生理科学实验设计家兔呼吸运动调节
生理学高分实验报告家兔呼吸运动的调节
肺牵张感受器位于肺泡壁和支气管 平滑肌中，可感受肺部的扩张和缩 小。
呼吸肌感受器位于呼吸肌中，可感 受呼吸肌的收缩和舒张。
中枢和外周感受器的相互作用
中枢和外周感受器之间存在复杂的相 互作用，共同维持呼吸运动的稳定性 和适应性。
02
给实验组家兔分别注射不同浓度的呼吸兴奋剂和呼 吸抑制剂。
03
观察并记录注射药物后家兔呼吸运动的变化情况， 包括呼吸频率、呼吸深度的改变。
实验步骤与操作
• 在药物作用高峰期，再次测定家兔的血气指标，以评估药物对呼吸功能的影响。
实验步骤与操作
4. 数据分析与统计
对实验数据进行整理和分析，比较对照组和实验组家兔在呼吸运动参数和 血气指标上的差异。
体液调节与神经调节的相互作用
协同作用
在某些情况下，体液调节和神经调节可协同作用，共同调节呼吸运动。例如，当机体处 于缺氧状态时，外周化学感受器和中枢化学感受器同时受到刺激，引起呼吸加深加快。
拮抗作用
在某些情况下，体液调节和神经调节可相互拮抗，共同维持呼吸运动的平衡。例如，当 机体处于过度通气状态时，动脉血氧分压升高可抑制外周化学感受器的活动，而中枢化 学感受器则继续受到刺激，引起呼吸减慢变浅。这种拮抗作用有助于防止过度通气对机
证了呼吸运动的调节机制。
04
本实验为深入研究呼吸运动的调节机制提供了有价 值的参考数据，有助于进一步揭示呼吸生理学的奥
秘。
对未来研究的展望和建议
0标1题
进••一文文步研字字究内内不容容同物种 之•间文呼吸字运内动容调节机 制•的文异同字，内以容更全面
地了解呼吸生理学的 普遍规律。
呼吸兔子调节实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸兔子调节的基本原理和方法。
2. 观察和分析呼吸兔子在不同生理状态下的呼吸运动调节。
3. 掌握实验操作技能，提高实验操作能力。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸运动调节机制包括呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
本实验通过观察家兔在不同生理状态下的呼吸运动，分析呼吸兔子调节的机制。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法1. 家兔麻醉：使用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉，待家兔麻醉成功后，背位固定于兔体手术台上。
2. 分离气管和迷走神经：切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管，分离出双侧迷走神经，穿线备用。
3. 连接实验仪器：将张力传感器、引导电极和计算机采集系统连接好，用于记录呼吸运动。
4. 记录正常呼吸曲线：观察家兔在正常生理状态下的呼吸运动，记录呼吸频率、节律和幅度。
5. 改变呼吸运动调节因素：a. 增加无效腔：将气管插管适当延长，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
b. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
c. 改变血液中CO2分压：通过注射生理盐水或二氧化碳，改变血液中CO2分压，观察呼吸运动的变化。
6. 记录和分析实验结果。
五、实验结果1. 正常呼吸曲线：家兔在正常生理状态下的呼吸运动呈现规律性，呼吸频率、节律和幅度稳定。
2. 增加无效腔：增加无效腔后，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，呼吸张力增强，呼吸阻力增大。
3. 切断迷走神经：切断双侧迷走神经后，家兔呈现慢而深的呼吸运动，呼吸频率降低，呼吸深度增加。
4. 改变血液中CO2分压：降低血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度降低；提高血液中CO2分压，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加。
六、实验分析1. 增加无效腔：增加无效腔导致呼吸阻力增大，使家兔通过增加呼吸频率和呼吸深度来满足身体对氧气的需求。
家兔呼吸运动的调节实验报告
一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的生理变化，了解呼吸运动的调节机制。
2. 分析血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及调节机制。
3. 探讨迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
呼吸中枢分布于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓、脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
呼吸运动受体内、外各种因素影响，如血液中CO2分压、PO2、[H]等化学因素，以及迷走神经、肺牵张反射等神经调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
待家兔麻醉后，将其背位固定在手术台上。
2. 气管插管：在颈部切开皮肤，分离气管，插入气管插管，连接呼吸传感器。
3. 分离迷走神经：在颈部分离双侧迷走神经，穿线备用。
4. 记录呼吸运动：启动计算机采集系统，记录家兔呼吸频率、节律、通气量。
5. 观察血液中化学因素对呼吸运动的影响：a. 向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化；b. 向气管插管内注入一定量的生理盐水，观察呼吸运动的变化；c. 向气管插管内注入一定量的[H]，观察呼吸运动的变化。
6. 观察迷走神经对呼吸运动的影响：a. 切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化；b. 重新连接双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 观察到在注入CO2后，家兔呼吸频率、节律、通气量均增加，表明CO2对呼吸运动具有促进作用。
2. 观察到在注入生理盐水后，家兔呼吸运动无明显变化，表明生理盐水对呼吸运动无明显影响。
3. 观察到在注入[H]后，家兔呼吸频率、节律、通气量均降低，表明[H]对呼吸运动具有抑制作用。
最新生理学实验：家兔呼吸运动的调节
实验数据分析1.正常的家兔呼吸曲线图1.正常的家兔呼吸曲线曲线由图可知，本组选取的家兔自身呼吸频率较快，幅度加大，后续增强呼吸的因素作用不是十分明显。
2.接空气气囊的家兔呼吸曲线图2.接空气气囊的家兔呼吸曲线曲线由图可知，改接空气气囊后，家兔呼吸幅度和频率均未出现太大变化。
3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线图3.接CO2气囊的家兔呼吸曲线CO2由图可知，接CO2气囊后，家兔呼吸曲线幅度增大，频率加快。
这是因为CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，不但对呼吸有很强的刺激作用，而且对维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动是必须的。
当呼入气体中CO2浓度升高，血液中CO2浓度随之升高，CO2透过血脑屏障使脑脊液的CO2浓度也升高。
CO2与水反应生成H2 CO3，随后水解成HCO3-和H+，由H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过一系列调控使得呼吸作用加强。
此外，当CO2浓度增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
4.接N2气囊的家兔呼吸曲线图4.接N2气囊的家兔呼吸曲线由图可知，接N2气囊后，家兔呼吸曲线幅度略有增大。
这是因为吸入纯N2时，因吸入气体中缺乏O2，肺泡气O2浓度下降，导致动脉血中O2浓度下降；而CO2浓度却基本不变（CO2扩散速度较快）。
随着动脉血中O2浓度下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线图5.增长解剖无效腔的家兔呼吸曲线由图可知，增长解剖无效腔后，家兔呼吸幅度略有下降，而呼吸频率则稍稍上升，这是因为实验中通过插管的方式增大无效腔，也就是减小了进入肺泡的潮气量，即每次的有效气体更新变小。
结果促使O2分压下降，CO2分压上升，使其反射性的调节使呼吸加深加快。
所以膈肌放电的变化幅度加大，频率有微量增大。
反映到膈肌的收缩曲线，由于收缩频率的增大，为了维持正常的肺部通气量，所以收缩强度减弱。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。
实验材料与方法。
1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。
2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。
接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。
实验结果。
1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。
2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。
3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。
实验分析。
1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。
2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。
实验结论。
家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。
同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。
结语。
通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。
希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告一、实验目的本实验旨在观察和分析各种因素对家兔呼吸运动的调节作用，深入理解呼吸运动的生理机制以及神经、体液等因素在呼吸调节中的重要性。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌节律性收缩和舒张所引起的胸廓有节律的扩大和缩小。
呼吸运动受神经和体液因素的调节。
神经调节主要包括迷走神经和交感神经，体液调节则包括血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度等的变化。
三、实验材料与方法（一）实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只，体重 20 25kg。
2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、压力换能器、生物信号采集处理系统、50cm 长的橡皮管、20ml 和 5ml 注射器、CO₂气囊、N₂气囊、装有钠石灰的广口瓶、装有空气的广口瓶、生理盐水、3%乳酸溶液等。
（二）实验方法1、家兔称重后，用 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）于耳缘静脉缓慢注射麻醉。
将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部手术部位的被毛。
2、颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管，通过压力换能器与生物信号采集处理系统相连，记录呼吸运动曲线。
3、分离双侧迷走神经，穿线备用。
4、观察并记录正常呼吸运动曲线。
四、实验步骤（一）增加吸入气中二氧化碳浓度将装有 CO₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体，观察呼吸运动的变化。
（二）缺氧将装有 N₂的气囊通过橡皮管与气管插管的侧管相连，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。
（三）增大无效腔将一段 50cm 长的橡皮管连接在气管插管的侧管上，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
（四）静脉注射乳酸溶液用 5ml 注射器经耳缘静脉缓慢注入 3%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。
（五）切断迷走神经分别切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
然后再分别刺激切断后的迷走神经中枢端和外周端，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果（一）增加吸入气中二氧化碳浓度当家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体后，呼吸运动明显加深加快。
兔呼吸调节_实验报告
一、实验目的1. 观察并记录家兔的呼吸运动，包括呼吸频率、幅度和节律。
2. 研究不同生理因素（如CO2浓度、缺氧、肺牵张反射等）对家兔呼吸运动的影响。
3. 掌握呼吸调节的基本原理和实验方法。
二、实验原理呼吸运动是机体与外界环境进行气体交换的重要生理过程。
呼吸调节主要通过呼吸中枢（位于脑干）和化学感受器（如中枢化学感受器和外周化学感受器）的反射性调节实现。
实验中，通过改变实验条件，观察家兔呼吸运动的变化，可以了解呼吸调节的机制。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔（体重约2kg）2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布等。
四、实验方法与步骤1. 实验动物准备：将家兔称重后，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
2. 呼吸运动记录：将家兔固定在手术台上，分离气管并插入气管插管，连接呼吸传感器，记录家兔的呼吸频率、幅度和节律。
3. 生理因素影响观察：a. CO2浓度增加：将CO2气囊连接到气管插管，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
b. 缺氧：将家兔置于低氧环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
c. 肺牵张反射：剪断家兔一侧膈神经，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
4. 数据记录与分析：记录实验过程中呼吸频率、幅度和节律的变化，并进行分析。
五、实验结果与讨论1. CO2浓度增加：当CO2浓度增加时，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，说明CO2浓度升高可以刺激呼吸中枢，促进呼吸运动。
2. 缺氧：在低氧环境中，家兔的呼吸频率和幅度也明显增加，说明缺氧可以刺激外周化学感受器，促进呼吸运动。
3. 肺牵张反射：剪断膈神经后，家兔的呼吸频率和幅度无明显变化，说明肺牵张反射在呼吸调节中不起主要作用。
六、实验结论1. CO2浓度和缺氧可以刺激呼吸中枢和外周化学感受器，促进呼吸运动。
2. 肺牵张反射在呼吸调节中不起主要作用。
实验七++家兔呼吸运动的调节
四、实验内容
（一）手述过程（看示范和录像） 1）麻醉 2）固定与剪毛 3）气管插管术 4）颈部神经血管分离术
（二）连接实验装置
（三）实验观察
1 增加无效腔 2 肺牵张反射 3 刺激迷走神经 4 切断迷走神经 5 注射乳酸
五、注事项
1. 随时注意动物麻醉的深度，如实验时间过 长，动物经常挣扎，可补注少量麻醉剂。
实验七
家兔呼吸运动的调节
一、实验目的 1. 学习和掌握哺乳类的麻醉和解 剖方法。 2. 学习测定兔呼吸运动的方法。 3. 观察并分析肺牵张反射以及影 响呼吸运动的各种因素。
二. 原理
呼吸运动能够持续地节律地进行, 是由于体内神经和体液调节机制 发存在。
三、试剂与器材
兔、微机、 生物信号处理系统、兔体手术台、 圆头手术镊、手术剪、手术刀、止血钳、呼吸 波换能器、弯剪、气管插管、橡皮管（长1m以 上, 短10-20cm）、玻璃勾针、20mL注射器、 50mL注射器、针头、20%氨基甲酸乙酯、棉花、 棉线、刺激输出线、保护电极。
2. 刺激神经之前，应先检查是否有刺激电流输 出。
3. 神经需刺激时才拉出，不要一直由保护电极 勾住，防止神经干燥。
六、结果和目标
1.观察和记录正常呼吸的曲线, 了解其特性 和规律；
2.观察和记录各种影响因素所造成的呼吸 曲线的变化。
七、思考题 1．分析增加呼吸无效腔，呼吸运动改变
的原因。 2．根据实验结果分析肺牵张反射对维持
正常呼吸节律的意义。 3．双侧切断迷走神经以后，呼吸运动的
变化说明什么问题？ 4. 分析注射乳酸后呼吸运动变化的原因。
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生理科学实验设计——家兔呼吸运动的调节09级31班第四小组麦华浩莫世杰刘文荣罗国华王辉赵宏伟一：实验目的：（1）熟悉家兔耳缘静脉注射法、家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术。
（2）记录家兔呼吸曲线观察一氧化碳（CO）、纯氧，走神经对呼吸运动的调节及了解其机理。
（3）熟悉Medlab生物信号处理系统、保护电极、氧气瓶，张力换能器在实验中的作用及使用注意事项。
二：立题依据：一氧化碳中毒机理是一氧化碳与血红蛋白的亲合力比氧与血红蛋白的亲合力高200～300倍，它进入人体后会和血液中的血红蛋白结合，使血红蛋白不能与氧气结合，从而造成人体组织缺氧。
急性中毒时，轻者会出现头痛、头晕、耳鸣、心悸、恶心、呕吐、无力，重者会出现心肌损害、脑椎体系损害、昏迷、休克甚至死亡。
及时强制吸氧，置换一氧化碳，能避免死亡。
临床表现主要为缺氧，其严重程度与HbCO的饱和度呈比例关系。
轻者有头痛、无力、眩晕、劳动时呼吸困难，HbCO饱和度达10%—20%。
症状加重，患者口唇呈樱桃红色，可有恶心、呕吐、意识模糊、虚脱或昏迷，HbCO饱和度达30%—40%。
重者呈深度昏迷，伴有高热、四肢肌张力增强和阵发性或强直性痉挛，HbCO饱和度>50%。
患者多有脑水肿、肺水肿、心肌损害、心律失常和呼吸抑制，可造成死亡。
二氧化碳（CO2）是调节呼吸运动最重要的生理性化学因素。
很早就知道，在麻痹的动物或人，当动物血液Pco2降到很低水平时，可出现呼吸暂停。
因此，一定水平的Pco2对维持呼吸中枢的基本活动是必需的。
CO2刺激呼吸运动是用过两条途径实现的：一是通过刺激中枢化学感受器再兴奋呼吸中枢；二是刺激外周化学感受器，冲动经窦神经和迷走神经传入延髓，反射性地使呼吸加深﹑加快，肺通气量增加。
CO2在呼吸调节中经常起作用，动脉血Pco2在一定范围内升高，可加强对呼吸的刺激作用氧中毒机理当吸入性PO2过高时，活性氧产生增加，反可引起组织，细胞损伤，称为氧中毒。
氧中毒的发生取决于PO2而不是氧浓度。
吸入性PO2过高时，由于血液与组织，细胞之间的PO2差增大，氧的弥散加速，组织细胞因获得氧过多而中毒。
一般认为氧中毒时细胞受损的机制与活性氧的毒性作用有关。
人体及高等动物的呼吸运动能持续有节律的进行，是由于体内调节机制的存在。
正常节律性呼吸运动是在呼吸中枢神经系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。
①迷走神经的神经冲动传导迷走神经含有感觉、运动和副交感神经纤维。
这些纤维末梢释放的递质是乙酰胆碱(ACh)，ACh与心肌细胞膜上的M胆碱受体结合，可导致心率减慢，心房肌收缩力减弱，心房肌不应期缩短，房室传导速度减慢，甚至出现房室传导阻滞，即负性变时、变力和变传导效应。
一般说，右侧迷走神经以支配窦房结为主。
在实验中，电刺激外右侧迷走神经，其末梢释放的Ach：一方面使窦房结细胞在复极过程中K+外流增加，结果使最大复极电位绝对值增大；另一方面，使自动去极速度减慢。
这两种因素均使窦房结自律性降低，心率因而减慢，血压降低。
②来自肺部的迷走神经传入冲动有抑制吸气和促进吸气转换成呼气的作用(即肺牵张反射）。
肺牵张反射包括了肺扩张反射和肺萎陷反射两部分。
吸气时，肺被扩张，气道的牵张感受器受刺激，发放冲动通过迷走神经到达延髓，切断吸气神经元的活动，使吸气过程终止。
此为肺扩张反射。
肺萎陷反射同理，呼气时肺萎陷，气道的牵张感受器受刺激，通过迷走神经来使呼气终止，然后转入吸气。
三、实验方法及技术路线实验材料：1、实验动物：家兔2、试剂: 3%戊巴比妥溶液，CO气瓶，纯氧气瓶， CO2气瓶，生理盐水，林格液3、仪器设备及器械：MDLE生物信号采集处理系统，Ｙ型玻璃气管插管、手术器械，动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针, 丝线，注射器，兔台），气管插管，体重秤，张力换能器，生理信号采集系统，医用橡皮管，纱布，10ml 注射器，玻璃分针。
实验分组：完全随机设计分组观察指标：呼吸运动曲线实验方法与步骤：1.实验参数设置。
打开计算机，启动Medlab生物信号采集处理系统，按表6-4进行本实验的计算机实验参数设置，或直接选择“家兔呼吸运动的调节”定制实验。
表6-4 Medlab系统实验设置参数将保护电极的一端插入放大器面板的此机器输出端口，掀下“R←S”按钮，使第4通道作为刺激波形显示通道使用。
2家兔称重后，耳缘静脉注入3%戊巴比妥钠1ml/kg，动物麻醉后，取仰卧位固定在兔手术台上，剪去颈部和剑突部位的毛。
在颈部正中线切开皮肤5~6cm。
钝性分离结缔组织及颈部肌肉，暴露气管并做好气管插管。
找到气管两侧与之平行的颈动脉鞘，用玻璃分针分离出其中的两侧迷走神经。
穿线备用。
3切开胸骨下端剑突部位的皮肤，沿腹白线向下切开2cm左右。
小心将剑突表面组织剥离，暴露出剑突软骨和剑突骨柄。
挑起剑突，将剑突骨柄与背部的膈肌条分离少许，用止血钳夹捏剑突骨柄片刻后，用粗剪刀剪断剑突骨柄，使剑突游离。
此时可观察到剑突软骨完全跟随膈肌收缩而自由游动。
用一带缝线的钩子钩住剑突软骨，缝线的另一端通过滑轮连接与张力换能器的弹性梁上，换能器输入线的一端连接于生物信号放大器的第3通道。
用微调固定器根据基线的移动调整张力换能器的高度，给予相当于5g的全负荷。
4描记一段正常呼吸运动曲线，观察呼气相﹑吸气相﹑呼吸幅度和频率，辨清曲线与呼气﹑吸气运动的关系。
5纯氧对呼吸运动的影响。
将装有O2气体的气瓶导气管口和气管插管一侧管共同置于一细口瓶内，用止血钳夹闭气管插管的另一侧管，快速将气瓶的旋钮松开让家兔吸入细口瓶中纯氧，以达到吸入过多氧气的目的。
观察和记录此时家兔的呼吸运动曲线，效果明显后，撤销以上操作，再观察呼吸运动的恢复过程。
6CO对呼吸运动的影响。
将装有CO气体的气瓶导气管口和气管插管一侧管共同置于一细口瓶内，用止血钳夹闭气管插管的另一侧管，缓慢将气瓶的旋钮松开让家兔吸入细口瓶中CO，以达到吸入一定量的CO的目的。
观察和记录此时家兔的呼吸运动曲线，效果明显后，撤销以上操作，再观察呼吸运动的恢复过程。
7Co2对呼吸运动的影响将装有CO2气体的气瓶导管口和气管插管一侧管共同置于一细口瓶内，将气瓶旋钮逐渐松开，使CO2气流缓慢地随着吸气进入气管，此时观察和记录高浓度CO2对呼吸运动的影响。
效果明显后，关闭CO2气瓶，再观察呼吸运动的恢复过程。
（至于切断迷走神经后CO2对呼吸运动的影响要在下面的步骤才做）8 迷走神经在呼吸运动调节中的影响先记录一段正常呼吸运动曲线，①电刺激迷走神经将保护电极与刺激输出线（通道）连接，分别将右侧迷走神经轻轻搭在保护电极上，选择刺激强度3V，刺激频率5HZ波宽5ms的电脉冲定时10s刺激右侧迷走神经，观察呼吸的变化[2]，并记录呼吸曲线的变化。
②待家兔呼吸运动恢复平后，剪短一侧迷走神经，观察并记录呼吸运动曲线，将装有CO2气体的气瓶导管口和气管插管一侧管共同置于一细口瓶内，将气瓶旋钮逐渐松开，使CO2气流缓慢地随着吸气进入气管，此时观察和记录高浓度CO2对呼吸运动的影响。
效果明显后，关闭CO2气瓶，再观察呼吸运动的恢复过程，待家兔呼吸运动恢复平静后;用同样的刺激电极分别刺激健侧迷走神经，剪短侧迷走神经的中枢端（近头端）和外周端（远头端），分别观察并记录对呼吸运动的变化③待呼吸运动恢复平静后，剪断另一侧迷走神经，观察并记录呼吸运动的影响，将装有CO2气体的气瓶导管口和气管插管一侧管共同置于一细口瓶内，将气瓶旋钮逐渐松开，使CO2气流缓慢地随着吸气进入气管，此时观察和记录高浓度CO2对呼吸运动的影响。
效果明显后，关闭CO2气瓶，再观察呼吸运动的恢复过程；待兔呼吸平稳后再用同样的电刺激剪短侧迷走神经的中枢端（近头端）和外周端（远头端），分别观察并记录对呼吸运动的变化四：可行性这个实验设计参考资料充分，考虑周全，有许多理论支撑五：实验结果预测1.给予CO后，兔呼吸频率增快，幅度增高2.给予纯氧后，兔呼吸运动逐渐受到抑制3.给予电刺激迷走神经后，兔呼吸运功频率加快，但幅度有所降低4.剪短一侧迷走神经后再刺激迷走神经，兔呼吸运动受到抑制（给予CO2后，兔的呼吸运功比没剪断迷走神经前变化减弱）5.剪短双侧迷走神经后刺激迷走神经，兔呼吸运动受到明显抑制（给予CO2后，作用不明显，兔的呼吸运功变化不大）六：注意事项1实验前要做好张力换能器的定标工作，一确定采样数值与张力之间的饿换算关系。
定标砝码的大小可根据张力换能器的量程和预计测量适当的选择。
2气管插管前，要注意先把气管内的分泌物清除干净。
插管时动作应轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血而堵塞插管。
3用止血钳夹捏剑突柄的目的是为了减少剪口的出血，此过程不可忽略。
剪断剑突骨柄的剪口不可过宽，因两侧均有血管通过，过多出血形成的血凝块会影响游离剑突的活动。
4 分离剑突背部的膈肌条时不能太向上，剪断剑突骨柄时剪口不可过深。
以免造成气胸。
尤其注意切勿伤及或剪断附于剑突背部的膈肌条。
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