猪附红细胞体特异性基因的克隆和序列分析

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猪附红体剖析

强心：使用安那加注射液：肌注0.5-1g/头。
解热：对于高热（42℃）发病猪可肌注安乃近注射液。
补铁、维生素：在饲料中补充铁盐和维生素C。
目前，暂无有效疫苗使用。
预防 ·无疫苗 ·减少抑制免疫性疾病及应激反应 ·切断传播途径：针头、手术器械等严格
消毒；驱虫、灭蝇、灭虱等
·用药预防
附红细胞体病
➢ 诊断：根据症状，温暖季节多发，查病原体。
病理变化
·血液呈水样、清漆样 ·肝变性肿大，黄棕色 ·淋巴结肿大 ·胸腔、腹腔及心包积液
诊断
·临床症状：高热、贫血、耳廓边缘变色和皮肤变态反应、应激后发病
·血液学变化：血液水样、贫血像
·病原：血涂片Giemsa染色，查找附红体，在红
细胞表面见有卵圆形至圆形的附红细胞单体，或完全将红细胞包围的链状附红细胞体
每吨饲料添加150g），连续使用5-7天，然后将剂量减半，再连续使用2周。
金霉素：每吨饲料添加300g，连用3-5天，然后剂量减半，再连续使用2周。可同时添加阿散酸。
土霉素：每吨饲料添加600g，疗程同上。可同时添加阿散酸。
②对症治疗
输液：附红细胞体病的一个显著病理特征是低血糖、酸中毒。因此可对发病母猪（种用）静脉输注10%葡萄糖和碳酸氢钠，对发病群体（商品猪）在饲料中添加碳酸氢钠（每吨饲料添加1-2kg）
临床症状：
高热、黄疸、贫血、消瘦、食欲不振、呼吸困难；慢性型表现为粘膜苍白，皮肤上有瘀斑，耳部边缘发紫；母猪（20～30％）表现为受胎率低，不发情、流产、产死胎、弱仔、无乳。发病率高（100％），单纯感染时，死亡率低（小于2％）。
临床症状
·急性期—高热达42℃，苍白，黄疸
（少见），尿液呈红茶色

猪附红细胞体SRP54基因的克隆及表达质粒的构建

ｔｎａｄｔｅｅｉｅｏｏｉａｈｒｃｅｉｔｃ，ｆｅａａｌｓｃｎｉｍｅｓＣＰａｄＭＥＶｎｅｔｎｗｅｅｃｌｉｎｈｐｄｍｉｌｇｃｌａａｔｒｉｓａｃｌｍｐｅｏｆｒｄａＶｎｏｃｓｓｉｆｃｉｒｏ— ｏｌｃｅｎｓｄｆｒｃｏｉｇｔｅｃｍｐｅｅＯＲＦｅｅｏｈｏｏ－ｔｕｔｒｌｐｏｅｎＮＳｎｈｉｅｔｄａｄｕｅｏｌｎｎｈｏｌｔｓｇｎｓｂｔｆｎｎｓｒｃｕａｒｔｉ１ａｄｔｅｍａｎ
基因片段，隆至ｐ克ＭＤ１一ｉｌ载体上，ＰＲ、切初步鉴定正确后进行测序，所克隆片段进行生物８Ｔｓｍｐｅ经Ｃ酶对
信息学分析，并构建重组表达质粒ｐＸＳＰ４ＧＥ－Ｒ５。结果显示，隆的ＳＰ４基因片段大小为１１４ｂ，克Ｒ５６ｐ与Ｇｎａｋ中参考序列的同源性为９；ｅＢｎ７该基因编码３１个氨基酸，Ａ０８编码蛋白的等电点为６’１无跨膜区；．，５重
ＹＡＮＧｈｎ，ＷＡＮＧｉｎｋ，ＹＩＬ，ＸＵｏｇｌ，ＣＨＥＮＧｈ— ｅｇＳｅＪａ－ｅｉＨｎ —ｉＳｉｐｎ，ＷＵｕＨａ
（ｓｔｔｏｐｃａｌｃｎｍｉＡｎｍａｎｌｎｃｅｃ，ＡＩｔｕｅｆＳｅｉｌｉＷｉｄＥｏｏｃｉｌｄＰａｔｉｎｅＣＡＳｉｎＪｌ，３１９ＣｉａａＳ，Ｊｌ，ｉｎ１２０，ｈｎ）ｉｉ

猪附红细胞体病及并发猪链球菌病的综合分析.doc

猪附红细胞体病及并发猪链球菌病的综合分析概述：近几年来，猪附红细胞体病在我国流行普遍,凡养猪地区均有该病发生。

猪感染附红细胞体后，可导致猪机体抵抗力、免疫力降低，极易引起其他疾病的混合感染。

猪饲料添加剂—活性肽原临床常见的猪感染附红细胞体后发病的有猪瘟、猪链球菌病、猪水肿病、猪沙门氏菌病、传染性胸膜肺炎等，有的甚至几种病混合感染，给临床诊疗带来一定困难。

若诊断不确切、治疗不当，死亡率较高。

猪饲料添加剂—活性肽原流行特点猪附红细胞体病占猪病发病比例与季节没有明显差异，说明本病已没有明显的季节性，可能与传播途径的广泛性有关。

临床症状猪饲料添加剂—活性肽原(1)猪附红细胞体病临床症状：病初精神沉郁，食欲不振，体温升高(40.5℃～41.5℃以上)尿呈茶褐色或血红蛋白尿，有的毛囊出血，部分病例贫血，黏膜苍白、黄疸，持续感染的病例耳朵边缘能发生坏死。

急性感染耐过的猪往往生长缓慢。

由于被感染耐过的猪不能产生很强的免疫力，可能再次被感染发病。

猪饲料添加剂—活性肽原母猪可引起繁殖障碍，主要表现：受胎率低、不发情、流产、产弱子。

此外还有许多母猪出现怀孕延迟或不发情，有的母猪几次发情配种而不能受孕。

猪饲料添加剂—活性肽原(2)猪链球菌病的临床症状：临床可分为最急性型、急性型、慢性型种类型。

猪饲料添加剂—活性肽原最急性型：发病急、病程短，不见症状突然死亡。

急性型：体温升高到41℃以上，不食或少食，精神沉郁，呼吸迫促。

腹下、四肢、耳朵呈紫色。

猪饲料添加剂—活性肽原有的呈游泳状,抽搐，转圈，突然倒地，最后衰竭，麻痹死亡。

有的出现关节炎，跛行或不能站立。

猪饲料添加剂—活性肽原慢性型：由急性型耐过猪可转为慢性型，或开始发病即为关节炎型或化脓性淋巴结炎型，病程较长，食欲较差。

猪饲料添加剂—活性肽原四肢关节肿大、痛疼、跛行或不能站立。

下颌淋巴结发炎肿胀，后期化脓破溃。

猪饲料添加剂—活性肽原病理变化(1)猪附红细胞体病主要变化可见：贫血、黄疸、血液稀薄、肝脏肿大，脂肪变性，有的呈黄棕色，胆汁浓稠。

猪附红细胞体病的诊治(doc 5页)

猪附红细胞体病的诊治(doc 5页)猪附红细胞体病的诊治几个月以来，在山东农业大学动物保健医院门诊上常发现以高热、贫血、轻度黄疽、皮肤发红为特征的疾病。

由于大部分猪场猪群己用猪瘟、猪丹毒、猪肺疫、仔猪副伤寒疫苗进行了免疫预防接种，因此很多人怀疑为猪弓形虫病，但用磺胺类等药物治疗，均未见效，并出现死亡。

我们根据临床症状，流行特点结合实验室检查确诊为猪附红细胞体病，并且取得了明显的治疗效果。

1、病原特点在猪体内存在有两种附红细胞体，一种是猪附红细胞体，另一种是小附红细胞体。

后一种对猪不发生致病作用，常引起猪发病的只是前一种，它能使猪发生一种热性病。

猪附红细胞体是这两种原虫中较大的一种，直径平均为0．8微米，最大的可达2，5微米。

通常的形态是环形，也有球形、杆状和发芽状的。

这些原虫通常依附于红细胞上，有时也游离于血浆中。

其增殖是在红细胞内行二分裂萌芽法。

附红细胞体对干燥和化学药品的抵抗力很低，但耐低状出血；全身骨骼肌色泽变淡、稍黄染；肝表面有黄色条纹状坏死，胆囊充满胆汁；肺叶边缘充血、出血；纵隔淋巴结水肿；心包积液，心脏肿胀，心内外膜有点状出血；脾脏肿胀、柔软，切面有稀薄血液。

4、实验室诊断4.1 血液压片取病猪新鲜血液一滴，加等量生理盐水混匀，加盖玻片，油镜暗视野下观察，发现红细胞表面和血浆中有多种形态如球形、椭圆形、环形及杆状的闪光虫体，这些虫体能前后、左右、上下伸展、旋转、翻滚。

由于在红细胞表面的虫体有张力作用，使红细胞的形态发生变化，呈锯齿状、菠萝状等不规则形态，一个红细胞上可附着数个至数十个虫体。

4.2姬姆萨染色镜检取病猪耳静脉血，涂片，姬姆萨染色，在1500倍油镜下，可观察到附在红细胞表面的淡紫色、呈多种形态的附红纲胞体，而以点状、不规则的环形为多，其特点是当调动微动螺旋时，折光性较强，附红细胞体中央发亮，形似空泡。

5、治疗咪唑苯脲20-30mg/kg体重肌肉注射间隔24小时再注射一次。

注射本品前，可先注射地塞米松以防猪只过敏；注射本品后若有猪只出现严重的气喘症状，可以用硫酸阿托品缓解。

不可轻视的猪附红细胞体病核心思路分析

不可轻视的猪附红细胞体病核心思路分析猪附红细胞体病（PRRS），是一种由PRRS病毒引起的高致死率和高传染性的疾病，严重危害了全球猪业的发展。

猪附红细胞体病在全球范围内广泛流行，给养猪业带来了严重的经济损失。

本文将针对不可轻视的猪附红细胞体病进行深入分析，探讨其核心思路和防控方法。

一、PRRS病毒的传播途径及危害1. 传播途径猪附红细胞体病主要通过粪便、鼻液、唾液和血液等途径进行传播。

空气传播也是其主要传播途径之一。

由于PRRS病毒对环境适应力强，能在恶劣环境中长时间存活，所以传播速度快，范围广，很容易感染整个猪场。

2. 危害PRRS病毒感染后，会导致猪的免疫功能受损，易患其他细菌、病毒等二次感染，严重影响猪的生长发育和生产性能。

由于PRRS病毒具有高传染性，感染后可在猪群中迅速扩散，大面积死亡现象时有发生，给猪场带来了严重的经济损失。

1. 疫情监测针对猪附红细胞体病的严重危害，猪场需加强疫情监测，定期对猪群进行检测，及时发现病毒感染的情况，以便采取针对性的防控措施。

对于疑似感染的猪群，要及时进行隔离治疗，避免病毒的传播扩散。

2. 强化生物安全措施生物安全是防控猪附红细胞体病的关键。

猪场需严格执行消毒制度，做好猪场环境卫生管理工作，保持猪舍内外的干净整洁，定期对猪场设施和设备进行消毒清洁，减少病毒的存活和传播。

3. 加强免疫管理科学合理地开展猪群免疫程序，提高猪的免疫力，对猪附红细胞体病进行预防接种，规范及时地进行疫苗接种计划，有效提高猪的抵抗力，减少病毒感染的风险。

4. 提高猪群品质管理水平加强饲养管理，保障猪群的健康生长。

在饲喂管理方面，要注意合理配饲，保证猪的营养需求，提高猪的抗病能力，减少病毒感染的风险。

5. 建立完善的防疫体系建立全面的防疫体系，加强对猪附红细胞体病的认识，提高防控意识，提高防控措施的实施力度，确保猪场的生产安全。

三、猪附红细胞体病的防控方法1. 积极加强猪群的免疫力在日常饲养管理中，要注重提高饲养水平，加强猪群的营养保健，合理配置饲料，增强猪的体质，提高免疫力。

猪附红细胞体特异性基因的克隆和PCR诊断方法的建立

Ｋｙｗｏｄ：ｙｏｌｓｕｓｏｙｒｓｈｉｅｃｉｎ；ｃｏｅｅｒｓＭｃｐａｍａｓｉ；ｐｌｍｅａｅｃａｎｒａｔｏｌｎ
Ｃｏｒｅｐｏｄｉｕｔｒｒｓｎｎｇａｈｏ
附红细胞体病是由附红细胞体（ｃｐａｍａｕ，Ｍｙｏｌｉｓｓｓ
ａｃｒｉｅｓｑｅｃｕｌｈｄｂｏｌｅｉ０３（Ｊ０９９．ｈＣｒｄｃｃｎｉｅ０ｐｗｉｓｉｎｉａｔｃｏｄｎｔｔｅｕｎｅｐｂｉｅｙＨｅｌｎ２０Ａ５４９）ＴｅＰＲｐｏｕｔｏｔｎｄ６３ｂｈｃｗａｅｔｌｏｇｏｈｓｚａｈｄｃ
ｈｕｌｅｅｕｎｅＴｅＰｔｅｐｂｉｈｄｓｑｅｃ．ｈＣＲｓａｓｓｅｉｃａｄｃｕｄｄｔｃ．５ｒ／ｓａｓｙｗａｐｃｆｎｏｌｅｅｔ０６ｇｍＥｆＭ，ｕｓｔｉａｑｉｋｍｅｈｄｔａｏｌｅｉｉｏｓｉ、Ｉｓｕｃｔｏｔｃｕｄｂｈｕｅｒｅｉｅｏｏｙｓｄｎａｌｌｉａｉｇｏｅｏ．ｕｓｓｄｆｐｄｍｉｌｇｔｙａｄｅｒｃｉｃｌａｎｓｆｓｉ、ｏｕｙｎｄＭ
Ｍ．ｉ寄生在人或多种动物的红细胞表面、血浆和ｓｓｕ）
方法，但费时、成本高；血清学方法包括补体结合
试验（Ｆ）ＣＴ、间接血凝试验（Ａ）ＥＩＡ方法检测Ｉ和ＬＳＨ

猪附红细胞体pcr检测方法的建立和初步应用

猪附红细胞体pcr检测方法的建立和初步应用文章标题：猪附红细胞体PCR检测方法的建立与初步应用在农业领域，猪附红细胞体PCR检测方法的建立和初步应用备受关注。

本文将从建立方法的过程、应用范围和未来发展等方面进行深入探讨，帮助读者全面了解这一重要的技术。

一、建立方法的过程1.1 猪附红细胞体PCR检测方法的原理猪附红细胞体PCR检测方法是一种基于多重PCR的检测技术，主要用于检测猪体内的特定病原体。

1.2 关键步骤和技术要点建立这一检测方法需要充分理解猪体内病原体的生物学特征，同时需要在PCR技术上进行优化，确保灵敏度和特异性。

1.3 方法的验证和实验数据经过大量实验和数据对比，可以确定该方法在猪体内病原体检测方面具有可靠性和准确性。

二、初步应用2.1 在疾病防控中的应用猪附红细胞体PCR检测方法可以用于疾病的早期诊断和监测，为疾病的控制和防治提供重要支持。

2.2 在饲养管理中的作用通过该方法的应用，可以及时检测病原体，避免疾病的传播，保障猪的生长和健康。

2.3 对农业生产的意义猪附红细胞体PCR检测方法的建立和应用，对农业生产具有重要意义，可以提高疾病检测的精准度，保障畜禽健康生产。

三、未来展望3.1 技术的改进和完善在未来，需要不断改进和完善猪附红细胞体PCR检测方法，提高其在现实应用中的效率和稳定性。

3.2 拓展应用领域除了用于猪体内病原体的检测，该技术还可以在其他动物的病原体检测中得到拓展，具有广阔的应用前景。

3.3 国内外研究现状与竞争优势通过了解国内外研究现状，可以为我们提供更多的启发和借鉴，提高我们的研究水平和竞争力。

个人观点和总结通过对猪附红细胞体PCR检测方法的建立和初步应用的深入探讨，我认为这一技术具有巨大的潜力和应用前景。

在未来，随着技术的不断改进和完善，相信它将在农业生产和疾病防控领域发挥更大的作用。

在撰写本文的过程中，我深刻理解了猪附红细胞体PCR检测方法的重要性和价值所在。

猪源附红细胞体rnpB基因的克隆与序列比较

猪源附红细胞体rnpB基因的克隆与序列比较王向佩;雷晓思;陈兆国;赵权;周鹏;米荣升;沈莉萍;黄燕;王晓娟;杨晓娇;石凯;刘宇轩【摘要】为了解猪源附红细胞体（Mycoplasma spp.）RNA酶P RNA（RNase P RNA，rnpB）基因序列变异状况，将实验室保存的经16S rRNA基因序列分析鉴定的53份猪源附红细胞体阳性DNA样品用于rnpB基因的扩增，扩增产物克隆至pMD18-T载体并进行序列测定。

将获得的序列与GenBank登录的猪附红细胞体（Mycoplasma suis）德国分离株rnpB基因序列（登录号：EF523602）进行分析和比对，利用MEGA5.0软件构建系统发育树，并与16S rRNA判定结果进行比较。

结果共得到42条猪附红细胞体rnpB基因和11条小附红细胞体（M.parvum）rnpB基因序列。

猪附红细胞体上海分离株rnpB基因与GenBank 登录的猪附红细胞体德国分离株rnpB基因之间的核苷酸序列相似性为98.1%~100.0%；小附红细胞体上海分离株rnpB基因与猪附红细胞体德国分离株rnpB基因序列的相似性为91.0%，与猪附红细胞体上海分离株rnpB基因序列相似性为90.0%~91.0%。

系统进化分析显示猪附红细胞体rnpB基因与小附红细胞体rnpB基因分布在不同聚簇上，与16S rRNA基因序列鉴定结果一致。

%The present study was designed to illustrate variation of RNase P RNA (rnpB) gene of Mycoplasma spp. origin of swine. Partial rnpB gene of Mycoplasmasuis and M.parvum was amplified in PCR from 53 genomic DNAs extracted from pig blood samples, which had been identified as Mycoplasma spp. positive by 16S rRNA gene sequence analysis. The amplified products were cloned into pMD18-T vector for sequencing. The obtained sequences were compared with the sequence of rnpB gene of M. suis German isolate in GenBank (Accession number: EF523602). Thephylogenetic tree was constructed based on nucleotide sequence of rnpB gene of different species using MEGA 5.0 software and the results of Mycoplasma species identification were compared with those of 16S rRNA assessment. Total 42 rnpB genes of different M. suis isolates and 11 rnpB genes of different M. parvum isolates were cloned and sequenced. Homology analysis showed that the nucleotide sequence identities were 98.1%-100.0% between M. suis rnpB gene of Shanghai isolates and German isolate, 91.0%between rnpB gene of M. parvum Shanghai isolates and German isolate and 90.0%-91.0%between M.parvum and M.suis Shanghai isolates. The rnpB genes of M.suis and M.parvum distributed in different clusters of phylogenetic tree, which was consistent with 16S rRNA gene assessment.【期刊名称】《中国动物传染病学报》【年(卷),期】2014(000)003【总页数】8页(P26-33)【关键词】猪附红细胞体;小附红细胞体;rnpB;克隆;序列比较【作者】王向佩;雷晓思;陈兆国;赵权;周鹏;米荣升;沈莉萍;黄燕;王晓娟;杨晓娇;石凯;刘宇轩【作者单位】吉林农业大学动物科学技术学院，长春130118; 中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;吉林农业大学动物科学技术学院，长春130118;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;上海市动物疫病预防控制中心，上海201103;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;吉林农业大学动物科学技术学院，长春130118;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241;中国农业科学院上海兽医研究所农业部动物寄生虫学重点开放实验室中国农业科学院动物源性食品安全研究中心，上海200241【正文语种】中文【中图分类】S852.64猪的附红细胞体病（eperythrozoonosis）是由附红细胞体（Mycoplasma spp.）寄生于猪的红细胞表面、血浆及骨髓等引起的[1,2]，以发热、贫血、黄疸为主要临床症状的人兽共患传染病[3]。

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叩呻长度约为呻４ｂ的基因片段，５１Ｄ为猪附红细胞体病的检测和分
卜卜卜
ｌｌ
咖啪咖
注：Ｍ为Ｄ２０ＮＩ００ＤＡＭａｅ；４为重组质粒ＰＲ扩增产物。ｒｒｌｋＣ
图２重组质粒ＰＲ扩增结果Ｃ
的１ＳｒＮＡ基因片段。６Ｒ
Ｍｌ２３４
细胞体１Ｎ６ｒＡ基因序列。ＳＲ
２４系统发育进化分析．应用ＭＥＡ．软件的Ｎｉｂｕ－Ｇ３１ｅｈｏｒｇ
Ｊｎｇｏｉ法对国内外附红细胞体１ＳｒＮｉｎ６Ａ基因序列进行系统Ｒ进化分析，．ｕ —ｌＥｓｓｉ／Ｊｉｎ与广东株处于同一进化支，于附红属
００ｐ０ｂ００ｐ０ｂ
细胞体簇，克次氏体亲缘关系较远，与立结果见图５。
３讨论
５０ｐ０ｂ
２０ｐ５ｂ
该研究根据发表的猪附红细胞体１ＳＲＡ基因序列设６Ｎｒ
３
计了１引物，对从镜检阳性猪的血液样本中成功地扩增出了
序列，Ｇ＋其Ｃ含量为４．％。测序结果用ｂｓ程序进行６３ｌｔａｎ相似性搜索，．／Ｊｉ株其中的４５０因序列与广东株Ｅｓｓｉｎｕ．Ｌ９基ｂ猪附红细胞体１ＳｒＮ６Ａ基因序列（Ｙ９０６同源性为ＲＡ４２８）１％，国外株猪附红细胞体１Ｎ０与０６ｒＡ基因序列（８５５ＳＲＵ８６）
ＮｔｏＩ单酶切鉴定；、３４为Ｐｔ单酶切。ｓＩ图３重组质粒的ＮｔＩ酶切鉴定结果ｏ
吉棘株１塑＾ｃＥＩＡ＾Ｇ（（ＡＡＧ６０广东株２０ … … … … … … … … … … … … … … … … … … … … ３９８３美国株２１ … … … … … … … … … … … … … … … … Ｔ… … … ・３０６．２
同源性达９．％（４，一步证实目的基因片断为猪附红ｒ８图）进７
性平板上筛选 Βιβλιοθήκη 疑似阳性克隆。经ＰＲ鉴定得到约５１ＤＥ４ｂ
的特异性条带（２；ＮｔＩ图）经ｏ酶切分析得到约为２８、７Ｄ９４５３ｂ
的２条带（３。结果表明重组质粒中插入了猪附红细胞体图）
试验获得的核苷酸序列与广东株ｊｓ／１ＳｒＮｕ６ＲＡ基Ｅ．ｓ因序列同源性为１０，Ｍｓｃ＿报道的Ｅ．ｕ６０％与ｅｓｋ等７ｉｓ／１ＳｓｒＮＡ序列同源性为９．％。鉴于１ＳｒＮＲｒ８７６Ａ基因的高度保守Ｒ
子流行病学研究提供科学依据。
ｎｏ５
１０ｐ０ｂ５１０ｐ０ｂ０５０ｂ０ｐ
图５Ｅ．ｕｓＪＬＮ基因系统进化树ｓ／．ＩＩ
注：为ｌｂＤＡＬｄｅＭｒｅ；２为Ｄ２Ｘ￣ＮＭｒｅ；、ＭｌＮａｄｒａｋｒＭｋＩＩＤＡａｋｒｌ２为Ｉ
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安徽农业科学
２ｏ年０７
２２目的基因的克隆和鉴定将ＰＲ回收产物连接到．ＥｐＥ－ａｙＧＭＴＥｓ载体，转入Ｅ．ｏｉＩ￣感受态细胞，氨苄抗ｃｌＤ－Ｉ５在
系统进化树表明，吉林省猪体内所检测的附红细胞体与
广东省株、俄亥俄州株、伊利诺斯州株猪附红细胞体的基因序列同处于一个大的进化支上，表明吉林省猪体内的附红细胞体为猪附红细胞体，分基因属于猪附红细胞体１Ｎ其部６ｒＡ基ＳＲ因群，从分子水平揭示了猪附红细胞体的遗传特性。因此，将从吉林省猪体内所检测的附红细胞体暂称为Ｅｓｓｉｎ．／Ｊｉｕ．Ｌ。
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