罗非鱼皮胶原蛋白的提取条件优化及性质

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酸法和酶法提取罗非鱼鱼皮胶原蛋白特性分析

酸法和酶法提取罗非鱼鱼皮胶原蛋白特性分析

罗非鱼是世界第三大养殖品种,在我国养殖量居第二[1].目前,其主要用来生产冷冻鱼肉片,因此会留下60%~70%下脚料,包括鱼皮、鱼头、鱼鳍和鱼骨,其中鱼皮中含有丰富的胶原蛋白[3],对其进行有效利用,避免浪费的同时还可减少环境污染[2].胶原蛋白是哺乳动物体内含量最多、分布最广的功能性蛋白质,它构成了动物皮的支持组织,具有增强机体皮肤组织细胞储水能力、增强肌肤弹性、保持皮肤柔软、使皮肤细嫩等生理功能,其理化性质和生物学特性优良,在医学、食品工业和化妆品等领域应用广泛.胶原蛋白的提取分离方法包括热水提法、酸提法、酶提法等[4].醋酸酸法和胃蛋白酶酶法提取胶原蛋白,通过紫外光谱、红外光谱以及吸油性、保水性、溶解性测定对两者理化特性进行分析比较,以期为胶原蛋白的提取及应用提供理论依据.1材料与方法1.1试验材料与试剂罗非鱼鱼皮产自江苏连云港飞凡水产公司;羟脯氨酸购于Sigma 公司;氯化钠、异丙醇、胃蛋白酶、正丙醇、无水乙酸钠、乙酸、硫酸铜、柠檬酸购于上海国药,均为分析纯.1.2试验仪器SC-3612离心机(江苏金坛市荣华仪器制造有限公司)、ST3100酸度计(奥豪斯仪器有限公司)、SP-723分光光度计(光谱仪器有限公司)、Nicolet IS50傅立叶变换红外光谱仪(赛默飞世尔科技有限公司)等.1.3试验方法1.3.1鱼皮预处理将鱼皮烘干,粉碎,5%氯化钠浸泡6h,蒸馏水洗涤数次并沥干水分,置于异丙醇、乙醚与蒸馏水体积比为2:2:8的溶液中浸泡6h,蒸馏水洗涤数次后沥干水分并在55℃恒温干燥箱中烘干备用[5].1.3.2酸溶性胶原蛋白(ASC)的制备按料液比1:20加入预处理所得鱼皮和0.5mol/L 乙酸,磁力搅拌24小时,离心得到上清,加入氯化钠使得浓度至0.9mol/L,静置过夜.6000r/min 离心20min,舍弃上清,沉淀加入10倍体积0.1mol/L 的乙酸进行溶解,并在10倍体积的0.1mol/L 乙酸溶液中透析12h,每4h 换一次透析液,蒸馏水透析至中性,得到酸溶性胶原蛋白提取液,冷冻干燥得到酸溶性胶原蛋白(ASC)[6].1.3.3酶溶性胶原蛋白(PSC)的制备将预处理后的鱼皮按料液比1:20加入0.5mol/L 乙酸中,并加入鱼皮质量2%的胃蛋白酶.磁力搅拌提取24h,离心取上清,加入一定质量的氯化钠至上清液氯化钠溶液最终浓度为0.9mol/L,静置过夜.6000r/min 离心20min,弃上清,加入10倍体积的0.1mol/L 的乙酸中溶解沉淀,并在10倍体积的0.1mol/L 乙酸溶液中透析12h,每4h 换一次透析液,蒸馏水透析至中性,得到酶溶性胶原蛋白提取液,冷冻干燥得到酶溶性胶原蛋白(PSC)[6].1.3.4胶原蛋白得率计算胶原蛋白得率/%=冻干胶原蛋白粗品质量提取用鱼皮质量×100(1)Vol.35No.9Sep.2019赤峰学院学报(自然科学版)JournalofChifengUniversity (NaturalScienceEdition )第35卷第9期2019年9月收稿日期:2019-07-03基金项目:宿州学院科研平台开放课题项目(2017ykf05);安徽高校自然科学研究重点项目(KJ2017A441);宿州学院、宿州市农业科学院实践教育基地(szxy2018xxhz02);宿州学院教授(博士)科研启动基金项目(2016jb02)酸法和酶法提取罗非鱼鱼皮胶原蛋白特性分析王晴,曹稳根,钱玉梅,李红侠,汪慧文(宿州学院生物与食品工程学院,安徽宿州234000)摘要:以罗非鱼鱼皮为材料,利用醋酸和胃蛋白酶分提取胶原蛋白,通过紫外光谱、红外光谱、吸油性、保水性、溶解性等对其理化特性进行比较分析.结果表明两者在230nm 左右出现最大紫外吸收峰,均属典型的胶原蛋白;红外显示两种蛋白结构相似;酶溶性胶原蛋白吸油性优于酸溶性胶原蛋白,且两者都有很好的保水性和溶解性.以期为胶原蛋白的提取及应用提供理论依据.关键词:罗非鱼;提取;胶原蛋白;特性中图分类号:TS201.2文献标识码:A文章编号:1673-260X (2019)09-0090-0390--图2酸溶性提取液和酶溶性提取液紫外扫描图谱1.3.5紫外吸收光谱分析将酸溶性胶原蛋白提取液和酶溶性胶原蛋白提取液,以0.5mol/L 的醋酸作为对照,在200~400nm 波长范围内用紫外可见分光光度计测定其吸光度,得到胶原蛋白紫外吸收曲线[7].1.3.6红外光谱分析采用傅里叶红光谱仪对ASC 和PSC 进行红外扫描,分别将适量的ASC 和PSC 与KBr 混合压片,在400~4000cm -1波数区间扫描,分辨率4cm -1[8,16].1.3.7溶解性测定取一定质量ASC、PSC 溶于0.5mol/L 醋酸中,使得浓度为5mg/mL.取5mL 分别调至pH 为4、5、6、7、8、9,保持pH 值不变,蒸馏水定容至10mL,4000r/min 离心15min,双缩脲法测定上清液蛋白质含量,并同时将样品溶于0.5mol/L 醋酸溶液采用双缩脲法测定样品总蛋白含量,用公式(2)计算溶解性[7].溶解性%=上清液蛋白含量总蛋白含量×100(2)1.3.8吸油性测定取两份10mL 精炼油,分别加入0.1g ASC 和PSC,振荡器震荡1min,静置半小时,于200r/min 离心25min,按公式(3)计算吸油性[7].X=10.0-V f m(3)式中:X 为吸油性/(mL/g);V f 为游离油的体积/mL;m 为0.1g.1.3.9保水性测定量取50mL 蒸馏水,加入ASC 和PSC 0.05g,搅拌,置于1000r/min 条件下离心5min,弃分离水,称量残留物质量,并置于25℃干燥箱中,每隔20min 测一次质量,按公式(4)计算水分残存率[7],以其衡量两者保水性强弱.Y%=m 0-m m 0-0.05×100(4)式中:Y 表示水分残存率%;m 0表示离心剩余物质量/g;m 表示每隔一段时间剩余物质量/g.2结果与分析2.1不同提取液胶原蛋白得率在酸性条件下,蛋白质分子之间离子键遭到破坏,发生胶原纤维膨胀、溶解现象,因而可利用酸法提取胶原蛋白;酶法提取是利用蛋白酶使胶原溶解[9].由图1可得,酶法提取胶原蛋白得率较酸法提取高,且提高近2倍.2.2紫外吸收光谱分析对酸溶性胶原蛋白提取液和酶溶性胶原蛋白提取液在紫外光区进行全波长扫描测试,得到的紫外扫描曲线如图2所示,由于胶原蛋白共轭氨基酸含量较少,在280nm 波长处无吸收峰,而在225nm 左右有最大吸收峰,试验结果符合胶原蛋白的吸收特征[10],且杂峰较少,表明提取胶原蛋白纯度较高.2.3红外光谱分析如图3所示,ASC 和PSC 产生的吸收峰形状和位置基本一致,在4000~3000cm -1范围内,ASC 和PSC 均有一个较宽的峰,分别在3450cm -1和3440cm -1处,是由酰胺A 带所产生[11];PSC 在2000~1000cm -1波数内出现三个强而窄的吸收峰,其中1640cm -1处吸收峰是由胶原蛋白酰胺I 带产生,在1550cm -1(ASC)和1560cm -1(PSC)处的吸收峰是由胶原蛋白酰胺II 带产生,1390cm -1处为酰胺III 带吸收峰,综上表明PSC 和ASC 主体结构均保留比较完整.2.4溶解性溶解度指物质在特定溶剂中溶解的最大限度,其在天然蛋白质提取、分离和纯化时起到重要作用,蛋白质变性程度也可通过蛋白质的溶解行为的变化作为评价指标,此外蛋白质在饮料中的应用也与其溶解性能有直接的关系[12].如图4所示,随着pH 值的上升,PSC 和ASC 的溶解性先快速下降又逐渐趋于平缓.pH=4时PSC 和ASC 的溶解性最好,ASC 可达80%,PSC 达63%,而pH 在7~9时胶原蛋白的溶解性较差,在图1酸提取液和酶提取液胶原蛋白得率图3罗非鱼鱼皮ASC 和PSC 红外光谱图91--30%左右.胶原蛋白溶解性随pH 的变化跟其等电点位置有关,当处于等电点,两性离子达到电荷平衡,溶解度达到最低[13-14],因此结果表明罗非鱼鱼皮胶原蛋白等电点位于7附近.2.5吸油性图5可见,ASC 和PSC 的吸油能力约为30mL/g 和49mL/g.PSC 的吸油性更佳,可能与胃蛋白酶作用于酶切位点使得较多疏水基团暴露,使得酶溶性胶原蛋白吸油能力增加,且研究表明,蛋白质吸油性跟其结构密切相关[15].2.6保水性保水性指当蛋白质受到外力作用时其保持水分的能力,受浓度、离子种类以及环境等影响[7].ASC 和PSC 在25℃条件下随时间改变保水性的变化如图6所示,水分残存率随时间增加逐渐下降,但ASC 保水性较PSC 下降缓慢,可能由于醋酸和胃蛋白酶对亲水基团的作用差异,使得暴露的亲水基团不同360min 后,ASC 和PSC 的水残存率仍然在90%作用,保水性均优良.3结论与讨论酸法和酶法提取罗非鱼鱼皮胶原蛋白并比较其理化性质,两种方法提取得到的胶原蛋白主体结构基本一致,均保留较完整;但从得率、溶解性和吸油性的角度,酶法提取得到的胶原蛋白更优,而酸法提取的胶原蛋白保水性较好,因此,醋酸法和胃蛋白酶法提取的胶原蛋白可应用于不同的领域.———————————————————参考文献:〔1〕巩育军,郭先霞,李瑞伟,等.罗非鱼营养成分研究进展[J].中国食物与营养,2009(11):50-52.〔2〕Zheng S K,Zheng C H,Lin H,et al.Isola⁃tion and cliaracterization of acid -solubilised collagen from the skin of Nile tilapia (Ore⁃ochromis niloticus)[J].Food Chemistry,2009,116:879-883.〔3〕倪娜.羊血浆蛋白-肌原纤维蛋白复合凝胶形成的作用力分析[D].中国农业科学院,2014.27-30.〔4〕郅慧,于慧,张辉,等.动物源胶原蛋白提取及应用研究进展[J].吉林中医药,2019,39(02):225-227.〔5〕田宏,张春华,陈山乔,等.罗非鱼头磷脂组成及其化学特性[J].赤峰学院学报(自然科学版),2016,32(24):11-14.〔6〕王晓军,吴婷,贾伟,等.酸法和酶法提取牦牛骨胶原蛋白的特性分析[J].食品科学,2018,39(12):101-106.〔7〕包玉龙,陈孙福,罗永康.酸法和酶法提取鳄鱼皮胶原蛋白及性质研究[J].肉类研究,2012,26(07):1-4.〔8〕Z ·elechowska E,Sadowska M,Turk M.Isola⁃tion and some properties of collagen from the backbone of Baltic cod (Gadus morhua)[J].Food Hydrocolloids,2010,24(4):325-329.〔9〕张敏.酸法和酶法提取齐口裂腹鱼皮胶原蛋白及鉴定性质研究[D].四川农业大学,2014.〔10〕辛菲.鲅鱼皮胶原蛋白的提取及分子特性的初步研究[D].新疆农业大学,2012.〔11〕黄石溪,陈桂平,罗灿,等.酸法和酶法提取鮰鱼皮胶原蛋白的工艺研究[J].农产品加工(学刊),2013(16):51-54.〔12〕Zhenying H,Liang Q,Yong S,et al.Im⁃provement of the solubility and emulsifying properties of rice bran protein by phosphory⁃lation with sodium trimetaphosphate [J].Food Hydrocolloids,2019(96):288-299.〔13〕王碧,贾冬英,罗红平,等.皮边角废料提取胶原蛋白的功能特性[J].中国皮革,2002(15):13-16.〔14〕肖桂华,朱蓓薇,董秀萍,等.鲍鱼腹足不同部位的质构特性及组织结构研究[J].食品科技,2010,35(11):155-159.〔15〕孙冰玉,石彦国.微波对醇提大豆浓缩蛋白吸油性的影响[J].中国食品学报,2006(05):97-100.图6罗非鱼鱼皮ASC 和PSC保水性随时间的变化图4pH 值对罗非鱼鱼皮ASC 和PSC 溶解性的影响图5罗非鱼鱼皮ASC 和PSC 的吸油性92--。

三酶法制备罗非鱼鱼皮胶原蛋白抗氧化肽及活性研究

三酶法制备罗非鱼鱼皮胶原蛋白抗氧化肽及活性研究

三酶法制备罗非鱼鱼皮胶原蛋白抗氧化肽及活性研究夏光华;申铉日;蔡锦红;徐克寒;张诚【期刊名称】《食品科学》【年(卷),期】2012(033)023【摘要】为了探索制备罗非鱼鱼皮胶原蛋白抗氧化肽的最佳工艺,在碱性蛋白酶和胰蛋白酶酶解的基础上,以酶解温度、酶解时间、酶解pH值和酶与底物质量比([E]/[S])为试验因素,以水解度和DPPH自由基清除率为响应值,采用响应面分析法优化Orientase 20A酶的酶解条件。

结果表明:最优工艺参数为:酶解温度为41.74℃、pH3.97、酶解时间为6h、[E]/[S]为1.5%,酶解液水解度和DPPH自由基清除率的预测值分别为9.42%和35.01%,验证值分别为9.57%和35.21%。

响应面对酶解法制备罗非鱼鱼皮胶原蛋白抗氧化肽的酶解条件的优化是可行的,可以用于实际预测。

抗氧化活性实验表明,酶解肽具有较强的清除DPPH自由基和ABTS +.能力,其IC50值分别为10.78mg/mL和8.26mg/mL。

【总页数】5页(P175-179)【作者】夏光华;申铉日;蔡锦红;徐克寒;张诚【作者单位】海南大学食品学院,海南海口570228;海南大学食品学院,海南海口570228;海南大学食品学院,海南海口570228;海南大学食品学院,海南海口570228;海南大学食品学院,海南海口570228【正文语种】中文【中图分类】TS254.4【相关文献】1.罗非鱼鱼皮胶原蛋白降血压酶解液的制备与活性研究 [J], 陈胜军;李来好;曾名勇;杨贤庆;吴燕燕;刁石强2.酶法制备鲟鱼皮胶原蛋白多肽及其抗氧化活性研究 [J], 李露园; 王升帆; 朱有贵; 章银军; 汪钊; 郑建永3.酶法制备草鱼皮胶原蛋白抗氧化肽的工艺优化 [J], 秦倩倩; 吴琼英; 贾俊强4.固态发酵法制备罗非鱼皮胶原蛋白肽及其抗氧化活性研究 [J], 邢瀚文;韩玮;施文正;李晓晖5.大孔树脂对罗非鱼皮胶原蛋白抗氧化肽脱盐作用的研究 [J], 夏光华;申铉日;酒志强;黄霜霞因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

罗非鱼皮胶原蛋白的提取条件优化及性质

罗非鱼皮胶原蛋白的提取条件优化及性质

罗非鱼皮胶原蛋白的提取条件优化及性质杨贤庆;张帅;郝淑贤;李来好;吴燕燕;石红;黄卉【期刊名称】《食品科学》【年(卷),期】2009(030)016【摘要】采用Box-Benhnken中心组合试验设计及响应面分析法优化热水提取罗非鱼鱼皮胶原蛋白工艺,得到最佳提取工艺为:4℃条件下用0.213mol/L盐酸浸泡鱼皮2Imin(料液比1∶20,m/V),蒸馏水浸泡(料液比1∶7,m/V),42℃水浴提取12.6h,最终得到的胶原蛋白含量达293.018mg/g,产品甘氨酸、脯氨酸和羟脯氨酸含量丰富.SDS-PAGE实验结果表明胶原蛋白中含有α1、α2和β链,是典型的Ⅰ型胶原蛋白,凝胶强度为682g,特性黏度为1.461dl/g.【总页数】5页(P106-110)【作者】杨贤庆;张帅;郝淑贤;李来好;吴燕燕;石红;黄卉【作者单位】中国水产科学研究院南海水产研究所,广东,广州,510300;中国水产科学研究院南海水产研究所,广东,广州,510300上海海洋大学,上海,200090;中国水产科学研究院南海水产研究所,广东,广州,510300;中国水产科学研究院南海水产研究所,广东,广州,510300;中国水产科学研究院南海水产研究所,广东,广州,510300;中国水产科学研究院南海水产研究所,广东,广州,510300;中国水产科学研究院南海水产研究所,广东,广州,510300【正文语种】中文【中图分类】TS254.9【相关文献】1.碱性蛋白酶水解罗非鱼皮提取胶原蛋白肽的最佳条件研究 [J], 张寒俊;杨国燕;张蕾2.罗非鱼骨胶原蛋白质的提取及其性质 [J], 叶韬;林琳;张晓霞;姜绍通;陆剑锋3.乙酸溶胀-挤压提取对罗非鱼真皮胶原蛋白理化性质的影响 [J], 鲍虹蕾;杨敏;刘文文;何沁峰;崔改泵;陈伟;胡建恩;武龙4.罗非鱼鱼皮胶原蛋白提取条件的研究 [J], 丁卓平;刘振华;李仁冬;朱卫钦5.尼罗罗非鱼皮胶原蛋白乳酸提取工艺条件优化及理化特性研究 [J], 梁志桃;郭飞;胡柳花;鹿文红;张强;;;;;;因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

超声辅助酶法提取罗非鱼皮胶原蛋白及其溶解特性

超声辅助酶法提取罗非鱼皮胶原蛋白及其溶解特性
(1 上海海洋大学食品学院,上海 201306; 2 平太荣远洋渔业集团,浙江舟山 316100; 3 国家淡水水产品加工技术研发分中心( 上海) ,上海 201306)
摘要:以罗非鱼皮为原料,探究了超声辅助酶法提取罗非鱼皮胶原蛋白的最佳工艺及其溶解特性。 采用超声 功率、加酶量、超声时间作为单因素试验自变量,并进行响应面优化,求得使胶原蛋白得率最高的提取条件。 将罗非鱼皮超声辅助酶法所得胶原蛋白( Ultrasonic pepsin- soluble collagen,UPSC) 和常规酶法所得胶原蛋白 (Pepsin- soluble collagen,PSC) 进行蛋白得率、紫外光谱及溶解特性分析比较。 结果显示:最优提取工艺为超 声功率 165 W、超声时间 26 min、加酶量 1. 67%,此条件下 UPSC 得率(62. 26%) 显著高于 PSC(29. 02%) 。 紫 外光谱分析得到二者的最大吸收峰均在 230 nm 而不是 280 nm 处,符合 Ι 型胶原蛋白特征。 在不同 pH 条件 下,UPSC 的相对溶解度几乎均高于 PSC。 研究表明:超声辅助酶法是一种高效、环保、简便的提取罗非鱼皮 胶原蛋白的方法,适合工业化生产。 本研究不但提供了超声辅助酶法提取罗非鱼皮胶原蛋白的最佳工艺,而 且所得胶原蛋白得率高、相对溶解度较好,为其在食品加工方面的应用提供了依据。 关键词:罗非鱼皮;超声辅助酶法优化;胶原蛋白;得率;相对溶解度 中图分类号:TS254. 9 文献标志码:A 文章编号:1007- 9580(2022)06- 0127- 008
参考 Chen 等[22] 的方法并稍做改动,将胶原
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第6期
李家柔等:超声辅助酶法提取罗非鱼皮胶原蛋白及其溶解特性

罗非鱼鱼皮胶原蛋白多肽的制备及其理化性质研究

罗非鱼鱼皮胶原蛋白多肽的制备及其理化性质研究

罗非鱼鱼皮胶原蛋白多肽的制备及其理化性质研究梁拥军;孙向军;杨璞;张欣【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2009(037)004【摘要】[目的]制备罗非鱼鱼皮胶原蛋白多肽,并对其理化性质进行研究.[方法]以从罗非鱼鱼皮中提取的胶原蛋白对原料,分离制备活性肽,并测定其理化性质.[结果]利用胰蛋白酶在45 ℃、pH值8、加酶量5%条件下,酶解3 h,进而用葡聚糖凝胶G-50通过蛋白质纯化仪进行分离,纯化得到较纯的多肽Y32.电泳得知Y32分子量为4.045 6 kDa; DSC820e测定Y32的变性温度为57.5 ℃;调节pH值测定其等电点为8.7;用氨基酸组成分析仪测定Y32氨基酸种类及其含量发现,Y32多肽中共含有19中氨基酸,其中,甘氨酸所占比例最大,符合胶原蛋白氨基酸的基本构成.[结论]为进一步开发利用罗非鱼鱼皮提供了基础资料.【总页数】3页(P1588-1590)【作者】梁拥军;孙向军;杨璞;张欣【作者单位】北京市水产科学研究所,北京,100068;北京市水产科学研究所,北京,100068;北京市水产科学研究所,北京,100068;北京市水产科学研究所,北京,100068【正文语种】中文【中图分类】S912【相关文献】1.不同提取方法对罗非鱼皮胶原蛋白理化特性的影响 [J], 郝淑贤;林婉玲;李来好;杨贤庆;周婉君;黄卉;魏涯;岑剑伟;叶鸽2.绿鳍马面鲀(Navodon septentrionalis)鱼皮胶原蛋白的分离纯化及理化性质研究 [J], 郁迪;丁冬各;王斌3.尼罗罗非鱼皮胶原蛋白乳酸提取工艺条件优化及理化特性研究 [J], 梁志桃;郭飞;胡柳花;鹿文红;张强;;;;;;4.胡子鲶鱼皮酸溶性胶原蛋白的理化性质研究 [J], 李八方;郭鸣;侯虎;王珊珊5.微射流-酶处理对罗非鱼皮胶原蛋白结构和理化特性的影响 [J], 李思佳;孙卫东;张业辉;刘磊;张友胜;阮奇珺;汪婧瑜因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

罗非鱼鳞胶原蛋白提取工艺研究

罗非鱼鳞胶原蛋白提取工艺研究

罗非鱼鳞胶原蛋白提取工艺研究孙宪迅;孙齐英;韩雪;周理红【摘要】研究用胃蛋白酶从罗非鱼鳞中提取胶原蛋白的工艺。

根据测定水解液中羟脯氨酸(HYP)的含量计算胶原蛋白提取率,采用单因素和正交试验确定胃蛋白酶水解鱼鳞制备胶原蛋白的适宜酶解条件。

结果表明,采用底物质量分数7%,胃蛋白酶酶解罗非鱼鳞制备胶原蛋白的适宜温度、pH、加酶量、时间分别为65℃、2.0、2%、2h。

在适宜工艺条件下,胶原蛋白提取率可达94.24%。

%The technology of extraction collagen from tilapia fish scales through pepsin hy- drolysis has been studied. According to hydrolysate concentration of hydroxyproline (HYP), the single factor and orthogonal experiment was determined the best enzymatic hydrolysis condition. The optimum condition of temperature, pH, enzyme concentration and hydrolyzing time for the ex- traction is 65~C, pH 2.0, 2%, 2 h. The extraction rate of collagen from tilapia fish scales was 94.24% under this optimal condition.【期刊名称】《江汉大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2012(040)003【总页数】3页(P105-107)【关键词】罗非鱼鳞;胶原蛋白;胃蛋白酶【作者】孙宪迅;孙齐英;韩雪;周理红【作者单位】江汉大学生命科学学院,湖北武汉430056;江汉大学生命科学学院,湖北武汉430056;江汉大学生命科学学院,湖北武汉430056;江汉大学生命科学学院,湖北武汉430056【正文语种】中文【中图分类】TS254.9胶原蛋白在化妆品、医药、食品、饲料等领域得到越来越广泛的应用,需求量逐年增大[1-3]。

罗非鱼鱼皮胶原提取的研究

罗非鱼鱼皮胶原提取的研究

鱼 皮剪成 1c 见 方 的 碎 片 , 5 m 取 0g左 右加 人 物 料 比为 1: o w/ 的乙醚 浸 泡 2 , 2 ( V) 4h 用清 水 清 洗 干净后 , 以物料 比为 1: 0 W/ 的氢 氧 化 再 2 ( V) 钠 或氯 化 钠 溶 液 浸 泡 1 , 用 蒸 馏 水 冲 洗 至 2h 再
( 山东 美佳 集 团有 限 公 司 , 山东 日照 2 62 ) 7 8 6
胶原 是一 种重 要 的 功 能性 蛋 白质 , 与细 胞 它 增 生 、 化 、 动 、 疫 、 节 润 滑 、 化 、 口愈 分 运 免 关 钙 伤 合 、 官 支撑 、 体保 护 等密 切相 关 , 在 已 引起 器 机 现 人 们 的广 泛关 注 。由于 其特 殊 的 生 物功 能 , 提 其 取物 已被 广泛 应 用 与 医药 、 品 、 食 日用 化工 、 物 生 合 成 等 众 多 领域 , 制 造药 用 胶 囊 、 如 外科 手 术 材 料、 食用 明胶 、 照相 明胶 、 妆 品 等[ 。 目前 用 于 化 1 ]
粗提 液加入 氯化 钠 , 其 使
终浓度 达 到 0 9mo/ 盐 析 过 夜 , 0 / n . lL, 5 0 0 rmi
发达 国家 已经禁 止使用 从牛皮 及牛骨 中提 取 的胶
原制 品 。因此从水 产 品中提取 得到安 全 、 生 、 卫 无 害 的胶 原制 品具有广 泛 的市场前 景 。
( 方 法 , 定 羟 脯 氨 酸 含 量 , 以换 算 系 数 E) 测 乘 1. , 1 1 即得胶原 蛋 白含 量 。由 L一 羟脯 氨 酸 标 准 品得到 的回归方 程为 :
Y=0 0 5 + 0 079 相关 系 数 R 一 0 981 . 7 x . 1 , z .9 。

罗非鱼胶原蛋白

罗非鱼胶原蛋白

利用先进的生物工程定向酶切技术从罗非鱼鱼鳞中提取的胶原肽其蛋白质含量约95%,有18种氨基酸,含有7种人体必需氨基酸,具有蛋白质含量高、灰份少、重金属含量低、平均分子量为1000~2000D左右,可被人体表皮皮层和体内消化系统直接吸收产品特点。

1、产品质量稳定:采用海南本地养殖的罗非鱼鱼鳞或者鱼皮为原料,原料新
鲜无腐烂,保证产品性质稳定。

2、高品质的产品:产品白色,淡腥味,无糖无脂,无添加。

3、良好的价格性能:速溶性好,耐高温,适用pH值范围广,流动性佳。

4、优质的原料:
(1)原料的稳定性:产品采用单一鱼种(罗非鱼的鱼皮或者鱼鳞)
(2)原料的安全性:原料均来自当地罗非鱼加工出口企业,企业均通过GAP 认证,符合美国FDA和欧盟的卫生标准。

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2 结果与分析
2.1 响应面优化试验结果分析
2.1.1 响应面优化试验结果
表 2 响应面分析试验设计及结果 Table 2 Arrangement and results of the four-variable/five-levels
response surface central composite design
V) at 42 ℃ for 12.6 h, and the optimized extraction led to a collagen content of 293.018 mg/g. The collagen was rich in glycine,
proline and hydroxyproline. SDS-PAGE analysis showed that this collagen contained α1, α2 and β chains indicating that it
食品科学
※工艺技术
Box-Benhnken 的四因素五水平试验中共有 27 个试验 点,其中试验 1~24 是分析因子试验、试验 25~27 是 零点试验,胶原蛋白含量( Y ) 为响应值,试验所得的胶 原蛋白含量(Y)见表 2。
采用 SAS 9.0 软件对表 2 中胶原蛋白含量试验数据进 行多元回归分析,分析结果见表 3、4。由表 3、4 可 知方程的一次项、二次项的影响都是极显著的,交互 项不显著,方程的决定系数为 97.98%,说明响应值有 97.98% 来源于所选变量,回归方程可以较好地描述各因 素与响应值之间的真实关系。根据分析结果,去掉非 显著项得到胶原蛋白含量对盐酸浓度(X1)、盐酸浸泡时 间(X2)、提取温度(X3)和提取时间(X4)的二次回归模型, 该方程表达了提取所得胶原蛋白含量(Y)与各因素之间的 变化规律,其二次回归模型为:
0
0
-2
22
0
0
+2
23
0
0
0
24
0
0
0
25
0
0
0
26
0
0
0
27
0
0
0
X4 胶原蛋白含量 (mg/g)
-1
215.208
+1
224.469
-1
243.726
+1
263.130
-1
214.767
+1
220.647
-1
238.287
+1
261.807
-1
220.353
+1
224.910
-1
261.660
extraction of collagen from tilapia skin were determined as follows: soaking tilapia skin in 0.213 mol/L HCl solution with a ratio
of material to liquid of 1:20 (m/V) at 4 ℃ for 21 min prior to the hot water extraction with a ratio of material to liquid of 1:7 (m/
中图分类号:TS254.9
文献标识码:A
文章编号:1002-6630(2009)16-0106-05
胶原蛋白是一种天然高分子化合物,具有一定的凝 胶强度、乳化性、低黏度性、吸水和保湿性等,广 泛应用于食品、医药、化妆品等工业中[1]。胶原蛋白 主要存在于动物的皮、骨、软骨、牙齿、肌腱、韧 带和血管中,在鱼皮和鱼鳞中也有大量分布。我国是 世界上水产大国,每年有大量的鱼皮及鱼鳞等废弃物产 生,以往这些废弃物多被丢掉或制成鱼粉饲料出售,不 仅污染环境,还对资源造成极大的浪费,因此研究从 鱼类下脚料中提取胶原蛋白具有深远意义。
106 2009, Vol. 30, No. 16
食品科学
※工艺技术
罗非鱼皮胶原蛋白的提取条件优化及性质
杨贤庆 1,张 帅 1,2,郝淑贤 1,李来好 1,吴燕燕 1,石 红 1,黄 卉 1
(1.中国水产科学研究院南海水产研究所,广东 广州 510300;2.上海海洋大学,上海 200090)
摘 要:采用 Box-Benhnken 中心组合试验设计及响应面分析法优化热水提取罗非鱼鱼皮胶原蛋白工艺,得到最佳提 取工艺为:4℃条件下用 0.213mol/L 盐酸浸泡鱼皮 21min(料液比 1:20,m/V),蒸馏水浸泡(料液比 1:7,m/V), 42℃水浴提取 12.6h,最终得到的胶原蛋白含量达 293.018mg/g,产品甘氨酸、脯氨酸和羟脯氨酸含量丰富。SDSPAGE 实验结果表明胶原蛋白中含有α1、α2 和β链,是典型的Ⅰ型胶原蛋白,凝胶强度为 6 8 2 g ,特性黏度为 1.461dl/g。 关键词:罗非鱼鱼皮;胶原蛋白;热水提取;凝胶强度;黏度
Optimization of Extraction and Physico-chemical Properties of Tilapia Skin Collagen
YANG Xian-qing1,ZHANG Shuai1,2,HAO Shu-xian1,LI Lai-hao1,WU Yan-yan1,SHI Hong1,HUANG Hui1 (1. South China Sea Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences, Guangzhou 510300, China; 2. Shanghai Ocean University, Shanghai 200090, China)
表1 Table 1
中心组合试验 Box-Benhnken 方案设计因素水平编码表 Independent variables and levels in the four-variable/
five-levels response surface design
因素
代码
盐酸浓度(mol/L) X1
盐酸浸泡时间(min) X2
1.2.5 紫外光谱分析 参考赵苍碧等[4]的方法略有改进,将胶原蛋白成品
配制成 1mg/ml 溶液(溶剂为 0.5mol/L 醋酸),用紫外分光 光度计在波长 200~400nm 间进行扫描。
1.2.6 胶原蛋白的氨基酸组成 参考 Liu 等[5]的方法将一定量的胶原蛋白置于水解管
中,加入 6mol/L 盐酸,抽真空密封,110℃水解 24h, 用氨基酸自动分析仪测定各氨基酸含量。
1.2.3 实验条件响应面优化设计 经前期研究发现,盐酸浓度、酸处理时间、热水
提取温度和提取时间四个因素对胶原蛋白提取效果影响 较大,因此针对这四个因素进行优化,根据 B o x Benhnken 的中心组合设计原理,选用影响胶原蛋白提 取的四个主要因素:X1 盐酸浓度(mol/L),X2 盐酸浸泡 时间(min),X3 提取温度(℃),X4 提取时间(h)。每一个 自变量的水平分别以- 2 、- 1 、0 、+ 1 、+ 2 进行编码, 试验因素与水平设计见表 1 ,数据采用 S A S 9 . 0 和 Minitab15 软件分析。
is a typical type I collagen. Its gel strength and characteristic viscosity were 682 g and 1.461dl/g, respectively.
Key words:tilapia skin;collagen;hot water extraction;gel strength;characteristic viscosity
+1
265.629
-1
230.202
+1
225.057
-1
264.600
+1
278.271
0
224.910
0
269.010
Байду номын сангаас
0
247.401
0
263.277
0
158.760
0
251.370
-2
257.691
+2
283.710
0
287.091
0
287.532
0
287.973
108 2009, Vol. 30, No. 16
1.2.9 特性黏度的测定 参照文献[8]、[9]将胶原蛋白成品配成 1mg/ml 的胶原
蛋白醋酸溶液,以此溶液为基准,以 0.5mol/L 的醋酸 为对照,用乌氏黏度计在室温 25℃下分别测定 5/6、2/3、 1/2、1/3 含量时的黏度,计算公式为:
增比黏度ηsp=t/t0 - 1 特性黏度[η]= cl→im0ηsp/C 式中:t 是样品流出时间;t 0 为溶剂流出时间;C 为样品浓度;ηsp/C 为比浓度黏度;[η]为浓度外推到 0 时 的比浓度黏度即特性黏度。
※工艺技术
食品科学
2009, Vol. 30, No. 16 107
1.2.1 罗非鱼皮处理 将新鲜罗非鱼皮清洗去除脂肪等杂物,切成 1cm ×
1cm 块状后于- 20℃冷冻备用。
1.2.2 胶原蛋白提取 鱼皮解冻后清洗、沥干,经 20 倍体积(m/V)的盐酸
于 4℃浸泡处理后,取出鱼皮用蒸馏水洗涤至 pH5,沥 水后用 7 倍体积(m/V)的蒸馏水浸泡,水浴提取,提取后 的胶原蛋白经冷冻干燥后即得罗非鱼皮胶原蛋白成品。
试验号
X1
X2
X3
1
-1
-1
-1
2
-1
-1
-1
3
-1
-1
+1
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