标本采集与转运培训

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临床微生物标本采集与运送课件

临床微生物标本采集与运送课件
留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集,不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液。
采样端口用酒精消毒;必要时,可先夹住导尿管但不能超过30分钟;将注射器针头插入采样
端口,抽吸出尿液;注入无菌杯或试管中
尿标本的运送


收集中段尿液5-10ml,及时送检。
室温保存下不得超过2小时,否则应置于4℃冰箱保存,保存时间不得超过24h。
本。
室温都有利于病原菌和污染菌会生长繁殖,因此若30min内不能及时培养尿液则必须冷藏,
但也不能超过24小时。
粪便培养标本采集与运送
粪便标本采集指征:







当病人出现以下一种情况时应该采集粪便标本进行细菌培养:
1.粪便涂片白细胞>5个/HP;
2.体温>38℃;
3.重症腹泻;
4.脓血便;
5.未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人;
• 有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便或液
• 状便的效果最好。

脑脊液标本采集与运送





采集:
按脊椎穿刺操作规程,采集约3-5ml脑脊液于3支无菌试管中,每支试管至少1-2ml,然后马
上将第2支(或第1支)送至实验室。
做脑脊液培养时,建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。
运送:
行抗菌药的经验治疗。如果24小时内报告阴性,则继续采集2套血培养。
3.可疑的亚急性心内膜炎患者每间隔30分钟至1h采集1套,连续采集3套标本。如果24小时内报
告阴性,则继续采集2套血培养。
应该采多少血量?
• 采血量是影响灵敏度最关键因素
1.成人一份标本2个培养瓶(需氧+厌氧),每瓶8-10ml,共20ml;要求至少采两份标本,即

临床标本的采集和运输

临床标本的采集和运输

XXXX
XXXXX
2
3
准备采集工具:根据采集方法准备好所需的工具,如注射器、试管、 棉签、滤纸等
遵循无菌操作原则:在采集过程中,必须遵循无菌操作原则,以避 免污染标本和感染采集人员
4床中最常用的标本采集方法之一,以下是采集过程中的注意事项 选择合适的静脉:通常选择肘正中静脉或头静脉等较大且清晰的静脉进行采血
消毒:在采血前,需要对采血部位进行消毒,以避免感染
穿刺:在消毒后,使用采血 针进行穿刺,穿刺成功后将 针头固定在静脉上
收集血液:将血液收集到试 管中,根据需要加入抗凝剂 或防腐剂等
拔针:在采血完成后,迅速 拔出针头,并压迫采血部位 5-10分钟,以避免出血和感 染
2. 尿液采集
尿液采集通常分为两种方式:留置导尿和自然排尿。以下是尿液采集的注意事项
标识:在容器上标识患者信息、标本类型、采集时 间和检测要求等
保护标本:在运输过程中,需要保护标本免受震动 、污染和光照等影响
及时送检:在规定时间内将标本送至实验室进行检 测,以保证检测结果的准确性
BRILLIANT JOURNEY ABOUT NATURE
感谢观看
THANK YOU FOR WATCHING
导师:xxx
目录
CONTENTS
1 临床标本采集前的准备
2
临床标本的采集
3
临床标本的运输
2
1
在进行临床标本 采集之前,需要 做好以下准备工

1
了解患者的基本信息:包括姓名、性别、年龄、病史、用药情况等, 以便确定采集的标本类型和数量
确定采集方法:根据标本类型和采集部位的不同,需要采用不同的 采集方法,包括静脉采血、尿液采集、呼吸道分泌物采集等

2024版新冠核酸检测标本采集培训

2024版新冠核酸检测标本采集培训
新冠核酸检测标本采集培训
目录
• 培训背景与目的 • 标本采集基本原则与规范 • 咽拭子标本采集方法 • 鼻咽拭子标本采集方法
目录
• 血液标本采集方法 • 标本保存、运输和接收流程 • 总结回顾与考核评估
01
培训背景与目的
新冠疫情现状
全球范围内持续传播,疫情防控形势严峻 无症状感染者比例较高,隐匿性传播风险大 病毒变异株不断出现,防控难度增加
止血带使用时间
止血带使用时间不宜过长,一般建议在1 分钟以内。长时间使用可能导致局部组 织缺氧、淤血等不良反应。
避免反复使用
止血带应一次性使用,避免反复使用导 致交叉感染或皮肤损伤等风险。
特殊人群注意事项
对于老年人、儿童、孕妇等特殊人群, 应特别注意止血带的使用方法和时间, 以免造成不必要的伤害。
06
个人防护与消毒情况
对医护人员在采集过程中的个人防护和消毒措施进行评估, 确保安全操作。
培训效果反馈收集渠道
1 2 3
问卷调查 向参加培训的医护人员发放问卷,收集他们对培 训内容、方式、效果等方面的反馈意见。
实操考核 通过组织实操考核,观察医护人员在实际操作中 的表现,了解他们是否真正掌握了标本采集的技 能。
05
血液标本采集方法
血液标本类型选择
静脉血
通常选择肘部静脉进行采集,适用于大多数人群,采集量适中, 可满足核酸检测需求。
动脉血
主要用于重症患者或需要特殊监测的情况,采集难度相对较大, 需专业人员操作。
毛细血管血
适用于新生儿或婴幼儿等难以采集静脉血的情况,采集量较少, 需注意防止组织液混入。
采集时间点和频率建议
THANKS
露咽喉部。
采集时间

标本的采集与运输 ppt课件

标本的采集与运输 ppt课件

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表2:妊娠期主要血浆变化指标及其机制
变化
机制 血浆运输蛋白↑ 血液稀释 体重及代谢增加
甲状腺素脂类、铜和铁蛋 白质量↑
TP,ALB降低
肾小球滤过率、肌酐清除 率上升
凝血系统机能↑
凝血因子活性↑ PT、
需要增加造成相对缺 APTT↓FIB ↑

铁、铁蛋白缺乏
血沉加快, CRP↑
1.采血后血从注射器快速注入试管, 2.混匀含添加剂的试管时用力过猛; 3.定位不准,采血不顺; 4.止血带使用时间过长,血管内溶血;
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22
5.血液与抗凝剂比例不当; 6.采血点,器具不洁; 7.采血过程有空气进入,产生泡沫;
8.全血放置时间太长; 9.离心力过大。。。。 10.标本存放,运送条件不当。
检查内容
检查内容
应用理由
晨尿
随意尿 下午2-4小时尿 留24小时尿 留12小时尿 空腹尿 餐后尿
蛋白质 镜检
细菌、亚硝酸盐、葡萄 糖消耗试验
长时间浓缩标本、阳性率高
尿液的浓度及渗透压高,胞
形态保存好 尿液中膀胱内停留时间长,细 菌有足够的生长时间,能充分 对亚硝酸盐和糖起作用
尿常规 尿胆原 代谢物定量 aDIS计数 葡萄糖 葡萄糖
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44
不合格标本拒收标准
1.标本容器标签不合格、标识信息条码器 无法读取、容器标签不完整、或没有粘 条码的标本
2.标本采血量不足于检测最小需要量的标 本或空管的标本。
3.抗凝血中有凝块,严重溶血及严重脂血 并影响检测结果的血液标本
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45
不合格标本拒收标准
4.未正确使用标本采集管或标本类型错 误。

检验标本的采集储存转运和处理制度

检验标本的采集储存转运和处理制度

检验标本的采集、储存、转运和处理制度检验标本的采集一、血液标本的采集血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管.静脉血是最常用的标本,静脉穿刺是最常用的采血方法。

毛细血管采血主要用于儿童,血气分析多使用动脉血。

(一)静脉采血法1.采血步骤采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等,按试验项目要求,准备好相应的容器,如空白试管、抗凝管或促凝管等。

病人应取坐位或卧位,采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。

若用普通采血法,采血后应取下针头,将血液沿管壁缓慢注入试管内。

2.注意事项( 1 )防止溶血:造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁;淤血时间过长;穿刺不顺利,组织损伤过多;抽血速度太快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫;震荡过于剧烈等。

若用普通注射器采血后,未取针头直接将血注入真空管内,也易造成溶血.体内溶血属合格标本,但应在报告单上注明。

( 2 ) 避免充血和血液浓缩:采血时应动作迅速,尽可能缩短止血带使用时间。

用止血带压迫时间最好不超过半分钟,否则将使生化结果升高或下降。

( 3 )若病人正在进行静脉输液,不宜在输液同侧手臂采血;若女性病人做了乳腺切除术,应在手术对侧手臂采血。

( 4 )采血的体位:体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中的许多指标发生改变。

一般采取直立位采血,其二标本的测定值比卧位高 5 %~ 15 %.因此,采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位),以及体位的一致性。

( 5 )采血时只能向外抽,决不能向静脉内推,以免注入空气,形成气栓而造成严重后果。

( 6 )很多生化成分受膳食影响,因此,采血前要确认病人是否空腹。

(二)动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点,但多选择肱动脉和桡动脉。

在摸到明显搏动处,按常规消毒,左手固定搏动处,右手持注射器,针头成 60 °角刺入,血液将自动进入注射器内.采血注意事项见血气分析部分。

临床微生物标本的采集,储存和转运

临床微生物标本的采集,储存和转运

临床微生物标本的采集,储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理,但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者,可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒,严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本,以免皮肤表面正常菌群的污染,造成混淆和误诊。

2.2正常菌群寄生部位:采集时应特别小心;应明确检查的目的菌在进行分离培养时,采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。

3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。

3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时,应注意对局部及周围皮肤的消毒,严格进行无菌操作;3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时,如窦道标本,应从窦道底部取活组织检查,而非从窦道口取标本,以免受皮肤表面正常菌群的污染,造成混淆和误诊;3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌,或使用一次性无菌容器,不能用消毒剂或酸类处理。

标本中也不得添加防腐剂,一面降低病原菌的分离率。

4-适量标本4.1标本采集应足量。

标本量过少,可能会导致假阴性结果。

4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本:三1ml尿液标本:>3ml4.1.3粪标本:1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊:4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液:>5ml;4.2.2清晨中段尿:5-10ml;4.2.3粪标本:>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等):5- 10ml。

临床微生物标本采集及运送PPT课件

临床微生物标本采集及运送PPT课件
已接种的培养基放co培养箱35培养1824h55培养基的选择痰标本血巧伤口分泌物脓汁血mac淋球菌gc真菌培养血念显大便血macss院感普通营养琼脂霍乱培养血macssvib或tcbs56已经检测完的标本盖回塞子每天的标本统一放入注明当天日期的袋子里血液标本48冰库保存对亍超过保存期微生物所有的标本由生物安全员或指定人员对其进行高压灭菌后放入医用垃圾桶中再由环卫部门定期上门接收统一处理
,避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前,以晨起进食前为宜,取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量,降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查,二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好,防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检,实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内,半小时送检是可接受的,如 果送检时间超过 1 小时,则会影响结果。
注:某些细菌具有自溶酶,放置时间过长易自溶死亡,因此, 标本应立即送检,并且保温(禁止放冰箱,因脑膜炎双球 菌遇冷死亡)
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的,而尿道口有正常菌群寄生,标本的采集 必须无菌操作。

临床试验检验标本采集及运输标准操作规程

临床试验检验标本采集及运输标准操作规程

临床试验检验标本采集及运输标准操作规程全文共四篇示例,供读者参考第一篇示例:一、前言临床试验是评价药物安全性和有效性的重要手段,而标本采集及运输是临床试验的重要环节之一。

合理的标本采集和运输操作规程对于保证临床试验数据的准确性和可靠性至关重要。

为了规范标本采集及运输工作,提高临床试验的质量,特制定本标准操作规程。

二、术语定义1. 临床试验:指对人体进行的药物安全性和有效性评价的研究。

2. 标本:指用于生化检测、药物浓度测定等分析的生物组织或体液。

3. 采集者:指从受试者身上采集标本的人员。

4. 运输者:指将标本从采集点送至检验点的人员。

三、采集操作规程1. 采集前准备(1)采集者应接受相关培训,了解采集标本的目的、方法和注意事项。

(2)采集器具应事先消毒,并准备好采集所需的标本管、采血针等工具。

(3)标本采集应在合适的环境中进行,保证采集者和受试者的安全和舒适。

2. 采集过程(1)根据临床试验方案要求,确保采集正确的标本类型和数量。

(2)遵循标本采集的标准流程,依次进行手部消毒、标本采集、采集管标记等操作。

(3)采血时应注意选择适当的采血部位和针头,避免造成受试者不必要的疼痛和伤害。

3. 采集后处理(1)采集完毕后,采集者应及时将标本管密封并标记好受试者信息。

(2)遵守标本储存和运输的规定,确保标本的稳定性和完整性。

1. 运输前准备(1)运输者应对标本进行分类和包装,确保标本的准确性和完整性。

(2)运输前应检查标本信息是否完整,并与采样者信息进行核对。

2. 运输过程(1)运输标本应选择符合要求的运输工具和容器,避免标本泄漏和污染。

(2)在运输途中应避免标本受到振动和温度变化,保证标本的稳定性和质量。

(3)运输者应妥善保管标本,避免与其他物品混杂,并遵守相关安全规定。

3. 运输后处理(1)标本送达检验点后,应立即进行登记和接收,确保标本信息准确无误。

(2)对标本进行处理时应遵守相关规程,确保标本能够及时送检并得到准确分析。

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检验科2014年新开项目





血清胱抑素C测定(医保收费编码:2187 ) 临床意义: 早期诊断肾脏病 AKI早期诊断指标 肾移植患者监测 准确检测肌酐“盲区”(较血清BUN、Cr有更高的敏感 性和特异性) 化疗前肾衰的筛选 检测儿童GFR下降 初发糖尿病肾病检测(CysC检出糖尿病肾病的灵敏度为 40%,特异性为100%) 诊断先兆子痫 瘫痪患者的GFR检测 监测新生儿肾功能成熟度
需要沟通的几个问题


1、采集后的标本一定要标示清晰、完整, 至少包括姓名、科室、住院号、床号。 2、申请单字迹清晰、项目填写齐全、无漏 项。

3、输血病人要开具《输血申请单》、《输
血记录单》并与病人血标本一起送检验科。
需要沟通的几个问题
4、哪些标本是不合格标本?

标本的采集与转运
一、检验项目所用试管
检验项目所用试管
血常规管
紫色 用途 :血常规、糖化血红蛋白等。 采血后立即颠倒混匀8次。 如果血少,EDTA浓度增高, 中性粒细胞会肿胀分叶消失, 血小板会肿胀、崩解,产生 正常血小板大小的碎片, 使分析结果产生错误

促凝管
黄色 用途:快速血清分离生化免疫 标本类型: 血清 制备标本 步骤 :采血后立即颠倒混匀5次 --静置30分---离心 添加剂: 惰性胶体+促凝剂 采血量:3ml ~5ml
患者准备

5.时间
有些血液成份日间生理变化较大,因此应 相对固定采血时间。

一般以清晨空腹抽血为宜〈急症项目除 外〉。
还应考虑病人的生物钟规律,特别是激素 水平分析,如女性生殖激素与月经周期密 切相关;

患者准备



胆固醇则在经前期最高,排卵时最低;纤 维蛋白原在经前期最高,血浆蛋白则在排 卵时减少。 生长激素于入睡后会出现短时高峰。 故采血时间应在相同时间进行。

(5) 含咖啡因饮料,可使血浆游离脂肪酸增

ห้องสมุดไป่ตู้
加,并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。 (6) 食物如含有动物血液,可引起粪隐血 假阳性。 (7) 病人在采血前24h内应避免饮酒,因为 饮酒后使血浆乳酸、尿酸增加,长期饮酒 者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞 体积增加、谷氨酰转肽酶亦较不饮酒的病 人为高,甚至可以将这三项作为嗜酒者的 筛选检查。
五、粪便标本采集注意事项



1.应取指头大小的粪便送检,并注意选取有 脓血或其他异常外观的部分送检。 2. 粪便标本不应混入尿液,否则易造成有形 成分破坏。 3.大便培养标本要采集由脓液、粘液的部分 送检。 4.避免混入消毒剂,造成结果误差。 5.严禁用棉棒取标本。
六、痰液标本采集注意事项
患者准备

持续性影响,如激烈运动后使CK、LDH、 ALT、AST和GLU等的测定值升高,有些恢复 较慢,如ALT在停止运动1h后测定,其值仍 可偏高30%~50%
患者准备


2.饮食 多数试验要求在采血前禁食12h,因为饮食 中的不同成分可直接影响实验结果。 (1) 餐后血液中ALT、GLU、BNU、Na等均 可升高,但空腹达24h以上,可出现低血 糖,血中TG、游离甘油及脂肪酸可增高。
谢 谢
患者准备



(2) 高脂餐后2~4h采血,多数人ALP含量 增高。如检测血脂成分应禁食含高脂肪食 物3天。 (3) 高蛋白质餐使血尿素、血氨增加,但 不影响肌酐含量。 (4) 高比例不饱合脂肪酸食物,可减低胆 固醇含量(蔬菜、水果、鱼、奶);香蕉、 菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍。
患者准备




4、标本交接: 实验室人员在接受标本时应严格 执行核对、签收制度; 对检验申请要认真审核,确认标本质量是否 符合要求,待检项目与标本是否相符,避免血少、 空管、污染等情况; 对不能接受的标本应注明拒收原因,并通知 临床重新采集标本。应记录收到标本的日期和时 间,同时应记录标本运送人和接受人; 对于拒收的标本记录拒收理由。
四、尿液标本采集注意事项



根据检测项目不同,尿液标本留取方法可分为晨 尿、随机尿、24小时尿、无菌尿。 (1) 晨尿:为住院病人留尿的主要方法,早晨起 床后收集第一次尿,做常规检测,但留取至送检 时间不宜超过2小时。(早7:00-7:30分,尿杯1/3) (2) 随机尿:多为门诊就诊病人的留尿检验方法。 (静脉滴注大剂量青霉素、VitC时可影响尿蛋白、 尿糖及尿隐血结果,应尽量避免)。
患者准备



6.生理差别的影响: 不同年龄组的个体及妇女的妊 娠期、月经期,血液成份有一 定的生理差异,应注意与病理情况区别。
所以检验申请单中必须注明患者的性别, 以便于参考不同的生物参考区间。
三、血标本采集注意事项


1.采血前应核对患者姓名、床号等信息,明 确检验项目、标本要求及需血量。 2.建议使用“真空采血管”采集血液标本。 采静脉血时止血带结扎过久,可引起检测 结果的误差。
七、脑脊液、浆膜腔液、关节液

由临床医师穿刺采集,注意避免混入血液, 采集后立即送检。
如做细菌培养,应无菌采集标本。如果预 计穿刺液会凝固,应预先加入肝素防凝。

八、标本保存与运送

标本保存和运送是检验质量保证的重要环 节之一。由于采集的标本受各种因素的影 响,可使检验结果引起误差,因此必须正 确掌握标本保存和运送。

1) 唯一性标志(条形码)错误或不清楚的;脱落、丢失 的。 2) 用错标本容器的(如用错真空采血管);容器破损难以 补救者。 3) 溶血、脂血严重者。 4) 抗凝血中有凝块;该抗凝血未加抗凝剂者;或与抗凝 剂比例不正确者。 5) 标本量不足者。 6) 该加防腐剂而未加防腐剂导致标本腐败者。 7) 不应接触空气的接触了空气。 8) 细菌培养被污染者。 9) 输血、输液中采集的标本。 10) 采集标本后送检间隔过长者。
血标本采集注意事项
3.

标本溶血常见原因:
采血不熟练 ;注射器血急速注入试管;试 管混匀用力过猛;从已有血肿的静脉采血; 采血量不足后二次采血;穿刺处所用消毒 液未干;注射器和针头连接不紧采血时空 气进入产生泡;采血用针头过细;静脉穿 刺不顺利等原因均会引起溶血,溶血会影 响部分检测项目的准确性。
血标本采集注意事项

4. 特别注意:采血不能在输液的同侧进行, 更应杜绝在输液管内采血,因输液成分会 影响检测结果(使相应的结果偏高,如输K+、 Glu时,可使所测K+、Glu明显增高),或使 血液稀释结果偏低。
血标本采集注意事项


5. 血液培养的样品要采用无菌技术,防止 污染。 6.葡萄糖耐量测定:试验前三天正常饮食, 试验当日清晨空腹抽血2ml,将75克葡萄糖 溶于300ml温水中嘱病人一次服下,立即记 录时间;然后分别在服糖后60、120、180 分钟,各抽自凝血2ml,试管上标明时间标 记,立即送检。
九、标本的运输


1.标本应视为具有生物危害的物品,运输时 需要用专用的标本转运箱(有盖、牢固、 防渗漏,防震荡、防污染、防丢失,并有 专门的生物安全危害标识), 运输过程中 要严防破损泄漏。 2.微生物检验标本应避免污染。 3.运送标本时,应确认标本容器的盖子严密, 避免标本外溢造成污染。
标本的运输



1.一般留取清晨第一口痰。 2. 起床后首先用清水漱口,然后用力将气管内深 部的痰液咳出,不可吐入唾液,将其全部置于洁 净、不吸水容器中,尽快送检。 3. 用于细菌培养的痰标本,应使用微生物实验室 提供的消毒专用盒。注意在留痰之前不要打开、 不要接触容器内层以免污染,标本留取后立即将 容器盖好并及时送检。 4.微生物培养取样应在抗生素等药物治疗开始之 前,如已用药,则应选血液药物浓度最低水平时 采样。
附加说明





1.标本采集送出后需追加检验项目的,应在标本 采集当天上午11点30分以前通知实验室。并补送 检查申请单、记账单至检验科相应实验室。 2.如对检验结果有异议,请在下列标本储存时间 之内与检测实验室核实,如需要应重新采集标本 复检。 检验科标本储存时间: 生化、免疫检测标本保留7天; 血液分析、血凝标本保留24小时; 尿液、粪便等体液标本不保留。
血凝管




用途:PT,APTT,TT,Fib。 抗凝剂:枸橼酸钠。 抗凝比例:1:9。 采血量:0.9ml。 采血后颠倒混匀8次, 尽快送检。
血沉管




用途:红细胞沉降率测定。 抗凝剂:枸橼酸钠。 抗凝比例:1:4。 采血量:1.2ml。 采血后颠倒混匀8次, 尽快送检。
尿液标本采集注意事项


d. 将全部标本混合均匀,准确量取全部尿 液的尿量,记载于容器上,从中取约5毫升 尿液于洁净干燥的容器内尽快送检。(注: 如果不能准确量取的尿量总体积,请称量 尿的重量)。 (4)无菌尿:用于尿培养检测,使用容器 必须为无菌容器(由实验室提供)。尿液 留取时,前段尿弃去,留取中断尿于无菌 容器中送检。
免疫生化管
用途:常规生化免疫测定(肝功、 脂糖、肾功、ASO/RF等) 抗凝剂:肝素 采血量3~5ml 采血后颠倒混匀8次, 尽快送检。

二、患者准备
1.病人状态: 一般要求在安静状态下采集标本。如 患者处于高度紧张的状态时,可使Hb、 WBC增高。 运动能影响许多项目的测定结果,这种 影响可分暂时性和持续性两类:暂时性影 响如使血浆脂肪酸含量减少;丙氨酸、乳 酸含量增高。
尿液标本采集注意事项



(3)24h尿:主要用于化学组分的测定, 亦用于某些需要浓缩检查项目。 根据不同检验目的加用合适的防腐剂,如 生化项目需添加约5~10ml甲苯防腐; 麝香草酚0.1g加于100ml尿供抗酸杆菌浓集 检查。
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