第八讲植物细胞培养

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植物细胞培养

植物细胞培养
• 研钵中放入10 g叶片和40 ml研磨介质 (20 uM蔗糖+10 uM MgCl2+20 uM TrisHCl缓冲液),轻轻研磨,匀浆用双层细 纱布过滤,滤液经过低速离心,游离细 胞就会沉降到试管底部,得到纯化细 胞。
方法1:
撕去表皮
露出叶肉细胞 用解剖刀刮下细胞
方法2:叶片研碎、离心
加研磨介质
• 操作简便、重复性好、群体大
二:单细胞的分离
• 可以获得单细胞的来源:
• 由植物器官分离单细胞 • 由愈伤组织分离单细胞
1 由植物器官分离单细胞
• 叶片是分离单细胞的最好材料 • 叶片分离单细胞的方法:
• 机械法 • 酶解法
• 1)机械法:
• 用刀片刮叶片 (花生成熟叶片) • 叶片研碎、离心法
• 方法:
• 把含琼脂的培养液加到小三角瓶中,使成1cm厚,高压灭菌后备 用。在无菌条件下,取处于活跃生长期的约1cm2大小的愈伤组织 块,安放在三角瓶中固体培养基上的中央部位,并在愈伤组织块上 放一片约1cm2的无菌滤纸片,将其在培养室中放置过夜,使滤纸充 分吸收从组织块渗出来的营养成分。然后将分离出的单个细胞接种 到滤纸上面进行培养。待2~3个月后即可从滤纸上直接转移到新鲜 培养基上,得到单细胞无性系


该方法可在暗 视野(或相差 显微镜下清楚 地观察到活细 胞的各种变 化,甚至还可 以观察到线粒 体的变化。 由于培养基 少,营养、水 分和PH变动 大,培养细胞 仅能短期分裂
第八讲 植物细胞培养
2012年秋季
上一讲内容回顾
• 1)什么是单倍体?单倍体植株? • 单倍体(Haploid):具有配子染色体数目的 细胞、组织或个体 • 单倍体植株(Haploid Plant):由单倍体细 胞分化、生长出来具有配子体染色数的植株

第八讲植物细胞悬浮培养技术

第八讲植物细胞悬浮培养技术

第八讲:植物细胞悬浮培养技术摘要悬浮培养技术是一种在液态培养基中培育植物细胞的方法。

这种技术可以用于研究植物细胞的生理、生化、遗传和分子生物学。

本文将介绍悬浮培养技术的原理、方法和应用,并讨论其优缺点。

原理悬浮培养技术是将植物细胞悬浮在液态培养基中,并提供足够的营养和适宜的环境条件,促进细胞生长和分裂。

悬浮培养技术可以通过两种方法进行:自然悬浮和机械悬浮。

自然悬浮是指通过培养基中的液体流动和植物细胞的重力作用来保持细胞悬浮状态。

机械悬浮是指通过磁力搅拌或气泡强制产生的涡流来保持悬浮状态。

方法悬浮培养技术的方法主要包括以下步骤:1.选取适当的植物细胞:悬浮培养技术可以应用于多种植物细胞,例如培养基的类型和成分、植物物种、生长条件等,都会影响细胞的生长和分裂。

2.培养基制备:准备含有足够营养物质和适合生长的植物细胞的培养基。

3.细胞分离:使用细胞壁水解酶、酸碱处理或机械方法去除细胞壁,分离单个细胞。

4.细胞培养:将分离的细胞置于液态培养基中,将培养瓶放置拟南芥上,以恒定光照、温度、湿度和通风条件下日夜持续观察培养。

5.细胞传代:留置旺孔1cm左右的细胞,废弃周边细胞,再次培养。

应用悬浮培养技术可以应用于以下方面:1.生物医学研究:通过悬浮培养技术培养人类细胞,可用于药物筛选、治疗性细胞移植和组织工程学等研究。

2.分子生物学研究:由于悬浮培养技术能够大量培养植物细胞,因此可以用于高通量分析、基因克隆和表达、蛋白质组学和代谢组学研究等。

3.植物细胞与组织培养:悬浮培养技术可以用于植物组织和细胞的体外培养,利用悬浮培养技术可以大量制备植物生长激素和次生代谢产物。

优缺点悬浮培养技术有以下优点:1.可以大规模培养细胞。

2.可以简化分离和培养过程,使得实验成本低廉。

3.可以控制培养环境,减少外界干扰。

悬浮培养技术也存在以下缺点:1.悬浮培养技术对培养条件和营养要求非常苛刻,因此需要经验丰富的实验人员进行操作。

2.悬浮培养技术可能会产生细胞堆积的问题,从而影响细胞生长和分裂。

植物细胞培养的概念及意义

植物细胞培养的概念及意义
Lower than callus culture
Cell suspension ar grown in bioreactor
7 植CE物LL细SU胞S培PE养NSION CULTURE
7.2 悬浮培养(suspension culture) 7.2.1起始培养物的建立
1、选择适宜的外植体:幼胚、胚轴、子叶是最常使用 的外植体。 2、选择适宜的培养基:较高浓度激素浓度,必要的附 加物质。 3、愈伤组织的要求:松散性好、增殖快、再生能力强。
7 植CE物LL细SU胞S培PE养NSION CULTURE
7.2 悬浮培养(suspension culture) 7.2.2 悬浮系的建立
所以,悬浮培养系的建立就是将疏松的愈伤组织放入液体培养基 中,经过摇床不断振动,使细胞分散。它具有如下基本特点:
首先,细胞可以不断增殖,形成高密度的细胞群体,适于大规模 生产;
7 CELL SUSPENSION CULTURE
7.1 植物细胞培养的概念及意义 7.1.1 定义
植物细胞培养是指在离体条件下,将愈伤组织或其他易 分散的组织置于液体培养基中,进行振荡培养,得到分散 成游离的悬浮细胞,通过继代培养使细胞增殖,从而获得 大量的细胞群体的一种技术。小规模的悬浮培养可在培养 瓶中进行。大规模的需要利用生物反应器生产。
植物细胞悬浮培养是指细胞或细胞聚集体在液体培养 基中进行悬浮培养,培养物可以接种在培养瓶中在摇床上 培养,也可以在生物反应器中进行大规模培养。这些细胞 或聚集体来自愈伤组织,或者直接来自植物的器官或组织 外植体(如花粉培养)。
悬浮培养与固体培养比较有三个优点:一是增加培养 细胞与培养液的接触面,改善营养供应;二是在振荡条件 下可避免细胞代谢产生的有害物质在局部积累而对细胞自 身产生的毒害;三是振荡培养可以适当改善气体的交换。

第八章——植物细胞培养

第八章——植物细胞培养

4、PH和二氧化碳浓度
在悬浮培养时,PH变动相当大。加入EDTA使铁和其他金属离 子长期处于可利用状态。硝态氮和铵态氮之间进行调整可作 为稳定PH的一种方法。
二氧化碳对细胞培养没有太大影响,但在低密度细胞培养中, 二氧化碳对于诱导细胞分裂可能有重要作用。
植物细胞生长和活力的测定
一、悬浮培养中细胞生长的测定 1、细胞计数:把1份培养液加入到2份8%三氯化铬溶液中,在 70℃下加热2-15分钟,然后将混合物冷却,用力震荡10分钟,用 血球计数板进行细胞计数。 2、细胞总体积:将已知体积的均匀分散的悬浮液放入1个15ml刻 度离心管中,在2000g下离心5min,得到细胞沉积的体积。 细胞密实体积(PCV):以每ml培养液中细胞总体积的ml数表示。
第八章-植物细胞培养
植物细胞培养简介
• 概念: 在培养基中培养彼此分离的细胞、使之生长、 增殖或分化。 包括固体培养和液体培养2种形式。
固体培养(solid culture)
• 在固体培养基中培养细胞=静止培养。细胞被固定、 不能移动;单细胞分裂后形成细胞团。
优缺点: 1)所得到的各个细胞团均为单细胞形成,遗传成分和 生理特性具有一致性; 2)细胞生长速度较慢; 3)不能长期、连续、大规模培养细胞。
烟草细胞接种密度和植板率
影响植板率的因素
(4) 培养基成分:用营养成分丰富的培养基或条 件化培养基,植板率高。 (5) 培养方式:采用看护培养(nurse culture) 是可以提高植板率。 平板培养是分离、筛选单细胞无性系的有效方法
看护培养(nurse culture)
植物细胞大规模培养生产次生代谢物质
如某个或某种类型的植物细胞是怎样生长、分裂和分化 的?化学物质(激素等)或者物理因素(重力、压力)等是 怎样影响这些过程的?

植物细胞培养

植物细胞培养

1、连续培养的特点 (1)由于不断加入新鲜培养基,保证了养分的充 分供应,不会出现悬浮培养物发生营养不足的现象。 (2)可在培养期间使细胞保持在对数生长期中。 细胞增殖速度快。 (3)适于大规模工业化生产。
2、连续培养的种类
封闭式连续培养:系统中的细胞数目不断增加。
开放式连续培养:系统中的细胞密度保持恒定。
二、培养类型和方法
(一)成批培养 指把细胞分装在一定容积的培养基中进行培养, 当培养物增殖到一定量时,转接继代,建立起单细 胞培养物。它是进行细胞生长和细胞分裂的生理生 化研究常用的培养方法。
1、成批培养法
(1)细胞生长在固定体积的培养基上,直至培养基中的 养分为细胞耗尽为止。 (2)用适当搅拌的方法增加和维持游离细胞和细胞团在 培养基中的均匀分布。 (3)在整个培养过程中,细胞数目会不断发生变化,呈 现出明显的慢-快-慢,最后增长停止的细胞生长周期。 (4)成批培养结束后,若要进行下一批培养,必须另外 进行继代培养,其方法是用注射器吸取一定量的含单细胞 和小细胞团的悬浮培养物,并移到含有新鲜培养基的培养 瓶里,继续进行培养。
细 胞 数 目 静止期 缓慢期
直线生长期
对数增长期
延滞期
时间

细胞生长周期
(二)半连续培养
指每隔一定时间后倒出一半的悬浮液, 并同时补充加入等量新鲜培养液。能重复 地取得大量、均一的培养细胞,供生物研 究之用。
(三)连续培养
是利用特制的培养容器进行大规模细胞培 养的一种方式。 在培养过程中,以不断抽取悬浮培养物并 注入等量新鲜培养基,使培养物不断得到养分 补充,保持其恒定体积的培养。
封闭型连续培养:在培养过程中,排除的旧培养基 由加入的新鲜培养基进行补充,进出数量保持平衡, 从而使培养系统中营养物质的含量总是超过细胞生 长的需要。 悬浮在排除液中的细胞经机械方法收集后再放回培 养系统中,因此在这样培养方式中,随着培养时间 延长,细胞密度不断增加。

植物组织细胞培养

植物组织细胞培养

植物组织细胞培养步骤:植物组织培养的简单过程如下:剪接植物器官或组织——经过脱分化(也叫去分化)形成愈伤组织——再经过再分化形成组织或器官——经过培养发育成一颗完整的植株。

培养步骤第一步,将采来的植物材料除去不用的部分,将需要的部分仔细洗干净,如用适当的刷子等刷洗。

把材料切割成适当大小,即灭菌容器能放入为宜。

置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时,冲洗时间视材料清洁程度而宜。

易漂浮或细小的材料,可装入纱布袋内冲洗。

流水冲洗在污染严重时特别有用。

洗时可加入洗衣粉清洗,然后再用自来水冲净洗衣粉水。

洗衣粉可除去轻度附着在植物表面的污物,除去脂质性的物质,便于灭菌液的直接接触。

当然,最理想的清洗物质是表面活性物质—吐温。

第二步是对材料的表面浸润灭菌。

要在超净台或接种箱内完成,准备好消毒的烧杯、玻璃棒、70%酒精、消毒液、无菌水、手表等。

用70%酒精浸10~30秒。

由于酒精具有使植物材料表面被浸湿的作用,加之70%酒精穿透力强,也很易杀伤植物细胞,所以浸润时间不能过长。

有一些特殊的材料,如果实、花蕾、包有苞片、苞叶等的孕穗,多层鳞片的休眠芽等等,以及主要取用内部的材料,则可只用70%酒精处理稍长的时间。

处理完的材料在无菌条件下,待酒精蒸发后再剥除外层,取用内部材料。

第三步是用灭菌剂处理。

表面灭菌剂的种类较多,可根据情况选取1—2种使用见表。

第四步是用无菌水涮洗,涮洗要每次3min左右,视采用的消毒液种类,涮洗3-l0次左右。

无菌水涮洗作用是免除消毒剂杀伤植物细胞的副作用注意:①酒精渗透性强,幼嫩材料易在酒精中失绿,所以浸泡时间要短,防止酒精杀死植物细胞。

②老熟材料,特别是种子等可以在酒精中浸泡时间长一些,如种子可以浸泡5分钟。

③升汞的渗透力弱,一般浸泡10分钟左右,对植物材料的杀伤力不大。

④漂白粉容易导致植物材料失绿,所以对于幼嫩材料要慎用。

⑤在消毒液中加入浓度为0.08—0.12%的吐温20或80(一种湿润剂),可以降低植物材料表面的张力,达到更好的消毒效果。

植物细胞培养


2.1.1 含义:将愈伤组织培养在一定容积的 密闭容器中进行培养。它是进行细胞生 长和 细胞分裂的生理生化研究常用的培养方法。
但要进行下一批培养,则生长一定时间后, 需要继代转移。
悬浮培养 2.1.2

特点
培养基体积固定 • 培养过程中,细胞生长,其数目 不断发生变化,呈S增长。 • 必须适当搅拌
植物细胞培养
细胞培养内容包括两方面
悬浮培养 单细胞培养 促进细胞生长和生物合成 促进细胞生长和形成完整植株
获得单细胞的方法 悬浮培养 单细胞培养
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
单细胞的分离
由完整的植物器官分离单细胞 由培养组织中分离单细胞
单细胞的分离
1、由完整的植物器官分离单细胞
叶片是分离单细胞的最好材料
机械法 酶解法
• 植物生长激素:植物生长素、细胞激动素、 赤霉素和脱落酸等四大类。 • 有机氮源:通常采用的有机氮源有蛋白质 水解物、谷氨酰胺或氨基酸混合物等。 • 有机酸:加入丙酮酸,或者柠檬酸、苹果 酸和琥珀酸等三羟酸循环的中间产物 • 复合物质:在植物细胞的培养过程中,酶 母抽提液、麦芽抽提液、椰子汁和水果汁 等复合物质通常可以作为细胞的生长剂。
• Reinhard等(1968)首先将这种设想转变成现实, 生产出了哈尔碱(harmine)。 • 紧接着Kaul等(1969)、Furrya等(1972)和 Teuscher等(1973)分别培养植物细胞获取了其 中的薯蓣(yu山药)皂苷、人参皂角苷和维斯纳精 (visnagin)。 • 现在一些发达国家已集中相当数量的人力、财力 潜心开拓这个经济潜力十分巨大的生产领域。目 前世界最大批量工业化培养细胞(烟草细胞)已 达2万升(20吨)。 • 我国在“八五”、“九五”和“863计划”中连 续拨款资助工业化培养红豆杉细胞生产抗肿瘤药 物紫杉醇的研究,目前已达到60mg/L的世界先进 水平

植物细胞培养

•40
3)双层滤纸培养 在饲养层和靶细胞层之间放两张滤纸,上面
一层滤纸用于将靶细胞转移到其他培养基上继 续培养.
•2021/6/7
•41
4)微室培养
定义: 将单细胞培养在少量的培养基中培养。
•2021/6/7
•42
优点: (1)在培养过程中,可以
连续进行显微观察一个细胞 的生长、分裂和形成细胞团 的全部过程.
优势: 便于运输和储藏;提高生产效率; 保存珍贵品种
•2021/6/7
•25
人工种子
外层:固定化膜(有机薄膜),保护胚状体水分,
防止外部力量冲击
中间:营养成分和植物激素
•2021/6/内7 层:包裹的胚状体或芽
•26
• 4.1 植物组织培养与细胞培养的区别 • 4.2 发展历史 • 4.3 植物组织与器官培养 • 4.4 植物细胞培养 • 4.5 植物原生质培养
度的悬浮细胞接种到或混合到一薄层固体培 养基中培养的技术,类似于微生物细胞的平板 培养。
• 细胞的分离及密度的调整:一般采用酶分离
法,小细胞团不能超过6个细胞,要选择合适 的过滤网筛。
细胞密度一般控制在1000-1×105/ml
•2021/6/7
•34
• 板的制备和细胞的培养:35℃的固体培养基(1.4%
选择等手段来实现代谢产物的诱导。
•2021/6/7
•28
4.4.2 植物细胞培养的方法
根据培养对象: 主要有:单细胞培养,单倍体培养(花药雄 性生殖细胞),原生质
根据培养系统: 主要有:固体培养和液体培养。
•2021/6/7
•29
4.4.3 植物细胞培养的培养基
• 基础培养基有:
MS,B5,N6 。 主要有无机盐, 碳源, 有机氮源,有机酸等构成。 常用的培养基的组成:MS+植物生长激素+椰 子汁

植物细胞培养

植物细胞培养与次生代谢产物 制备
植物细胞培养方法分类 1、根据培养对象:单细胞培养、单倍体培养、 原生质体培养 2、根据培养系统:悬浮培养、液体培养、固 体培养、固定化培养
单细胞小规模培养
• 液体浅层静置培养:将一定密度悬浮细胞接 液体浅层静置培养: 种于培养皿或三角瓶中封口静置培养。 • 细胞同步化培养:(获得生长周期一致的) 细胞同步化培养: • 1)体积选择法:筛网过滤 • 2)冷处理法:4度处理数天 • 3)饥饿法:控制培养液营养 • 4)抑制法:尿苷,5-氟脱氧尿苷,秋水仙素
后产生荧光
2. 呼吸强度测定:氧电极法测呼吸作用 呼吸强度测定: 3. 细胞生长和分解速率的测定:细胞重量 细胞生长和分解速率的测定:
(五)植物细胞培养生产次级代谢产物
植物细胞培养生产药用代谢产物例子
植物细胞与组织培养比较
• 细胞悬浮培养: 细胞悬浮培养:
植物细胞的保存 1、继代培养保存法:1-2周换液传代 2、低温保存法:5-10度培养换液 3、冰冻保存法:冷定化细胞的活力测定 固定化细胞的活力测定
1. 染色法:二乙酸荧光素可被活细胞吸收,酶解 染色法:

植物细胞培养

植物细胞培养植物细胞培养是一项重要的生物学研究技术,通过将植物细胞放入适宜的培养基中,提供适宜的养分和生长条件,使其在无菌条件下进行繁殖和生长。

这项技术在植物生物技术和植物育种研究中有着广泛的应用,可以用于植物组织培养、植物再生、基因工程、植物病毒研究等方面。

接下来,我将详细介绍植物细胞培养的原理、步骤、方法及其应用。

一、植物细胞培养的原理植物细胞培养的原理是利用植物细胞的分裂和再生能力,在培养基上形成功能完整的植株。

培养基中提供的养分和生长因子可以满足植物细胞的营养需求,而适宜的温度和光照条件则有利于细胞分裂和再生。

在无菌条件下进行培养,可以避免外界的微生物污染和干扰,保证细胞培养的成功率。

二、植物细胞培养的步骤植物细胞培养主要包括材料准备、杀菌、建立无菌培养条件、组织处理、细胞培养和植株再生等步骤。

1.材料准备:选择适宜的植物材料,如幼苗的茎尖、子叶、胚乳、花药等作为外植体。

同时准备培养基、培养器具和培养条件所需的试剂和设备。

2.杀菌:将外植体浸泡在含有杀菌剂的溶液中,进行表面消毒,以去除外植体表面的细菌和真菌。

3.建立无菌培养条件:在无菌操作台上进行操作,使用无菌培养器具和培养基,保持操作环境的无菌状态。

4.组织处理:将外植体切割成适当的大小,要求每个组织片段都含有足够的细胞和组织分化能力。

5.细胞培养:将组织片段放置在含有适宜濃度的培养基中,提供适宜的养分和生长因子,调节温度和光照条件,使细胞进一步分裂和分化。

6.植株再生:当细胞分裂和分化达到一定程度时,可以通过调节培养基的成分和添加适宜的激素来诱导细胞形成胚乳、芽和愈伤组织,最终形成功能完整的植株。

三、植物细胞培养的方法植物细胞培养可以通过不同的方法来实现,包括愈伤组织培养、悬浮细胞培养、胚愈伤组织培养等。

1.愈伤组织培养:将外植体的某些部位培养在含有适宜生长因子的培养基上,刺激组织的分裂和分化,形成愈伤组织,进而形成植株。

2.悬浮细胞培养:将植物细胞分散在液体培养基中,进行无瓶培养。

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• 带有培养物的微室可以按需要放在培养箱或培养室中,温度 26~28℃,光照或黑暗的条件下进行培养。
• 观察或照相时一定要在同一温度下进行。
• 该方法可在暗 视野(或相差 显微镜下清楚 地观察到活细 胞的各种变 化,甚至还可 以观察到线粒 体的变化。
• 由于培养基 少,营养、水 分和PH变动 大,培养细胞 仅能短期分裂
• 此法简单易 行,易于成 功,但不能在 显微镜下直接 观察细胞生长 过程
• 3)微室培养法
• 悬浮单细胞接种于凹玻片或玻璃环与盖玻片组成的微室内பைடு நூலகம் 固体培养基中的培养方法
• 方法:
• 将洗净的盖玻片与载玻片在酒精灯火焰上消毒,冷却后按盖 玻片大小在载玻片上涂一圈四环素眼膏。
• 将细胞悬浮液滴一小滴在载玻片上,然后在四环素眼膏上放 一小段毛细管,将消毒后的盖玻片盖在四环素眼膏的框子沙 锅内,使其与眼膏紧密接触,在盖玻片与载玻片之间造成一 密闭的小室,这小室通过一段毛细管与外界通气,盖玻片盖 上后要使它与细胞悬浮液滴相接触。
轻轻研磨 过滤、离心
• 机械法的优缺点:
• 优点:完整细胞不受酶的伤害,无需胞质分离,对于生理生 化研究较为理想
• 缺点:细胞产量低,不易获得大量活性细胞;仅适用于只有 薄壁组织排列松散,细胞间结触点很少的叶片类型
• 2)酶解法
• 常用酶:果胶酶 • 添加0.8%甘露醇及1% 硫酸葡聚糖钾
加果胶酶 过滤 、离心
• 特点:
• 操作简便、重复性好、群体大
二:单细胞的分离
• 可以获得单细胞的来源:
• 由植物器官分离单细胞 • 由愈伤组织分离单细胞
1 由植物器官分离单细胞
• 叶片是分离单细胞的最好材料 • 叶片分离单细胞的方法:
• 机械法 • 酶解法
• 1)机械法:
• 用刀片刮叶片 (花生成熟叶片)
• 叶片研碎、离心法
• 研钵中放入10 g叶片和40 ml研磨介质 (20 uM蔗糖+10 uM MgCl2+20 uM TrisHCl缓冲液),轻轻研磨,匀浆用双层细 纱布过滤,滤液经过低速离心,游离细 胞就会沉降到试管底部,得到纯化细
胞。
方法1:
撕去表皮
露出叶肉细胞 用解剖刀刮下细胞
方法2:叶片研碎、离心
加研磨介质
• 胚状体发育途径及愈伤组织发育途径
• 5)花药/花粉培养在育种中的应用有哪些?
• 克服后代分离,缩短育种周期 • 提高目标基因型的选择效率 • 用于诱变育种 • 获得超雄株
本讲内容
• 概念 • 单细胞的分离 • 植物细胞培养分类 • 植物细胞培养的应用
一:定义
• 植物细胞培养(plant cell culture):指对 植物器官或愈伤组织上分离出来的单细胞(或 小细胞团)进行培养,形成单细胞无性系或再 生植物的技术
• 1)平板培养法:
• 分散的植物细胞接种于含薄层固体培养基的培养皿 内的培养方法称为平板培养法
• 方法:
• 将经机械破碎过筛或酶(纤维素酶及果胶酶等)消化 分散纯化的细胞,经计数及稀释(悬浮液中细胞的 密度调整到103~105个/ml),接种到加热熔化而刚 冷却至35℃左右的固体培养基中充分混匀,倾入培 养皿中,石蜡密封,于25℃培养,约20天后细胞即 可生长成团。统计生长情况
• 方法:
• 把含琼脂的培养液加到小三角瓶中,使成1cm厚,高压灭菌后备 用。在无菌条件下,取处于活跃生长期的约1cm2大小的愈伤组织 块,安放在三角瓶中固体培养基上的中央部位,并在愈伤组织块上 放一片约1cm2的无菌滤纸片,将其在培养室中放置过夜,使滤纸充 分吸收从组织块渗出来的营养成分。然后将分离出的单个细胞接种 到滤纸上面进行培养。待2~3个月后即可从滤纸上直接转移到新鲜 培养基上,得到单细胞无性系
第八讲 植物细胞培养
2012年秋季
上一讲内容回顾
• 1)什么是单倍体?单倍体植株?
• 单倍体(Haploid):具有配子染色体数目的 细胞、组织或个体
• 单倍体植株(Haploid Plant):由单倍体细 胞分化、生长出来具有配子体染色数的植株
• 2)单倍体细胞培养的途径?
• 雌配子体培养(未受精的胚珠/子房培养) • 花药培养 • 花粉培养
• 平板培养的效果一般用植板率衡量。植板率是指已形成细胞团的单 细胞与接种总细胞数的百分比
• 植板率=(每个平板中所形成的细胞团数/每个平板中接种的细胞 数)Χ100%
• 2)看护培养法
• 从悬浮培养物或脆弱愈伤组织上用针或玻璃毛细管分离单细胞,每 个细胞放在一个方形滤纸片的上表面,而滤纸片放在活跃生长的愈 伤组织上进行培养的方法
• 3)什么是雄核发育途径?其启动机制是?
• 在合成培养基上,以花药或花粉为外植体,改变花粉 的发育途径,使其不形成配子,而像体细胞一样进行 分裂、分化、最终发育成完整植株的发育途径。
• P花粉及饥饿处理
• 4)适合单倍体培养的花粉发育阶段?花粉单 倍体植株的形态发生方式有哪两类?
• 花粉离体培养时,雄核发育最适宜的时期一般是第 一次有分裂或之前
• 方法简便、易于获得大量高质量的单细胞,应用广泛
三:植物细胞培养的分类
• 单细胞培养 • 细胞的悬浮培养
1 单细胞培养
• 对分离得到的单个细胞进行培养,诱导其分裂 增殖,形成细胞团,再通过细胞分化形成芽、 根等器官或胚状体,直到长成完整植株的技术
• 培养方法:
• 平板培养法(Plating Method) • 看护培养法(Nurse Culture) • 微室培养法(Microchamber Culture) • 纸桥培养法(Paper Wick Method)
• 酶解法的优缺点:
• 优点:可以得到高纯度的叶肉细胞;产量高;细胞 不易破
• 缺点:细胞受到酶伤害;细胞受到质壁分离影响; 对于,大麦、小麦和玉米很难通过酶解法使细胞分 离(叶肉细胞伸长,并在许多地方收缩,细胞间形 成一种互锁结构)
2 由愈伤组织分离单细胞
• 将未分化、易碎散的愈伤组织—转移到装有适当液体 培养基的三角瓶中—置于水平摇床以80-100 rpm振荡 培养—获得悬浮细胞液—用孔径200 mm的细胞筛过滤 除去大块细胞团—再以4000 rpm速度离心—除去比单 细胞小的残渣碎片—获得纯净的单细胞悬浮液
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