外周血染色体标本制作课件

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高分辨外周血染色体制备与羊水细胞培养课件

高分辨外周血染色体制备与羊水细胞培养课件

细胞培养
将离出细胞种植适宜培 养基中,进行培养。
观察与记录
定期观察细胞生长情况 ,记录细胞形态、数量
等数据。
羊水细胞培养注意事项
01
02
03
04
无菌操作
整操作过程需无菌条件进行, 避免感染。
细胞鉴别
确保所培养细胞羊水中胎儿细 胞,而非母体细胞。
培养基选择
选择适宜、高质量培养基,保 证细胞生长繁殖。
细胞培养
将样本接种培养基中 ,适宜温度湿度条件 培养。
细胞固定
使固定剂将细胞固定 载玻片便染色。
染色
采高辨染色技术细胞 进行染色,便观察染 色体结构。
显微观察
使显微镜观察染色后 细胞,记录染色体形 态数目。
实验技巧享
细胞培养技巧
保持培养基清洁适宜温度,定期更换培养基 ,维持细胞生长。
染色技巧
根据同染色需求选择合适染色剂,控制染色 时间浓度。
综合征、威廉姆斯综合征等。
染色体结构异常
染色体结构异常可能导致身体畸 形、器官发育全等症状,如猫叫 综合征、Duchenne肌营养良症
等。
染色体基因突变
除染色体数目结构异常,基因突 变也可能导致遗传性疾病。高辨 染色体析可发现基因突变,进而
确诊相关疾病。
05
实验操作与技巧
实验操作流程
样本采集
采集外周血或羊水样 本,确保无菌操作, 避免污染。
固定技巧
选择适当固定剂,控制固定时间浓度,确保 染色效果。
显微观察技巧
选择适当显微镜倍数,调整焦距光源,便清 晰观察染色体形态。
实验安全须知
无菌操作
确保所操作无菌条件进行,避免交叉 污染。
防护措施

外周血染色体核型分析PPT演示幻灯片

外周血染色体核型分析PPT演示幻灯片
900bphs水平看到,一致视为双方同源。 12
谢谢 Thanks
13
➢多发性流产,死胎和不孕不孕的夫 妇
➢35岁以上高龄孕妇
➢已生育过染色体异常患儿的夫妇, 或双方或一方具有遗传病家族史
➢夫妇双方或一方为可疑或已知的染 色体数目或结构异常的患者
➢婚前孕前检查希望进行优生优育检 查的人群
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临床应用: Application
检测方法: Method 样本量: Sample
3.细胞的收获:
1)用离心机以2200转/分钟离心5分钟后弃 上清液。
2)加入0.075M的KCl溶液10ml,充分混匀 ,低渗时间为15-18分钟 。
3)预固定:低渗后加入固定液1ml充分混 匀(固定液是甲醇与冰乙酸按3:1混匀), 以2200转/分钟离心7分钟。
4) 吸弃上清液,加入10ml的固定液,混 匀。
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项目介绍 (Project) - 外周血染色体核型分析 (Cont.)
实验操作: Test Procedure
1.接种:先在每瓶含有PHA的5ml培养基的 培养瓶中接种0.5ml的外周血,接种2瓶。
2.培养:37℃全封闭式培养68-72h。在细胞 收获前加入0.1ml浓度为20ug/ml秋水仙素培 养1-1.5h。
项目介绍 (Project) - 外周血染色体核型分析
➢染色体异常是导致自然流产、胚胎停止 发育,不良孕产史和不孕不育及发育异常 的重要原因,对优生优育门诊就诊的患者 进行染色体分析,在临床诊断和优生优育 方面有重要意义。 ➢培养法G显带
➢肝素抗凝全血2.0ml
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项目介绍 (Project) - 外周血染色体核型分析 (Cont.)
➢缺失:染色体臂中段或末端丢失。 ➢倒位:某一染色体中间片段发生两 个断裂,断片倒转180°后重接。 ➢易位: 转位,平衡易位,罗伯逊易 位

外周血染色体制备

外周血染色体制备
?染色体是在有丝分裂或减数分裂时遗传物质存在的特定形式是间期细胞染色质结构紧密组装的结果
一、染色体的概念及结构特点
• 染色体是在有丝分裂(或减数分裂)时遗传物质 存在的特定形式,是间期细胞染色质结构紧密组 装的结果。
• 主要结构有着丝粒、主缢痕、次缢痕、随体、端 粒和核仁组织区。
• 主要功能原件有自主复制DNA、着丝粒DNA、端 粒DNA。
• 低渗处理:将培养物倒入15ml离心管中,以1500r/m离心 10分钟,去上清液后加入8ml预热的低渗液,混匀后放 入37℃培养箱中低渗处理半小时。
• 预固定:加入1 mL新配制的固定液,轻轻混匀后以 1500r/m离心10分钟。
三、 外周血细胞染色体标本的制备
• 固定:吸去上清液,加入8 mL新配制的固定液,充 分混匀室温固定半小时后离心沉淀细胞。重复固 定2次,每次半小时。
• 染色体制片:固定好的细胞以1500r/m离心10分钟, 吸去上清液,加入约0.2ml新的固定液,充分混匀。 取浸泡在冰水中的载玻片,以每张载玻片2-3滴细 胞悬液进行滴片。置78℃干燥后,室温保存。
谢谢!
二、外周血细胞培养的方法
• 培养基:RPMI-1640营养液、胎牛血清、青链霉素、植 物血凝素。
• 接种前加入0.4%肝素抗凝。 • 每5ml培养基中接种约0.4ml静脉血。 • 37℃,5%二氧化
• 秋水仙素处理:收获前加入终浓度0.1ug/ml秋水仙素继 续培养2-3小时。

外周血染色体标本制作

外周血染色体标本制作

二、实验原理
因此,可采取少量外周静脉血,做短期培 养,培养至72小时细胞进入增殖旺盛期,此时 加入秋水仙素抑制细胞分裂,使细胞分裂停止 在中期以获得足够量的分裂期细胞,经低渗、 固定、制片、染色后镜下观察进行核型分析。 上述制备的染色体标本经胰蛋白酶消化、 Giemsa染色后,可在染色体纵轴上显示出着 色深、浅相间的横纹——带,表明每条染色体 的特征。
• 最后,理想的固定剂还应能有助于达到优良的染色 效果,即能增强染色体的嗜碱性。例如,甲醛虽具 有优良固定剂的其它所有特性,但却会降低染色体 的嗜碱性,所以不能单独用作染色体的固定剂。 • 显而易见,没有哪一种化学物能同时具备以上这些 条件,因而通常是将数种可以共存的液体混合起来, 使之成为染色体研究中真正有效的固定剂。尽管如 此,那怕是最佳固定剂仍难免有不足之处。首先, 细胞被杀死后发生的基本变化很难予以避免;其次, 可能会抽提出一些弥散成分;最后即使操作十分谨 慎,仍难以保持酶活性不变;此外,某些化学物还 会导致细胞的皱缩。
3.2固定液的种类
• 醋酸 • 作为混合固定液的一种成分,醋酸的优点在于: (1)可以与已知的任何一种固定剂同时使用,并 且可以和任意比例的水、乙醇或甲醇混合;(2) 浓度可以很低(1%)也可以很高(99%);(3) 具有很强的穿透性能,比乙醇的穿透性还高。 • 醋酸能使核酸沉淀使组蛋白溶解,但却不能固定细 胞质蛋白。在染色体结构的研究中,醋酸的主要用 途是阻止染色体收缩,使染色体的结构免于被破坏。 经醋酸固定的物质还能抵销乙醇的硬化作用。
细胞的膨胀和染色体的皱缩是决定固定剂质量 的两个重要因素。以往曾认为渗透压是促使细胞内 结构膨胀或破坏的决定性因索,为此选用等渗液作 为固定剂,其实这种看法是不正确的。事实证明, 稀释的醋酸具有20个大气压,照常可使细胞和组织 膨胀,而只有2.5个大气压的苦味酸却可使组织大大 地收缩。这提示一种固定剂的效果如何与渗透压的 关系很小。另一方面,苦味酸使蛋白质沉淀的作用 很强而醋酸却没有这一作用。可见,使蛋白质沉淀 这一特性在导致染色体收缩方面可能起重要作用。 因此,在选用哪些化学物作为固定剂时,需要权衡 以上这些因素。

人类外周血染色体标本制备

人类外周血染色体标本制备

14、染色( Giemsa staining) Giemsa染液染色8分钟,玻片用自来水冲洗,晾干。 15、镜检(microscopic examination)
四、试剂和药品 1、 培养液的配制 RPMI1640培养基(含L-谷氨酰胺和碳酸氢钠) 80%
小牛血清(56℃水浴灭活30分钟)
植物血凝素PHA (主要成分是粘多糖和蛋白质) 青霉素终浓度 链霉素终浓度
10、再固定: 加入固定液(甲醇︰冰醋酸 = 1︰3),固定 20分钟。
11、再离心
1000转/分离心10分钟,弃去上清液,留沉淀。
12、再固定 加入固定液(甲醇︰冰醋酸 = 1︰1)打匀,固定 20分钟。
13、制片
固定后, 1000rpm离心10分钟,留下 0.2ml 沉淀物,吸取细胞 悬液滴在已用冰水浸泡的洁净载玻片上,立即用嘴吹散,在洒精灯 焰上通过几次,使细胞平铺于载玻片上,空气干燥(dir drying)。
5、 甲醇 ( methanol )
6、 冰醋酸 (acetic glacid)
二者以不同比例配合使用
新鲜配制
7、吉姆沙染液(Giemsa)
吉姆沙由天青、伊红和甲基蓝组成 先将0.5克吉姆沙粉未干研磨,加33毫升60℃预热的纯甘油,在研钵 中研磨,在60℃水浴中保温90分钟。冷却后,再加入33毫升甲醇,滤纸 过滤,收集在棕色瓶中保存。原液要提前半年配制。原液中按比例加入 磷酸缓冲液即可染染色体标本。
1份Giemsa原液+ 9份磷酸缓冲液
8、磷酸缓冲液(pH 6.8)
溶液A:磷酸二氢钾 (KH2PO4.2H2O) 9.078克溶于1000毫升蒸馏水中。 溶液B:磷酸氢二钠 (Na2HPO4.2H2O) 11.876克溶于1000毫升蒸馏水中。 100毫升缓冲液:需溶液A50.8毫升,溶液B49.2毫升。

人类外周血染色体标本制备及核型分析

人类外周血染色体标本制备及核型分析

100毫升生理盐水中。高压灭菌,冰箱保存备用。
3 、 KCl : 0.075M , 0.559 克氯化钾溶于 100 毫升双蒸水中。
4 、秋水仙素: 10 微克 / 毫升,作为有丝分裂的阻止剂,
抑制细胞分裂时纺锤体形成,使细胞分裂停止在中期。称 10
毫克秋水仙素溶于100毫升生理盐水中,配成100微克/毫升的
人类染色体核型分析
一、实验目的
通过实验掌握染色体核型分析的常用方法以及G带的带型
特征和识别技巧,初步学会识别G带染色体。 二、实验原理 将一个细胞内的染色体按照一定的顺序排列起来构成的图 像就称之为该细胞的核型(karyotype)。核型分析有多种方法, 如G带,R带、C带等。将染色体标本用显带方法处理后, 再用Giemsa染色,这类技术就称为G分带,通过显微摄影,
10、再固定,加入5mL固定液(甲醇:冰醋酸=1:3),室温固定
10-15分钟
11、再离心 1000转/分离心10分钟,弃去上清液。 12、再固定 加入固定液(甲醇:冰醋酸1:1)5mL,打匀, 固定 10-15分钟。 13、制片
固定后,1000转/分离心留下0.2ml沉淀物,吸取细胞悬液滴
在已用冰水浸泡的洁净载玻片上,立即用嘴吹散,在洒精灯焰上 通过几次,使细胞平铺于载玻片上,空气干燥(air drying)。
体遗传学命名的国际体制
(ISCN)排列编号。粘贴时短 臂向上,长臂向下。 3.在分析结果中,写出该 细胞的核型式,注明性染色体。
PHA、灭活小牛血清和双抗。
3 、接种的血样愈新鲜愈好,最好在 24 小时内培养。如果
不能立刻培养,应置于4℃冰箱,保存时间过久会影响细胞活力。
4、温度和培养液的酸碱度十分重要。人的外周血中淋巴细胞 培养最适温度为37℃0.5℃,温度过高过低都将影响细胞的生长, 但细胞对低温比对高温耐受力强;若是中途停电,可相应延长培

染色体标本制备

染色体标本制备

• 4、制片: (1)离心:从温箱中取出培养瓶,用毛细吸管将培 养液转入5ml的刻度离心管内。1200rpm,离心 8min。 (2)低渗:弃去上清液。加入37℃预热(中午开 水浴箱)的0.075mol/L KCl低渗液,加至5ml,用 毛细吸管轻轻吹打均匀,放在37℃恒温水浴中 20min。 (3)预固定:在离心管中加入现配的(实验前配制) 甲醇-冰醋酸(3:1)固定液约0.5ml,用毛细吸管吹 打轻轻混匀, 室温固定20min。 (4)再次离心:1200rpm离心8min。
实验步骤
• 1、采血:将皮肤常规消毒后静脉采血约2-3ml 。 • 2、种血及培养:将7号针头缓慢加15滴(约0.3 ml 血样)立即接种含到5ml培养液(含PHA )的培养 瓶内,轻轻摇匀后将培养瓶放在37℃温箱中培养 72h。培养过程中,每天应轻轻摇动两次培养瓶。 • 3、秋水仙素处理:在终止培养前4h加秋水仙素处 理(星期五上午11:30加),向各培养瓶中加2滴 秋水仙素(终浓度20µg/ml),轻轻摇匀后继续培 养。
外周血染色 • • • 血样:每班6个同学采集外周血 试剂: 1640培养液含植物血凝素(PHA), 20µg/ml秋水仙素液, 0.075 mol/L KCl溶液 固定液:甲醇-冰醋酸(3:1) (实验前配制) Giemsa液
实验仪器及用具
• 恒温培养箱、离心机、恒温水浴箱 、冰箱 • 注射器以及消毒酒精 • 培养瓶120个、吸管120支、离心管 (5ml)120支、 • 冰载玻片: 饭盒加纯净水,加冰,4度冰箱, 120张。
(5)第一次固定:弃上清液,加入固定液约5ml, 立即用吸管吹打使之成细胞悬液,室温固定 20min。1 200rpm离心8min。 (6)第二次固定:同第一次固定。 (7)弃上清液,根据沉淀量的多少,加入适量固定 液1~2滴,用吸管吹打使均匀后制成细胞悬液。 (8)滴片:在30-40cm高处将细胞悬液滴在预冷的 载玻片上,注意动作应迅速,避免载片升温。马 上吹散,酒精灯烘烤(烘干50-60%程度),滴 -吹-烤。 样本编号后学生本次实验结束。老师课后染色。

外周血细胞培养法制备染色体

外周血细胞培养法制备染色体

外周血细胞培养法制备染色体外周血细胞培养法制备鱼染色体一体外培养1.培养基的配制:在超净工作台中,100ml培养基含以下成分和比例:RPMI-1640 84ml小牛血清15mlPHA 2支0.1%肝素钠1ml双抗终浓度为100单位/ml(可不加)以5% NaHCO3(无菌)或1N HCl调pH至7.2-7.4。

2.采血:用注射器吸取少量灭菌肝素钠溶液,实验鱼尾部用碘酒消毒后,从尾静脉取血。

3.培养:将抗凝血加入培养液中,每10ml培养液中约加入0.2ml抗凝血。

24℃,5%二氧化碳浓度的培养箱中培养,时间为68-72小时。

培养期间,定期轻摇匀,使细胞充分接触培养基。

4.秋水仙素处理:终止培养前2—4小时,在培养液中用1ml注射器滴加入10ug/ml 的秋水仙碱,使终浓度为0.05-0.07μg/ml。

以上步骤均需无菌操作。

二染色体制备1.收集细胞:将培养物全部转入洁净离心管中,以1000rpm离心5分钟,弃上清液。

2.低渗处理:向刻度离心管中加入低渗液9ml,用滴管混匀,低渗25-30分钟。

3.预固定:低渗后加入1ml固定液,轻轻混匀后1000rpm离心5分钟。

4.固定:弃上清液,加入5ml固定液,轻轻混匀,静置20分钟。

1000rpm离心5分钟,弃上清液。

5.重复步骤4两次6.制悬液:弃上清液后,视细胞数量多少加入适量固定液制成细胞悬液。

7.滴片:吸取细胞悬液自20—30cm高滴在一张干燥洁净的载玻片上,轻吹散,空气中自然干燥。

8.染色:1:10 Giemsa染液染色20-40分钟,细水冲洗背面去多余染液,气干。

9.镜检:低倍镜下寻找分散良好、染色适中的分裂相,油镜下观察染色体形态并计数。

三注意事项l.培养温度应稳定,培养液pH一般为为7.2—7.4。

2.秋水仙素处理时间过长,分裂细胞多,染色体短小;反之,则少而细长。

都不宜观察形态及计数。

故秋水仙素的浓度及时间需要根据实际情况摸索。

3.低渗使红细胞膜破裂,淋巴细胞膨胀,低渗处理浓度及时间要适当。

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二、实验原理
染色体是在显微镜下可见细胞有丝分裂过程 中出现的结构。因此,必须获得染色体标本才 能进行检查分析,通常情况下,都是利用外周 血淋巴细胞进行核型分析。正常情况下,人体 外周血淋巴细胞不再分裂,但植物血凝素 (PHA)可刺激血中的淋巴细胞转化成淋巴母 细胞,使其恢复增殖能力。
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1.纺锤体抑制剂
细胞分裂中纺锤体是由微管组成的。微管管壁 由13条原丝纵向平行排列构成,主要成分为微管蛋白, 而微管蛋白分α微管蛋白和β微管蛋白两种。α微管蛋 白和β微管蛋白组成的异二聚体构成微管亚单位,若 干个异二聚体相接连成原丝。α微管蛋白与β微管蛋白 在化学结构上极为相似,两者42%序列相同。其中β 微管蛋白肽链中第201位为半胱氨酸,为秋水仙素结 合部位。如果结合的部位被其结合,微管不仅不能继 续聚合,而且会引起原有微管解聚。
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秋水仙素的作用与其浓度和作用时间相关,在高 浓度时可以延缓着丝点分裂,低浓度时则抑制细胞纺 锤体的形成。 在秋水仙素作用下,染色单体缩短,着 色变深以致外形清晰。但不同染色体缩短的程度不一, 长的染色体比短的染色体浓缩得更明显些。
从能收集到足够的中期细胞考虑,秋水仙素处理 的时间宜长些,所用的浓度宜高些;但从能得到较为 细长的染色体考虑,处理的时间宜短,所用的浓度宜 低。因而秋水仙素处理的方法应同时兼顾这二个方面。 如果处理的时间太短则标本中的分裂细胞就少;与此 相反,如果处理的时间太长分裂细胞虽多,但染色体 缩得太短,以致形态模糊,就难以获得优良的显带标 本。
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1.纺锤体抑制剂
故秋水仙素具有干扰微管装配,破坏纺锤体形 成和终止细胞分裂的作用。以秋水仙素为代表的纺锤 体抑制剂能引起有丝分裂过程中纺锤丝断裂或抑制纺 锤体的形成,但不影响染色体的复制和着丝粒的分裂 使正在分裂的细胞停留在中期,以获得大量分裂相供 分析之用。秋水仙素积累分裂中期的作用,几乎对所 有植物器官和许多动物的器官都是十分有效的。
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从收获到制片需经过加纺锤体抑制剂、低渗处 理、固定、滴片等几个主要环节,现将各步骤的原 理、所用试剂及相关注意事项详述如下。
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1.纺锤体抑制剂
1.1基本原理和机制
• 使染色体散开并清楚地呈现次缢痕,凭借的原理是改 变细胞质的粘度。因为在细胞分裂时,随着纺锤体的 形成,染色体紧靠在一起,很难进行分析。纺锤体的 形成取决于细胞质和纺锤体成分的粘度之间的平衡。 因此,改变细胞质的粘度就能破坏纺锤体,使染色体 依然呈游离状态,或者更确切地说,染色体不再粘附 至细胞内的任何结合力上。所以在随后制作标本时一 旦受到压力,染色体就很易铺展开来。同时,由于染 色体的不同区段上水合作用的能力不一,当细胞质的 粘度发生变化时,就会使缢痕区显示得更为清楚。
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1.3处理过程
培养终止前在培养基中加入浓度为20μg/ml的秋 水仙素0.05~0.1ml(1ml注射器滴垂直3-5滴)使其最 终浓度为0.4~0.8μg/ml,置5%CO2、37ºC±0.5ºC培 养箱中处理2~4h。
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1.4注意事项
应当注意的是经秋水仙素处理后的细胞虽可用 各种不同的固定液(金属固定液或非金属固定液)予 以固定,但一定要在固定之前把秋水仙素从组织或 细胞上冲洗掉,否则沉积在细胞表面的秋水仙素不 仅会影响染色体的形态,而且还会阻碍固定液的穿 透性。为此,在低渗处理后,应尽早地加快速穿透 液,如甲醇-冰醋酸固定液。要不然在固定的时候, 细胞核仍可能进入代谢期。
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二、实验原理
因此,可采取少量外周静脉血,做短期培 养,培养至72小时细胞进入增殖旺盛期,此时 加入秋水仙素抑制细胞分裂,使细胞分裂停止 在中期以获得足够量的分裂期细胞,经低渗、 固定、制片、染色后镜下观察进行核型分析。 上述制备的染色体标本经胰蛋白酶消化、 Giemsa染色后,可在染色体纵轴上显示出着 色深、浅相间的横纹——带,表明每条染色体 的特征。
• 乙酰甲基秋水仙碱是人工合成的秋水仙素的衍生物。 它的功能跟秋水仙素一样但对细胞的毒害作用只有 秋水仙素的1/30一1/40。4-6×10-6的浓度即可得到 所希望的效应。
• 除了秋水仙素以外,另一些化学物也可作为纺锤体 抑制剂。如三氯乙醛水合物、六六六、硫酸长春花 碱等,它们在人体细胞均可产生良好效果。
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• 与其它预处理化学物相比较秋水仙素的另一个优点
是,在广泛的温度范围内都是有活性的。在热带地 区的夏季,那怕气温高达43.3℃,对秋水仙素的活 性也无显著影响,有人将秋水仙素加入保存在89℃的组织中,发现中期细胞的数目比保存在室温 但未加秋水仙素的组织要多得多,而且染色体的结
构也很清楚。
人类体细胞染色体标本制备与核型分析 Metaphase Chromosome Preparation and Analysis of Karyotype
学习交流PPTຫໍສະໝຸດ 1一、实验目的 1.熟悉人类外周血淋巴细胞的培养方法及染 色体标本的制备方法。 2.熟悉人类染色体G显带标本制备与分析。
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1.纺锤体抑制剂
1.2主要的纺锤体抑制剂及其作用特点
• 秋水仙素
• 秋水仙素(colchicine)是一种生物碱,因最初从百 合科植物秋水仙(Colchicum autumnale)中提取 出来,故名。分子式C22H25O6N。纯秋水仙素呈 黄色针状结晶,熔点157℃。易溶于水、乙醇和氯 仿,难溶于热水、乙醚等。味苦,有毒。秋水仙素 能抑制有丝分裂,破坏纺锤体,使染色体停滞在分 裂中期。这种由秋水仙素引起的不正常分裂,称为 秋水仙素有丝分裂(C-mitosis)。在这样的有丝分 裂中,染色体虽然纵裂,但细胞不分裂,不能形成 两个子细胞,因而使染色体加倍。
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2.低渗溶液
经过秋水仙素处理后,细胞内的染色体比较适 合于观察了,但还是不能满足要求。因为人类细胞 的染色体数目多,形状小,最大的染色体约7-8微米, 加之主要的观察与分析均在油镜下进行,这就要求 标本中的染色体彼此散开,并且尽可能处于同一平 面上。这些均有赖于低渗处理。
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