apoB多态性检测的方法(包括VNTR,Eco和MSP酶切多态性)
基因多态性的检测方法

基因多态性的检测方法一、直接方法1.目标基因测序:通过对目标基因进行测序,可以直接得到其等位基因的序列信息。
目前,高通量测序技术的发展使得测序成为一种常用的基因多态性检测方法。
2.杂交技术:杂交技术可以用于检测单核苷酸多态性(SNP)和小片段插入/缺失等变异。
常用的方法包括限制性片段长度多态性(RFLP)和串联重复片段多态性(VNTR)等。
3.聚合酶链反应(PCR):PCR可以通过扩增目标片段的方法,检测基因多态性。
例如,引物在目标序列上的配对使得PCR扩增产物的长度与目标基因的等位基因有关。
通过测定扩增产物的长度变化,可以确定基因多态性。
4.克隆测序:克隆测序是一种将目标基因克隆到载体中,并对克隆的DNA进行测序的方法。
这种技术可以用于检测较大的插入/缺失变异以及基因拷贝数变异等。
二、间接方法1.单核苷酸多态性(SNP)芯片:SNP芯片是一种高通量并行检测SNP 的技术。
它通过固定在芯片上的特异性探针与待测样品中的SNP位点进行杂交,然后使用荧光信号检测方法来确定不同等位基因的存在情况。
2.DNA芯片:DNA芯片可以广泛用于基因多态性的检测。
它可以同时测定数百甚至数千个基因,快速、准确地检测多个等位基因的存在情况。
3.高分辨率融解曲线分析:高分辨率融解曲线分析可以用来区分等位基因之间的序列差异。
该方法通过双链DNA在升温过程中解旋变性的温度差异,来分析目标序列中的等位基因。
4. 二代测序技术:二代测序技术(如Illumina和Ion Torrent)基于多组重叠的小片段测序,可以用于高通量的基因多态性检测。
它可以同时测定数百万个SNP位点,识别多个等位基因的存在情况。
综上所述,基因多态性的检测方法涵盖了直接方法和间接方法。
这些方法可以用于检测单核苷酸多态性、插入/缺失变异、基因拷贝数变异等不同类型的基因多态性。
随着技术的不断发展,基因多态性的检测方法将变得更加高效、准确和经济。
如何用PCR法检测基因的多态性

如何用PCR法检测基因的多态性PCR法(聚合酶链反应法)是一种广泛应用于分子生物学领域的基因检测技术。
它能够在短时间内扩增特定序列的DNA片段,从而实现对基因多态性的检测。
以下是使用PCR法检测基因多态性的步骤:1.设计引物首先,需要根据目标基因的序列设计引物(寡核苷酸序列)。
引物一般包括一对前、后引物,它们各自与目标序列的两侧互补配对。
引物的设计应考虑到目标基因区域的多态性,以确保引物与所有可能的变体都能配对。
2.提取DNA从目标生物体的组织样本(如血液或组织)中提取DNA。
DNA提取方法可以选择物理法或化学法,如离心法和盐析法等。
3.PCR反应将提取到的DNA作为PCR反应的模板,加入引物、四个核苷酸和聚合酶等反应物,进行PCR反应。
PCR反应由多个循环组成,每个循环包括DNA的变性、引物的结合和DNA的扩增。
4.凝胶电泳分析将PCR反应产生的扩增产物进行凝胶电泳分析。
凝胶电泳是一种将DNA分子根据大小分离的方法。
将PCR产物加载到琼脂糖凝胶槽中,然后通过电场进行电泳。
根据其大小,DNA片段将在凝胶中移动到不同的位置。
通过与大小已知的DNA分子比较,可以确定PCR产物的大小。
5.基因型分析通过比较PCR产物的大小,可以检测到基因的多态性。
在不同基因型的个体中,PCR产物的大小可能会有所不同。
可以将PCR产物分成不同的等级,以进行基因型分析。
6.数据分析最后,对PCR结果进行数据分析和解释。
根据PCR产物的大小和基因型等信息,可以确定个体的基因型。
如果一些基因型与一种特定的表型相关联,那么可以推测该基因是多态的,并且可能与该表型相关。
除了上述步骤,还可以通过引入序列特异性的限制酶切位点、单特异性引物扩增等方法,进一步确定基因多态性。
此外,PCR法还可以与其他技术如测序、SNP分析等相结合,以获得更详细的多态性信息。
总之,PCR法是一种快速、敏感且广泛应用的检测基因多态性的方法。
通过合理的引物设计、PCR反应、凝胶电泳和数据分析等步骤,可以确定基因的多态性及其与表型相关性,为遗传研究和疾病诊断等领域提供重要信息。
人类遗传学中多态性位点鉴定方法

人类遗传学中多态性位点鉴定方法人类遗传学是研究人类基因组中的遗传变异并探索其对个体表型和疾病形成的影响的学科。
其中,多态性位点(polymorphic loci)鉴定方法是人类遗传学研究中的重要工具之一。
本文将介绍多态性位点的概念及其在人类遗传学中的应用,包括多态性位点的鉴定方法、应用领域和意义。
多态性位点是指基因组中存在的具有多种等位基因(alleles)的位点。
这些位点上的等位基因频率在人群中存在显著差异,即具有多态性。
多态性位点的发现和鉴定可以用于遗传多样性的研究、群体遗传结构的分析、人类进化的推断以及疾病易感性的评估等方面。
多态性位点的鉴定方法主要有遗传标记法、DNA测序法和基因芯片技术。
遗传标记法是通过利用已知的多态性位点进行间接鉴定,常用的方法包括限制性片段长度多态性(Restriction Fragment Length Polymorphism,RFLP)、微卫星标记法(Microsatellite Marker)和单核苷酸多态性(Single Nucleotide Polymorphism,SNP)等。
这些方法通过PCR扩增等技术手段,测定位点上等位基因的特定序列或长度,从而实现位点的鉴定。
DNA测序法是直接测定多态性位点的等位基因序列,其中Sanger测序法和下一代测序技术是最常用的方法。
Sanger测序法是通过链终止法将DNA片段逐个碱基测序,并最终确定等位基因序列。
下一代测序技术包括Illumina测序、Ion Torrent 测序和454测序等,具有高通量、高灵敏度和低成本等优点,广泛应用于多态性位点的鉴定与研究。
基因芯片技术是通过将大量特异性探针固定在芯片表面,检测样品中目标序列的方法。
其中,DNA芯片和SNP芯片是最常用的两种类型。
DNA芯片通过比较样品与探针之间的杂交情况,从而确定目标序列的等位基因分布情况。
SNP芯片利用探针固定在芯片上的SNP位点,通过鉴定样品中SNP位点上的等位基因,实现多态性位点的鉴定。
研究生实验PCR检测apoB基因多态性(1)

精品课件
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(一)原理
PCR是在模板DNA、引物和四种脱氧核
苷酸等存在的情况下,DNA聚合酶依赖 的酶促合成反应,整个扩增过程分三步。
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变性:加热,模板DNA形成两条单链 退火:降温,模板单链DNA与引物配对
Mg2+有效浓度 如果扩增产物或效率不理想,要注意调整 Mg2+浓度
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精品课件
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(三) PCR反应条件
1.
PCR循环的温度和时间(变性、退火、延伸)
2.
PCR循环的次数和平台效应
精品课件
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温度和时间
(1)变性温度:94-95℃
Templete:GC比例高、长度很长,则变性时间↑
(2)退火:温度越高,扩增特异性越好
(2)已有商品化的混合液,终浓度一般为20-200umol/L, 高浓度dNTPs易产生错误掺入,而浓度太低,势必降低反 应物的产量。
注意:不稳定,保存时间长会失效
精品课件
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5. 10×PCR反应buffer
(1) 250~500mmol/L KCl; (2) 100~500mmol/LTris-HAC (pH8.4); (3) 15~20mmol/L MgCl2(对Taq酶的活性影响很大,
如:GGGTCGATTCCTACCCATGC
注意减少Primer间互补序列,导致2个Primer形成dimer ,
一般不要超过 3个互补bp
如:CCCATGC
ATGGAGTC
::::
::::
GGGTCTA
TCAGTAAGC
农村长寿人群ApoB基因VNTR多态性与行为生活方式的交互作用研究

a n d b e h a v i o r l i f e s t y l e i n ur r a l p o p u l a t i o n o f Wu y i . Me ho t d s A s a mp l i n g s u  ̄e y a n d p h y s i c a l e x a mi n a t i o n we r e c o n d u c t e d a mo n g l o n g e v i t y a n d c o n t r o l p o p u l a t i o n wi t h a t o t l a o f 3 46 r e s i d e n t s . Ge n o mi c DNA w a s e x t r a c t e d a n d u s e d t o d e t e c t p o l y mo r p h i s ms o f 3 VNTR o f t h e Ap o B
基因多态性的检测方法

基因多态性的检测方法基因多态性指的是一个基因的表现型可以在个体之间或同一物种的不同个体之间存在多种变异形式的特点。
这些基因变异可能与遗传疾病的发生风险、药物反应差异、环境适应能力以及其他生物学特征有关。
因此,基因多态性的检测对于了解疾病风险、个体差异以及定制个体化治疗方案非常重要。
下面介绍一些主要的基因多态性检测方法:1. 基因测序(Sequencing)基因测序是一种检测细胞或个体基因组DNA序列的方法,可用于鉴定基因多态性。
最常用的方法是Sanger测序和高通量测序技术,如Illumina测序、Ion Torrent测序等。
这些技术能够高效、准确地测定基因组DNA序列,找出基因中各种不同的多态性位点(Single Nucleotide Polymorphisms,SNPs)。
2. 基因芯片(Microarray)基因芯片是一种高通量并行检测技术,可以在同一基因芯片上同时测定多个基因的多态性。
基因芯片是在玻璃片或硅芯片上固定着大量的DNA探针,这些探针可以与待测样品中的DNA特异性结合,从而测定目标基因的多态性。
通常,通过比较样本与已知探针的结合特性,可以确定待测基因的多态性。
3. 聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction,PCR)PCR是一种快速复制DNA片段的方法,在基因多态性检测中广泛应用。
PCR可以选择性地扩增DNA片段,使其能够更容易进行后续分析。
对于基因多态性检测,PCR常用于扩增特定位点的基因DNA片段,并通过电泳或DNA测序等方法检测DNA的多态性。
4. 串联重复序列分析(Tandem Repeat Analysis)在人类基因组中,一些位点的DNA序列可能会重复出现多次,这种重复的DNA序列被称为串联重复序列。
了解串联重复序列的变异形式可以提供关于个体间遗传差异的信息。
串联重复序列分析可以通过PCR扩增、电泳、测序等方法来检测和分析串联重复序列的多态性。
检测基因多态性的方法

检测基因多态性的方法基因多态性是指一个基因在个体或种群中存在两个或更多的等位基因,并且这些等位基因的频率大于1%。
基因多态性在人类的特征和疾病的研究中具有重要意义,因为它可以帮助我们了解基因对特定特征和疾病的贡献程度以及个体对药物治疗的反应程度。
下面将介绍几种常见的基因多态性检测方法。
1.PCR-RFLP(聚合酶链反应限制性片段长度多态性)PCR-RFLP是一种基于聚合酶链反应(PCR)和限制性酶切的技术。
首先,通过PCR扩增目标DNA区域,然后使用限制性内切酶切割PCR产物。
由于不同的等位基因可能在限制性酶切位点处有不同的序列,因此切割后的片段长度也会不同。
通过电泳分离不同长度的片段后,可以通过比较不同样本的片段模式来确定等位基因型。
2.SNP(单核苷酸多态性)芯片3.测序技术传统的测序技术,如Sanger测序,已被广泛用于检测基因多态性。
通过PCR扩增目标基因区域并分离纯化PCR产物后,使用测序方法确定其序列。
通过与已知参考序列比较,可以确定等位基因的存在和基因型。
近年来,高通量测序技术的快速发展,如Illumina测序和Ion Torrent测序等,使得更大规模的基因多态性检测成为可能。
4.扩增片段长度多态性(AFLP)AFLP是一种通过PCR扩增特定DNA片段来检测多态性的方法。
它结合了限制性酶切和PCR扩增的原理。
首先,使用特定的限制性酶切割DNA样本,然后使用一对特定的引物进行PCR扩增。
由于每个DNA片段在PCR 扩增时会加上特定的引物顺带序列,因此PCR产物的长度会有差异。
通过电泳分离PCR产物后,可以通过比较不同样本的PCR产物长度模式来确定等位基因型。
5.基因芯片基因芯片是基因多态性检测的一种常用方法,特别适用于密集编码的基因区域。
基因芯片使用固定的DNA探针,通过和样品DNA杂交检测目标基因区域的多态性。
探针可以是PCR产物、cDNA或合成的oligonucleotide。
2015年研究生实验2 PCR检测apoB基因多态性

3. 模板DNA
(1)模板用量—— Plasmid:1ng, Chromosome:300-500 ng, 一般认为102~104拷贝模板就可以满足要求。 (2)可选DNA—— 质粒、 噬菌体、染色体DNA
注意: 防止交叉污染
4. dNTP
(1)四种脱氧核苷酸,基本原料,四种dNTP的浓度应相同, 其中任何一种浓度偏高或偏低,都会诱导聚合酶的错误掺 入,降低合成速度,过早终止反应 (2)已有商品化的混合液,终浓度一般为20-200umol/L,高 浓度dNTPs易产生错误掺入,而浓度太低,势必降低反应 物的产量。 注意:不稳定,保存时间长会失效
(6)引物的特异性:引物应与核酸序列数据库的其它序列无明显
同源性。
(7) Primer 5’未端可修饰、突变:
修饰:
如:32P、生物素、荧光素,不影响其效果
突变:
AGCTCCATGACCCAG 5'CGCTCCATGACCCAG 3'
注意:绝不可以在3'端进行上述改造 ∵DNA聚合酶是5'→3'聚合,若3'端改造→不能互补→不能延伸
引物设计软件
• • • • • • • Primer Premier 5.0 (自动搜索)* Oligo 6 (引物评价) Vector NTI Suit DNAsis Omiga DNAstar Primer 3 (在线服务)
2. Taq DNA聚合酶
水生栖热菌(thermus aquaticus,Taq)的DNA聚合酶,其特点有: ① 5’3’DNA聚合酶活性; ② 无3’5’外切酶活性,因此无校正功能; ③ 有良好的热稳定性, 最适聚合酶 温度72℃,选择72℃延伸; ④半衰期: 92.5℃ 130min 95℃ 40min 97.5℃ 5—6min 变性温度≤95℃,使其在整个扩增循环中保持足够活性; ⑤其活性对Mg2+浓度非常敏感; ⑥终浓度一般为:2.5U/100ul;
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3 点样时枪头下伸,点样孔内不能有气泡,缓冲液不
要太多 4 EB染料有毒(强致癌物),切勿用手接触,更不要
污染环境,胶勿乱扔
5 紫外线观察不要太久
(2)酶切反应时间:37℃ 终止反应。
12小时,最后65℃ 20min
(3)电泳检测
2% 琼脂糖凝胶电泳, 紫外灯下观察结果: MspI 酶切位点出现M+ M+ ( 含395 bp、 85 bp 2 条带) 、M+ M- ( 含480 bp、395 bp、85bp 3 条带) 和M- M- ( 含480 bp 1 条带) 3 种基因型。
四.操作步骤 (1人1孔)
琼脂糖凝胶板的制备(封板、梳子位置与高度、2%胶
3mm、凝固后拔梳)
倒缓冲液,加样(取基因组DNA样品液 8μl+2μl上样缓冲液(5×),混匀, 上样;)
电泳(恒压100V 1小时)
检测(紫外检测)
PCR扩增HBV基因产物的鉴定
取PCR产物20μl直接上样 1 2 3 4 5 6
GAATTC CTTAAG
EcoR I酶切位点多态性检测 PCR反应
(1)NA模板 Mix ddH2O
1μl
1.5 μl 15 μl 12.5 μ l
94℃ 5min(预变性)
总体积:
30 μl
94℃1min(变性) 58℃3min (复性+延伸) 72℃5min(续延伸) 4℃ 保存
• PCR反应体系 • PCR过程 • PCR的基本原理
apoB-VNTR PCR反应
(1)PCR反应体系 (2)PCR程序
引物
DNA模板 Mix ddH2O
1μl
1.5 μl 15 μl 12.5 μ l
94℃ 5min(预变性)
总体积:
30 μl
94℃60’’(变性) 60℃4min (复性+延伸) 60℃5min(续延伸) 4℃ 保存
上样缓冲液:EDTA—螯合镁,防止DNA降解;含有聚蔗 糖—防止样品扩散;迁移指示剂--溴酚蓝相当于0.5Kb大小;
二、实验目的
掌握琼脂糖凝胶电泳分离DNA的原理和方法
掌握检测DNA的实验方法
三、实验材料
基因组DNA 电泳仪,电泳槽,电子天平,移液器,枪头, 微波炉,紫外透射检测仪等。 琼脂糖,1XTAE电泳缓冲液,EB(溴化乙锭)或EB替代物, 6X加样缓冲液 :Ⅰ 0.25%溴酚蓝(指示剂,约500bp) , 0.25%二甲苯青 (指示剂,约5000bp) ,40%蔗糖水溶液 (比重加大,防止扩散); Ⅱ 0.25%溴酚蓝 ,0.25%二甲苯青 ,30%甘油水溶液
E- E-
E- E+
E+ E+
2.MspI 酶切位点多态性
对个体血脂影响不大,但由于它在CHD 人群 中出现频率较高,推测它与脂质代谢、CHD 发病之间存在某种联系
CCGG GGCC
MspI I酶切位点多态性检测 PCR反应
(1)PCR反应体系 (2)PCR程序
引物
DNA模板 Mix ddH2O
apoB基因多态性分析
apoB基因
• 独立位于2号染色体短臂末端(2p23),单 拷贝。基因全长43kb,含28个内含子和29 个外显子。 • 功能:载脂蛋白B(apoB)是VLDL、IDL 和LDL的主要结构蛋白, 其主要功能是转运 内源性胆固醇, 维持体内血胆固醇平衡。
• apoB基因在所有载脂蛋白基因中具有最明 显的多态性,其核苷酸变异有75处,其中 导致氨基酸变异的有54处。
一、实验原理(2)
电场强度:与电泳速度成正比;(DNA/蛋白质等大分子: 100-500V,即常压电泳;高压电泳:氨基酸/核苷酸等小分子) 溶液PH值:距等电点越远,净电荷越多,则速度越快; 离子强度:越低则带电物质的速度越快。
DNA分子量:越小则越快;
DNA构象:超螺旋>线性>开环(质粒) 胶浓度:越低则速度越快 TAE 缓冲液:超螺旋结构更符合其实际分子质量; TBE:缓冲能力强,适合≤ 1 Kb DNA片段
---DNA琼脂糖凝胶电泳
7
1:Marker 2:阳性模板 3:待测样品1
4:待测样品2
5: 待测样品1 6: 待测样品2 7: 待测样品1 8:待测样品2
EB替代品,无需 染色,紫外灯下观 察结果
1%胶,电泳(100V 30min)
五
太高会使制板变形
注意事项
1 倒胶时把握好胶的温度,不要高于60℃ ,否则温度 2 胶一定要凝固好才能拔梳子,方向一定要竖直向上, 不要弄坏点样孔
PCR-VNTR(Variable numble of tandemly repeated short DNA sequence) 多态性检测
PCR;电泳检测
有关PCR反应
标准的PCR反应体系
4种dNTP混合物 引物 Taq DNA聚合酶 Mg2+ 模板DNA 各200μmol/L 各10~100pmol 2.5u 1.5mmol/L 0.1~2μg
一、apoB-VNTR
有关3’ VNTR多态性
3’VNTR位于该基因3’端下游第2个Poly A信号以下 位置的一个可变数目串连重复序列,也称小卫星区 (minisatellite)。根据重复序列长度的不同,可分为 不同的等位基因型,自从1989年首先发现14种Apo B 基因3’VNTR等位基因以来,国内外至今已发现22种 等位基因,长度在400~1200 bp之间,根据重复序列 的内部结构可以把这些重复序列分为两类:一类是 ATAATTAAATATTTT,称为X型;另一类是 ATAATTAAAATATTT,称为Y型。其序列中发生单核苷 酸取代(即G或C取代T), 又可产生X或Y的变异体Xi、 Yi、Xii和Yii等。VNTR重复序列数目的不同,以及每一 重复序列内部结构的变化决定了VNTR的高度多态性。
30cycle
二、酶切位点多态性
1.EcoR I酶切位点
apoB 基因的EcoR I酶切位点多态性是由于 4154 位密码子突变,使原有的EcoRI 酶切 位点消失,产生E- 等位基因,并使所编码 的谷氨酸被赖氨酸取代。有研究认为具有 突变的E- 等位基因与血浆高胆固醇(TC) 及高低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)的水平 有关,与血浆甘油三酯(TG)、LDL-C 水平 升高相关。
1μl
1.5 μl 15 μl 12.5 μ l
94℃ 5min(预变性)
总体积:
30 μl
94℃1min(变性) 60℃1min (复性) 72℃1min (延伸) 72℃5min(续延伸) 4℃ 保存
30cycle
酶切反应及电泳检测
(1)酶切反应体系:
PCR反应产物 10Xbuffer EcoR I 双蒸水 EcoR I 10ul 2ul 18ul 1ul
M- M-
M- M+
M+ M+
基因组DNA的琼脂糖电泳检测
一、实验原理(1)
琼脂糖是一种天然聚合长链状分子,沸水中溶解 (84-96度),36-42℃ 开始形成多孔性刚性滤孔, 凝胶孔径的大小决定于琼脂糖的浓度(分离0.250kb); DNA分子在碱性缓冲液(pH8.0)中带负电荷,在外 加电场作用下向正极泳动; DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时,有电荷效应与分 子筛效应。不同DNA的分子量大小、构象及电荷数 不同,电泳时的泳动率就不同,从而分出不同的区带; DNA显色剂多用EB(致癌作用),它能和碱基间的 氢键结合,在波长为254nm~365nm的紫外光(防止 损伤)照射下呈橘红色(530nm)的荧光;
30cycle
酶切反应及电泳检测
(1)酶切反应体系:
PCR反应产物 10Xbuffer EcoR I 双蒸水 EcoR I 10ul 2ul 18ul 1ul
(2)酶切反应时间:37℃ 终止反应。
12小时,最后65℃ 20min
(3)电泳检测
2% 琼脂糖凝胶电泳, 紫外灯下观察结果:
EcoRI 酶切位点出现E+ E+ ( 含253 bp、227 bp 2 条带) 、E+ E- ( 含480bp、253 bp、227 bp 3 条带) 和E- E- ( 含480 bp 1 条带) 3 种基 因型。