细胞室无菌技术标准操作规程

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无菌实验室操作规程

无菌实验室操作规程

无菌实验室操作规程标题:无菌实验室操作规程引言概述:无菌实验室是进行微生物实验和细胞培养的重要场所,为保证实验结果的准确性和可靠性,操作规程十分关键。

本文将详细介绍无菌实验室的操作规程,包括实验室准备、操作流程、设备消毒、个人防护和废物处理等方面。

一、实验室准备1.1 清洁实验室环境:无菌实验室应保持干净整洁,定期清洁地面、台面和设备,避免灰尘和细菌污染。

1.2 检查实验室设备:在进行实验前,要检查实验室设备是否正常运转,确保无菌实验室的各项设备都处于良好状态。

1.3 准备所需材料:提前准备好所需的培养基、试剂和实验用具,确保实验进行顺利。

二、操作流程2.1 洗手消毒:进入无菌实验室前,必须先进行手部消毒,避免将细菌带入实验室。

2.2 穿戴个人防护用具:穿戴实验服、手套、口罩和护目镜等个人防护用具,避免污染实验样品。

2.3 严格按照实验操作规程进行:在进行实验时,要按照操作规程的要求进行,避免操作失误导致实验失败。

三、设备消毒3.1 消毒实验台面:在进行实验前,要将实验台面用75%乙醇或其他消毒液擦拭消毒,避免细菌污染。

3.2 消毒实验用具:使用完实验用具后,要及时用高温或消毒液进行消毒,确保下次使用时无菌。

3.3 定期消毒实验室设备:定期对实验室设备进行消毒,保持实验室的无菌状态。

四、个人防护4.1 穿戴个人防护用具:在进行实验时,必须穿戴好实验服、手套、口罩和护目镜,避免接触细菌。

4.2 避免交叉污染:在实验过程中,要避免将实验用具和试剂带到其他实验室,避免交叉污染。

4.3 定期进行健康检查:实验人员要定期进行健康检查,确保身体健康,避免将疾病传播到实验室。

五、废物处理5.1 分装废物:在进行实验后,要将废物分类分装,避免混合造成交叉感染。

5.2 定期清理实验室废物:实验室废物要定期清理,避免细菌滋生和传播。

5.3 合理处理废物:将实验室废物交由专业机构处理,避免对环境和人体造成危害。

结论:无菌实验室操作规程十分重要,只有严格遵守规程,才能确保实验结果的准确性和可靠性。

细胞培养无菌操作

细胞培养无菌操作

细胞实验考核要点一、准备工作1、清点超净台中仪器物品(垃圾桶、饭盒中三种管、橡胶塞、蓝枪头、移液枪、电子枪、50ml离心管、镊子、剪刀、marker笔、打火机、卫生纸、6孔板、平衡50ml内含1ml离心管),合理布置台面。

2、超净台灭菌:酒精喷洒超净台面,紫外照射20min左右。

3、预热:将PBS、10%FBS、胰酶装进PE手套中,37℃预热备用。

二、实际操作1、点燃酒精灯2、从水浴锅中取出预热的三种液体,喷酒精后放入超净台,用卫生纸擦拭瓶壁酒精。

撕开三个封口膜。

瓶口在外焰烧灼烧,拧松三个瓶盖,以备用。

3、手喷酒精后,旋松并取出T25瓶。

在显微镜下观察细胞长势,若细胞密度达到了80%-90%,则可以进行传代。

注意若显微镜没有人用过,需要在载物台附近喷洒酒精后擦拭。

4、将T25拿到超净台里面。

手进入台面内需酒精喷洒消毒(后不赘述)。

打开吸泵。

5、来回灼烧吸泵铁头。

旋开T25瓶,注意灼烧瓶盖,瓶盖扣放。

铁头插上两个蓝枪头,瓶身倾斜吸去瓶中原培养基。

灼烧瓶盖和瓶口后盖盖,不要盖太紧。

6、取1ml移液枪,将T25竖起来,向未生长细胞的侧壁打入5ml PBS冲洗。

盖盖后左右上下稍移动。

将PBS吸出。

关吸泵!7、向瓶中加入500ul胰酶。

稍混合均匀。

放入培养箱中消化2min。

计时。

8、2min内需完成的操作(1)取出一个50ml离心管。

(2)烧套管:镊子在火上过一下,套管盒稍稍开一小口,用镊子取出一个套管,火上来回灼烧,然后放置在离心管架上。

(3)烧弯头吸管:从烧瓶中用镊子取出一个塞子。

弯头吸管盒稍开一小口,确定是不是塞棉花的一头。

镊子稍稍过火灼烧,开一小口,镊子夹出塞棉花一头,放下镊子,拿出吸管。

盒子放回原处。

将塞子塞入弯头吸管中。

手持塞子来回在火上灼烧,完毕后放入套管中。

9、取出培养箱中消化的细胞,显微镜及肉眼观察消化是否合适。

若在显微镜下看到细胞质壁分离呈球形,大部分细胞已经脱离瓶壁游走在视野中,肉眼观察有白色的成片细胞脱落,说明消化完成。

无菌室操作规程

无菌室操作规程

无菌室操作规程
《无菌室操作规程》
一、入室前准备
1. 穿戴工作服和帽子,佩戴口罩和手套。

2. 洗手并进行手部消毒。

3. 确认所需的物品已准备齐全,包括试剂、实验器具等。

二、进入无菌室
1. 打开无菌室门前,进行手部再次消毒。

2. 缓慢打开无菌室门,确保空气不会造成污染。

3. 进入无菌室后,关闭门窗,确保无菌环境不受外界污染。

三、操作规程
1. 所使用的器皿和仪器应当是经过无菌处理的。

2. 所有操作均需在无菌工作台上进行,不得在无菌室内随意移动物品。

3. 操作过程中不得进行交谈、咳嗽、喷嚏等操作,以免污染无菌环境。

四、操作完毕
1. 所有操作完毕后,进行手部消毒,然后缓慢打开无菌室门。

2. 将使用过的器皿和仪器进行处理,确保下次使用前已经过无菌处理。

3. 离开无菌室后,确认无菌室门窗关闭完毕,确保无菌环境不受外界污染。

五、其他注意事项
1. 定期清洁无菌室内部和工作台面,确保无菌环境的维护。

2. 使用过的试剂和实验器具应当妥善处理,避免造成环境污染。

3. 随时遵循相关的安全操作规程,确保无菌室内的安全和无菌环境的维护。

以上就是关于《无菌室操作规程》的详细内容,希望大家能够严格遵守规定,确保无菌室内的工作环境和实验结果的准确性。

细胞培养无菌操作基本技术

细胞培养无菌操作基本技术

细胞培养无菌操作基本技术细胞培养是现代生物学研究中常用的一种实验技术,能够使细胞在体外条件下生长和繁殖。

无菌操作是细胞培养过程中非常重要的一项技术手段,可以保证细胞培养环境的无菌纯净,避免细胞被外部微生物污染。

本文将介绍细胞培养中常用的无菌操作基本技术,并结合实例进行详细说明。

无菌操作基本技术主要包括以下几个方面:1.实验前准备在进行无菌操作前,首先需要准备好实验所需的培养基、培养器具和其他实验工具。

这些器具和工具需要经过高温高压灭菌处理,以确保其无菌。

此外,实验人员还需佩戴无菌手套、穿戴无菌实验服,并对实验台面进行彻底的清洁消毒,保持实验环境的无菌。

2.灭菌操作在进行无菌操作前,需要对培养器具进行灭菌处理。

常用的灭菌方法有干热灭菌和湿热灭菌两种。

干热灭菌是将培养器具置于高温烘箱中,持续加热若干小时,以达到灭菌目的。

湿热灭菌则是将培养器具置于高压高温的蒸汽中,进行高压灭菌。

此外,对于一些无法耐受高温高压的培养器具,还可使用化学灭菌方法,如使用过氧化氢和酒精进行消毒。

3.无菌操作技术在进行无菌操作时,需要遵循一定的操作规范。

首先,实验人员应将实验器具放入无菌工作台中,在UV灯的照射下进行灭菌处理。

然后,实验人员需要将自己的双手放入无菌手套中,并使用无菌皮培养工具进行操作。

接下来,需要准备好含有培养基的培养皿,并用无菌注射器将细胞转移到培养皿中。

在操作过程中,需要注意避免造成培养基的污染,尽量减少对培养基的接触时间,以防止细菌或其他微生物的污染。

4.维持无菌操作环境在进行细胞培养过程中,需要维持无菌操作环境。

实验人员应避免在实验台面上散落细胞培养基、细胞碎片或其他可能造成污染的物质。

细胞培养箱和无菌安全柜的门不可长时间打开,以防止空气中的微生物进入工作区域。

并且需要定期对无菌安全柜和细胞培养箱进行清洁和消毒。

同时,实验室人员需要经常进行手部清洁,并定期更换无菌手套和实验服,保持实验环境的无菌。

细胞培养中的无菌操作是进行细胞培养实验的基础,能够产生可靠的实验数据,并在细胞学研究中发挥重要作用。

无菌操作基本技术

无菌操作基本技术

无菌操作基本技术1. 实验进行前,无菌室及无菌操作台(laminar flow) 以紫外灯照射30-60 分钟灭菌,以70 %ethanol 擦拭无菌操作抬面,并开启无菌操作台风扇运转10 分钟后,才开始实验操作。

每次操作只处理一株细胞株,且即使培养基相同亦不共享培养基,以避免失误混淆或细胞间污染。

实验完毕后,将实验物品带出工作台,以70 % ethanol 擦拭无菌操作抬面。

操作间隔应让无菌操作台运转10 分钟以上后,再进行下一个细胞株之操作。

2. 无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞,必要物品,例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置,其它实验用品用完即应移出,以利于气流之流通。

实验用品以70 % ethanol 擦拭后才带入无菌操作台内。

实验操作应在抬面之中央无菌区域,勿在边缘之非无菌区域操作。

3. 小心取用无菌之实验物品,避免造成污染。

勿碰触吸管尖头部或是容器瓶口,亦不要在打开之容器正上方操作实验。

容器打开后,以手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45°角取用,尽量勿将瓶盖盖口朝上放置桌面。

4. 工作人员应注意自身之安全,须穿戴实验衣及手套后才进行实验。

对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作,并选择适当等级之无菌操作台(至少Class II)。

操作过程中,应避免引起aerosol 之产生,小心毒性药品,例如DMSO 及TPA 等,并避免尖锐针头之伤害等。

5. 定期检测下列项目:5.1. CO2 钢瓶之CO2 压力5.2. CO2 培养箱之CO2 浓度、温度、及水盘是否有污染(水盘的水用无菌水,每周更换)。

5.3. 无菌操作台内之airflow 压力,定期更换紫外线灯管及HEPA 过滤膜,预滤网(300小时/预滤网,3000 小时/HEPA)。

6. 水槽可添加消毒剂(Zephrin 1:750),定期更换水槽的水。

实验用品1. 种类︰1.1. 细胞培养实验用品均为无菌,除了玻璃容器与pasteur pipet 外,其它均为塑料无菌制品。

无菌技术操作规程

无菌技术操作规程

无菌技术操作规程《无菌技术操作规程》一、目的无菌技术操作规程的目的是为了确保无菌操作的安全性和有效性,防止细菌、病毒等微生物的污染,保证实验结果的准确性和实验人员的健康安全。

二、适用范围本规程适用于实验室、手术室等需要进行无菌操作的场所,涉及到培养基制备、细胞培养、微生物实验等工作。

三、操作程序1. 理清工作流程:在进行无菌操作前,要先明确工作流程,将需要使用的器皿、培养基等准备齐全。

2. 环境准备:无菌操作需要在无菌操作台上进行,操作台表面要进行清洁消毒,保持无菌状态。

3. 个人准备:实验人员需要穿戴合适的无菌服,戴上口罩、手套等个人防护用品。

4. 器皿处理:将需要使用的器皿在一定条件下进行高温高压灭菌处理,确保器皿的无菌状态。

5. 培养基制备:在无菌操作台上进行培养基的制备过程,确保在无菌环境下完成,防止细菌的污染。

6. 细胞培养:在严格的无菌条件下进行细胞的培养和处理,避免微生物的污染。

7. 垃圾处理:将使用过的器皿、口罩、手套等垃圾按规定的程序进行处理,防止垃圾中的微生物传播。

四、注意事项1. 每一项无菌操作都需要在无菌环境下进行,防止细菌、病毒的污染。

2. 实验人员需要接受相关的无菌操作培训,并进行定期的健康检查。

3. 无菌操作需要有专门的空间和设备,确保无菌状态的维持。

4. 严格按照规程操作,不得私自更改程序。

5. 发现操作台面或器皿出现污染时,要及时清洁消毒。

五、总结无菌技术操作规程是实验室和手术室等需要进行无菌操作的场所必须严格遵守的操作规定,只有严格按照规程操作,才能保证无菌环境的稳定和无菌操作的准确性和安全性。

在无菌操作中,实验人员需要时刻保持警惕,及时发现和处理可能的污染情况,确保无菌操作的顺利进行。

无菌技术操作手册

无菌技术操作手册

无菌技术操作手册
前言
无菌技术是微生物学和生物制药学中的基础技术之一。

本操作
手册旨在向初学者介绍无菌技术的基本概念和操作方法,确保实验
室操作过程中的无菌环境,保证实验室实验的准确性和可靠性。

实验室准备
在进行无菌实验前,必须将实验室清洁卫生。

实验室清理包括
擦拭工作台面,清洗培养皿和培养管等实验器具。

在实验开始前,
必须进行消毒操作,包括工作台面、培养皿和培养管。

无菌技术操作步骤
第一步:穿戴实验室衣物
在进行任何实验工作之前,穿着适当的实验室衣服(包括实验服、实验鞋、手套等)。

务必将实验室衣物彻底清洗、烘干、消毒。

第二步:准备工作台
使用70%乙醇或1%双氧水进行消毒,擦拭实验台面时,应先从边缘开始,由外向内反复擦拭,这样可以保证台面的整体清洁。

第三步:准备培养皿和培养管
用消毒棉球沾取75%酒精,擦拭培养皿和培养管表面,在灯火下进行操作。

第四步:接种
将消毒过的工具取出,接种细菌。

第五步:封闭培养皿和培养管
将培养皿和培养管紧密地密封,防止细菌外来污染,放入培养箱或恒温培养箱中培养。

实验室注意事项
1. 实验器材必须在灯下进行操作,防止外界细菌的干扰。

2. 实验室内必须保持高度清洁,切勿将实验物品随意放置。

3. 实验过程中尽可能不将手伸入操作台内,若必须进行操作则需要在已清洗并消毒过的条件下操作。

以上为无菌技术操作手册的简要介绍,仅供参考。

在无菌实验的操作过程中,操作规范和操作规程必须严格遵守,以保证实验结果的准确性和可靠性。

细胞间-无菌操作要点

细胞间-无菌操作要点
进入细胞间前
细胞间内操作
(用酒精消毒代替酒精灯灭菌的工作方案)
实验结束整理灭菌
环境清洁:进入细胞间前半小时,超净工作台及细胞间紫外灭菌。
试剂物品进入细胞间需酒精充分消毒。
无菌溶液进入细胞间前检查是否有沉淀、絮状物或变色,如有以上情况,禁止进入细胞间。
无菌服穿戴:隔离衣、帽子、手套、口罩穿戴整齐,(帽子遮盖全部头发、手套需套住袖口)。
物品进入超净台:试剂、培养瓶及废液缸需酒精消毒
培养箱:
1.开门前,在手套及培养箱门上喷酒精;
2.缩短开门时间;减少开门次数
3.开门时细胞间内减少走动,实验室的门应为关闭状态
超净台内(不使用酒精灯,但需严格消毒):
1.操作区域用酒精擦拭,保持整洁、宽敞,并打开超净台风扇运转通风
2.所有试剂、耗材进入前必须喷洒酒精,并充分擦拭,避免出现死角
10.取用无菌物品须用无菌持物钳(若持物钳污染,酒精棉球消毒后使用)
11.废液缸应放在远离操作区的最右侧靠外位置(弃废液动作轻柔,棉球擦拭载物台
2.观察完毕后,关闭显微镜
分类整理用品
1.试剂开封使用完,盖好盖子,封口膜封口
2.废液缸倾倒
3.隔离衣展开放置
离开前检查:
1.超净台是否关闭、台面是否恢复原样
2.显微镜、水浴锅是否关闭
3.恒温箱门是否关紧
3.无菌持物钳等工具在使用前紫外灭菌
4.无菌物品一经取出,即使未用,也不可放回。
5.手及袖口不能在无菌容器上方经过。
6.枪头盒随用随关
7.无菌容器盖的内面朝上放置于台面或拿于手中
8.任何液体(特别是培养基)洒落在器械或工作台上,应及时用酒精棉擦拭;瓶口外侧有试剂滴落,也应用酒精棉擦拭干净
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细胞室无菌技术标准操作规程
一、无菌室的灭菌
1. 定期打扫无菌室:每周打扫一次,先用自来水拖地、擦桌子、超净工作台等,然
后用3%。

来苏尔或者新洁尔灭或者0.5 %过氧乙酸擦拭。

超净台上滤网需每月清洗 1 次。

2. CO孵箱(培养箱)灭菌:用75%酒精擦拭或者0.5 %过氧乙酸,再用紫外灯照
射。

3. 实验前灭菌:打开紫外灯、超净台各20-30 分钟。

在开紫外灯杀菌前,应确认无
菌室无人后方可开紫外灯杀菌。

4. 实验后灭菌:用75%酒精(3%新洁尔灭)擦拭超净台、边台、倒置显微镜的载物
台。

5 •定期检测下列项目:钢瓶之CO压力;CO培养箱之CO浓度、温度、及水盘是
否有污染(水盘的水用无菌水,每周更换);无菌操作台内之气流压力,定期更换紫外线灯管及HEPAi滤膜,预滤网(300小时/预滤网,3000小时/HEPA。

6. 水槽可添加消毒剂(Zephrin 1:750 ),定期更换水槽的水。

二、实验人员的无菌准备
1. 肥皂洗手;
2. 穿好隔离衣,放好拖鞋;
3. 用75%酒精棉球擦净双手;
三、无菌操作的要点
1. 凡是带入超净工作台内的酒精、PBS培养基、胰蛋白酶的瓶子均要用75%酒精擦
拭瓶子的外表面;
2. 靠近酒精灯火焰操作;
3. 器皿使用前必须过火灭菌;
4. 继续使用的器皿(如瓶盖、滴管)要放在高处,使用时仍要过火;
5. 各种操作要靠近酒精灯,动作要轻、准确,不能乱碰。

如吸管不能碰到废液
6. 吸取两种以上的使用液时要注意更换吸管,防止交叉污染。

细胞传代培养(消化法)标准操作规程
一、原理
细胞在培养瓶长成致密单层后,已基本上饱和,为使细胞能继续生长,同时也将细胞数量扩大,就必须进行传代(再培养)。

传代培养也是一种将细胞种保存下去的方法。

同时也是利用培养细胞进行各种实验的必经过程。

悬浮型细胞直接分瓶就可以,而贴壁细胞需经消化后才能分
瓶。

二、材料和试剂
1. 无菌磷酸生理缓冲液(PBS)
2. 胰酶-EDTA溶液(0.05%胰酶-0.53mM EDTA-4Na):以10ml 分装于15 ml 无菌离心管中,保存于-0C,使用前放在37C水槽回温。

3. 新鲜培养基
4. 无菌吸管/离心管/培养瓶
三、操作步骤
1. 传代前准备
(1)预热培养用液:把已经配制好的装有培养液、PBS液和胰蛋白酶的瓶子放入37 r水浴锅内预热。

(2)用75%酒精擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手。

(3)正确摆放使用的器械:保证足够的操作空间,不仅便于操作而且可减少污染。

(4)点燃酒精灯:注意火焰不能太小。

(5)准备好将要使用的消毒后的空培养瓶。

(6)取出预热好的培养用液,用酒精棉球擦拭好后方能放入超净台内。

(7)从培养箱内取出细胞:注意取出细胞时要旋紧瓶盖,用酒精棉球擦拭显微镜的台面,再在镜下观察细胞。

(8)打开瓶口:将各瓶口一一打开,同时要在酒精灯上烧口消毒。

2. 胰蛋白酶消化
(1)加入消化液:小心吸出旧培养液,用PBS青洗(冲洗),加入适量消化液
(胰蛋白酶液),注意消化液的量以盖住细胞最好,最佳消化温度是37C。

( 2)显微镜下观察细胞:倒置显微镜下观察消化细胞,若胞质回缩,细胞之间不再连接成片,表明此时细胞消化适度。

(3)吸弃消化液加入培养液:弃去胰蛋白酶液,注意更换吸管,加入新鲜的培养
液。

3. 吹打分散细胞
( 1)吹打制悬:用滴管将已经消化细胞吹打成细胞悬液。

(2)吸细胞悬液入离心管:将细胞悬液吸入10ml 离心管中。

(3)平衡离心:平衡后将离
心管放入台式离心机中,以1000转/ 分钟离心6-8 分钟。

( 4)弃上清液,加入新培养液:弃去上清液,加入2ml 培养液,用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬液。

4. 分装稀释细胞
( 1 )显微镜下观察细胞:倒置显微镜下观察细胞量,必要是计数。

注意密度过
小会影响传代细胞的生长,传代细胞的密度应该不低于5X105/ml。

最后要做好标记。

(2)分装:将细胞悬液吸出分装至2〜3个培养瓶中,加入适量培养基旋紧瓶盖。

(3)继续培养:用酒
精棉球擦拭培养瓶,适当旋松瓶盖,放入CO培养箱中继续培养。

传代细胞 2 小时后开始贴附在瓶壁上。

5. 悬浮型细胞的传代
(1)吸出细胞培养液,放入离心管中,离心1000 rpm 5 分钟。

( 2)吸掉上清液,加入适量之新鲜培养基,混和均匀后,依稀释比例转移至新的培养瓶中,以正常培养条件培养。

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