉴定及耐药机制的研究。 ［通信作者］ 王 丽（Ｔｅｌ：０４３１－８５６１９４８６，Ｅ－ｍａｉｌ：ｗｌｉ９９＠ｊｌｕ．ｅｄｕ．ｃｎ）真菌胞内蛋白质提取方法的建立 王 爽１， ２，姜兰香１，张 宇２，３，贺 丹２，田 庄２，高 嵩２，横山耕治４，王 丽２（１．吉林大学第二医院皮肤科，吉林长春１３００４１；２． 吉林大学白求恩医学院病原生物学系，吉林长春１３００２１；３．吉林大学第二医院检验科，吉林长春１３００４１；４．日本千叶大学真菌研究中心，日本千叶２６０－ ８６７３）［摘 要］ 目的：研究不同的提取方法对白假丝酵母和茄病镰刀菌胞内蛋白质浓度、种类及数量的影响，为建立一种稳定可靠的真菌胞内蛋白质提取方法提供依据。方法：分别以白假丝酵母菌和茄病镰刀菌为研究对象， 培养时间为３６、４８和７２ｈ，超声波工作时间为２０ｓ、３ｍｉｎ、５ｍｉｎ，１０ｍｉｎ，超声波功率为３３２．５和４７５．０Ｗ， 通过蛋白质浓度检测和ＳＤＳ－Ｐ ＡＧＥ蛋白质电泳分析，比较不同条件下提取的蛋白质浓度、种类及数量，观察不同因素对蛋白质提取效果的影响。结果：２株真菌均在培养３６ｈ时提取胞内蛋白质的浓度最大，白假丝酵母在功率３３２．５Ｗ、超声３ｍｉｎ时得到胞内蛋白质的数量和种类最多，茄病镰刀菌在功率３３２．５Ｗ、超声１０ｍｉｎ时得到蛋白质的数量和种类最多。结论：使用超声波法与玻璃珠研磨法结合提取胞内蛋白质，从菌株的培养时间、超声波工作时间和功率３方面建立了真菌胞内蛋白质的最佳提取方法。 ［关键词］ 白假丝酵母；茄病镰刀菌；超声波；培养时间 ［中图分类号］ Ｒ３７９．２ ［文献标志码］ Ａ Ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ｏｆ ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｐ ｒｏｔｅｉｎ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｍｅｔｈｏｄｓ ｆｒｏｍ ｆｕｎｇ ｕｓＷＡＮＧ Ｓｈｕａｎｇ１，２，ＪＩＮＧ Ｌａｎ－ｘｉａｎｇ１，ＺＨＡＮＧ Ｙｕ２， ３，ＨＥ Ｄａｎ２，ＴＩＡＮ Ｚｈｕａｎｇ２， ＧＡＯ Ｓｏｎｇ２，ＫＯＪＩ Ｙｏｋｏｙａｍａ４，ＷＡＮＧ Ｌｉ ２（１．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｈｏｓｐｉｔａｌ，Ｊｉｌｉｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈａｎｇ ｃｈｕｎ １３００４１，Ｃｈｉｎａ；２．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｐａｔｈｏｇｅｎ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｎｏｒｍａｎ Ｂｅｔｈｕｎｅ Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｊｉｌｉｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈａｎｇ ｃｈｕｎ１３００２１，Ｃｈｉｎａ；３．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｈｏｓｐｉｔａｌ，Ｊｉｌｉｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈａｎｇ ｃｈｕｎ１３００４１，Ｃｈｉｎａ；４．Ｍｅｄｉｃａｌ Ｍｙｃｏｌｏｇｙ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ，Ｃｈｉｂｅｒ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈｉｂａ ２６０－８６７３，Ｊａｐａｎ）Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ Ｔｏ ｓｔｕｄｙ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｕｌｔｉｖａｔｅ ｔｉｍｅ，ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ ｔｉｍｅ ａｎｄ ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ ｐｏｗｅｒ ｏｎ ｔｈｅｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ，ｔｙｐｅ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｐｒｏｔｅｉｎ ｆｒｏｍ Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ ａｎｄ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｏｌｉｎａ ａｎｄ ｔｏｐｒｏｖｉｄｅ ｔｈｅ ｔｈｅｏｒｅｔｉｃａｌ ｂａｓｉｓ ｆｏｒ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｉｎｇ ａ ｒｅｌｉａｂｌｅ ａｎｄ ｓｔａｂｌｅ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｐｒｏｔｅｉｎ ｆｒｏｍｆｕｎｇ ｕｓ．Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ ａｎｄ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｏｌｉｎａ ｗｅｒｅ ｃｕｌｔｕｒｅｄ．Ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｔｈｅｃｕｌｔｕｒｅ ｔｉｍｅ（３６，４８，ａｎｄ ７２ｈ），ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ ｔｉｍｅ（２０ｓ，３ｍｉｎ，５ｍｉｎ，ａｎｄ １０ｍｉｎ）ａｎｄ ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ ｐ ｏｗｅｒ（３３２．５Ｗａｎｄ ４７５．０Ｗ）．Ｔｈｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ，ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ ｕｎｄｅｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆａｃｔｏｒｓ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅｐｒｏｔｅｉｎ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ ＳＤＳ－ＰＡＧＥ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ ａｎａｌｙ ｓｉｓ．Ｒｅｓｕｌｔｓ Ｂｏｔｈ ｓｔｒａｉｎｓ ｇｏｔ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｑｕａｎｔｉｔｙｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ ｗｈｅｎ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｆｏｒ ３６ｈ．Ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｑｕａｎｔｉｔｙ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｗｈｅｎ ｔｈｅｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ ｐｏｗｅｒ ｗａｓ ３３２．５Ｗａｎｄ ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ ｔｉｍｅ ｗａｓ ３ｍｉｎ，ｂｕｔ ａｓ ｔｏ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｏｌｉｎａ，ｔｈｅ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ ｗｅｒｅ ３３２．５Ｗａｎｄ １０ｍｉｎ，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ Ｔｈｅ ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｐｒｏｔｅｉｎ ｉｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｂｙ ｃｏｍｐｏｓｉｔｅｌｙ ｕｓｉｎｇ ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ ｍｅｔｈｏｄ ａｎｄ ｇｌａｓｓ ｂｅａｄ ｔｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ．Ｔｈｅ ｏｐｔｉｍａｌ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ０９５第３８卷 第３期２０１２年５月吉 林 大 学 学 报 （医 学 版）Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｊｉｌｉｎ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（Ｍｅｄｉｃｉｎｅ Ｅｄｉｔｉｏｎ）Ｖｏｌ．３８Ｎｏ．３ Ｍａｙ ２０１２
酵母RNA的提取实验报告
酵母RNA的提取紫外吸收法测RNA浓度实验报告 一、实验目的 1、掌握稀碱法提取酵母RNA的原理和方法。 2、掌握紫外线（UV吸收法测定核酸浓度的原理。 3、熟悉紫外分光光度计的使用方法。 二、实验原理 核酸是生命的最基本物质之一，广泛存在于所有动植物细胞、微生物体内。对核酸的研究是更深入研究生命体的基本前提之一。研究核酸需要纯度很高的核酸，所以核酸的提取方法也就在生物学研究中相当重要。本次实验提取酵母的核糖核酸（RNA o RNA离体后稳定性很差，含量低，所以在提取的时候就要注意防止核酸的降解和变性，防止过酸、过碱、避免剧烈搅拌，尤其重要的是防止RNA 酶的作用。本实验是医药卫生领域与大工业生产的基础方法。 核酸（RNA都是由核苷酸组成的多聚核苷酸化合物，而核苷酸是由糖、碱基和磷酸以等分子比例构成的，故测定组成核苷酸的任意一种组分即可以测定生物体内核酸的含量或者是提取出来的核酸的含量。 提取RNA的方法很多，在工业生产上常用的是稀碱法和浓盐法。前者是利用碱使细菌细胞壁溶解，是RNA释放出来，后者是在加热的条件下，利用高浓度的盐改变细胞膜的通透性，使RNA释放出来。使用浓盐法提取RNA勺时候应该注意掌握温度，直接至90~100C浸提，避免在20~70C的时间过长，因为这是磷酸二酯酶和磷酸单酯酶的作用活跃的温度范围，会使RNA降解而降低提取率。这两种方法是从废弃的啤酒酵母中提取RNA的—般方法。但是这两种方法各有利弊，如浓盐法提取的RNA纯度高，而稀碱法提取的时间短，提取率高，更利于工业化生产。 RNA在260nm处有最大吸收峰，一定浓度范围内其浓度与吸光度成正比，故可以用紫外分光光度计通过比色来测定RNA t量。 由于蛋白质在280nm波长处也有光吸收，对RNA测定有一定的干扰作用，但蛋白质的最大吸收峰在280nm 处，如同时测定280nm的光吸收，通过计算可消除其对RNA M定的影响。因此如其中含有蛋白质时必须同时测定280nm和260nm的吸光度，可通过计算测定溶液中RNA的含量。 三、实验器材 电子天平、离心机、量筒、烧杯、锥形瓶、紫外分光光度计、容量瓶（100mL 、移液管（5ml）、试管和试管架、PH 1-14试纸 四、实验试剂 0.2%NaOH酸性乙醇(5mlHCI加入剂、500ml 95%乙醇)、95聽醇、无水乙醇、酵母粉、第一次实
蛋白提取常见问题分析
蛋白提取常见问题分析 Q：如何进行组织液氮研磨？ A：将组织块在液氮里冻实，敲成大小合适的小块后放在研钵里，倒液氮，边研边加，保持研钵里有液氮，或是保持组织块不融。研碎了就行了。注意做前研钵等器具要预冷，用液氮或是先放负二十冰箱一段时间。 注意事项：1.液氮研磨的研钵，药勺必须预冷。2.开始研磨前，将研钵置于冰袋上，并加入少量的液氮，快速将样品转入其中。3.继续加入液氮，快速捣碎样品，然后快速研磨。4.待液氮挥发完前，继续加入液氮，快速淹没，重复操作，待样品变成非常细小的白色干粉时即可。5.将干粉刮下转入裂解液中，再加裂解液于研钵中，将其中的黏附的样品洗下。整个过程保持样品处于温度低的环境，研磨的速度要快而有力度。这样才能破碎细胞，同时不降解蛋白。 Q：提取蛋白Western内参如何选择？ A：参照下表选择： 适用范围 内参名称 分子量大小 注意事项 胞浆蛋白和总蛋白 beta-actin 43 kDa 不适用于骨骼肌样品，细胞 生长条件的改变和细胞外 基质成分的相互作用可能 会改变肌动蛋白的合成 胞浆蛋白和总蛋白 GAPDH 30-40 kDa 一些生理因素例如缺氧症 和糖尿病会增强 GAPDH 在 特定细胞中的表达 胞浆蛋白和总蛋白 Tubulin 微管蛋白 55 kDa 微管蛋白的表达随着抗菌 和抗有丝分裂抗性药物而 改变 核蛋白 TBP（TATA box binding protein）38 kDa 不适用于除去 DNA 的样本 核蛋白 Lamin A74 kDa 核蛋白 Lamin B核纤层蛋白72 kDa 不适用于除去核膜的样本 核蛋白 Histon H3 膜蛋白 α-Tubulin55 kDa 膜蛋白 Na-K ATPase 植物内参 Rubisco核酮糖二磷酸羧化酶 Lhcb4多抗 当实验样品中只是核蛋白，而不是细胞总蛋白提取液时，可以用组蛋白H（Histone H)，或者核纤层蛋白(nuclear lamina protein)等为核内参抗体。除了这些，其它常见的核蛋白内参还有K70, K80, Lamin A和B，
植物膜蛋白提取方法的研究(2D电泳用)
植物膜蛋白提取试剂盒（2D电泳用） 货号：BB-31841 V2.16 试剂盒组成： 产品组成 BB-31841-1 BB-31841-2 组份编号 规格 50T 100T 试剂A：植物膜蛋白提取液A 25ml 50ml 31841A 试剂B：植物膜蛋白提取液B 250ul 500ul 31841B 试剂C：膜蛋白溶解液C 10ml 20ml 31841C 试剂D：蛋白酶抑制剂混合物 100ul 200ul 31841D 使用说明书 1 1 知识产权： 贝博TM BBproExtra TM试剂盒及其使用方法包含专有技术。 产品简介： 膜蛋白承担各种生物功能，扮演重要角色。膜蛋白样品的制备需要充分考虑到与下游的胶分析及质谱分析等应用配套，因此膜蛋白样本制备成为一个难以逾越的挑战。传统制备膜蛋白样品的方法是使用去污剂和表面活性剂增溶。去污剂处理会使膜蛋白丧失其天然结构，因而妨碍了膜蛋白的功能研究。 贝博TM BBproExtra TM植物膜蛋白提取试剂盒（二维电泳用）是一种基于化学方法的高产膜蛋白提取试剂盒。植物膜蛋白提取试剂盒可以从各种植物中提取膜蛋白，可用于纯化膜蛋白的粗品制备及膜蛋白制备。提取过程简单方便。该试剂盒含有蛋白酶抑制剂混合物和磷酸酶抑制剂混合物，阻止了蛋白酶对蛋白的降解，为提取高质量的蛋白提供了保证。 本试剂盒提取的蛋白用于双向电泳。如需要用于报告基因检测、SDS-PAGE电泳检测、Western blotting、凝胶阻滞实验、免疫共沉淀、酶活分析等下游实验的试剂盒，请联系贝博，选用其它产品号的产品。 使用方法： 1、试剂准备： 每500ul膜提取液A中加入2ul蛋白酶抑制剂混合物，充分混匀后置冰上备用。 2、取洗净擦干后并去除叶梗和粗脉的200mg植物组织样本用手术剪刀尽可能剪碎，加 入500ul提取液A，用组织匀浆机/匀浆器充分匀浆。 3、匀浆或研磨后加入500ul提取液A，混匀后于一个干净离心管中在2-8℃振荡1小时。 4、将提取液在2-8℃条件下12000g离心5分钟，取上清。 5、在上清中加入5ul提取液B，充分混匀。 6、在37℃水浴10分钟。 7、在37℃ 1000g离心3分钟。 8、此时液体分为2层，小心移除上层部分，吸取下层管底部大约50ul液体。 9、用50-150μl冷的膜蛋白溶解液C溶解下层溶液，即得膜蛋白样品。
膜蛋白的提取方法-全攻略
https://www.360docs.net/doc/078425626.html, 膜蛋白的提取方法-全攻略 一、膜蛋白简介 膜蛋白在细胞中扮演着重要的角色：例如被熟知的识别、信号转导、运输等功能，也是用药的理想的靶点，虽动物细胞主要有9种膜脂，而膜蛋白的种类繁多，多数膜蛋白分子数目较少，但却赋予细胞膜非常重要的生物学功能。 根据膜蛋白分离的难易及其与脂分子的结合方式，膜蛋白可分为两大类型：外在膜蛋白、内在膜蛋白。 (1) 外在膜蛋白为水溶性蛋白，靠离子键或其它较弱的键与膜表面的蛋白质分子或脂分子结合，因此只要改变溶液的离子强度甚至提高温度就可以从膜上分离下来，膜结构并不被破坏。 (2) 内在膜蛋白与膜结合非常紧密，一般只有用去垢剂(detergent)使其膜解后才可分离出来。 附注：使用分级抽提方法获得的“膜蛋白”中只有很少一部分是具备多跨膜区的整合膜蛋白。 二、膜蛋白的提取方法 谈及蛋白分离，我们想到：超速离心，盐析法、超滤法、凝胶过滤法、等电点沉淀法、离子交换层析、亲和层析、吸附层析、逆流分溶、酶解法……有时这些方法常常组合到一起对特定的物质进行分离纯化。由于蛋白质种类繁多，不同的蛋白质由于结构和组成的差异，其溶解
https://www.360docs.net/doc/078425626.html, 度也各不相同.根据蛋白质的溶解特性，同时可选择不同的溶剂提取，分为水溶液提取和有机溶剂提取. 但是与胞质蛋白，核蛋白提取不同之处在于膜蛋白是嵌在膜中的，水溶性不好，基本方法就是用不同的离心速度去掉胞质蛋白等，然后用去污剂把蛋白从膜中释放出来。膜蛋白分离纯化的重要步骤是选择适当的增溶用表面活性剂，一般常用的有胆酸盐，CHAPS(一种离子去污剂），Emulgen和Lubrol等表面活性剂。 1）先分离膜，然后提取；如选用冷热交替法、反复冻融法、超声破碎法、玻璃匀浆法、自溶法和酶处理法使得细胞破碎，然后通过梯度离心得到含有膜蛋白的粗组分。（例如：用液氮研磨组织，加入匀浆缓冲液及蛋白酶抑制剂，然后差速离心、蔗糖密度梯度离心。收集37%与41%间的成分，即为质膜部分。裂解即可收集膜蛋白） 2）用特殊的去污剂选择性的分离。从膜上提取蛋白有许多困难。在多数情况下，都是采用去垢剂将疏水蛋白从其膜结构中溶解下来，然后将蛋白质稳定。去垢剂的选择通常是依据他对所需要蛋白质的提取效率来确定，但在某些情况下，还要考虑到以后的纯化步骤。虽然许多膜蛋白必须在去垢剂存在的情况下进行纯化，但最终仍可能需要除去去垢剂。这常常会引起蛋白质失活，但如果蛋白质是用于测序的，他将不是一个问题。如果不是用于测序的，可考虑使用能够黏附去垢剂的疏水珠.许多文献和生化试剂供应商的产品目录中，都介绍有许多种不同的可用来溶解膜蛋白的去垢剂.然而，他们并不是普遍适用的.在设计膜蛋白溶解方案时，必须考虑某一去垢剂的特殊性质.如 triton X-100在280nm处有吸收，如果某蛋白质的测试与280nm 处的吸收有关，就应避免使用这类去垢剂. 将膜制剂与胞质蛋白及细胞核分离后，再进一步从细胞膜制剂中将所需的膜蛋白增溶下来.这种做法的好处是可以用强烈的去垢剂提取细胞骨架的相关蛋白，而无需考虑胞质蛋白、细胞核成分或染色质成分的混入.使用这种方法所获得的膜蛋白，无论在种类上还是数量上，都比酸溶解法所得到的蛋白（<5000Da）要多.一般提取的膜蛋白量往往只占膜蛋白总量的不足0.1%，所以充分的膜蛋白的提取，无疑对于研究膜蛋白的结构和功能都是非常重要的. 酸溶解法简单，可靠，但有时含有其他蛋白。一般的都是利用4℃时所有的蛋白质原则上都溶于Triton X-114水溶液，在温度超过20℃时，此溶液分为水相和去污相；此时亲水性蛋白溶于水相，疏水的膜蛋白溶于去污剂相中。利用此性质可提取膜蛋白。 3 )膜蛋白色谱(Chromatography of Membrane Protein,CMP)：CMP分离强疏水性蛋白、多肽混合物的层析系统，一般有去垢剂（如SDS）溶解膜蛋白后形成SDS-融膜蛋白，并由羟基磷灰石为固定相的柱子分离纯化。羟基磷灰石柱具有阴离子磷酸基团（P-端），又具有阳离子钙（C-端），与固定相结合主要决定于膜蛋白的大小、SDS结合量。利用原子散射法研究cAMP的
酵母双杂交实验流程
模块七蛋白质之间的相互作用 1. 实验目的 本实验以重组质粒和酵母细胞为材料，学习检测蛋白质相互作用的基本原理和技术方法。主要介绍酵母双杂交的基本原理与操作技术；让学生了解和掌握酵母双杂交系统的应用；掌握酵母感受态的制备的基本原理和主要的操作步骤。 2. 实验原理 1989年Fields和Song等人根据当时人们对真核生物转录起始过程调控的认识（即细胞内基因转录的起始需要转录激活因子的参与），提出并建立了酵母双杂交系统。该系统作为发现和研究活细胞体内的蛋白质与蛋白质之间的相互作用的技术平台，近几年得到了广泛的运用和发展。 相比于其它蛋白质筛选系统，酵母双杂交系统具有以下优点：（1）检测在真核活细胞内进行，在一定程度上代表细胞内的真实情况。（2）作用信号是在融合基因表达后，在细胞内重建转录因子的作用而给出的，省去了纯化蛋白质的繁琐步骤。（3）检测结果是基因表达产物的积累效应，因而可检测存在于蛋白质之间的微弱或暂时的相互作用。（4）酵母双杂交系统可采用不同组织、器官、细胞类型和分化时期材料构建cDNA文库，能分析细胞质、细胞核及膜结合蛋白等多种不同亚细胞部位及功能蛋白。（5）通过mRNA产生多种稳定的酶使信号放大。同时，酵母表型、X-Gal 及HIS3 蛋白表达等检测方法均很敏感。 酵母双杂交系统也具有一定的局限性。首先，经典的双杂交系统分析蛋白间的相互作用定位于细胞核内，因而限制了该系统对某些细胞外蛋白和细胞膜受体蛋白的研究。酵母双杂交系统的另一个局限性是“假阳性”。在酵母双杂交系统建立的初期阶段，由于仅仅采用β-半乳糖苷酶这一单一的报告基因体系，这种报告基因的表达往往不能十分严谨地被控制，因此容易产生假阳性。由于某些蛋白本身具有激活转录的功能或在酵母中表达时发挥转录激活作用，使DNA结合结构域融合蛋白在无特异激活结构域的情况下也可被激活转录。另外某些蛋白表面含有对多种蛋白质的低亲和力区域，能与其他蛋白形成稳定的复合物，从而引起报告基因的表达，产生“假阳性”结果。产生“假阴性”结果的原因可能有许多蛋白质间的相互作用依赖于翻译后加工如糖基化、磷酸化和二硫键形成，还有些蛋白的正确折叠和功能有赖于某些非酵母蛋白的辅助等。 现在的酵母双杂交系统大都采用多种报告基因，如AH109酵母株含有三类报告基因—ADE2、HIS3、MEL1/lacZ，这三类报告基因受控于三种完全不同、异源性的GAL4-反应元件和三类启动子元件-GAL1、GAL2以及MEL1（如图6-1-1）。通过这种方法就消除了两类最主要的假阳性，一类是融合蛋白可以直接与GAL4结合位点结合或者是在结合位点附近结合所带来的假阳性；另一类是融合蛋白和某种转录因子结合后再结合到特定的TA TA盒上所带来的假阳性。ADE2一种报告基因就已经能够提供较强的营养选择压力，这时选择性地使用HIS3报告基因，一来可以降低假阳性率；二来可以控制筛选的严格性（如果需要筛选与诱饵蛋白具有较强结合的蛋白，就可以同时使用ADE2、HIS3两种报告基因；如果只需要筛选与诱饵蛋白具有中等强度或较弱结合的蛋白，就可以使用ADE2或HIS3两者中的一种）。MEL1和lacZ分别编码α-半乳糖苷酶和β-半乳糖苷酶，可以作用于相应的底物
叶绿体膜蛋白提取方法
叶绿体膜蛋白提取试剂盒 产品组成： 产品组成 BB-3175-1 BB-3175-2 规格 50 assays 100 assays 提取液A 200ml 400ml 提取液B 25ml 50ml 提取液C 250ul 500ul 膜蛋白稀释液 10ml 20ml 蛋白酶抑制剂混合物 100ul 200ul 储存条件： 蛋白酶抑制剂-20℃保存； 蛋白提取液2-8℃保存； 膜蛋白稀释液室温保存。 有效期： 一年。 产品简介： 叶绿体是植物细胞所特有的能量转换细胞器，光合作用就是在叶绿体中进行的, 由于具有这一重要功能，所以叶绿体一直是细胞生物学、遗传学和分子生物学的重要研究对象。叶绿体是植物细胞中较大的一种细胞器。跨膜蛋白承担各种生物功能，在生物的各种发展过程中扮演重要角色。膜蛋白样品的制备需要充分考虑到与下游的胶分析及质谱分析等应用配套，因此膜蛋白样本制备成为一个难以逾越的挑战。 贝博叶绿体膜蛋白提取试剂盒用简便快速的方法可以从各种植物样本中提取叶绿体膜蛋白，提取过程简单方便，可在一小时内提取得到高质量的叶绿体膜蛋白。该试剂盒含有蛋白酶抑制剂混合物和磷酸酶抑制剂混合物，阻止了蛋白酶对蛋白的降解，为提取高质量的蛋白提供了保证。该试剂盒提取的膜蛋白具有天然活性，提取的蛋白可用于Western Blotting、免疫共沉淀、酶活性测定等各种下游蛋白研究实验。 使用方法： 1.取新鲜植物样本叶片，洗净擦干后去除叶梗和粗脉。 2.每2g样本加入4ml提取液A。 3.用研钵快速研磨30-60秒，或者用组织搅碎机高速匀浆1分钟。 4.将匀浆用3层纱布或者400目滤网过滤。 5.将滤液200g力（约1000RPM，不同离心机不一样，以实际为准）离心1分 钟。将上清移入另一干净离心管。 6.将上清1000g力（约3000RPM）离心5分钟。 7.弃上清，收集沉淀。 8.在沉淀中加入500ul抽提液B和2ul蛋白酶抑制剂混合物，充分混匀后在冰上 静置1-2小时，中间每隔15-20分钟高速涡旋振荡15秒。
膜蛋白提取步骤
膜蛋白提取试剂盒 Membrane Protein Extraction Kit 产品编号：C500049 包装规格：50 Assays 产品简介 本试剂盒提供独特的组份提取细胞及组织中的膜蛋白。特殊的提取Buffer 在裂解细胞的同时，经过特殊处理，还可以选择性地分离提取细胞膜蛋白和胞器质膜蛋白。提取方法简单，可靠，快速。获得的膜蛋白纯度高，可用于SDS-PAGE 、Western Blot 、免疫共沉淀或细胞信号传导等后续研究，每次可以提取107 个培养细胞或200 mg 动物组织，本试剂盒可以使用50次。 产品特点 1. 整个操作过程只需要60 min 左右。 2. 即可以用于培养细胞（50x107 个），有可以用于动物组织（50 x 200 mg ）蛋白质的提取。 3. 避免蛋白酶对蛋白质的降解，保持膜蛋白质的完整性和天然活性。 4. 提取的膜蛋白纯度高，不需要超速度离心，可以同时处理多个样品。 运输和保存条件 在常温下运输，收到后，将蛋白酶抑制剂、Loading Buffer 、DTT 于在-20°C 的环境中保存，其余4°C 保存，保质期一年。 产品组成 成分 C500049 洗涤液 10×50 mL 提取Buffer 50 mL 蛋白酶抑制剂 50 μL Loading Buffer 1 mL DTT 50 μL 操作步骤 1. 对于悬浮培养或用细胞刮子刮下的贴壁培养的细胞，离心收集不少于1×107 细胞，再用预冷的双蒸水稀释的一倍浓度的 洗涤液洗涤细胞三次，每次3000 rpm （800 g ）离心5 min 。 2. 组织样本（200 mg ）尽量去除脂肪组织和结缔组织等非目的组织，冰上剪碎，再用预冷的一倍浓度的洗涤液洗涤细胞三次。 3. 在上述细胞或组织样本中加入1 mL 提取Buffer （使用前，每mL 提取Buffer 加入1 μL 蛋白酶抑制剂和1 μL DTT ），4°C 下玻璃匀浆器上下手动匀浆30~50次。或超声破碎细胞，每次30 sec ，3~4次，每次间隔1 min ，置于冰上冷却。均质匀浆或超声破碎细胞后应镜检，细胞破碎率不小于90％，同时没有明显的组织小块。 ü 因提取Buffer 在室温时会分层，请务必在冰上放置30 min 后，混匀，立即加入。 4. 装入1.5 mL 的预冷的离心管中，冰上放置10 min 左右，期间取出剧烈震荡2~3次，于4°C ，14000 rpm （17500 g ）离心10 min ，弃沉淀，上清转至新管中。 5. 上清置于37°C 水浴10 min 。再室温，13000 rpm 离心5 min ，样品分成上层和下层（含膜蛋白）。 ü 建议使用进口透明性较好的微量离心管，可见下层为含膜蛋白的有机相。上下两层因均为透明，只在交界处有一折光线， S a n g o n B i o t e c h
[整理]WesternBlot蛋白提取与样品制备.
Western Blot蛋白提取与样品制备>>>> Western Blot第一步便是样品制备，但是在开始制备样品之前，实验者应该对自己的实验有一个非常清晰的思路，通常需要思考的最基本问题包括：要检测的靶蛋白是否存在该样品中？靶蛋白的含量是否在Western Blot的检测下限以上（目前认为Western Blot的有效检测下限为0.1-1ng)？要检测的靶蛋白在组织或细胞的哪个时期存在？是否需要特殊刺激才会表达？是否只有在病变组织中才会有表达？是否存在多种异构体？是否容易发生自行降解？靶蛋白分子量是不是非常大或者非常小？靶蛋白是否仅存在特殊的细胞器中而需要分离出细胞器？充分思考了这些问题才有可能对样品制备有一个比较完善的策略。 蛋白提取可以分为三个步骤：第一步获取材料，第二步分离目的细胞或组织成份并破碎，第三步就是进行裂解制样。这里就这三个步骤展开一一讨论。 材料的获取从大方向讲，Western Blot的对象可以是植物组织、动物组织和培养物。 植物组织的获取一般应该不是很困难，尤其是可进行人工种植的植物更是方便。动物组织的获取就相对困难许多，一是要考虑到法律上的问题，二是需要实验者有丰富的解剖经验，可以快速准确地从动物体上取下需要的组织或Organ(要和谐，下同)。培养物就不用多说了，几乎每个实验者都养过细菌或者细胞的。如果是动物组织或者植物组织，一般情况下都可以用手术刀和手术剪从个体上分下需要的部份。如果是细菌，则可以将养好的菌液收集起来离心，然后弃去上清即可，如有必要，可以再用等渗中性溶液洗涤数次。如果材料是培养的细胞，建议将细胞从培养瓶（皿、板）内刮下来再离心处理，也可以不收集采取而直接在培养容器中裂解，详见下文。非常不建议用酶将细胞从培养器皿上消化下来再进行裂解。在组织或者细胞进行裂解之前，一般都要将组织或者细胞清洗干净（对于组织可用预冷的等渗buffer洗涤，对于细胞也用等渗buffer洗涤再用离心法去掉洗涤液即可），以除去组织中的污垢、血液和细胞培养中的培养基以及添加物。 细胞破碎如果收集到的材料是组织或者Organ，第一步往往是将它们分切成小块方便 操作。接下来就是准备进行细胞破碎了。细胞破碎的方法分为机械法和非机械法，机械法可以是振动、搅拌、研磨、压滤、超声、匀浆，非机械法可以是干燥、改变渗透压、冻融、酶解（纤维素酶、溶菌菌、蜗牛酶）等，不同来源的材料对于不同的处理方法耐受程度是不一样的，例如超声波可以很容易破碎动物细胞，但是破碎酵母细胞就困难许多。在这里有三个问题需要指出：（1）所有的操作尽量在低温条件下进行，防止细胞内的蛋白酶释放出来而将目的蛋白降解，最好全程都在冰浴中进行，有条件用液氮的就用液氮，下同。（2）超声处理中会释放出大量的热，因此一定需要冰浴。同时超声过程会释放自由基，有可能改变蛋白质的结构，可向系统中加入少量的GSH（谷胱甘肽）进行还原。另外，超声过程有可能打断蛋白质大分子，所以如果研究的蛋白质分子量比较大时建议减少超声处理时间或者换用其它方法处理。（3）如果使用蛋白酶处理，可能会将目的蛋白降解，同时还引入了新的蛋白质从而干扰实验，所以一般不推荐使用。细胞的破碎与裂解过程没有严格的时间和空间界线，其作用仅仅是为了使裂解过程更容易，因此在破碎细胞过程中所用的Buffer一般也是裂解时的裂解液，注意不能加太多，根据经验，一般每克组织加2-3ml裂解液为宜。