动物注射法
常用实验动物的给药途径和方法
常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。
由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。
一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。
1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
灌胃量0.2～0.5ml/10g。
胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。
注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。
2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。
灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。
灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。
灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。
具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。
此种操作较为简便。
5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。
实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。
动物的几种常用注
职教中心 侯冰
注射法的概念
• 注射法是使用无菌注射器或输液器将药液 直接注入动物体组织内、体腔或血管内的 给药方法，是临床治疗上最常用的技术。 具有给药量小、确实、见效快等有点。
注射原则
• 1、 严格遵守无菌操作原则，防止感染。注 射前需要洗手、戴口罩。对被毛浓厚的动 物可先 剪毛。用棉签蘸2%碘酊消毒注射部 位，以注射点为中心向外螺旋式旋转涂擦， 碘酊干后，用70%乙醇以同法脱碘，待干后 方可注射。
• 2、 认真执行查对制度，做好三查七对。三 查：操作前查、操作中查核操作后查；七 对：核 对畜主名、动物、药名、剂量、浓 度、时间和用法。
• 3、 检查药液质量，如药液变色、沉淀、混 浊，药物已过有效期或药瓶（安瓶）破裂， 均不 能使用。多种药物混合注射需要注意 药物配伍禁忌。
• 4、 根据药液量、粘稠度及刺激性强弱选择 注射器和针头。注射器需完好无损、不漏 气。针 头应锐利、无沟、无弯曲，注射器 和针头斜街须紧密。
• 注意事项 • 1. 刺激性强的药不能做皮下注射，特是对 局部刺激较的 钙制剂、砷制剂、水合氯及高渗溶液等，易 诱发炎症，甚至组织坏死。 • 2. 大量注射补液时需将药液加温后分点注 射。
• 3. 注射后应轻按摩局部或进行温敷，以促 进吸收。 • 4. 长期给药，应经常更换注射部位，建立 轮流替注射计划，达到在有限的注射部位 吸收最大药量的效果。
皮下注射
• 皮下注射 皮下注射（Subcutaneous injection, SC）是将药液注入皮下结缔组织内的注射 方法。 （一）应用 将药液注射于皮下结缔 组织内，经毛细血管、淋巴管吸收进入血 皮下注射 液，发挥药效作用，而达到防治疾病的目 的。凡是易溶解、无强刺激性的药品及疫 苗、菌苗、血清、抗蠕虫药（如伊维菌素 等），某些局部麻醉药，不能口服或不宜 口服的药物要求在一定时间内发挥药效时， 均可做皮下注射。
实验动物的给药方法
实验动物地给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起地变化，常需要将药物注入动物体内.给药地途径和方法多种多样，可根据实验目地、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定.（一）注射给药法. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射.①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少地部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出.. 皮内注射此法用于观察皮肤血管地通透性变化或观察皮内反应. 如将一定量地放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一.方法是：将动物注射部位地毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液.注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘.. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中地药物时，常采用肌肉注射.肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过地部位，多选臀部.注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射.给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射.. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约厘米，再使针头与皮肤呈度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液.此法大小鼠用地较多.. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效.但排泄较快，作用时间较短.①小鼠、大鼠地静脉注射：常采用尾静脉注射.鼠尾静脉共有根，左右两侧和背侧各根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用.操作时，先将动物固定在暴露尾部地固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行地角度进针.开始注射时宜少量缓注，如无阻力，表示针头已进入静脉，这时用左手指将针和尾一起固定起来，解除对尾根部地压迫后，便可进行注射.如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺.注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血.如需反复注射，尽量从尾地末端开始.一次地注射量为每体重～.②豚鼠地静脉注射：一般采用前肢皮下头静脉.鼠地静脉管壁较脆，注射时应特别注意.③兔地静脉注射：一般采用外耳缘静脉，因其表浅易固定.注射部位除毛，用％地酒精消毒，手指轻弹兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉地近心端，拇指绷紧静脉地远心端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器，尽量从静脉地远端刺入血管，移动拇指于针头上以固定，放开食、中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻以止血.④狗地静脉注射：狗地静脉注射多采用前肢外侧静脉或后肢外侧地小隐静脉.注射部位除毛后，在静脉血管地近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉地远心端将注射针头平行血管刺入，回抽注射器针栓，如有回血，即可放开像皮带，将药液缓缓注入.. 淋巴囊注射蛙类常采用此法，其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收.腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径.一般多选用腹部淋巴囊给药.注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液.（二）经口给药法. 口服法：口服给药是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取.一般适用于对动物疾病地防治或某些药物地毒性实验，制造某些与食物有关地人类疾病动物模型.此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大.大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽.. 灌胃法：在急性实验中，多采用灌胃法.此法剂量准确.灌胃法是用灌胃器将所应投给动物地药灌到动物胃内.灌胃器由注射器和特殊地灌胃针构成.小鼠地灌胃针长约～，直径为，大鼠地灌胃针长约～，直径约.灌胃针地尖端焊有一小圆金属球，金属球为中空地.焊金属球地目地是防止针头刺入气管或损伤消化道.针头金属球端弯曲成°左右地角度，以适应口腔、食道地生理弯曲度走向.①鼠类地灌胃法：用左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠地口腔插入，压迫鼠地头部，使口腔与食道成一直线，将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道，可感到轻微地阻力，此时可略改变一下灌胃针方向，以刺激引起吞咽动作，顺势将药液注入.一般灌胃针插入小鼠深度为～，大鼠或豚鼠为～.常用灌胃量小鼠为～，大鼠～，豚鼠～.②狗、兔地灌胃法：先将动物固定，再将开口器地小孔插入动物口中，再慢慢沿上鄂壁插入食道，将灌胃管地外端浸入水中，如有气泡逸出，则说明灌胃管误入气管，需拔出重插.插好后，将注射器连于灌胃管将药液推入.灌胃结束后，先拔出灌胃管，再拿出开口器.一次灌胃能耐受地最大容积兔为～，狗为～.（三）其它途径给药方法. 呼吸道给药：呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态地药物或毒气，均需要通过动物呼吸道给药.如实验时给动物乙醚作吸入麻醉、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等，特别在毒理学实验中应用更为广泛.. 皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤地吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采用经皮肤给药方法.如兔和豚鼠常采用背部一定面积地皮肤脱毛后，将一定地药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收.. 脊髓腔内给药：此法主要用于锥管麻醉或抽取脑脊液.. 脑内给药：此法常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后地各种变化.. 直肠内给药：此种方法常用于动物麻醉.兔直肠内给药时，常采用灌肠地胶皮管或用号导尿管代替.. 关节腔内给药：此法常用于关节炎地动物模型复制.大鼠给药方法一、大鼠灌胃大鼠灌胃是最常见地给药方法之一.灌胃所用地针头可以从市场上购买，操作方法和小鼠灌胃大同小异，只是由于大鼠体积较大，抓大鼠地手法和小鼠有所不同.大鼠灌胃是在清醒状态下进行地，不需要麻醉.大鼠地灌胃针长约～，直径约.大鼠灌胃时，右手持灌胃注射器，左手拇指和食中二指相对，抓住大鼠颈部皮肤，使大鼠地头部和颈部及躯干呈一直线，不需要固定大鼠地尾巴，就可以实施灌胃操作了，其余地操作均和小鼠一样.大鼠一般灌胃量为体重，因此一般大鼠灌入是可以地.大鼠地灌胃给药体积一般为～.但是药物地浓度是需要自己按照动物实验方法学地方法进行换算：大鼠对应人地折算系数为.二、大鼠腹腔注射腹腔注射是常见地给药方式，尤其是在麻醉时.常见地麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射.大鼠腹腔注射地方法和小鼠基本相同..大鼠腹腔注射可以用地注射器，配合～号针头..腹腔注射时右手持注射器，左手地小指和无名指抓住大鼠地尾巴，另外三个手指抓住大鼠地颈部，使大鼠地头部向下.这样腹腔中地器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官.进针地动作要轻柔，防止刺伤腹部器官..尤其是对于体重较小地大鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部地另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液..大鼠腹腔注射地给药容积一般为～.三、大鼠尾静脉注射这也是常见地操作，稍微有点难度，没有指导地话，一开始可能会感觉有点手足无措.但是可以肯定地说，只要掌握了方法，大鼠地尾静脉注射还是很容易地.总地来说，大小鼠地尾静脉注射难度相当，熟练后，大鼠应该比小鼠注射更容易，因为大鼠地尾巴较粗，而且血管也较粗，进针地手感比较好找.但是大鼠年龄增大后，尾部鳞片也较厚，此时尾静脉注射难度会加大，进针点宜选择两个鳞片地间隙，以利于针尖顺利刺入.操作步骤：. 首先要固定大鼠，最简单地固定方法就是把大鼠麻醉，然后大鼠躺在那里不动，就可以顺利操作了.但是我们往往需要多次给药，就是单次给药地话，每只都麻醉地话，也很麻烦，而且还要考虑麻醉对实验结果和动物地影响，因此，有必要找另外地方法固定了.再有地固定方法就和小鼠类似，做一个圆筒，最好是金属做地，（可以在当地地铁匠铺，或者买白铁铺里面定做）首先是金属比较结实，而且可以用来固定在铁架台上，方便操作.圆筒地一段有个盖子可以拿下来，盖子中间有个小孔，可以让大鼠地尾巴伸出来（中间地小孔可以用胶布缠一下，防止锐利地边缘割伤大鼠尾巴）.另外一段可以用金属网地结构，网地形状可以做成子弹头地头端形状.网状结构可以让光线透近来，方便大鼠钻进圆筒里面.圆筒地长度约～，直径约～，可以做个系列长度和直径地圆筒，适合不同大小地大鼠.操作地时候，可以把圆筒固定在铁架台上面，有铁丝网地一面稍微向上，拔下另外一头地盖子，抓住大鼠地尾巴，悬空大鼠，让大鼠地头部靠近圆筒，稍微引导一下，大鼠就会钻进圆筒，将大鼠地尾巴穿过盖子中间地小孔，盖上盖子，向外拉直大鼠尾巴，就可以进行下一步操作了.也有直接利用大鼠笼盖地铁丝网固定大鼠，向上面小鼠固定地方法固定大鼠，那是高手所为，总共只需要一次到两次地静脉注射时可以试用，不推荐使用..固定好大鼠后就是注射了，一般用一次性地地注射器，去除针头，接上号地头皮针，用头皮针穿刺，个人感觉比较方便，而且便于固定针头..注射前首先要让大鼠地血管充盈.可以采用地酒精棉球擦拭地方法或者采用温水浸泡地方法，（一般水浴温度度左右），大概分钟就可以让尾部左右二侧静脉充分扩张，用电吹风地热风吹大鼠尾部，这种使静脉扩张地方法不但快而且操作方便，但要控制好吹地方式，不要弄伤动物.若大鼠地血管很不清楚，推荐采用温水浸泡地方法，水温以不烫手为宜.温水浸泡～分钟后，取出大鼠尾巴，用干棉球擦拭.等一会儿，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了.若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡，切不可冒险注射，除非你手法很熟练，另当别论..大鼠尾部共有四条血管，一般认为左右地两条静脉比较容易注射，多采用这两条静脉进针.一般要求进针部位靠近大鼠地尾端，这样若注射失败地话，还可以再向上选择进针点.但是进针部位也不可以太靠下，因为越往下，静脉越细，操作越难，一般以大鼠尾巴下三分之一地位置比较好..最关键地就是进针了.进针时操作者左手食指和拇指固定住大鼠地尾巴，让大鼠地尾巴在经过拇指后向下弯曲，进针点靠近拇指指甲.针头和血管呈约°角，针尖斜面朝上，轻轻挑刺入皮肤后针头立即和血管平行，一般情况下一次就可以进入血管，可以将针头刺入血管一大半，轻轻回抽针栓，看见有明显地回血，就可以推注药液了，正常情况下，推注地过程应该没有明显阻力，血管也不会鼓起.推液时动作宜轻柔，若发现血管鼓起，那是针头没有刺入血管，需立即拔出针头，重新注射.（正常情况下，均可以看见回血，若没有回血，成是没有进入血管，不要推药，拔出针头，重新穿刺，以防推注药液导致大鼠尾巴皮下水肿，加大穿刺地难度，若是带有颜色地液体，如伊文斯兰，就更要注意）.注射结束后，轻轻拔出针头，可以用干燥地棉球压一下进针点，防止液体回漏.四、大鼠舌静脉注射大鼠地舌静脉给药比较少见，因为他需要在麻醉状态下方可以操作.不麻醉地情况下也不是不可以，但是若不麻醉地话，既不符合动物福利，也很容易失败，而且操作人员也容易受伤.一般在做垂体后叶素致大鼠心肌缺血地实验中，垂体后叶素地静脉注射采用舌静脉注射..舌静脉注射一般采用注射器，配号针头..大鼠麻醉后，仰卧位固定在鼠板上，牙齿也固定好.右手持眼科镊，轻轻拉出大鼠舌头，左手拇指和食指轻轻捏住舌尖，可见大鼠舌头两侧均有一条很清楚地静脉，一般右侧地比较顺手（我是右撇子），左手稍微绷紧大鼠舌头，不要绷地太紧，这样静脉会看地不清楚，以能拉直大鼠舌头，且能清楚看见血管为宜..右手持注射器，针尖斜面朝上，和舌头血管呈°角，挑刺入血管.（舌静脉非常浅，针尖挑刺舌面皮肤后就进入血管了），轻轻推注药液，若发现舌头有鼓起，则是注射失败.这样注射点很容易出很多学，形成血肿，这侧静脉想再次注射就很困难了，那么最好就选用另外一侧静脉了..舌静脉血流很丰富，拔针时一定要用干棉球压迫注射点，帮助止血..正常地舌静脉注射不影响大鼠地进食.五、大鼠经皮肤给药首先需要脱毛可以配制地硫化钠溶液，也可以自配脱毛剂，配方：硫化钠：肥皂粉：淀粉为：：，加水混合成糊状软膏.用棉签将脱毛剂涂在要脱毛地部位，观察看见区域内鼠毛发粘用干净棉签沾洁净地水将脱毛部位清洗干净，大鼠一般用腹部皮肤，小鼠可用背部皮肤.六、大鼠鞘内给药鞘内给药有两种方式：一是急性给药，二是长期慢性给药.慢性给药，具体地说应该是在暴露出寰枕膜后将管插入蛛网膜下隙，至有清亮脑脊液反流后可确定位置正确，然后将管插入达腰膨大水平，固定并缝合即可.注射反意寡核苷酸，所以直接在～椎间隙进针就可以对于长期给药宜选慢性套管给药，选做好插入深度标记地导管，根据动物大小和所需埋置地脊髓节段，决定好插入深度，一般～地大白鼠腰骶部约，胸段约～.给药：将号注射针头锯断，并磨尖，插在导管上，导管另一端接在另一接又注射器地号针头上，给药时只需将钢管另一端与动物身上埋植好地导管相接即可.七、大鼠阴道给药大鼠阴道给药方法类似于小鼠，而且大鼠地生殖道比小鼠要长一些，会比小鼠操作相对容易一些.小鼠阴道内感染，是往小鼠阴道内注射感染菌液，开始感染时采用地是用小儿科地头皮针改做地软管向小鼠生殖道内注射，但因为小鼠生殖道很浅，而且软管本身占有小鼠生殖道地一部分体积，导致主入地菌液易漏，后来尝试用地加样器每次取，采取多次注射地办法.做此类实验主要是注意感染地药物或液体不要漏出来，可以采取多次注射地办法.八、大鼠鼻腔给药.有滴鼻和喷雾两种常见方式喷雾其实就是雾化吸入.滴鼻给药没有办法达到雾化吸入地效果.雾化吸入需要有雾化设备，一般医院地都有，但是医院地如果借不出来，自己家里地加湿器也可以凑合.雾化给药地时候，要把大鼠放在一个相对比较密闭地地容器中（当然要有透气孔），让大鼠尽可能多地接触药物，但是好象没有专门地这种容器，一般都是自制地，材料最好是有机玻璃.如果需要一只一只给药地话，那么大鼠固定器也可以着用.雾化地时间如果没有特殊要求，一般来说是半个小时.从药物进入体内分布地部位来看，滴鼻应该作用于局部为主，而喷雾雾化吸入等给药方式可使药物进入气管，肺等部位，吸收情况应该有比较大地不同..鼻内接种动物先进行麻醉后，以左手食指和拇指抓住动物双耳部，翻转动物身体置于左手掌内，使其鼻尖朝向操作者；右手持注射器，将接种药物，逐滴滴入动物鼻内.接种量不宜过多：大鼠为～（小鼠为～；豚鼠与兔可为）.。
兽医基础 注射术
（3）注射部位及方法：
✓ 猪的静脉注射法 猪的静脉注射可在耳静脉进行。
✓ 马、牛（羊）的静脉注射法 马、牛（羊）多在颈静
脉处注射。牛亦可在耳静脉注射（方法同猪耳静脉注 射法），马也可在胸外静脉注射。
猪的静脉注射
马属动物的静脉注射
羊的静脉注射
（4）输液法
✓ 以输液器进行，其注射方法同静脉注射法。
注射部位 选择肌肉丰满处，应避开大血管及神经干。牛马 多在颈侧、臀部，猪在颈中部、耳后、臀部或股 内侧，家禽在胸部
注射方法:
选择适宜的注射器和针头。局部剪毛消毒。一手 固定注射部位，一手持连有针头的注射器，使与 皮肤成垂直角度，迅速刺入肌肉2～4cm，注入药 液，
牛的肌肉注射
马属动物的肌肉注射
猪的肌肉注射
必要时，注射后可对局部进行短时间按摩，以促 进药液吸收。
注意事项:
凡刺激性不大的药液及疫（菌）苗、血清等均可 皮下注射，如注射药液太多时，应分点注射；
凡油类药物和具有收缩血管的药物均不宜作皮下 注射。
牛皮下注射—消毒
牛皮下注射
马属动物皮下注射
鸡皮下注射
2．肌肉注射法
腹腔内注射
是药物注入腹腔内的一种注射方法。牛 右侧肷窝部。猪在两侧后腹部（5.6乳头 之间）
瓣胃内注射
药物注射牛羊等反刍动物瓣胃内方法。 注射部位是右侧9--11肋间与肩关节水平 线交点的下方2cm
④静脉注射时必须排尽注射器或输液管内的气泡；否则，会引 起严重后果。
⑤注射时要看清血管，选准部位，防止乱扎，以免局部形成血 肿。
⑥如针头刺入血管而又无回血时，应检查针头是否被血凝块堵塞。
⑦大量输液时，速度不宜过快，药液应加温至接近体温。
⑧输液过程中，如畜禽表现骚动不安、出汗、气喘、肌肉战栗等 现象时，应及时停止。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法5篇
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法5篇第1篇示例：大鼠小鼠腹腔注射的操作方法一、引言腹腔注射是实验动物体内注射给药的一种常用方法，通常用于药物毒性和药效学研究。
在实验过程中正确的操作方法对于实验结果的准确性至关重要。
本文将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法，以供参考。
二、仪器与药品准备1. 注射针：选择适合体积的注射针，常见的有1ml、2ml、5ml 等多种规格，根据实验需要选择合适的规格。
2. 注射器：选择与注射针匹配的注射器，确保注射器的稳定性和操作性。
3. 消毒酒精：用于消毒注射针和注射器。
4. 实验动物：选择健康状况良好的大鼠或小鼠作为实验对象。
5. 麻醉剂：根据实验需要选择合适的麻醉剂，通常可以选择异氟醚或氯仿等。
三、操作步骤1. 准备工作a. 消毒操作台面和工具，保持实验环境清洁。
b. 准备好实验动物，并进行术前麻醉。
（注意：麻醉剂应根据实验动物的种类、体重和实验需要进行选择）c. 准备好需要注射的药品，并按照规定的剂量准备好。
2. 动物定位a. 将实验动物取出并放置于注射操作台上，保持动物处于仰卧位。
b. 用消毒酒精擦拭动物的腹部，保持清洁。
3. 注射操作a. 将注射器连接至注射针，并通过推杆将空气排出，确保注射器内无空气。
b. 用消毒酒精擦拭注射部位，定位后将注射针垂直刺入动物腹部。
c. 缓慢注射所需药品，确保药液完全注入。
4. 结束操作a. 缓慢拔出注射针，用干净的消毒纱布轻压注射部位，以防止药液溢出。
b. 将动物放置在温暖通风的环境中，观察动物的状态，并在必要时进行恢复护理。
四、注意事项1. 操作前需对动物进行术前麻醉，确保动物处于无痛苦状态。
2. 注射时需注意注射的速度和力度，以免伤害到动物内脏器官。
3. 在操作前后要做好手部消毒，并确保注射器和注射针的清洁和消毒。
4. 对于实验动物的选择需遵循伦理规范，确保其健康和人道对待。
五、结语以上就是关于大鼠小鼠腹腔注射的操作方法，正确地操作可以保证实验结果的准确性，同时也能够保护实验动物的健康。
实验动物给药途径和方法
实验动物给药途径和方法实验动物给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。
给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。
（一）皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有 5 （1/2）号针头的注射器刺入皮下。
皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。
兔在背部或耳根部注射。
蛙可在脊背部淋巴腔注射。
（二）皮内注射皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连 4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
（三）肌肉注射肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。
注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。
给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有 5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。
（四）腹腔注射用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5～1.0cm，再以 45 度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液（图 1），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。
若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开 1cm 处。
图 1 小鼠腹腔注射方法（五）静脉注射 1．兔：兔耳部血管分布清晰。
兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。
内缘静脉深不易固定，故不用。
外缘静脉表浅易固定，常用。
先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连 6 号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液注入（图 2），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常见的动物实验操作方法，它可以用于给小鼠或大鼠注射药物、细胞、病毒等物质。
正确的腹腔注射操作可以确保实验的准确性和可靠性，同时也可以减轻动物的痛苦和不适。
下面就介绍一下关于大鼠小鼠腹腔注射的操作方法。
一、准备工作在进行腹腔注射之前，首先需要做好准备工作，确保实验的顺利进行。
准备工作包括准备注射所需的器材和药物、准备动物、清洁工作台和操作区域等。
1. 准备器材：首先需要准备好所需的器材，包括注射针、注射器、酒精棉球、手套等。
注射针的大小要根据动物的体重和实验需要进行选择，一般来说，大鼠可以选择22号至25号的针头，小鼠可以选择25号至27号的针头。
2. 准备药物：根据实验需要，准备好需要注射的药物、细胞、病毒等物质。
确保药物的浓度和用量符合实验要求，避免浪费。
3. 准备动物：在进行腹腔注射之前，需要确认动物的健康状况和体重，选择适合的实验动物进行操作。
可以提前将动物从饲养箱中取出，放置在操作台上进行适应环境，减少动物的惊恐和焦虑。
4. 清洁工作台和操作区域：在进行腹腔注射之前，需要清洁工作台和操作区域，保持操作环境的清洁和卫生，避免污染。
二、腹腔注射操作步骤1. 基本操作要求腹腔注射是一种需要较高技术要求的操作方法，操作时需要细心、耐心和稳定的手部技巧。
在进行腹腔注射之前，需要对操作流程进行详细了解和掌握，并且要严格按照实验的操作规程和操作流程进行操作，以确保实验的可靠性和准确性。
2. 动物定位在进行腹腔注射之前，需要将动物放置在操作台上，进行适当的固定和定位。
一般来说，可以将动物的四肢与动物操作台的支架进行固定，同时注意动物的头部和背部要保持平稳，避免动物的不适和惊恐。
3. 皮肤消毒在进行腹腔注射之前，需要对动物的注射部位进行皮肤消毒，以确保注射部位的清洁和无菌。
可以使用酒精棉球对注射部位进行消毒，注意要避免酒精进入动物的眼睛或口腔。
4. 注射操作a. 使用手套和口罩确保实验的无菌操作。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常用的实验方法，用于给小鼠和大鼠输注试剂并进行相关的实验研究。
本文将介绍大鼠和小鼠腹腔注射的操作方法，包括前期准备、实验步骤和注意事项等方面。
前期准备1. 准备试剂：根据实验需要，准备好所需的药物或化学物，保证其质量和纯度，并根据实验要求进行适当的稀释。
2. 准备针头：注射前，准备好合适大小的注射针头。
对于大鼠，选择20-22G 的针头，长度为约1.5英寸；对于小鼠，选择27G-30G 的针头，长度为约1英寸。
3. 准备消毒用品：为了避免感染，注射前需要准备好消毒用品，例如酒精棉球和无菌手套。
另外，也需要准备好实验台、实验器具和动物。
实验步骤1. 准备动物：将待注射的动物取出笼子，并将其放置在实验台上。
对于大鼠，可以使用改良的瘤子带将其固定住，以避免动物移动。
对于小鼠，可以将其放在手套中，轻轻将其固定住。
2. 消毒操作区：用酒精棉球擦拭静脉穿刺部位，以及取注射针的部分。
对小鼠进行的话，必须先消毒小鼠处放置的环境。
3. 注射针装载和抽液操作：打开注射针包装袋，将注射针取出并拧下保护针头，接着采用一定的方法吸取待注射的试剂。
这里注重是液体预热，若注射的液体是冷的会导致小鼠不适。
4. 注射操作：对大鼠进行注射时，用无菌手套托起鼠腹，将针头慢慢穿入鼠腹膜，然后轻轻地将试剂注入鼠腹内。
对小鼠进行注射时，将针头慢慢穿入鼠腹腔，并注入试剂。
注意事项1. 注射前，需要确保试剂的质量和纯度，并进行适当的稀释。
如果试剂质量不好，或者稀释不当，可能会导致实验结果出现误差。
2. 注射针头大小和长度需要根据动物的大小和体重来确定。
如果针头太大或太长，可能会对动物的健康造成不良影响。
3. 在注射前和注射时，需要将注射部位消毒。
这可以避免感染，并确保实验结果的准确性。
4. 注射液体预热，保持温度适合小鼠的选择。
5. 在注射过程中，需要小心操作，谨慎注射。
避免对动物造成不必要的伤害。
总结腹腔注射是一种常用的实验方法，用于给小鼠和大鼠输注试剂。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
注射法
一、皮下注射皮下注射是将疫苗注入畜禽的皮下组织，疫苗可通过毛细血管和淋巴系统被吸收，疫苗吸收缓慢而均匀，维持时间长。
凡引起全身性广泛损伤的疾病，均可采用此种免疫途径。
此法免疫确实、效果良好，但用药量较皮内注射大，有一定的副作用。
1．选择注射部位皮下注射宜选择皮薄、被毛少、皮肤松弛、皮下血管少的部位。
大动物(牛、马)宜在颈侧中1／3部位，猪宜在耳根后或股内侧，犬、羊宜在股内侧，家禽宜在翼下或颈背部下1／3处，兔宜在耳后。
2．保定动物用适当方法保定好动物。
3．注射部位消毒注射部位消毒。
4．注射左手示指与拇指将皮肤提起呈三角形，右手持注射器，沿三角形基部刺入皮下约2cm；左手放开皮肤(如果针头刺入皮下，则可较自由地拨动)，回抽针芯，如无回血，然后再推动注射器活塞将疫苗徐徐注入。
5．注射完消毒用酒精棉球按住注射部，将针头拔出，最后涂以5％碘酊消毒。
二、皮内注射皮内注射优点是使用药液少，注射局部副作用小，比相同剂量的皮下注射产生的免疫力强：该法操作时需有一定的经验和技术。
此法不常用，目前只适用于羊痘苗和某些诊断液等。
(1)皮内注射宜选择皮肤致密、被毛少的部位。
马、牛宜在颈侧、尾根、肩胛中央，猪宜在耳根后，羊宜在颈侧或尾根部，鸡宜在肉髯部位。
(2)保定动物，注射部位剪毛、消毒。
(3)用左手将皮肤挟起一皱褶或以左手绷紧固定皮肤，右手持注射器，将针头在皱褶上或皮肤上斜着使针头几乎与皮面平行地轻轻刺入皮内0.5cm左右，放松左手。
(4)左手在针头和针筒交界处固定针头，右手持注射器，徐徐注入药液。
如针头确在皮内，则注射时感觉有较大的阻力，同时注射处形成一个圆丘，突起于皮肤表面。
注射完毕，拔出针头，用酒精棉球轻压针孔，以免药液外溢。
三、肌内注射此法药液吸收快，作用迅速。
灭活疫苗必须采用肌内注射法，不能口服。
因为有些疫苗会损伤肌组织，如注射部位不当，还可能引起跛行；所以，极少数疫苗及血清才用此法。
(1)肌内注射应选择肌肉丰满、血管少、远离神经干的部位。
大动物宜在臀部或颈部；猪宜在耳后、臀部、颈部；羊、犬、兔宜在颈部；鸡宜在翅膀基部或胸部肌肉。
(2)保定好动物，注射部位剪毛、消毒。
(3)对中、小动物可用左手固定注射部位皮肤，右手持注射器垂直刺人肌肉后，改用左手夹住注射器和针头尾部，右手回抽一下针芯，如无回血，即可慢慢注入药液。
(4)对大动物，为防止损坏注射器或折断针头，可用分解动作进行注射，即把注射针头取下，以右手拇指、示指紧持针尾，中指标定刺入深度，对准注射部位用腕力将针头垂直刺入肌内，然后接上注射器，回抽针芯，如无回血，随即注入药液。
注射完毕，拔出注射针头，涂以5％碘酊消毒。
(5)根据畜禽大小和肥瘦程度不同，掌握刺人不同深度，以免刺人太深(常见于瘦小畜禽)而刺伤骨膜、血管、神经，或因刺入太浅(常见于大猪)将疫苗注入脂肪而不能吸收。
注射剂量应严格按照规定的剂量注入，禁止打“飞针”，造成注射剂量不足和注射部位不准。
四、静脉注射此法药液吸收最快，主要用于注射抗病血清进行紧急预防或治疗，可以及时抢救患畜。
因畜种的不同选择不同的注射部位，马、牛、羊在颈静脉，猪在耳静脉，鸡在翼下静脉，因操作费力，一般疫苗接种不作静脉注射。
五、胸、腹腔注射法有些疫苗必须接种到胸腹腔中才能达到形成抗体的有效浓度，起
到保护机体的作用。
尽量不采取此法，因为，此法危险性大，对疫苗的质量要求高，操作难度大，所以只在疫苗使用说明特殊标注的情况下使用，非特殊标注疫苗决不可使用此法。
采用此法时应注意动物的确切保定，部位、进针角度、深度一定要准确。
注射前后的局部消毒要彻底，保证无菌操。
具体操作者必须经过专门的训练。
腹腔注射法：仔猪可由助手倒提后腿，肚皮朝外，术者在倒数第2对乳头处（耻骨前缘3-5cm）于腹中线旁开2厘米左右的腹壁，先擦酒精脱脂，然后用酊擦拭消毒，再擦酒精脱碘后，手持连接9号针头（长1.5厘米）的注射器，垂直刺入腹腔1～1.5厘米，回抽注射器活塞，如无气体和液体时，即可缓缓注入药液。
注入药液后，拔出针头，局部再进行消毒处理。
胸腔方法：采取站立保定，助手骑在猪背上两腿夹住病猪，双手抓住猪耳。
术者在倒数第6肋间与髋关节水平线交界处，剪毛、消毒，用9号兽用针头垂直刺入，进针3～5厘米,进针后若有空洞感即可将药徐徐注入。
或仔猪左侧卧保定，在肩关节水平线倒数第6肋间交点处剪毛、消毒，用9号兽用针头垂直刺入，进针3～5厘米,进针后若有空洞感即可将药徐徐注入。
注意针头连接注射器操作以免空气进入胸腔。
注入后，拔出针头，局部再进行消毒处理。
下图：局部消毒法、腹腔注射法胸、腔注射部位。