浮游生物调查方法
鱼类浮游生物调查
鱼类浮游生物调查
30m 以浅
海域
浅水Ⅰ型浮游生物网 垂直取样 30米以深
海区
大型浮游生物网 垂直取样 用双鼓网 倾斜取样
调查方式和网具 D 大型浮游生物网自海底至海面垂直采样 I
浅水Ι型浮游生物网自海底至海面垂直采样 B
双鼓 (Bongo)网自海底至海面垂直采样 S
采水
样品采集
定性采样 一般在海水表层（）或其它水层进行水平拖网，船速为。
所用网具、水层及拖网时间应分别根据调查的目的和调查区鱼卵和仔、稚鱼密度来决定。
定量样品 由海底至海面垂直或倾斜拖网。
落网速度为0.5m/s ；起网速度为。
并记录于表。
样品处理
样品用中性甲醛溶液固定，加入量为样品体积的5%。
海洋生物资源调查-第3章 鱼类浮游生物调查及评价(专业知识模板)
种类鉴定
主要鱼类浮游生物应鉴定到属或科。 2.2 调查要素
包括鱼卵和仔、稚鱼的种类组成和数量分布。 3 采样
3.1 采样设备
网具 30m以浅海域,应采用浅水Ι型浮游生物网垂直取样， 30m以深海区,应采用大型浮游生物网垂直取样或用双鼓网 倾斜取样。此外可根据海区位置或深度、调查的性质、目
Na——全网鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒(ind)或尾(ind)； S——网口面积,单位为平方米（m2）； L——流量计转数； C----流量计校正值。
海洋生物要素调查及评价
水平拖曳样品
以粒/网（ind/net）或尾/网(ind/net)计算。 6 填写报表
按本部分的有关规定填写报表； 7 7.1 分布图绘制
是衡量亲鱼资源量大小和预报补充资源量所必需的资料。
海洋生物要素调查及评价
2
2.1
技术要求和调查要素
技术要求
垂直或倾斜拖网深度
水深大于200m的海区拖网深度为200m至表垂直拖网或斜 拖，水深小于200m的则由底至表垂直拖网或斜拖。 水平拖网深度 水平拖网深度为0m3m层。
垂直或倾斜分段拖网水层
根据测站深度、调查性质和目的的不同来确定.
平面分布图一般用等值线或不同量级的圆圈符号表示。
等值线的取值标准如下：
a)鱼卵和仔、稚鱼总量（单位为 ind/m3或ind/100m3）：1， 5，10，25，50，100，250，500，1 000，5 000；
海洋生物要素调查及评价
b) 鱼 卵 和 仔 、 稚 鱼 主 要 科 、 属 或 种 ( 单 位 为 ind/m3 或
c) 数量小于上述等级时，可用“ +”标在测站上，以示出现。
浮游生物资源调查及水质评价
浮游生物资源调查及水质评价作者：张武敬来源：《山西农业科学》 2014年第11期张武敬（运城市水务局水产站，山西运城 044000）摘要：浮游生物的群落组成、现存量、优势种及多样性都可作为水质评价和营养水平的重要标志。
分别在太原市、清徐县和山西农业大学思想湖（太谷）中采取水样，通过在显微镜下检查浮游生物的群落组成、优势种，对水体的健康程度做出判断。
结果表明，清徐鱼苗育种场的水体中检测出浮游植物29种，隶属5个门，蓝藻门较多，有17种，浮游动物27种，以桡足为主，有10种；太原和思想湖池中浮游动物量很大，太原有25种，思想湖中有31种，均以轮虫和桡足类为主。
蓝藻对水质稳定的影响较大，且死后会释放大量藻毒素。
轮虫和桡足类对养殖主体都是很好的饵料生物，能为鱼虾提供较为充足的营养。
关键词：池塘养殖；水质评价；浮游生物中图分类号：Q179.1 文献标识码：A 文章编号：1002-2481（2014）11-1197-03池塘中的浮游动、植物，周丛生物、底栖动物和水生细菌等，是组成池塘渔业生态系统的重要饵料生物基础，也是物质和能量向养殖终极产品输送的生物通道。
浮游植物作为水体中的初级生产者，可向水体中提供氧气，参与水体中的物质循环和能量转化[1]，在水生态系统中发挥着重要的作用，同时也是鱼、虾的天然饵料[2-4]，其数量变化会直接影响渔业资源量[5-6]。
浮游生物是水域生态系统中重要的生物组成部分，其在物质转化、能量流动和信息传递等生态过程中起着至关重要的作用，浮游生物的种类变化情况是水体的一个重要表征指标[7-8]。
水体中过量的浮游植物会使水体透明度降低，水质恶化、缺氧，导致毒素形成[9]。
在渔业生态系统中，生物群落中的生物在种间保持着各种形式的相互联系，共同参与对环境的反应，组成一个具有相互独立的成分、结构和机能的“生物社会”[10]。
群落与环境之间互相依存、互相制约，共同发展，形成一个自然整体。
浮游生物与水质的关系非常密切，有很多种类对水体环境变化很敏感，水生生物已被广泛应用于水环境监测。
淡水水生态调查方法
淡水水生态调查方法一，浮游生物部分（一）浮游植物、原生动物与轮虫1，定性样品采集与保存25号浮游生物网在水面下约0.5 m内以适当的速度作“∞”字形来回拖动1-3min，获得的浓缩样（约30-50ml）即为定性样品。
甲醛（4%）或鲁哥氏液（适量）现场固定，或活体带回实验室及时镜检。
2，定量样品采集与保存（1）采集与保存：用有机玻璃定深采水器采集表层或混合水样。
水样量：一般1000ml（贫营养水体应酌情增加水量），加入鲁哥氏液（长期保存样品也可用甲醛溶液）现场固定，避光，避热，带回实验室。
鲁哥氏液：6g 碘化钾+4g 碘+100ml水，1L水样中加入10-15ml。
浓缩鲁哥：样品量大时野外采样用，60g 碘化钾+40g 碘+100ml水，1L水样中加入1-1.5ml。
（2）沉淀浓缩处理设备：浮游生物沉淀器、吸耳球、虹吸管。
沉淀时间：24~48 h（禁止任何形式的搅动）。
沉淀完成后用虹吸管将上层清液小心吸出，下层沉淀摇动后转入50ml样品瓶用上清液冲洗三次沉淀器并转入样品瓶。
浓缩注意事项：浓缩最终体积视藻类多寡而定，藻多则最终样品体积大于50ml，藻少则小于50毫升；可以用透明度做相对的参考指标，以镜检时每个视野（40倍物镜下）有十几个藻为宜。
保存注意事项：①瓶塞要拧紧；②长期保存时加入甲醛溶液（体积分数2-4%）（二）浮游甲壳动物1，定性样品采集与保存13号浮游生物网（孔径0.112mm），水面下约0.5 m内，“∞”字形来回拖动，1-3min，加入5%甲醛固定。
2，定量样品采集与保存采不同水层水样10-50L用25号（注意，与定性网不同）浮游生物网过滤（滤缩法）——个体大，密度较低。
过滤后的生物网放在水中洗2-3次，多余的水滤过之后，网底管中的液体也放入样品瓶中。
加入甲醛（5%）固定。
二，理化参数部分总磷TP、总氮TN、正磷酸盐PO4-P、硝酸盐氮NO3-N、亚硝态氮NO2-N、氨氮NH4-N、化学需氧量COD、生化需氧量BOD、总有机碳TOC、总无机碳TIC、溶解氧DO、pH、氧化还原电位ORP、电导率CoND、水温、透明度SD、水色等，可酌情选择部分或全部参数。
第三章 鱼类浮游生物调查及评价(海洋生物资源调查技术)
b) 鱼 卵 和 仔 、 稚 鱼 主 要 科 、 属 或 种 ( 单 位 为 ind/m3 或 ind/100m3)：1，5，10，25，50，100，200，300，400 ，500，1 000；
c) 数量小于上述等级时，可用“+”标在测站上，以示出现 。
d) 上述取值标准，可视具体情况酌情增减。 7.2 圆圈的取值标准如下： a) 鱼卵和仔、稚鱼总量(ind/m3或ind/100m3)为： ＞01，＞110，＞1025，＞2550，＞50100，＞100250， ＞250500，＞5001 000，＞1 0005 000，＞5 000；
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鱼卵、仔稚鱼的研究工作的目的和意义
➢ 了解有关胚胎发育和仔鱼的形态、分类及其生长和死亡生理、生态习 性等；
➢ 从研究海洋水域的生态学出发，研究鱼卵、仔鱼作为被捕食者、捕食 者以及评价污染作用的指标；
➢ 作为养殖对象，从水产养殖的苗种需要出发，也要研究选育良种的鱼 卵和仔鱼；
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3）卵膜特征 海产鱼类的卵膜，通常较薄，表面光滑而透明。。 4).卵黄结构 由于卵黄含量的丰富程度不同，卵黄的构造
和形态也不相同。 5) 油球 卵内有无油球及其数量、大小、色泽和分布都是鉴 定卵子的重要依据，如牙鲆，只有1个大油球，而条鳎则有 几十个小油球。
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6) 卵黄间隙 卵黄间隙的大小在同种鱼或不同种鱼而有差异。 7).胚胎的特征 胚胎形成后，是鱼卵整个发育期中外部形态比
在鉴定计数过程中，遇到发育不好的坏卵均要计入总量。
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5 资料整理 5.1 丰度中鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒 每立方米或尾每立方米（ind/m3）； N——全网鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒或尾（ind）； V——滤水量，单位为立方米（m3）。
浮游动物的采样方法
浮游动物生物量的测量方法自赵文《水生生物学》现存量：单位面积或体积中所存在生物体的数量或质量。
现存量若以个体数表示则可称为丰度或（数量）密度，单位为个/L。
若以质量表示则可称为生物量，单位为mg/L。
采集方法：一采水器采水后沉淀分离（适用原生动物、轮虫等小型浮游动物）；二用网过滤（适用于枝角类、挠足类等甲壳动物）。
仪器：采水器，（25#）浮游生物网，显微镜，计数框（计数原生动物用0.1ml计数框，计数轮虫和甲壳动物用1ml计数框）解剖镜，毛细管，目测微尺一采集1 设站根据浮游动物的分布设站。
2 采水层次由水体的深度决定。
切不可之采一个表层或一个底层水样。
（据夏季调查，东湖B站（水深4m左右），在2m的水层区，甲壳动物的数量约占31%，而入2m一下的水层占69%左右。
同时还发现，在夏季，一般幼体喜欢在表层，成体在深层。
）分层方法：是每隔0.5m或1m,甚至2m取一个水样加以混合，然后取得一部分作为浮游动物定量之用。
许多水库或深水湖泊，水深20m以上，这种水体在夏季及冬季存在温跃层（或称变温层）。
由于在温跃层一下缺乏光照，浮游植物数量极少，依赖植物生存的浮游动物数量也相应减少。
如果从养殖角度而言，只取温水层以上的水层就足够了。
3 采水量浮游动物不但种类组成复杂，而且个体大小相差也极悬殊。
因此要根据它们在水体中的不同密度二采不同的水量。
（目前计数原生动物、轮虫的水样量以1L为宜，枝角类、桡足类则以10~50L较好。
）4 采集时间采样时间要尽量保持一致。
一般在上午8:00~10:00进行为好。
在长江中下游采集，如果采集四次，则春、夏、秋、冬各一次。
如果只采一次，则应在秋季（9、10月）进行为好。
（这是因为9~10月正是鱼类摄食旺季，为鱼类生长的最佳时期，如果此时有较高的现存量，则可认为该水体中有较大的供铒能力。
）浮游动物样品的固定，原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林，加量同浮游植物（一般可与浮游植物合用同一样品）。
第三讲2-水生生物调查研究
成蜡叶标本，可用浸制液浸泡。 标本贴上标签。
四、种类鉴定 用新鲜标本进行鉴定。所有标本应鉴定到种。 五、称重 1、鲜重 按种类称重。称重前放干燥处阴干，在采样当天完成。 2、干重 称取子样品(不少于样品量的10％)，置105℃干燥箱中干燥48 h或直到恒
录表。
2、计算生物量
1）浮游植物生物量计算 2）浮游动物生物量计算 原生动物、轮虫可用体积法求得生物体积，比重取l，再根
据体积换算为重量和生物量。 甲壳动物可用体长一体重回归方程，由体长求得体重(湿重)。 无节幼体一个可按0.003 mg湿重计算。
大型水生植物调查
一、主要试剂与器具
值。 枝角类、桡足类：5 mL计数框分若干次全部计数。 无节幼体：数量不多，全部计数；数量很多，可稀释计数3～
5片取平均值。 注意： 计数前，样品摇匀，吸出迅速准确； 计数框内无气泡，也不应有水样溢出； 计数两片取平均值，但每片结果与均数之差不大于土15％，
否则应计数第三片。
样点的间距一般为100～200 m。没有大型水生植物 分布的区域可不设采样点。
2、定量采样 挺水植物：用l㎡采样方框采集。 沉水植物、浮叶植物和漂浮植物：用采样面积为
0.25㎡的水草定量夹采集。 注意： 每个采样点采集两个平行样品； 采集的样品除去杂质装入样品袋内，沉水植物放盛
集；每个点采样10～50L，用25号浮游生物网过滤浓缩； 定性样品用13号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集。 原生动物、轮虫和无节幼体：定量可用浮游植物定量样品， 单独采集取样1L；定性样品用25号浮游生物网采集。
五、浮游动物定性定量分析
浮游动物和浮游植物调查方法
个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平
均每个视野有5-6个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野不超过1-2个时，要数200个视野以上，
数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都
不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转
入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀
器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30
或50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 间、地点、采水量、池号和样品号等。
例：计数第一个片为250个，计数第二片为 246个 则两片的均数为（250+246）/2=248 均数与第一片之差：248-250= -2 均数与第二片之差：248-246=2 则：-2/248= -0.0081即 -0.81% 2/248=+0.0081 即 0.81% 因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应 视为计数结果。
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移
动台的显微镜。
经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。
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七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移 0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2 动台的显微镜。 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后 轻拭或用水冲净。
虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一端 放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经 用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移 开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些 微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于 水面。虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 应使清淮一滴一滴地流下。吸出的清液要用一洁 净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可 重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
数横条，最少不少于5 数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
浮游动物定量：
八、结果统计： 定性结果： 定量结果：个/L， 定量结果：个/L，mg/L
例：计数第一个片为250个，计数第二片为 例：计数第一个片为250个，计数第二片为 246个 246个 则两片的均数为（250+246） 则两片的均数为（250+246）/2=248 均数与第一片之差：248均数与第一片之差：248-250= -2 均数与第二片之差：248均数与第二片之差：248-246=2 则：则：-2/248= -0.0081即 -0.81% 0.0081即 2/248=+0.0081 即 0.81% 因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应 因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应 视为计数结果。
六、样品处理： 1、定性样品处理 2、定量样品处理 浮游植物样品 浮游动物样品
浮游植物样品 所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置，使浮 游植物完全沉淀。 沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2 沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2）。如无 沉淀器也可用甘杯、烧杯或在原水样瓶中 静置沉淀。
沉淀器应置于平稳处，避免摇动。水样倾入二小 时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类附着 在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都 不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转 不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转 入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀 30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀 器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30 次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30 或50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 间、地点、采水量、池号和样品号等。
浮游生物调查方法
一、调查目的： 浮游生物种类和数量与环境关系。 二、调查的主要内容： 定性调查 定量调查
三、调查工具
1、采水器
2、浮游生物网
3、透明度盘
4、标本瓶
5、固定液 鲁哥氏液 甲醛 3%-5% 3%6、其他：
四、采样点选择 五、样品采集： 1、定性样品采集 2、定量样品采集：浮游植物，浮游动物。
首先将计算瓶用左右平移的方式摇动100-200次， 首先将计算瓶用左右平移的方式摇动100-200次， 摇均匀后立即用0.1毫升吸管从中吸取0.1毫升置入 摇均匀后立即用0.1毫升吸管从中吸取0.1毫升置入 0.1毫升计数框内，在400-600倍的显微镜下观察计 0.1毫升计数框内，在400-600倍的显微镜下观察计 数，每个水样标本计数两次（二片），取其平均 值，一每片计数100个视野，但具体观察的视野数 值，一每片计数100个视野，但具体观察的视野数 以样品中浮游植物多少而酌情增减，如果平均每 个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平 个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平 均每个视野有5 个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野有5-6个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野不超过1 个时，要数200个视野以上， 均每个视野不超过1-2个时，要数200个视野以上，