微生物实验报告
微生物实验报告_显微镜
一、实验目的1. 掌握显微镜的基本操作方法。
2. 观察微生物的形态和结构。
3. 了解微生物在不同环境下的生长状况。
二、实验原理显微镜是一种利用光学原理放大微小物体的仪器。
通过显微镜，我们可以观察微生物的形态、结构、运动和生长状况，从而了解微生物的生物学特性。
三、实验材料与仪器1. 材料：- 微生物培养液- 微生物纯培养物- 玻片、盖玻片、载玻片- 滴管、酒精灯、镊子2. 仪器：- 显微镜- 照相机（可选）四、实验步骤1. 拿出显微镜，调整光源和焦距，确保视野清晰。
2. 用滴管将微生物培养液滴在载玻片上，盖上盖玻片。
3. 将载玻片放置在显微镜的载物台上，调整焦距，观察微生物的形态和结构。
4. 用照相机记录微生物的图像（可选）。
5. 重复以上步骤，观察不同环境下的微生物生长状况。
五、实验结果与分析1. 观察到微生物的形态多样，包括球形、杆形、螺旋形等。
2. 观察到微生物的结构包括细胞壁、细胞膜、细胞质、细胞核等。
3. 观察到微生物在不同环境下的生长状况，如温度、pH值、营养物质等对微生物生长的影响。
六、实验结论1. 显微镜是观察微生物形态和结构的重要工具。
2. 微生物的形态和结构与其生物学特性密切相关。
3. 环境因素对微生物的生长具有重要影响。
七、注意事项1. 操作显微镜时要轻柔，避免损坏镜头。
2. 保持显微镜的清洁，避免污染。
3. 观察微生物时要保持耐心，仔细观察。
八、实验拓展1. 尝试观察其他微生物，如细菌、真菌、藻类等。
2. 研究微生物的生长规律和环境适应性。
3. 利用显微镜观察微生物的繁殖过程。
九、实验总结通过本次实验，我们掌握了显微镜的基本操作方法，观察了微生物的形态和结构，了解了微生物的生长规律和环境适应性。
实验过程中，我们深刻体会到显微镜在微生物学研究中的重要作用。
细菌培养实验报告模板(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉细菌培养的基本原理和方法。
2. 学习观察细菌的生长特征。
3. 掌握无菌技术操作，提高实验技能。
二、实验原理细菌是单细胞微生物，具有繁殖速度快、形态多样等特点。
在适宜的培养基和条件下，细菌可以生长繁殖，形成肉眼可见的菌落。
通过细菌培养，可以观察其生长特征，为后续研究提供基础。
三、实验材料1. 培养基：牛肉膏蛋白胨培养基、营养肉汤培养基等。
2. 细菌：金黄色葡萄球菌、大肠杆菌等。
3. 实验仪器：恒温培养箱、高压蒸汽灭菌器、移液器、无菌操作台等。
4. 实验试剂：无菌水、无菌棉签、无菌生理盐水等。
四、实验方法1. 培养基制备：按照说明书配制牛肉膏蛋白胨培养基和营养肉汤培养基，高压蒸汽灭菌后备用。
2. 细菌接种：将金黄色葡萄球菌和大肠杆菌分别接种于牛肉膏蛋白胨培养基和营养肉汤培养基中。
3. 恒温培养：将接种后的培养基放入恒温培养箱中，分别于37℃和30℃下培养24小时。
4. 观察记录：观察细菌在培养基上的生长情况，记录菌落形态、大小、颜色等特征。
5. 无菌技术操作：在无菌操作台中，进行接种、移液等操作，防止污染。
五、实验结果1. 金黄色葡萄球菌在牛肉膏蛋白胨培养基上生长良好，形成圆形、金黄色、表面光滑的菌落。
2. 大肠杆菌在营养肉汤培养基上生长良好，形成乳白色、浑浊的菌液。
六、实验分析1. 通过本次实验，掌握了细菌培养的基本原理和方法。
2. 观察到金黄色葡萄球菌和大肠杆菌在不同培养基和温度下的生长特征，为后续研究提供了基础。
3. 在实验过程中，注意无菌技术操作，防止污染。
七、实验讨论1. 细菌在不同培养基和温度下的生长情况有何差异？2. 如何提高细菌培养的效率？3. 在实验过程中，如何避免污染？八、实验总结通过本次细菌培养实验，我们了解了细菌的基本特征和生长规律，掌握了无菌技术操作，为后续研究奠定了基础。
在实验过程中，我们要注重细节，严格按照操作规程进行，确保实验结果的准确性。
微生物实验报告
一、实验目的1. 学习微生物分离纯化的基本方法。
2. 掌握微生物形态观察和菌落特征鉴定技术。
3. 培养微生物实验操作技能，提高对微生物学基本知识的理解。
二、实验原理微生物分离与鉴定是微生物学实验中的基本操作。
通过分离纯化，可以获得单一菌株，便于进行后续研究。
微生物鉴定则是根据微生物的形态特征、生理生化特性等，确定其种类。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：土壤样品、牛肉膏蛋白胨培养基、琼脂、无菌水、无菌试管、接种环、酒精灯、显微镜等。
2. 实验仪器：高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、无菌操作台等。
四、实验步骤1. 样品采集与处理（1）采集土壤样品，放入无菌试管中。
（2）用无菌水将土壤样品稀释10倍，制成土壤悬液。
2. 分离纯化（1）将土壤悬液取适量，涂布于牛肉膏蛋白胨琼脂平板上。
（2）将平板倒置放入恒温培养箱中，37℃培养24小时。
（3）观察菌落生长情况，挑取单个菌落，进行纯化培养。
3. 形态观察与菌落特征鉴定（1）将纯化后的菌株涂布于牛肉膏蛋白胨琼脂平板上，37℃培养24小时。
（2）观察菌落形态、颜色、大小、边缘等特征。
（3）将菌落置于显微镜下观察菌体形态。
4. 生理生化特性鉴定（1）根据菌落特征，选取疑似菌种进行生理生化试验。
（2）进行糖发酵试验、氧化酶试验、甲基红试验等。
（3）根据试验结果，确定菌种。
五、实验结果与分析1. 分离纯化经过多次挑取，成功分离出多个单菌落。
2. 形态观察与菌落特征鉴定观察发现，分离出的菌株菌落呈圆形，表面光滑，边缘整齐，颜色为白色。
3. 生理生化特性鉴定经过糖发酵试验、氧化酶试验、甲基红试验等，确定分离出的菌株为乳酸菌。
六、实验总结本次实验成功分离纯化了土壤样品中的乳酸菌，并通过形态观察、菌落特征鉴定和生理生化特性鉴定，确定了其种类。
在实验过程中，掌握了微生物分离纯化的基本方法，提高了微生物实验操作技能，加深了对微生物学基本知识的理解。
七、注意事项1. 实验操作过程中，严格遵守无菌操作规程，避免污染。
微生物的分布实验报告
微生物的分布实验报告篇一：微生物实验报告微生物实验报告一环境中的微生物的检测和分离纯化实验目的：1 学习并掌握无菌操作技术原理和方法2 学习用稀释涂布法分离微生物3 认识微生物存在的普遍性，体会无菌操作的原理实验材料：1 土样溶液0.5ml，无菌生理盐水2 取液器(1000μL一支，100μL一支)，培养箱，培养皿(12个)，无菌有帽试管，三角瓶，无菌涂棒，接种环，1000μL无菌吸头若干，记号笔，酒精灯，火柴，试管架实验步骤：A培养基的制备(已提前制备好)B周围环境中的微生物的检测，在牛肉膏蛋白胨培养基平板上作如下实验1 取三个平板，用100μL的取液器分别吸取100μL的河水、豆浆、豆奶，均匀加在三个培养基上，并用无菌玻璃涂棒涂布均匀(要多涂几次，时间约1-2分钟，使细菌均匀分布)。
2 再取三个平板，三个同学分别用手指(未洗过)在培养基上涂抹几秒钟，一个同学对应一个平板。
3 再取一个平板，其中一个同学将手用肥皂洗过后，再在培养基上涂抹。
4 再取一个平板，打开皿盖，一个同学对着培养基咳嗽，使口腔中的气流和飞沫落到培养基上。
5 再取一个平板，打开皿盖，在空气中放置10min左右，关上皿盖。
6 将上述9个平板放置在35℃的培养箱中培养24h。
C土壤中分离微生物1 采土样，制备土壤稀释液(已准备好)2 取三个平板，每个培养基上用取液器添加100μL的土壤稀释液，并用无菌玻璃涂棒涂布均匀(要多涂几次，时间约1-2分钟，使细菌均匀分布)。
3 将平板依旧放在35℃的培养箱中培养24h。
D菌落计数培养24h后，取出培养平板，算出每个平板上的菌落数量。
其中，土样中的微生物含量可用以下式子计算土壤中的细菌含量(个/g土壤)=菌落平均数×10×稀释倍数实验结果及数据：实验结果如附图。
开盖10min 手指直接按压手指直接按压手指直接按压1号的手指经肥皂洗后按压对着培养基咳嗽豆奶河水土壤溶液土壤溶液豆浆土壤溶液实验讨论及感想：1根据你对周围环境中微生物存在的观察，你认为无菌操作要注意什么？在进行无菌操作的时候，应该要注意始终在明火旁边操作，既不能离得太远，也不能离得太近。
实验报告微生物的分布
一、实验目的1. 了解微生物在自然界中的分布情况；2. 掌握微生物采集、分离、培养的基本方法；3. 培养无菌操作意识，提高实验技能。
二、实验原理微生物是自然界中广泛分布的一类生物，它们在土壤、水体、空气、生物体等多种环境中均有存在。
微生物的分布与各种环境因素密切相关，如温度、湿度、pH值、营养物质等。
本实验通过采集不同环境中的微生物样本，进行分离、培养和观察，了解微生物的分布规律。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：土壤、水体、空气、植物表面等；2. 仪器：无菌操作台、无菌棉签、无菌试管、培养皿、显微镜、恒温培养箱等；3. 试剂：无菌生理盐水、营养琼脂、无菌水等。
四、实验步骤1. 微生物采集（1）土壤样品：用无菌铲子取适量土壤，放入无菌试管中；（2）水体样品：用无菌吸管吸取水体样品，放入无菌试管中；（3）空气样品：将无菌棉签在无菌生理盐水中蘸湿，在空气中滚动，收集空气中的微生物；（4）植物表面样品：用无菌棉签在植物表面滚动，收集植物表面的微生物。
2. 微生物分离与培养（1）将采集的样品进行适当稀释；（2）将稀释后的样品涂布在营养琼脂平板上；（3）将平板倒置放入恒温培养箱中培养。
3. 微生物观察（1）观察培养皿上生长的微生物菌落；（2）用无菌接种环挑取菌落，进行纯培养；（3）在显微镜下观察微生物的形态。
五、实验结果与分析1. 土壤样品：在培养皿上观察到较多的微生物菌落，菌落形态多样，有圆形、椭圆形、不规则形等；2. 水体样品：培养皿上菌落较少，菌落形态与土壤样品相似；3. 空气样品：培养皿上菌落较少，菌落形态与土壤样品相似；4. 植物表面样品：培养皿上菌落较多，菌落形态与土壤样品相似。
实验结果表明，微生物在自然界中广泛分布，土壤、水体、空气、植物表面等环境中均存在大量的微生物。
微生物的形态和数量与采集环境有关，土壤中的微生物种类和数量最多，其次是植物表面和水体，空气中微生物数量最少。
六、实验结论1. 微生物在自然界中广泛分布，与各种环境因素密切相关；2. 通过微生物的采集、分离、培养和观察，可以了解微生物的分布规律；3. 无菌操作在微生物实验中至关重要，可以有效防止污染。
微生物的实验报告
一、实验目的1. 学习微生物分离和纯化的基本方法。
2. 掌握微生物形态观察和简单生理生化试验的方法。
3. 熟悉微生物鉴定的一般程序。
二、实验原理微生物分离与鉴定是微生物学的基本实验技术。
通过纯化培养，可以得到单一种类的微生物，便于对其进行观察和研究。
微生物鉴定则是对纯化后的微生物进行分类和命名。
三、实验材料与仪器1. 材料：土壤样品、牛肉膏蛋白胨培养基、琼脂、生理盐水、革兰氏染色液、显微镜、酒精灯、接种环等。
2. 仪器：高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、酒精灯、显微镜等。
四、实验步骤1. 微生物分离（1）土壤样品采集：取适量土壤样品，置于无菌试管中。
（2）土壤样品处理：将土壤样品加入适量的生理盐水，振荡混匀，制成土壤悬液。
（3）稀释涂布平板法：将土壤悬液进行10倍系列稀释，取适量稀释液涂布于牛肉膏蛋白胨琼脂平板上，37℃恒温培养24小时。
（4）挑取单菌落：用接种环挑取单个菌落，转接至新的牛肉膏蛋白胨琼脂平板上，37℃恒温培养24小时。
2. 微生物形态观察（1）革兰氏染色：将纯化后的菌落涂片，进行革兰氏染色，观察菌体的形态和染色特性。
（2）显微镜观察：将菌落制成临时涂片，在显微镜下观察菌体的形态、大小、排列等特征。
3. 微生物生理生化试验（1）糖发酵试验：将纯化后的菌落接种于糖发酵管中，37℃恒温培养24小时，观察菌落是否产生气泡。
（2）V-P试验：将纯化后的菌落接种于V-P试剂中，37℃恒温培养24小时，观察菌落是否产生红色沉淀。
4. 微生物鉴定根据微生物的形态、生理生化特征，结合已知的微生物分类学知识，对纯化后的微生物进行鉴定。
五、实验结果与分析1. 微生物分离：成功分离出多个单菌落，菌落呈圆形、光滑、湿润、乳白色。
2. 微生物形态观察：革兰氏染色结果显示，菌体为革兰氏阳性菌，呈杆状。
3. 微生物生理生化试验：糖发酵试验结果显示，该菌能发酵葡萄糖，产生气泡；V-P试验结果显示，该菌能产生红色沉淀。
4. 微生物鉴定：根据以上实验结果，该菌为葡萄球菌属。
微生物大小与数量的测定实验报告
微生物大小与数量的测定实验报告一、实验目的本次实验旨在掌握使用显微镜测量微生物大小的方法，以及学会运用血球计数板对微生物数量进行测定。
通过实验操作和数据处理，深入了解微生物的形态特征和种群密度，为后续的微生物学研究打下基础。
二、实验原理（一）微生物大小的测定微生物细胞的大小是微生物的基本特征之一。
使用显微镜测微尺可以较为准确地测量微生物细胞的长度、宽度和直径等参数。
显微镜测微尺包括目镜测微尺和镜台测微尺。
目镜测微尺是一块可放在目镜内的圆形小玻片，上面刻有刻度；镜台测微尺是一块特制的载玻片，中央有精确的刻度，用于校正目镜测微尺。
（二）微生物数量的测定血球计数板是一种专门用于计算较大单细胞微生物数量的工具。
它由一块特制的厚玻璃片制成，玻片上有四个槽构成三个平台。
中间的平台又被一短横槽隔成两半，每半边上面各刻有一个方格网。
方格网上刻有 9 个大方格，其中只有中间的一个大方格为计数室。
计数室的刻度一般有两种规格，一种是一个大方格分成 16 个中方格，而每个中方格又分成 25 个小方格；另一种是一个大方格分成 25 个中方格，而每个中方格又分成 16 个小方格。
但无论哪种规格，每个大方格的边长均为 1 毫米，盖上盖玻片后，计数室的容积是一定的。
因此，在一定体积的菌液中，通过计算微生物在计数室中的数量，就可以换算出菌液中微生物的数量。
三、实验材料与仪器（一）材料枯草芽孢杆菌、酿酒酵母的菌悬液。
（二）仪器显微镜、目镜测微尺、镜台测微尺、血球计数板、盖玻片、滴管、擦镜纸、吸水纸等。
四、实验步骤（一）微生物大小的测定1、安装目镜测微尺将目镜测微尺装入目镜的隔板上，注意有刻度的一面朝下。
2、校正目镜测微尺（1）将镜台测微尺置于载物台上，先用低倍镜观察，找到镜台测微尺的刻度线。
（2）移动镜台测微尺，使镜台测微尺与目镜测微尺的刻度线平行，并使两者的“0”刻度线重合。
（3）换用高倍镜观察，找出两尺再次重合的刻度线。
分别记录目镜测微尺和镜台测微尺在重合线段内各自的格数。
微生物学实验报告
微生物学实验报告微生物学实验报告引言微生物学是一门研究微小生物的科学，它涉及到微生物的分类、结构、生理、生态以及与人类和环境的相互作用等方面。
本实验旨在通过观察和分析微生物的生长特性，了解微生物的繁殖规律和影响因素。
实验方法1. 实验材料准备我们选择了常见的细菌和酵母菌作为实验材料。
实验中使用的培养基包括富含营养的琼脂培养基和含有特定营养物质的选择性培养基。
实验器材包括培养皿、试管、移液管等。
2. 实验步骤首先，我们将培养皿分成不同的区域，分别涂抹不同的微生物样本。
然后，将培养皿放入恒温培养箱中，控制温度和湿度，观察微生物在不同条件下的生长情况。
接下来，我们将微生物样本接种到含有特定营养物质的选择性培养基上，观察其生长情况，以了解微生物对不同营养物质的需求。
实验结果在琼脂培养基上，我们观察到细菌和酵母菌在适宜的温度和湿度条件下迅速生长。
细菌呈现出白色或黄色的菌落，而酵母菌则呈现出乳白色的菌落。
在选择性培养基上，我们发现不同微生物对营养物质的需求有所不同。
例如，某些细菌只能在含有特定氨基酸的培养基上生长，而在其他培养基上则无法繁殖。
讨论与分析微生物的生长受到多种因素的影响，包括温度、湿度、营养物质等。
在实验中，我们控制了温度和湿度，使其处于适宜的范围，从而促进微生物的生长。
此外，我们还观察到微生物对不同营养物质的需求不同，这与微生物的代谢特性有关。
不同微生物的代谢途径和需求差异导致它们对不同营养物质的利用能力不同。
微生物的快速繁殖和适应性使其在自然界中起到重要的作用。
它们参与了有机物质的分解和循环，维持了生态系统的平衡。
此外，微生物还可以用于生物工程和医学领域。
例如，利用细菌进行基因工程，可以生产出许多重要的药物和化学物质。
然而，微生物也可能对人类和环境造成危害。
某些微生物会引起传染病，给人类的健康带来威胁。
此外，微生物还可能对环境产生负面影响，例如导致水体富营养化和生态系统的破坏。
结论通过本次实验，我们深入了解了微生物的生长特性和影响因素。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
微生物实验报告实习报告实习名称食品微生物检验实习系别生物与化学工程系年级专业12级食品科学与工程专业学生姓名某某某指导老师王老师、黄老师、李老师X X 学校2015 年1 月13日1、实习时间、地点和实习单位2、实习目的通过食品微生物检验实习，掌握培养基的配制、包扎及灭菌；正确采集样品并对样品进行稀释、滴加、培养；菌落观察、鉴定与计数；数据处理、分析等方面内容，并结合生产和科研技术的发展，开设较高的综合性实验为主，运用综合的实验方、实验手段对我们的知识、能力、素质形成综合的培养。
为我们今后从事各种与食品相关的工作打下基础。
3、实习过程概述3.1参加认识实习动员大会2014年11月8日上午由黄大川、王瑶琼2位老师召开了微生物实习动员大会。
会上，老师们说明了实习目的、内容、时间、地点，着重强调了此次实习的自主性和和注意事项，另外还应遵守实验室的规章制度，保持高度的安全意识。
3.2实习内容一、腐乳中细菌含量的检测1、实验材料和设备1ml移液管 5支,1000ml、500ml、100ml的烧杯各1、1、2个,250ml锥形瓶 3个，100ml量筒1个，研钵1个,滴定管1支,试管5支,试管架1个，玻璃棒1根,培养皿 12个,涂布器1个,洗耳球1个,酒精灯1盏,电磁炉1个，天平1台,药匙1个，pH试纸，标签纸1张，纱布、棉花、线、报纸若干，高压蒸汽灭菌锅，恒温培养箱，超净工作台。
2、牛肉膏蛋白胨培养基的配制配方：牛肉膏3g 蛋白胨10g NaCl 5g 琼脂15—20g 水1000ml pH 7．4—7．6步骤：称量→溶化→调pH→过滤→分装→加塞→包扎→灭菌→倒平皿→接种→培养3、样品的稀释①预处理：在天平上称取25g 样品，置于研钵中，然后加50ml无菌水在无菌室里研磨，磨碎后再加175mL 无菌水于研钵中，最后转至250ml锥形瓶中，充分振摇后，制成1:10 的样液。
②十倍稀释：用1mL 灭菌移液管吸取1:10 样液1mL ，沿管壁缓缓注人盛有9 mL无菌水的灭菌试管中（注意吸管不要触及稀释液面），充分振荡试管使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。
接着用另一支吸管按上述操作重复，依次制成10倍梯度系列的样品匀液。
每稀释1次，换用1支1mL灭菌移液管。
从制备样品匀液至样品接种完毕，全过程不得超过15 min 。
4、倒平皿前准备开启无菌工作台，先紫外线灭菌，30min后再进入。
（研钵用酒精擦拭后，放在无菌室进行紫外灭菌）5、倒平皿倒入的培养液要到培养皿高度三分之一的位置，至少倒10个培养皿。
倒完培养皿后，将其放在一旁等待冷却凝固。
6、接种根据对样品污染状况的估计，选择3 个适宜稀释度的样品匀液，根据腐乳的污染情况估计我们选用了10-11、10-12、10-13 三个稀释度，进行10倍稀释时，吸取0.5 mL 样品匀液于无菌培养皿内，每个稀释度做了3个平皿。
同时，留1个培养皿作空白对照。
（注：每个稀释度做三个培养皿是为了降低误差，使结果更准确，因为我们用的是市售型腐乳，污染情况较严重，所以选用了这三个稀释度）7、渗透将接种后的培养皿放置30min，使样液渗入培养基。
8 、倒置培养将渗透好了的培养基翻过来，放在温度为36±1℃的恒温箱中培养 24±1h。
9、实验结果选取菌落数在30 CFU～300CFU 之间，无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数，低于30 CFU 的平板记录具体菌落数，大于300 CFU 的可记录为多不可计。
每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。
二、腐乳中霉菌含量的检测1、实验材料和设备研钵1个，100mL量筒1个，滴定管1支，1 mL移液管6支，试管5支，玻璃棒1根，培养皿12个，500mL烧杯一个，涂布器1个，洗耳球1个，药匙1个，试管架1个，酒精灯1盏，电磁炉1个，天平1台，pH试纸，250mL锥形瓶3个，标签纸1张，纱布、棉花、线、报纸若干，高压蒸汽灭菌锅，恒温培养箱，超净工作台。
察氏培养基的配制配方：硝酸钠3g 磷酸氢二钾1g MgSO4·7H2O 0.5g 氯化钾0.5g 硫酸亚铁0.01g 蔗糖30g 琼脂20g 蒸馏水1000mL步骤：称量→溶化→调pH→过滤→分装→加塞→包扎→灭菌→倒平皿→接种→培养3、4、5跟细菌含量的检测步骤一样6、接种根据对样品污染状况的估计，选择3 个适宜稀释度的样品匀液，因为霉菌的菌落较大，所以我们选择了10-11、10-12、10-13 三个稀释度，进行10倍稀释时，吸取0.5 mL 样品匀液于无菌培养皿内，每个稀释度做了3个平皿。
同时，留1个培养皿作空白对照。
（注：每个稀释度做三个培养皿是为了降低误差，使结果更准确）7、渗透将接种后的培养皿放置30min，使样液渗入培养基。
8 、倒置培养将渗透好了的培养基翻过来，放在温度为27±1℃的恒温箱中培养5天。
9、实验记录24小时记录一次数据，连续5天。
10、实验结果1、实验材料和设备研钵1个，100mL量筒1个，滴定管1支，1 mL移液管5支，试管5支，玻璃棒1根，培养皿12个，500mL烧杯一个，涂布器1个，洗耳球1个，药匙1个，试管架1个，酒精灯1盏，电磁炉1个，天平1台，pH试纸，250mL锥形瓶3个，铁架台1个，漏斗1个，标签纸1张，纱布、棉花、线、报纸若干，高压蒸汽灭菌锅，恒温培养箱，超净工作台。
2、马铃薯葡萄糖琼脂培养基的配制配方：马铃薯200g 葡萄糖20g 琼脂15~20g 蒸馏水1000ml 自然pH 步骤：先洗净去皮,再称取200g马铃薯切成小块，加水煮烂（煮沸20—30分钟，能被玻璃棒戳破即可），用纱布过滤，加热，再据实际实验需要加琼脂，继续加热搅拌混匀，待琼脂溶解完后，加入葡萄糖，搅拌均匀，稍冷却后再补足水分至1000ml，分装锥形瓶，加塞、包扎，（121℃）灭菌20分钟左右后取出。
3、4、5跟细菌含量的检测步骤一样6、接种据样品污染估计，选择3 个适宜稀释度的样品匀液，我们选择了10-11、10-12、10-13三个稀释度，进行10倍稀释时，吸取0.5 mL 样品匀液于无菌培养皿内，每个稀释度做了3个平皿。
同时，留1个培养皿作空白对照。
（注：每个稀释度做三个培养皿是为了降低误差，使结果更准确）7、渗透将接种后的培养皿放置30min，使样液渗入培养基。
8 、倒置培养将渗透好了的培养基翻过来，放在温度为28±1℃的恒温箱中培养5天。
9、观察计数24小时记录一次数据，连续记录5天。
10、实验结果四、腐乳中大肠菌群有无的检测1、实验材料和设备研钵1个，100mL量筒1个，滴定管1支，1 mL移液管5支，试管5支，玻璃棒1根，500mL烧杯一个，培养皿13个，涂布器1个，洗耳球1个，药匙1个，酒精灯1盏，试管架1个，电磁炉1个，天平1台，pH试纸，250mL锥形瓶3个，标签纸1张，纱布、棉花、线、报纸若干，高压蒸汽灭菌锅，恒温培养箱，超净工作台。
2、实验流程稀3、乳糖胆盐发酵管的配制配方：蛋白胨20g 乳糖10g 猪胆盐5g 0.04%溴甲酚紫水溶液25mL 蒸馏水1000mL pH7.4制法：将蛋白胨、乳糖及猪胆盐溶于水中，校正pH，加入指示剂，然后往每支试管中加10ml左右的乳糖发酵液，再放入1支杜氏小管，我们组共装了4支，最后，加塞、包扎放入高压蒸汽锅115℃灭菌15min。
4、接种将灭完菌的乳糖胆盐发酵管放到无菌室内冷却降温，等温度降到室温时，用移液管吸取0.5ml样液于乳糖胆盐发酵管中，然后混匀加塞。
5、培养将接完菌的乳糖胆盐发酵管放在37℃的恒温箱中培养，时间为24小时。
6、观察我们的乳糖胆盐发酵管中的杜氏小管没有浮起来，说明市售腐乳中没有大肠菌群。
4.思考题（1）用滤膜法检测大肠菌群有什么优点？答：滤膜法的优点:⑴与直接法比较可以检测大量的样品。
⑵浓缩效应使微生物的检测结果提高。
⑶带有菌落的滤膜可作为检测的永久记录存档。
⑷可见的菌落与样品量直接对应，得出定量结果。
（2）检查样品中的大肠菌群有何意义？答：大肠菌群主要包括肠杆菌科中的埃希氏菌属、柠檬酸细菌属、克雷伯氏菌属和肠杆菌属。
这些属的细菌均来自于人和温血动物的肠道，需氧与兼性厌氧。
不形成芽泡，在35—39℃条件下，48h内能发酵乳糖产酸产气，革兰氏阴性。
大肠菌群中以埃希氏菌属为主，埃希氏菌属被俗称为典型大肠杆菌。
大肠菌群都是直接或间接地来自人和温血动物的粪便。
本群中典型大肠杆菌以外的菌属，除直接来自粪便外，也可能来自典型大肠杆菌排出体外7—30 d后在环境中的变异。
所以食品中检出大肠茵群，表示食品受到人和温血动物的粪使污染，其中典型大肠杆菌为粪便近期污染，其他菌属则可能为粪便的陈旧日污染。
大肠菌群最初作为肠道致病菌而被用于水质检验，现已被我国和国外许多国家广泛用做食品卫生质量检验的指示菌。
大肠菌群的食品卫生学意义是作为食品被粪便污染的指示菌，食品中粪便含量只要达到10-3mg/kg即可检出大肠菌群。
肠道致病菌如沙门氏菌属和志贺氏菌属是引起食物中毒的重要致病菌、然而对食品经常进行逐批逐件地检验又不可能，鉴于大肠茵群与肠道致病菌来源相同，而且一般在外环境中生存时间也与主要肠道病原茵一致，所以大肠茵群的另一个重要食品卫生学意义是作为肠道病原菌污染食品的指示菌。
当然食品中检出大肠菌群，只能说明有肠道病原茵存在的可能性，两者并非一定平行存在，但只要食品中检出大肠菌群，则说明有粪便污染，即使无病原菌．该食品仍可被认为是不卫生的。
5.实验心得这次实验还算圆满成功，在实验过程中我们遇到很多的问题，我们没有能够很好及时的处理，还有一些注意事项我们没有意识到，所以在以后的实验中要做好各种准备，不能手忙脚乱，我们要认真对待实验，不能马虎，在以后的试验中遇到不懂的要你那够自己很好的处理，还有一些细节我们要注意，比如稀释的时候各种小细节都直接影响实验的结果。
我们不足的地方需要不断的改进，在以后的实验学习难免遇到，所以一定要养成严谨的好习惯。
、在实验过程中，我们要注意灭菌和无菌操作的重要性，尽量避免杂菌污染，导致实验误差每次实验结束时，都需要整理好自己所负责的台面卫生，确保实验室的安全整洁。
搞好实验室的卫生。
养成好习惯。
这次的微生物课程实习，让我学到了很多，比如说怎样设计实验方案以及团队精神的重要性，而且，这次的课程实习，让我对自己的实验动手能力有了一个新的认识和提高，能更深刻的认识到自己实验过程中不足的一方面，在以后的学习中一定注意这方面的培养重视！认真对待实验。
总之这次试验不仅让我学习到了知识，还学习到了怎么和自己的团队一起完成一项任务，怎样在一起合作。
总之收货很大。
11。