痰培养质量控制-简易
痰液及下呼吸道分泌物培养简易操作规程

、痰液及下呼吸道分泌物培养标准操作流程1观察标本合格后操作。
一般为晨痰,再留取痰之前刷牙、反复漱口,应从气管深部咳出痰,吐进无菌容器内送检。
涂片白细胞小于10,上皮细胞大于25 为不合格痰,相反白细胞大于25,上皮细胞小于10-25 为合格痰标本。
2点燃酒精灯,尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌—待冷却后—取痰液—接种到血平板、中国兰平板(或麦康凯平板上)。
平板划线分离培养:(1)用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线,在第二三区依次用接种环划线。
(2)每划一区域应将接种环烧灼一次,冷却后再划下一区域,每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
(3)划线完毕将平板加盖倒置(琼脂平板得底部向上)于35°C 培养18-24 小时。
4观察菌落特征涂片染色,确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验---- 报告结果。
便培养标准操作流程1、收取有粘液或脓血、稀水粪便标本。
2、点燃酒精灯,尽量保证无菌中间。
3、接种环灭菌一待冷却后一取粪便一接种到血平板、SS平板、中国兰平板(或麦康凯平板上)。
平板划线分离培养:(1)用接种环将标本涂布在平板第一区域并作数次划线,在第二三区依次用接种环划线。
2)每划一区域应将接种环烧灼一次,冷却后再划下一区域,每一区域得划线应接触上一区域得接种线2-3 次使菌量逐渐减少以形成单个菌落。
(3)划线完毕将平板加盖倒置(琼脂平板得底部向上)于35°C 培养。
4培养18-24 小时后观察菌落特征涂片染色,确定阳性菌、阴性菌、球菌还就是杆菌后鉴定种属。
5做药敏试验--- 报告结果。
尿培养标准操作流程1收取晨尿第一泡清洁中段尿。
(把外阴用肥皂清洗一遍,再用清水清洗两遍,待干或用干净布擦干)用导尿管得病号需新换导尿管后取标本2点燃酒精灯,尽量保证无菌中间。
3接种环灭菌一待冷却后将标本混匀,用定量接种环取尿液1ul(大约一接种环)一接种到血平板,接种环灭菌---待冷后取标本接种到中国兰平板(或麦康凯平板上)。
痰涂片检查与质量控制

(二) 室间质控:
质控模式:
跨国 参比 实验室
每年每省抽查一个县
国家 结核病 参比实验室
省(市、>1 次/年 地(市)
自治区)
细菌学
参比实验室
实验室
2 次/
每年抽查每地(市)一个县
县(市) 细菌学 实验室
质控范围: 1. 督导内容: —实验室布局 —实验室安全防护和污染物处理
—涂片、染色操作 —显微镜维护状况 —抽取痰涂片复验 —实验室日常工作记录(包括室内和室间质控) 2. 督导方式: —现场督导 上级实验室检验人员赴基层实验室现场指导,抽取痰片复验。 —非现场督导 基层实验室将保存近期 3 个月的全部痰片,及实验记录,送上级实验室 复验。 国家参比实验室以非现场督导为主。省级参比室应进行现场和非现场督导,但每年应对 一定比例的地(市)和县(市)实验室,作现场督导。 地(市)对县(市)实验室的督导,原则采取现场督导形式。 3. 痰涂片室间质控: —范围、内容同室内质控。 —痰片抽取方式 现场和非现场督导均抽取 30 份痰片,包括 20 份涂阴、10 份涂阳痰片。 对一些特定的项目和课题, 可按其规定进行痰片复验。但送国家参比实验室年报表中仍按 本规定执行。 4. 评价标准:评价分为痰菌镜检结果和制片质量两方面。 —痰片镜检:阳性片符合率≥98%,阴性片符合率≥96%。 —制片质量:痰细胞,痰膜面积、厚薄、脱落合格率应≥90%,染色合格率≥95% 。
(3)痰标本性质:按脓样痰、干酪样痰、血性样痰、脓性粘液痰和水样痰分类登记。
(4)“标本镜检结果”中的“日期”为实际镜检日期。
痰培养质量控制简易

详细描述
为避免实验操作问题,应加强实验人员的培训和考核,确保其熟练掌握痰培养的 各项操作技能。同时,应定期对实验操作进行质量检查,及时纠正不规范的操作 。
04 痰培养质量控制 的未自动化技术
通过自动化设备提高痰培 养的检测速度和准确性, 减少人为误差。
基因检测技术
通过与国际接轨的质量控制标准,促 进国际间的学术交流与合作,共同推 动痰培养技术的发展。
提高科研成果的可靠性
通过严格的质量控制,提高科研成果 的可靠性和可信度,推动微生物学研 究的进步。
02 痰培养质量控制 的关键环节
痰样的采集
痰样的采集是痰培养质量控制的第一步,采集过程需要注意以下几点
采集时间:选择在抗生素使用前采集痰样,以避免抗生素对细菌生长的抑制作用。
采集方法:采用自然咳痰法,即让患者自行咳出痰液,避免使用吸痰器等强制排痰方式,以 免对呼吸道造成损伤。- 采集容器:使用干燥、清洁、无菌的容器收集痰液,避免使用含有 消毒剂或防腐剂的容器,以免对痰液中的细菌产生抑制作用。
痰样的处理
• 痰样的处理是痰培养质量控制的重要环节,处理过程需要注意 以下几点:- 痰液稀释:对于黏稠的痰液,需要进行稀释处理 ,以便于细菌的分离和培养。- 微生物去除:在痰液处理过程 中,需要去除痰液中的微生物,如唾液、食物残渣等,以免对 细菌培养产生干扰。- 培养基的接种:将处理后的痰液接种到 适当的培养基上,以便于细菌的生长和繁殖。
痰培养质量控制简易
汇报人: 202X-12-30
目录
• 痰培养质量控制的重要性 • 痰培养质量控制的关键环节 • 痰培养质量控制的常见问题及解决方案 • 痰培养质量控制的未来展望
01 痰培养质量控制 的重要性
保证实验结果的准确性
痰培养标本质量控制

痰培养标本质量控制痰培养标本质量控制1、背景信息痰培养是临床微生物学常用的一种检验方法,用于寻找痰标本中的病原微生物并进行药敏测试。
为了确保痰培养结果准确可靠,需要进行标本质量控制。
2、标本采集2.1 标本收集痰标本应采集自早晨起床后的第一次深咳嗽产生的痰液。
应向患者解释痰标本采集的目的,要求患者用口腔水漱口清洁口腔,并尽量避免采集到口腔分泌物。
2.2 标本容器选择痰标本应收集于干净、干燥、无菌的容器中。
透明或浅黄色塑料容器是常用的标本容器,容器应具备密闭性。
2.3 标本采集方法在患者编写有关信息的标签上标记标本编号、患者姓名、采集日期和时间。
请患者在标签上签名以确认标本采集的准确性。
2.4 标本送检标本采集后应立即送至临床检验实验室,或者根据医院相关规定存放在冰箱中,并确保标本不受污染。
3、标本质量控制3.1 标本数量根据患者临床症状和医生的指示,应确保每个患者至少提交两份痰标本。
3.2 标本增强痰标本质量控制中的一个常用方法是提高标本的敏感性。
可以通过让患者进行气道湿化治疗、支气管扩张、进行肺部物理治疗等方式来增强痰标本的产量。
3.3 标本存储和运输收到标本后,应及时进行镜检和细菌培养等检验。
如果不立即检验,应将标本存储在2-8摄氏度的冰箱中,尽量减少存储时间,以免影响检验结果。
在运输过程中,应确保标本不受振荡和温度变化的影响。
4、相关附件本文档包含以下附件:附件1:痰培养标本采集流程图5、法律名词及注释5.1 标本:指采集于患者体内的组织、血液、体液等样本,用于临床检验分析。
5.2 病原微生物:指引起疾病的病菌、真菌等微生物。
5.3 药敏测试:对病原微生物进行药物敏感性测试,以指导治疗方法。
6、总结痰培养标本质量控制对于准确诊断和科学治疗具有重要意义。
该文档详细介绍了痰标本采集、标本质量控制等相关内容,希望能够对临床实验室的工作人员和医务人员提供参考和指导。
呼吸内科痰标本送检的持续质量改进

呼吸内科痰标本送检的持续质量改进江苏省常州市第二人民医院 213000呼吸内科患者留取痰标本是最常见,也是非常重要的检查项目之一。
持续质量改进(continuous quality improvement,CQI)是由美国戴明博士1986年提出的。
它是在质量控制(QC)和质量保证(QA)的基础上发展起来的,在全面质量管理基础上更注重过程环节的一种新的质量管理 [1]。
针对住院患者痰培养标本送检不及时、合格率低等情况、我科专门对其实施了持续质量改进,取得了满意的效果,现汇报如下。
1 痰标本质量问题原因分析1.1 护理方面部分护理人员缺乏责任心或技术不熟练,导致标本保存不当(标本未加盖,室温下保存、保存时间过长),送检不及时,容器被污染,容器破损等。
1.2 患者方面患者神志不清,肢体活动受限,不能很好的配合咳痰。
或者无力咳痰。
1.3 医院制度方面缺乏专人管理;是否应用抗生素无标识,实践中忽略抗生素的影响。
1.4化验室因素大多数实验室在痰标本培养前不做标本质量检查(将痰液直接涂片,行革兰染色镜检),因而培养结果的可靠性不强。
杨小青[2]曾在2002年收集各临床科室痰标本共456份,经涂片染色镜检合格标本为242份,占53.1%;不合格标本214 份,占46.9 %。
在242 份合格标本中呈现纯培养或优势生长的占57.4 %,说明痰标本筛选后分离培养,可提高阳性率,减少不合格标本培养结果对临床的误导。
2 质量改进2.1引入PDCA管理循环即计划、实施、检查、处理四个阶段,加强对痰培养的科学管理[3]。
其特点是大环套小环,互相促进且呈螺旋式上升。
把痰标本送检质量作为大循环系统,留取痰标本的指导、留取标本的容器使用、护士、患者、家属是大循环中的一个个小循环系统,各个流程环环紧扣,人人把关,把整个计划工作有机地联系起来,相互协调,使上级循环成为下级循环的依据,下级循环成为上级循环的保证。
2.2 改进痰液留取方法正确采集痰培养标本是检出病原菌的关键步骤之一,能明显提高痰菌的阳性率[4]。
痰培养标本质量控制

评估结果分析及改进措施
结果分析
根据评估指标和评估方法,对痰 培养标本的质量进行综合分析, 找出存在的问题和不足。
改进措施
针对存在的问题和不足,制定相 应的改进措施,以提高痰培养标 本的质量和可靠性。
THANKS
感谢观看
标本标识
标本送检及时性
评估标本标识是否清晰、准确,以避免混 淆和错误。
评估标本送检是否及时,以确保病原菌存 活率和培养结果的准确性。
评估方法
现场观察
观察痰培养标本的采集、标识、送检等环节,以 评估其规范性和及时性。
实验室检测
对痰培养标本进行实验室检测,以评估其质量和 可靠性。
对比分析
将痰培养结果与临床诊断进行对比,以评估痰培 养标本的准确性。
患者不配合
应耐心解释采集的重要性,并指导患者正确 的采集方法。
痰液质量差
可以通过调整采集方法或改善患者呼吸道状 况来提高痰液质量。
采集过程中发生呛咳或窒息
应立即停止采集,并采取相应措施处理。
02
痰培养标本处理
标本处理流程
运输
尽快将痰液送至实 验室,避免长时间 放置。
接种
将痰液接种于培养 基上,进行培养。
如痰培养标本未能按时送达实验室, 可能影响检验结果的准确性。应尽快 与运输方联系,了解延迟原因并采取 相应措施。
如痰培养标本在运输过程中受到污染 或与其他标本混淆,可能导致检验结 果不准确。应立即通知实验室,重新 采集标本并进行检验。
损坏或丢失
如痰培养标本在运输过程中发生损坏 或丢失,应立即与运输方联系,协商 解决方案,同时通知实验室重新采集 标本。
诱导痰法
通过雾化吸入生理盐水或 其他诱导剂,使患者产生 痰液并收集。
浅谈痰液细菌学检验的质量控制

浅谈痰液细菌学检验的质量控制摘要】介绍痰液细菌学检验的质量控制要求。
检验前质量控制:标本采集和送检时限及检验申请单规范书写。
检验中质量控制:痰液前处理、涂片染色、接种、菌种鉴定、药物敏感试验。
检验后质量控制:三级报告制度和限时报告制度及规范报告单内容。
加强和临床联系,提供细菌耐药性信息,防范抗生素滥用。
目的:探讨痰液细菌学检验标准操作程序,提高质量控制意识,加强人员培训再教育。
【关键词】痰液细菌学质量控制痰液细菌学检验在检验医学中具有重要的位置,但结果的准确性不易控制,主要表现在它的高干扰性:如标本采集、运送等过程中的诸多因素都会干扰检出率和正确性,因此必须要有良好的业务素质和敬业精神,要勤于学习和探索。
痰液细菌学检验的全面质量控制是一个连续的质量管理程序,包括从患者准备、申请单书写、标本采集、保存、运送、处理和检验、结果分析和报告等过程。
本文拟从检验前、检验中、检验后三方面提出质量控制要求。
1.检验前的质量控制1.1痰液细菌学检验项目的申请要有针对性和合理性。
临床医师应在熟悉人体各部位正常菌群以及常见致病菌的基础上,结合感染患者的症状、体征,科学的提出检验申请,包括普通细菌、结核杆菌、支原体、真菌等项目,并力争在使用抗菌药物之前送检标本。
细菌检验申请单必须提供临床信息,特别说明是否使用抗菌药及其名称。
1.2正确的采集、处理与运送细菌学检查的标本是临床细菌检验成功的关键。
正确的微生物检验始自正确的标本采集。
临床医师、护士及检验师都必须通晓其要领,以便指导监督患者规范留取痰标本。
呼吸道分泌物(痰液)目前存在着严重的标本质量问题,现多采用自然咳痰法、诱导咳痰法、体位引流法、咽拭子法、气管穿刺法、纤维支气管镜抽吸及胃液抽吸法(怀疑将痰咽下的情况)等。
容器应无菌、不漏和便于密封。
标本采集后立即送检力争一小时送达,实验室应立即进行标本的质量检查及培养接种。
Lis系统标本送检签收软件程序可有效地控制标本留取、送检、前处理时限[1]。
痰培养标本质量控制精简版

痰培养标本质量控制痰培养标本质量控制收集标本痰培养的第一步是收集标本。
正确的收集方法对于获得可靠的结果至关重要。
1. 收集时机:最好在早晨醒来后收集第一口深部痰液,这样可以确保标本的浓度足够高。
2. 收集方法:尽量避免口腔和咽部的污染,使用唾液替代样本的质量很差。
必须通过咳嗽将痰液从气道中带出来,并尽量避免唾液的混入。
3. 标本容器:使用无菌、干燥、密封的容器收集标本。
请确保容器上有正确的标签,标注患者的姓名、住院号以及收集日期和时间。
4. 标本数量:尽量收集足够量的痰液,以便进行多个培养和检测。
通常,推荐收集15-20毫升痰液。
样本传送收集完标本后,及时将其送往实验室进行处理。
正确的样本传送也对痰培养结果的准确性有着重要影响。
1. 保存条件:标本在传送前需要保存在2-8摄氏度的环境中。
过长的保存时间可能影响痰液中微生物的生存和生长。
2. 运输方式:尽快将标本送至实验室。
如果距离较远,可以使用冷藏包或干冰来保持低温。
3. 标本传递说明:为了确保实验室能够正确处理标本,建议提供必要的信息,包括患者的姓名、住院号、样本的类型和收集时间等。
实验室处理实验室在接收到标本后,需要进行一系列的操作来分离和鉴定病原微生物。
1. 样本处理:,需要将样本进行分离,将液体与固体分开。
然后,通过离心和过滤等方法,分离出微生物细胞。
2. 培养基选择:根据临床症状和怀疑感染的微生物类型,选择适当的培养基进行培养。
3. 培养条件:根据不同的微生物类型,设置适当的培养条件,包括温度、湿度和氧气含量等。
4. 结果分析:根据培养的结果,进行微生物的鉴定和药敏试验,以确定感染的病原体以及其对抗生素的耐药性。
质控措施为了确保痰培养的准确性和可靠性,质控措施是非常重要的。
1. 内部质控:实验室应定期进行内部质量控制,包括采用已知菌株进行培养和鉴定的比对实验,确保实验结果正确可靠。
2. 外部质控:参加外部质量控制项目,与其他实验室进行比对,以评估实验室的准确性和可靠性。
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痰标本镜下分类(细胞数/低倍镜)
分级 A
B
C
上皮细胞(个) 白细胞(个) 判定 <10 >25 合格,可用于细 菌培养 10-25 >25 混合样本,若比 值< 1:2.5 为基本 合格,可用于细 菌培养 >25 <10 不合格,建议重 送标本
痰涂片镜下观察注意点:
• • • • • 白细胞内吞噬细菌与感染相关度高。 粘液丝缠绕或包裹的细菌可能为目的菌。 与白细胞伴行的细菌可能为目的菌。 合格样本中的单一细菌可做为目标菌。 混合样本要注意白细胞相关及视野的层次感,多关注 白细胞集中的视野。 • 细菌特殊结构形态。
痰培养分析前实验室外质量控制
如何获得合格标本? 标本就是产生检验报告的“原材料”,原材料的好坏直 接决定了产品质量。 当医生或护士交给病人一个痰杯,说吐一口痰检验检验, 病人很可能就会随便吐一口痰送至检验科,这样一个痰标 本大大地影响检验结果,会导致检验结果的不准确。那该 如何做呢?
Байду номын сангаас
痰培养的送检指征:
• 真菌:
• 念珠菌属:是口腔正常菌群。排除隐球菌,一般不能引起肺 炎,不用做进一步鉴定;除非是肿瘤患者(如:白血病)、 肺移植患者或者新生儿需要考虑。 • 隐球菌:宽厚荚膜、脲酶试验阳性。可引起肺部感染。 • 鉴定霉菌,注意排除菌株与实验室或环境有无污染(青霉菌 等)的情况,关注:
荚膜组织胞浆菌、球孢子菌:培养时间超过48h,为双向真菌,可引起肺部 感染。 烟曲霉菌:丝状真菌菌落,35℃培养24-48h时菌落为白色泛绿,72h后菌落 迅速转为褐色,中心粉末状背面为黄褐色如烟熏状,该菌为条件致病菌,感染时 患者症状重,预后差。
痰培养分析中实验室内质量控制
1.接种培养: 接种必须在II级生物安全柜中进行。
1.1尽快处理所有标本,尤其是急诊科、新入院病人和采取侵入性手 段获取的标本,要保证细菌的活力。 • 用无菌拭子挑取标本分别涂布于血琼脂平板、巧克力琼脂平板及 麦康凯平板的第一区,然后用接种环划第二、第三区;BA、Choc、 Meck置CO2、35℃潮湿环境培养。 1.2培养48小时,最好至72小时。 1.3对于侵入性方法采集的肺标本,培养延长至4天。
痰培养分析中实验室内质量控制
2.培养检查-读平板
2.1 观察培养24h后的平板;结合痰涂片镜检结果,仔细观察平板可 疑菌落生长状况:依靠溶血特征,菌落形态、菌落颜色、菌体形 态等特点区分:G+co、G+b、G-co、或G-b; 2.2 继续培养平板24-48h,为检出霉菌、慢生长菌、苟养的革兰阴 性杆菌如博德特菌属等。 2.3 继续观察培养48h的平板,可能会发现培养24h未发现的细菌形 态。 2.4用革兰染色结果解释培养结果。
革兰阴性双球菌:
• 卡他莫拉菌:检测菌落达有意义数量时经确认该菌,需要药敏试验; 其特点:菌落推动时可移动、氧化酶+、DNA酶+、不利用糖类产酸等。 • 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌:血平板上不生长或生长不好,经确认 鉴定为该菌时,不需做药敏试验。
革兰阳性杆菌:
• 奴卡菌:生长慢,该细菌可导致肺脓肿,标本脓性,有硫磺颗粒者 应高度怀疑该菌。鉴定确认需报告。 • 马红球菌:一般来自免疫抑制患者,任何数量,鉴定确认需报告。 • 棒状杆菌属: 除白喉棒状杆菌外,假白喉棒状杆菌(尿素酶阳性)、假结核棒状杆菌、 纹带棒状杆菌等均为条件致病菌,如:对来自ICU的插管患者,大量优势 菌,需鉴定报告。其他棒状杆菌、革兰阳性杆菌一般不会导致肺部感染。
1.肉眼观察 观察痰液的颜色、粘度、有无血丝和是否呈脓 性,可推测肺炎类型:如见有颗粒,则应注意可能与放线 菌属及奴卡菌属感染有关。 2.标本预处理:
2.1洗痰:于痰标本中加入适量(约10ml)无菌生理盐水,剧烈振荡 5~10s后,将生理盐水弃去(反复两次),可洗去痰中正常菌群。留 下沉淀于管底的浓痰。 2.2向洗涤过的痰液中加入等量PH7.6的1%胰酶溶液,放置37℃培养 90min,使痰液匀质化后备用。 建议以细胞学筛选代替洗痰。
苛氧革兰阴性杆菌(生长缓慢或麦康凯平板上不生长):
• 流感嗜血杆菌:巧克力平板上生长,菌体多形态,球杆菌、丝 状;卫星试验阳性,需做β -内酰胺酶实验。一般副流感嗜血杆 菌不导致肺部感染,大量出现提示培养结果将是不可信的。 • 博德特菌在血平板上生长,培养48h肉眼可见菌落;触酶和尿素 酶阳性;有临床意义。 • 巴斯德菌:为动物口腔中正常菌群,吲哚和氧化酶菌阳性;在 有基础疾病患者中,该菌可定植在呼吸道,引起鼻窦炎、支气 管炎、肺炎和脓胸。 • 艾肯菌:为上呼吸道正常菌群,很少引起呼吸系统疾病,除非 呈大量优势生长。
• 实验室外的工作由临床医生、护士完成,从临床医生 申请检验到临床护士采集送到实验室止。包括:检验 项目的申请;检验标本的采集、保存、运送和验收。 • 该阶段是分析前质量管理的关键,因为采集的标本合 格与否是保证检验质量的基础。就标本的正确采集和 运送,实验室人员应该加强与临床医生、护士沟通, 加强联系,互相配合,以确保标本质量。
痰培养分析中实验室内质量控制
3.细菌鉴定: • 在痰标本革兰染色镜检结果的指导下进行分离鉴定, 用出现炎症细胞和有意义数量的细菌来决定对培养物 的进一步处理;即选择与白细胞有相关性和有以下临 床意义数量的可疑致病菌(目标菌)做分离鉴定。
3.1 结合痰涂片镜检结果(被白细胞吞噬或伴行的细菌),挑选菌 体特征与菌落特征一致的细菌作为目标菌; 3.2 观察目标菌菌落数量,确定有临床意义的菌落类型; 3.3 确定目标菌后的鉴定步骤; 3.4 如果培养和涂片镜检结果不符合时,应重新读片。
标本运送:
• 用防漏无菌杯收集标本,贴好标本信息(条码)。 • 尽快送检,须在2小时内运送到微生物实验室。 • 痰培养不能及时接种的,储存条件为4℃环境,储存时 间不应超过24小时。 • 晨痰如果在两小时之内不能送检或接种应考虑送随机 痰(痰液留取后不能及时送检,降低了苛养菌的分离 率)。 • 原则:保持细菌活力,否则应拒收。
痰涂片镜检结果报告解释:
• 包含读革兰染色结果,注明细胞、细菌数量及评价结 果。例如: 指征 解释 鳞状上皮细胞≥10/低倍视野 提示标本被唾液污染,不再 进行培养。 鳞状上皮细胞 < 10 个 / 低倍 提示是一个好的深部痰标本 视野,可见大量多形核白细 胞 可见大量多形核白细胞 提示感染 可见胞内细菌 提示感染 大量多形核细胞,主要见革 可以肺炎链球菌,电告临床 兰阳性球菌成对或成短链排 医生 列
• 3.气管镜标本采集法 由临床医生按相应操作规程采集。气管镜标本包括支气管肺泡灌洗 液标本(BAL)、支气管灌洗液、保护毛刷标本(PSB)、支气管穿刺 活检标本。 • 取此类标本顺序应为: A.支气管灌洗液和支气管肺泡灌洗液标本(BAL): B.毛刷标本和活检标本: • 操作中避免将血带入收集液中;标本量应大于1ml;为防止污染,尽 可能采用吸入麻醉剂为佳。 • 4.小儿取痰法:用弯压舌板向后压舌,将拭子伸入咽部,小儿经压舌 刺激咳嗽时,可喷出肺部或器官分泌物粘在拭子上送检,由临床医生 采集。
标本采集:
• 标本采集应在临床工作人员指导(直视)下进行,并尽可能 在抗菌药物使用之前采集。有以下几种方法:
• 1.自然咳痰法 • 1.1晨痰最佳。咳痰前指导病人用无菌生理盐水、温开水充分漱口,有假 牙者应取下假牙。 • 1.2指导病人深呼吸数次后,用力深咳,咳出的深部痰直接吐入无菌、干 燥的广口带盖容器中,标本量≥1ML。不要在口腔中停留。 • 2.诱导痰(痰量少,无痰或咳痰困难者) • 2.1用湿牙刷和无菌生理盐水,漱口腔黏膜、舌头和牙龈约5分钟,勿用 牙膏;再用无菌生理盐水漱口; • 2.2用超声雾化器,是患者雾化吸入加温至45℃的3%~5%Nacl水溶液约 20-30ml,是痰液易于排出,用无菌杯收集诱导痰标本。
在麦康凯平板上生长良好的革兰阴性杆菌:
• 如果只有一种菌并数量达到有意义,而无其他致病菌,为肠道革 兰阴性杆菌尤其是肺炎克雷伯菌,做鉴定及药敏。 • 对于住院患者,不管是否有其他病原菌,检查有意义数量的铜绿 假单胞菌、不动杆菌、伯克霍尔德菌和嗜麦芽窄食单胞菌都应鉴 定,这些菌多为多重耐药,并可造成医院内流行。 • 如果有一种其他等量的革兰阴性菌生长,需要鉴定,可用初步生 化试验来描述细菌(如:根据在麦康凯平板上的气味和形态、菌 落色素、氧化酶、吲哚、双糖铁结果等)。
标本验收及拒收原则:
• • • • • 无标签者拒收。 标本信息不全、不符者拒收。 送检时间超过2小时拒收。 送检容器不当、溢漏、无盖者拒收。 痰标本呈水样或唾液样,有明显实物残渣、灰尘纸屑 者拒收。 • 不建议24小时内多次采集送检标本,除非痰液外观性 状出现变化,否则需要与申请医师协商处理。
痰培养分析前实验室内质量控制
常见呼吸道主要病原菌
革兰阳性球菌:
1.葡萄球菌:与白细胞有相关性的、鉴定有意义数量的金黄色葡萄球菌, 需要做药敏试验;当有意义数量(90%纯培养)的凝固酶阴性葡萄球菌, 无需鉴定到种,无需药敏,一般不具有临床意义。 2.链球菌:
2.1 β 溶血为溶血型链球菌: • A群链球菌:化脓性链球菌,致病力最强,任何数量都要报告。 • B群链球菌:婴幼儿标本检查鉴定出B群链球菌时,任何数量都要报告。 • C群、G群链球菌:主要是咽峡炎链球菌群,是人体上呼吸道正常菌群,当培养达到有意义 数量时,需报告。可引起肺部感染。 • 对于其他小菌落的β 溶血链球菌或F群链球菌不需报告,因为这些菌是上呼吸道正常菌群。 2.2 肺炎链球菌:是最常见的肺部感染病原菌,在社区获得性感染中有重要的地位;可通过 10%胆汁溶菌试验和奥普托新纸片抑制试验鉴定出。 2.3 草绿色链球菌:痰标本中的草绿色链球菌一般不具有临床意义。 2.4 肠球菌:一般不具有临床意义,不报告,除非达到90%纯培养。
痰培养质量控制
主要内容
• • • • 痰培养质量控制重要性 痰培养分析前质量控制 痰培养分析中质量控制 痰培养分析后质量控制