实验性肺血容量增高性肺水肿
实验性肺水肿
答：去甲肾上腺素作用于外周血管，使血管收缩，外周阻力增大，血压升高。肺部血液逗留使间质的积液增多，使呼吸代偿功能消失，加重了肺淤血性水肿。
3．实验中观察到气管插管有粉红色泡沫状液体流出，意义何在？其机制是什么？
答：出现粉红色泡沫痰，说明肺毛细血管通透性增高。泡沫痰说明水肿液中蛋白质成分较高，即血浆透过肺血管进入呼吸道，在呼吸过程中气体流过时很容易形成泡沫且不容易消除，使呼吸道内很快被泡沫充塞，严重影响气体交换。粉红色说明有红细胞滲出。肺水肿一旦发生，则肺泡上皮的屏障功能就会发生根本性的改变，水和各种溶质包括蛋白质、红细胞等都可以不受限制而自由通过上皮层进入气管管腔内，此时水肿液则可随呼吸运动由气管残端排出，
4．根据两组实验结果，联系理论，分析实验性肺水肿发生的机制
答：肺水肿是指肺血管内液体渗入肺间质和肺泡，使肺血管外液量增多的病理状态。发生机制为：⑴肺毛细血管静水压升高；⑵血浆蛋白渗透压降低；⑶肺毛细血管通透性增加:⑷肺淋巴回流受阻；⑸间质负压增加；⑹其他：如神经源性肺水肿(两侧迷走神经的切断)
成绩 教师签名
2.正常呼吸-→全速输液50%-→切双侧迷走神经(副交感神经作用消失，交感神经占优势)-→继续输液-→观察(呼吸曲线、粉红色泡沫样液体)-→若无现象加去甲肾上腺素15ml
3.动物死亡或处死；结扎气管、心脏血管-→分离肺脏-→测肺系数=
五、[实验结果]
切断家兔双侧迷走神经后，家兔呼吸吸气延长，呼吸加深变慢。取出的肺有大量出血点，有明显的肺水肿，经过结扎分离后称量肺，质量为21.50g。
实验报告专用纸
课程
病理生理学
学院
药科学院.
专业
(班级)
药学(创新班)14
试验性肺水肿试验指标测定记录
9．密切观察呼吸改变和气管插管内是否有粉 红色泡沫液体流出，死亡动物记录死亡时间存活 动物造病后30min则夹住气管，处死。所有动物 均打开胸腔，用线在气管分叉处结扎以防止肺水 肿液渗出，在结扎处以上切断气管，把肺取出， 用滤纸吸去肺表面的水份后称重，根据“肺系数 =肺重量（g）/体重（kg）”的公式计算系数， 然后肉眼观察肺大体改变，并切开肺，观察切面 的改变。
【实验结果】
实验性肺水肿实验指标测定记录
实验组 速尿治疗组 山莨菪碱治疗组 对照组
实验前
呼吸改变
注射生理盐水 注射肾上腺素 治疗 PH PCO2
血气分析
PO2 HCO3－ BE
粉红色泡沫液 肺表面状况 肺重量(g) 兔体重（kg）
【注意事项】 1．实验兔与对照兔的输液速度应基本一 致，不要太快或太慢，以控制在180～200滴 /min为宜。 2．解剖取肺时，注意勿损伤肺表面和挤 压肺组织，以防止水肿液流出，影响肺系数值。
【讨论思考题】 1. 本实验中为什么要大量快速输液？ 2. 输入肾上腺素导致肺水肿的机制是什么？ 3. 实验中为什么会出现粉红色泡沫痰？ 4. 输入肾上腺素为何会出现呼吸抑制甚至暂停？ 5. 本实验中如果输液过快过多对实验结果有何
影响？
病
2．复制实验性肺水肿，观察肺水肿的表现， 并探讨其有关的发病机制。
【实验原理】
过多的体液积聚在组织间隙或体腔中称为水 肿。肺水肿是由于液体从毛细血管渗透至肺间质或 肺泡所造成的。病理上可分间质性和肺泡性两类， 可同时并存或以某一类为主。间质性肺水肿大都为 慢性，肺泡性可为急性或慢性肺水肿。本实验主要 是通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素导致 急性肺水肿。
3．进行 颈部手术， 分离气管 和一侧颈 总动脉， 一侧颈外 静脉。作 气管插管。
家兔实验性肺水肿的发生机制
家兔实验性肺水肿的发生机制实验性肺水肿指的是在实验条件下，通过其中一种因素引起的肺水肿的发生。
家兔是一种常被用于实验性肺水肿研究的动物模型。
在马克劳德实验中，通过气道灌注大量液体（如盐水、和鲜血）或给予高压氧，会导致家兔发生肺水肿。
实验性肺水肿发生机制主要涉及血管内皮细胞的损伤和通透性的增加，以及炎症反应的参与。
以下将详细介绍几种可能的发生机制：1.血管内皮细胞损伤和通透性增加：气道灌注大量液体或给予高压氧会引起氧化应激，增加氧自由基的产生，进而引起血管内皮损伤。
血管内皮细胞损伤后，白细胞粘附于内皮上，释放炎症介质，如血小板活化因子（PAF），引起内皮细胞通透性的增加。
此外，血管内皮细胞损伤还可导致一系列信号通路的激活，如VEGF信号通路，促使血管通透性增加，从而导致肺水肿的产生。
2.炎症反应的参与：实验性肺水肿的发生与炎症反应密切相关。
气道灌注大量液体或给予高压氧会激活白细胞和炎症细胞，释放多种炎症介质，并导致炎症细胞的浸润。
炎症介质如白细胞介素-1β（IL-1β）、肿瘤坏死因子-α（TNF-α）等可导致肺组织的炎症反应，并进一步增加血管内皮细胞的通透性。
3.水钠潴留：肺水肿是指肺泡和间质组织中的液体积聚。
实验中的液体灌注或给予高压氧，会使血液中的水和电解质通过血管壁进入肺组织，并阻碍液体的排出，导致肺水肿。
需要注意的是，实验性肺水肿的发生机制是复杂且多样的，并可能涉及到其他因素，如一氧化氮（NO）合成的改变、血浆溶酶体蛋白酶激活等。
此外，个体差异、年龄、性别等因素也可能影响实验性肺水肿的发生。
总结起来，实验性肺水肿的发生机制主要包括血管内皮细胞损伤和通透性增加、炎症反应的参与以及水钠潴留等。
进一步研究这些发生机制有助于深入了解肺水肿的发生过程，并为肺水肿的预防和治疗提供新的思路和方法。
实验性肺水肿
05
实验性肺水肿的预防
加强病因预防
01
02
03
控制感染
加强实验室内外环境的消 毒，减少细菌和病毒的传 播，预防肺部感染。
改善通气
使用机械通气等措施，改 善肺部通气，降低肺部压 力。
避免接触有害物质
避免接触工业有害气体、 室内装修材料中的有害物 质等。
避免诱发因素
治疗方法需要进一步优化和 完善
虽然新型治疗方法不断涌现，但还需要进一步验证 和优化这些方法的有效性和安全性。
加强国际合作与交流
肺水肿的研究需要国际合作与交流，共同推 进研究进展，分享研究成果和经验。
THANKS
谢谢您的观看
01
避免疲劳
减少实验动物的运动量，避免过度疲 劳诱发肺水肿。
02
避免温度和湿度变化
保持实验环境温度和湿度的稳定性， 避免温度骤降或湿度过高过低等因素 对肺部的影响。
03
避免应激
减少实验动物的应激刺激，如噪音、 高温、强光等。
提高诊断准确性
加强临床观察
密切观察实验动物的呼吸、体温 、心率等生命体征，及时发现异 常情况。
定期进行肺部检查
定期进行X光、CT等影像学检查 ，及时发现肺部病变。
提高病理学诊断水平
对于需要病理学诊断的病例，应 提高病理学医生的诊断水平，确 保诊断结果的准确性。
06
研究展望
研究方向
深入研究肺水肿的发 病机制
从分子、细胞和整体水平上，深入探 讨肺水肿的发病机制，为预防和治疗 肺水肿提供理论基础。
吸入有毒物质
1
如化学气体、粉尘等
循环障碍
2
如心衰、心肌梗死等心血管疾病
实验性肺水肿的原理
实验性肺水肿的原理
实验性肺水肿是一种由于不同原因引起的肺部血管通透性增加，导致肺泡内液体积聚而引发的疾病。
一般来说，实验性肺水肿的原理包括以下几个方面：
1. 血管内皮细胞通透性增加：实验性肺水肿可能由于血管内皮细胞通透性增加导致。
某些炎症介质、毒素、细菌感染等因素可以刺激内皮细胞分泌炎性因子，使细胞间隙扩大，血管通透性增加。
这样一来，液体和蛋白质等溶质就会从血管内部渗漏到肺泡腔内，导致肺水肿的形成。
2. 淋巴循环障碍：实验性肺水肿可能与淋巴循环障碍有关。
正常情况下，淋巴系统可以清除肺泡内的液体，维持肺部的液体平衡。
而在某些情况下，如淋巴管阻塞或淋巴流量减少，淋巴液的排出受到限制，使得肺泡内液体聚集，引发肺水肿。
3.心脏功能异常：某些实验性肺水肿可能与心脏功能异常有关。
如实验性心脏病模型中，心脏的收缩力减弱、舒张功能受损或心输出量降低，都可能导致肺循环压力升高，血管压力超过肺泡压力，从而引发肺水肿。
4.神经内分泌调节异常：一些实验性肺水肿与神经内分泌调节异常有关。
某些实验模型中，肾上腺素、去甲肾上腺素等交感神经活性物质分泌增加，血管收缩性增强，从而导致肺血管收缩，通透性增加，引发肺水肿。
总的来说，实验性肺水肿的发生是一个复杂的过程，可能涉及到多个机制的相互作用。
这些机制包括血管内皮通透性增加、淋巴循环障碍、心脏功能异常以及神经内分泌调节异常等。
实验四 家兔实验性肺水肿及治疗
实验四家兔实验性肺水肿及治疗【目的】1.复制实用性肺水肿。
2.了解肺水肿的表现及其发生机理。
对象：家兔【用品】婴儿称、天平、气管插管及CAI 记录呼吸变化，静脉导管及静脉输液装置，颈部手术器材，听诊器、烧杯、沙布、滤纸、兔固定台。
生理盐水，肾上腺素生理盐水（1‰肾上腺素1ml+生理盐水9ml），山莨菪碱，利尿，戊巴比妥钠。
【步骤】1 材料和方法1.1材料：家兔（4只），婴儿称，天平称，气管插管及生理二导仪，，颈部小手术器械，听診器，生理盐水，手术台，注射器若干支。
1.2实验方法：（1）分4个实验组，每组各一只兔子，随机分为[1]实验组，[2-3]治疗组，[4]对照组。
（2）称重，按1%戊巴比妥钠0.5ml/kg耳缘静脉注射麻醉，固定手术台上。
（3）剪去颈部被毛，分离气管，切开插入气管插管并结扎固定，描记曲线。
用头皮针穿插耳缘静脉并固定，打开静脉输液装置，注意排除管道内气体。
（4）各组动物分别描记正常呼吸曲线，并用听诊器听肺部的呼吸音，然后输入37摄氏度生理盐水（按100ml/kg,输液速度为180~200滴/分）（5）实验组待滴注接近完毕时立即向输液瓶中加入肾上腺素生理盐水（按肾上腺素0.45mg/kg）继续输入。
治疗组步骤同实验组，不同的是在滴注肾上腺素后立即按20mg/kg 的量加输山莨菪碱注射液或5mg/kg的利尿注射液。
对照组只静脉滴注生理盐水，不加输肾上腺素和治疗药物。
（6）密切观察呼吸改变和气管插管内是否有分红色泡沫液体流出，并用听诊器听诊肺部有无湿罗音出现。
死亡动物记录死亡时间，存活动物造病后30min则夹住气管，放血处死。
所有动物均打开胸腔，用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出，在结扎处以上切断气管，小心将心脏及其血管分离（勿伤及肺），把肺取出，用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算系数，然后肉眼观察肺大体改变，并切开肺，观察切面的改变。
正常肺系数为4～5。
注意事项：1.实验组与对照组的输液速度应基本一致，输液的速度不要太快，以控制在180～200滴/分为宜。
家兔实验性肺水肿及治疗
讨论本实验四个实验组开始都是大量快速滴生理盐水，每只兔都是200ml以上的注入量，这样血容量肯定是明显升高胶体渗透压减低，从各实验组观察，这时的各只兔子呼吸都是从开始的均匀平稳到加深加快（见呼吸曲线变化），而听诊则闻及其呼吸音增强，心跳明显加快，由此反映了血容量升高，兔的心跳加快，呼吸加深加快。
这主要是由于血容量升高，心脏的负荷加大，回心血量增加，输出量也相应的增多；血容量增多，血氧浓度降低，刺激呼吸中枢调整呼吸频率和幅度。
从实验组和对照组来看，实验组在血容量明显增加的情况下加注AD就能在5min内快速地造成肺水肿；而对照组虽然同样是血容量升高，没有注入AD，却不会出现肺水肿，由此明显地知道在这种肺水肿的产生过程中，AD 起着关键的作用。
从宏观上，我们闻及实验组肺的湿罗音，插管处流出粉红色泡沫状液体几呼吸曲线的明显减弱减慢是最好的宏观证明。
资料显示，大剂量AD是引起a受体的作用，致使体血管和肺血管剧烈收缩致心脏前后负荷明显增加。
肺毛细血管压力持续及迅速增加打破Starling定律平衡，引起动力性水肿，另外，肾上腺素可直接作用并损伤内皮及内皮细胞，肾上腺素促使血小板凝集，缺氧与血管与收缩痉挛形成恶性循环，促使肺水肿的形成。
再从治组与实验组结果分析，再同样出现肺水肿的情况下，快速注入山莨菪碱后，见呼吸从慢弱到加深快了，湿罗音也渐减弱至消失，插管处的泡沫液不再流出，解剖后肺的表面及切面情况都显示其水肿大大消失，肺系数5.3明显优于实验组的10.2所有的这些结果，都明显地说明了山莨菪碱在这种急性肺水肿中的良好治疗作用。
两组治疗组比较后明显地看到利尿在本例的治疗中不起到明显的作用，肺脏照样水肿不减，呼吸照样衰竭，肺系数高达7.3。
研究资料显示莨菪碱类药物是M受体和N受体阻断剂，是抗胆碱能药物,能与Ach竞争胆碱能受体，阻碍Ach作用；同时又能抑制多种平滑肌，制止腺体分泌，兴奋呼吸中枢，这种解除平滑肌痉挛、扩张动静脉及毛细血管、减少肺毛细血管静水压，正是其治疗机理所在。
病理实验报告肺水肿
病理实验报告肺水肿概述肺水肿是一种常见的病理情况，主要指肺组织中非正常积聚的液体导致呼吸功能受损的一种疾病。
肺水肿可分为心源性和非心源性两种类型，其中心源性肺水肿是最常见的类型，常见于心脏疾病导致心脏泵血能力下降而引起的肺循环淤血。
本次实验将通过病理分析的方式对肺水肿进行详细的描述和讨论。
材料与方法本次实验使用的标本为来自已经死亡的患者的肺组织切片，通过显微镜对肺组织进行观察和分析。
结果与讨论外观观察通过观察切片下的肺组织，可以明显看到肺泡腔内积聚了大量黄色液体，肺泡壁也呈现水肿状态。
肺泡壁的水肿使得气体交换受到严重影响，导致患者呼吸困难。
组织学特征肺泡壁由一层薄的上皮细胞和基底膜组成。
在正常情况下，肺泡腔内只有少量液体和气体。
而在肺水肿的情况下，肺泡腔内积聚了大量液体，从而导致肺泡腔扩大。
进一步观察肺组织切片，发现肺泡壁上皮细胞的核被推到了细胞边缘，这是水肿现象的典型表现。
此外，肺泡壁上皮细胞间有明显的间隙扩大，这是由于组织液体的滞留和渗出所致。
病因分析根据临床病史和病理表现，可以初步判断本例肺水肿病因为心源性。
心源性肺水肿是由于心脏疾病引起心血管系统回流障碍，导致肺循环淤血而发生。
正常情况下，心脏负责泵血供应全身组织，但心脏疾病如心脏衰竭、心肌缺血等会导致心脏泵血能力下降。
当心脏泵血能力下降时，肺循环血流受阻，静脉回流受阻，导致肺毛细血管压力升高。
随着压力的增加，液体和红细胞开始渗出到肺泡腔内，形成肺水肿。
结论通过本次病理实验，我们对肺水肿的病理特征进行了观察和分析。
肺水肿是一种常见的疾病，主要表现为肺组织中的液体积聚和肺泡壁的水肿。
心源性肺水肿是最常见的类型，由心脏疾病导致心脏泵血能力下降而引起。
进一步的研究和临床实践需要对肺水肿的病因和治疗进行深入探索和研究，以提高对患者的诊断和治疗水平。
参考文献1. Francis DM, Veale D, Mako S, et al. The pathogenesis of diuretic therapy[J]. N Engl J Med, 1972, 287(13):626-631.2. Edematous lung[J]. Respiratory Care Notes, 2013,4(12).。
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实验性肺血容量增高性肺水肿
一、实验目的
1.复制家兔实验性肺水肿
2.观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机理。
二、实验药品与器材
生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置（二道生理记录仪）或生物信号采集系统、血气分析仪。
静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器，兔固定台，1ml2ml注射器各2具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。
三、实验步骤
本实验分为实验组和对照组。
1、将实验组家兔准确称重后，麻醉、仰卧固定于兔台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
2、由颈总动脉插入动脉插管
以描记血压，由颈外静脉插
入静脉插管并连接输液装置
缓慢滴人0．9％的生理盐水以
保持管道通畅
3、描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
4、用1m l肝素化注射器从耳朵
动脉抽血0．5m1，立即将针头
插入橡皮塞中以防空气进入。
经血气分析仪测定血液
的p H、P a C02、P a02、K+、N a+、C l-等，作为实验前对照。
5、然后输入37℃(摄氏度)生理盐水，输入量按100ml/㎏（体重）计算，输液速度180-200滴/min。
6、输药液过程中密切观察机体的变化：
①呼吸曲线有否变化，有否呼吸急促，困难。
②肺部是否出现罗音。
③气管插管口是否有粉红色泡沫液体溢出。
如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素，用法及剂量同上，直至出现明显的肺水肿表现。
并迅速从耳朵动脉抽血0．5m1，方法同上，测定血
气指标的变化。
7、对照组除不使用肾上腺素外，其余实验步骤和条件与实验组相同。
8、上述各组实验完成以后，分别夹住气管，剪开胸前壁，在气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。
在结扎处上方剪断气管，然后分离心脏及其血管，将肺取出。
用滤纸吸干肺表面的水份后，准确称取肺重量，以计算肺系数肺系数= 肺重量（g）\体重（kg）
正常肺系数约为4~5 g。
此后观察肺大体改变，切开肺，注意切面的变化，是否有粉红色泡沫液体溢出（注意其量，性质，颜色）。
还可在显微镜下对比观察肺水肿和正常肺的组织切片。
四、实验结果
1.家兔呼吸的变化曲线图像
2.本组肺的重量为8.2g，兔子重量为1.6Kg，本组所测得的肺系数为5.13（正常肺系数约为4~5）。
3.呼吸变浅变慢，心率加快，皮肤黏膜发绀，听诊肺部出现轻度湿罗音。
4.家兔肺水肿前后血气指标
四、实验讨论
本组虽然为对照组，从测得的肺系数来看，可能出现轻微的肺水肿。
其机制为：快速注射液体，机体体循环加速，心脏容量负荷增加，导致肺毛细血管压增大，出现轻微的肺水肿。
但也有可能是由于单纯注射大量液体使测得的肺系数增大。
与本组相对的实验组注射肾上腺素，经一段时间后可观察到气管处有淡粉色的泡沫痰，其肺系数大于10，即出现明显的肺水肿。
其机制为：首先快速注射液体，使得机体体循环加速。
肾上腺素具有缩血管的作用，使大量血量转移至肺循环，致肺毛细血管压明显增加，出现了明显肺水肿。
实验前肺部听诊正常。
肺水肿时，由于呼吸道内有体液渗出，形成水泡，水泡破裂后便可产生湿罗音。
本组为对照组，两次的血气分析结果显示，指标变化不大。
家兔因肺水肿引起代谢性酸中毒。
机制为：肺水肿时，严重缺氧使无氧代谢加强，乳酸等酸性产物增多。
肺水肿严重至呼吸衰竭，还可能出现功能性肾功能不全，肾小管排酸保碱功能降低，从而出现代谢性酸中毒。
由于代谢性酸中毒的存在，机体还可能出现高血钾，其机制为：酸中毒可使细胞内K+ 外移及肾小管排K+ 减少。
但实验结果为低钾血症，可能是因为肺水肿不明显导致。
肺水肿时也可出现乏氧性缺氧，其机制为：肺水肿导致肺换气功能障碍使经肺泡扩散到血液中的氧减少，PaO2 和血氧含量不足，即导致呼吸性缺氧。
但实验中小兔PaO2 和血氧含量反而升高，可能是因为早期是呼吸加深导致。
五、实验结论：
机体肺水肿时会出现呼吸变得浅快，肺部听诊可听到湿罗音，解剖可看到气管处有粉红色泡沫痰，严重时还会出现代谢性酸中毒，高钾血症，乏氧性缺氧等症状。
［注意事项］
1、忌用实验前已有明显肺部异常征象（罗音、喘息、气促等）的动物，否则影响结果的可靠性。
2、剖取肺脏时，操作要小心，防止肺表面损伤引起水肿液外流，影响肺系数的准确性。
3、在第1次使用肾上腺素后肺水肿征象不明显者，可重复使用，两次输药间隔10~15 min，不宜过频。
4、应控制输液速度，不要太快，以180~200滴/ min为宜。