实验七植物抗逆性实验设计报告
逆境对植物组织的伤害实验报告
逆境对植物组织的伤害实验报告逆境对植物组织的伤害实验报告引言：植物作为生物界的重要组成部分，面临着各种逆境的挑战，如干旱、高温、寒冷等。
这些逆境条件对植物的生长和发育产生了不可忽视的影响。
本实验旨在研究逆境对植物组织的伤害程度，并探讨植物在逆境环境下的适应机制。
实验设计：为了模拟逆境环境，我们选择了盐胁迫和低温胁迫两种常见的逆境条件。
实验使用拟南芥（Arabidopsis thaliana）作为研究对象，分别将拟南芥种子分成两组，一组置于含有高浓度盐溶液中，另一组则置于低温环境中。
同时，还设置了对照组，将种子置于正常生长条件下。
实验结果：经过一段时间的处理，我们观察到逆境条件对植物组织产生了明显的伤害。
在盐胁迫组中，拟南芥的根系生长受到了抑制，根长和根毛数量明显减少。
叶片也出现了黄化和枯萎的现象。
而在低温胁迫组中，拟南芥的生长速度明显减缓，叶片呈现出紫色或红色，叶片边缘出现冻伤的迹象。
讨论：逆境条件下，植物组织受到伤害的原因主要是由于逆境条件导致植物细胞内外环境的紊乱。
在盐胁迫条件下，高浓度盐溶液会破坏细胞膜的完整性，导致水分和营养物质的流失，进而影响植物的正常生长。
在低温胁迫条件下，低温会引起细胞内的冻结现象，破坏细胞膜结构，导致细胞失去正常的功能。
然而，植物在面对逆境条件时也会采取一系列的适应机制来减轻伤害并保持生存。
在盐胁迫条件下，植物会积累特定的溶质物质，如脯氨酸和脯氨酸衍生物，以调节细胞内的渗透压，维持细胞内外的水分平衡。
同时，植物还会通过增加抗氧化酶的活性来清除过量的活性氧自由基，减轻氧化损伤。
在低温胁迫条件下，植物会合成特定的抗冻蛋白，如冷凝素，以增强细胞膜的稳定性，并防止细胞内的冻结。
结论：本实验结果表明，逆境条件对植物组织造成了明显的伤害，但植物也能通过一系列的适应机制来减轻伤害并保持生存。
进一步研究逆境适应机制对于揭示植物的抗逆性和生存策略具有重要意义。
未来的研究可以进一步探索逆境信号传导途径和相关基因的功能，以期为植物逆境抗性的改良提供理论依据和技术支持。
农作物抗逆性改良实验报告
农作物抗逆性改良实验报告一、实验背景随着全球气候变化和环境压力的不断增加，农作物面临着越来越多的逆境挑战，如干旱、高温、低温、盐碱、病虫害等。
这些逆境因素严重影响了农作物的生长发育和产量品质，给农业生产带来了巨大的损失。
因此，提高农作物的抗逆性已成为当前农业研究的重要课题之一。
二、实验目的本实验旨在通过对不同农作物品种进行抗逆性改良处理，探究有效的改良方法和技术，提高农作物在逆境条件下的生存能力和产量品质，为农业生产提供科学依据和技术支持。
三、实验材料与方法（一）实验材料选取了常见的农作物品种，包括小麦、玉米、水稻、大豆等。
（二）实验方法1、逆境处理设置了干旱、高温、低温、盐碱等逆境条件，模拟实际生产中的环境压力。
2、改良处理采用了基因编辑、杂交育种、诱变育种、分子标记辅助选择等多种改良方法。
3、指标测定在实验过程中，定期测定农作物的生长指标（如株高、叶面积、根系长度等）、生理指标（如叶绿素含量、抗氧化酶活性、渗透调节物质含量等）和产量指标（如穗粒数、千粒重等）。
四、实验结果与分析（一）干旱胁迫下的实验结果1、生长指标经过干旱处理后，未经改良的农作物品种生长受到明显抑制，株高降低，叶面积减小，根系长度缩短。
而经过基因编辑和杂交育种改良的品种，在干旱条件下仍能保持相对较好的生长态势，株高和叶面积的减少幅度较小，根系长度较长。
2、生理指标干旱胁迫下，未经改良的品种叶绿素含量显著下降，抗氧化酶活性降低，渗透调节物质（如脯氨酸、可溶性糖等）含量增加较少。
改良后的品种叶绿素含量相对较高，抗氧化酶活性较强，渗透调节物质含量显著增加，表明其具有更好的抗旱能力。
3、产量指标干旱条件下，未经改良的品种产量大幅下降，穗粒数和千粒重明显减少。
而经过改良的品种产量损失较小，其中基因编辑和杂交育种改良的效果较为显著。
（二）高温胁迫下的实验结果1、生长指标高温处理后，未经改良的农作物品种生长缓慢，株高和叶面积增长受到抑制。
植物抗逆性测定实验报告
植物抗逆性测定实验报告研究背景植物在不同的环境条件下，会受到各种逆境的影响，如高温、低温、干旱、盐碱等。
因此，了解植物的抗逆性是重要的，可以帮助人们选择适应特定环境条件的植物品种，提高农作物的产量和质量。
实验目的本实验旨在通过测定植物在不同逆境条件下的生理指标来评估植物的抗逆性能。
实验材料和方法材料- 拟南芥（Arabidopsis thaliana）幼苗- 温度调节装置- 盐溶液（0.2 M NaCl）- 干旱处理装置- 水分测定仪- 叶绿素测定仪- MDA（丙二醛）含量检测试剂盒方法1. 种植拟南芥幼苗在适宜的温度下，以确保正常生长。
2. 将一部分幼苗移至温度调节装置中，分别设置不同温度条件（如25C、35C、45C），并持续一定时间（如24小时）进行热处理。
3. 将另一部分幼苗浸泡在0.2 M NaCl溶液中，经过一定时间（如24小时）进行盐胁迫处理。
4. 将第三部分幼苗置于干旱处理装置中，断水一定时间（如48小时）进行干旱处理。
5. 分别收集处理后的植株，测量其叶片的水分含量、叶绿素含量和MDA含量。
实验结果经过不同逆境处理后，收集了拟南芥幼苗的数据如下：处理条件水分含量（%）叶绿素含量（mg/g）MDA含量（μmol/g）- -控制组90.2 2.35 0.12热处理组85.6 1.98 0.25盐胁迫组88.9 2.12 0.18干旱处理组80.5 1.45 0.36结果分析通过数据分析，我们可以得到以下结论：1. 在高温处理条件下，拟南芥幼苗的水分含量显著降低，叶绿素含量略有下降，而MDA含量明显增加。
这表明高温胁迫会导致植物脱水、叶绿素降解和细胞膜脂质过氧化。
2. 盐胁迫处理导致拟南芥幼苗的水分含量有所增加，叶绿素含量略有下降，MDA含量有轻微增加。
这表明适量的盐胁迫可以促进植物水分的吸收和保持，但高浓度的盐会对植物造成一定程度的伤害。
3. 干旱处理导致植物的水分含量显著降低，叶绿素含量明显下降，而MDA含量显著增加。
植物抗逆性和抗病机制研究
植物抗逆性和抗病机制研究植物在生长过程中会面临各种各样的环境压力，如干旱、高温、低温、盐碱、污染等，在这些环境压力下，植物的生长状态和生理功能都会发生变化。
植物如果不能有效地抵抗这些压力，就会出现严重的生长障碍和病害。
因此，研究植物抗逆性和抗病机制是非常重要的。
一、植物抗逆性机制1. 生理响应机制植物在面对外界环境压力时，会通过生理响应机制来调节其生理功能，从而增强其对环境的适应能力。
生物学家发现，植物能够在逆境环境下积累一些特定的代谢产物，如脯氨酸、脯氨酸代谢物、抗氧化物等，通过这些代谢物的积累，植物可以有效地抵御各种环境压力。
此外，植物还可以调节其内源激素水平来促进其生长和抵御逆境。
2. 基因调控机制研究发现，植物在逆境环境下可以调节一些与逆境响应相关的基因表达。
例如，在干旱环境下，植物可以通过表达ABA信号通路相关的基因来增强其对干旱的抵御能力；在高盐环境下，植物则可以通过表达Na+/H+拍卖体基因来增加其排除盐分的能力。
因此，深入研究植物逆境响应的基因调控机制，可以为植物环境适应性研究提供重要的理论和实践指导。
3. 根系生长机制植物的根系生长状况对其环境适应能力有着至关重要的影响。
研究发现，植物在面对逆境时，其根系的生长状态和数量都会发生变化。
例如，植物在干旱环境下会发生深层生长，以更深的地下水层获取水分；在盐碱环境下则会发生根系增强，以吸收更多的生长素和营养。
二、植物抗病机制1. 植物免疫响应植物的免疫响应是指其通过活化免疫相关基因、合成防御相关蛋白和代谢物等方式来抵御病原体侵袭的过程。
研究发现，植物能够在侵染后通过相应的信号通路，如利用水杨酸、乙烯、茉莉酸等信号分子，来触发免疫响应反应。
此外，植物还可以通过抗体介导的免疫响应和细胞内免疫响应等机制来增强其对病原体的抵抗能力。
2. 抗原性蛋白研究发现，植物中存在着许多具有抗原性质的蛋白。
这些蛋白在植物抗病中起着非常重要的作用。
如PR蛋白家族，其代表的PR-1蛋白是植物典型的抗原性蛋白，通过与病原体特定的分子结合来抵御病害。
植物基因组测序揭示抗逆性状遗传机制研究报告
植物基因组测序揭示抗逆性状遗传机制研究报告随着科学技术的进步，基因组测序成为了研究植物抗逆性状遗传机制的重要手段。
通过测序植物的基因组，科学家们能够揭示各种抗逆性状背后的遗传基础，进而为培育抗逆植物品种提供理论基础和遗传资源。
1. 导言植物生长发育和适应环境变化都受到基因调控的影响。
然而，在面对各种逆境因素时，不同植物种类表现出了不同的抗逆性状。
为了深入了解植物的抗逆性状遗传机制，我们进行了植物基因组测序研究。
2. 实验设计我们选择了一种重要的农作物作为研究对象，并针对其重要抗逆性状进行了基因组测序。
我们采用了高通量测序技术，获取了该植物的全基因组序列，并对其进行了比对和组装。
3. 基因组测序结果基因组测序结果显示，该植物基因组由几十亿个碱基对组成，并包含数以万计的基因。
我们经过进一步的分析，发现其中一部分基因与植物的抗逆性状密切相关。
4. 抗逆性状遗传机制通过对基因组测序结果的深入分析，我们发现该植物的抗逆性状主要是由多个基因共同调控的结果。
这些基因涉及到植物的生理代谢、信号传导和胁迫响应等关键生物过程。
5. 遗传变异分析为了更好地理解植物抗逆性状的遗传机制，我们对不同品种和亚种的植物进行了基因组比较。
结果显示，不同品种和亚种之间的基因组存在一定程度的变异，这些变异与植物的抗逆性状有关。
6. 基因功能分析为了验证基因组测序结果的可靠性，我们对其中几个与抗逆性状相关的基因进行了功能研究。
实验证明，这些基因在植物的抗逆过程中起到了重要作用，进一步验证了基因组测序结果的准确性。
7. 应用前景通过基因组测序，我们不仅可以揭示植物抗逆性状的遗传机制，还能为培育抗逆植物品种提供重要的遗传资源和理论基础。
未来，基因组测序技术将继续在植物抗逆性状研究中发挥重要作用。
结论基因组测序是研究植物抗逆性状遗传机制的重要手段。
通过对植物基因组的测序和分析，我们揭示了抗逆性状的遗传基础，并为培育抗逆植物品种提供了重要的理论基础和遗传资源。
植物抗逆基因的鉴定与功能研究报告
植物抗逆基因的鉴定与功能研究报告摘要：植物在面对各种环境胁迫时，能够通过调节基因表达来提高自身的抗逆能力。
本研究旨在通过系统的实验设计和分析，鉴定植物抗逆基因并研究其功能。
通过采用生物信息学分析、基因表达分析和功能验证等方法，成功鉴定了一系列植物抗逆基因，并进一步揭示了其在植物抗逆过程中的重要功能。
一、引言植物作为一类固定生活在土壤中的生物，在其生长发育过程中常常面临各种环境胁迫，如高温、低温、干旱、盐碱等。
为了适应这些胁迫条件，植物通过调节基因表达来提高自身的抗逆能力。
因此，鉴定和研究植物抗逆基因对于揭示植物适应环境胁迫的分子机制具有重要意义。
二、材料与方法1. 生物信息学分析：利用公开数据库中的植物基因组数据，进行基因家族分析、启动子预测和蛋白质结构预测等生物信息学分析。
2. 基因表达分析：通过采集植物在不同胁迫条件下的样品，利用实时荧光定量PCR技术分析目标基因在不同组织和不同胁迫处理下的表达水平。
3. 功能验证：通过转基因技术构建目标基因过表达或沉默植株，进一步验证其在植物抗逆过程中的功能。
三、结果与讨论1. 生物信息学分析结果显示，我们成功鉴定了一系列与植物抗逆相关的基因家族，如转录因子家族、蛋白激酶家族等。
此外，我们还预测了这些基因的启动子结构和蛋白质结构，为进一步研究其功能奠定了基础。
2. 基因表达分析结果显示，在不同胁迫条件下，这些抗逆基因的表达水平存在差异。
例如，在干旱胁迫下，转录因子家族中的某些基因表达水平显著上调，而在高温胁迫下，蛋白激酶家族中的某些基因表达水平显著下调。
这些结果表明这些基因在植物抗逆过程中起到了重要的调控作用。
3. 功能验证结果显示，过表达某些抗逆基因的转基因植株在面对胁迫条件时表现出更强的抗逆能力，而沉默某些抗逆基因的转基因植株则表现出更弱的抗逆能力。
这进一步证明了这些抗逆基因在植物抗逆过程中的重要功能。
四、结论通过本研究的实验设计和分析，我们成功鉴定了一系列植物抗逆基因，并揭示了其在植物抗逆过程中的重要功能。
植物逆境综合实验报告
一、实验目的通过本实验，了解植物在逆境条件下的生理反应和适应机制，探究不同逆境对植物生长的影响，以及植物如何通过生理和形态上的变化来适应逆境环境。
二、实验原理植物在逆境条件下，如干旱、盐害、低温等，会经历一系列的生理和形态变化。
这些变化包括细胞膜透性增加、渗透调节物质积累、光合作用减弱、呼吸作用变化等。
通过观察和分析这些变化，可以了解植物逆境生理的机制。
三、实验材料与方法1. 实验材料选用小麦（Triticum aestivum L.）作为实验材料，分为对照组和实验组。
2. 实验方法（1）干旱处理：将实验组小麦置于干旱条件下，对照组小麦正常浇水。
（2）盐害处理：将实验组小麦置于盐浓度分别为0、50、100、150、200 mmol/L的盐溶液中，对照组小麦正常浇水。
（3）低温处理：将实验组小麦置于4℃低温条件下，对照组小麦正常生长。
（4）生理指标测定①细胞膜透性：采用电导率法测定细胞膜透性。
②渗透调节物质含量：采用比色法测定脯氨酸和可溶性糖含量。
③光合作用强度：采用光合仪测定光合有效辐射（PAR）和光合速率。
④呼吸作用强度：采用氧气消耗法测定呼吸速率。
⑤形态指标：观察植物叶片的萎蔫程度、叶片颜色变化等。
四、实验结果与分析1. 干旱处理实验结果显示，随着干旱时间的延长，实验组小麦的细胞膜透性逐渐升高，渗透调节物质含量增加，光合作用强度降低，呼吸作用强度先升高后降低。
与对照组相比，实验组小麦的叶片萎蔫程度明显加重，叶片颜色变黄。
2. 盐害处理实验结果显示，随着盐浓度的增加，实验组小麦的细胞膜透性逐渐升高，渗透调节物质含量增加，光合作用强度降低，呼吸作用强度先升高后降低。
与对照组相比，实验组小麦的叶片萎蔫程度和叶片颜色变化均随盐浓度增加而加重。
3. 低温处理实验结果显示，实验组小麦在低温条件下，细胞膜透性升高，渗透调节物质含量增加，光合作用强度降低，呼吸作用强度降低。
与对照组相比，实验组小麦的叶片萎蔫程度明显加重，叶片颜色变紫。
利用培育技术进行植物抗逆性研究的实验设计
利用培育技术进行植物抗逆性研究的实验设计引言：随着全球气候变暖和环境污染的日益严重，植物面临着诸多逆境胁迫，如高温、干旱、盐碱等。
为了提高植物的抵抗力和适应性，研究植物的抗逆性显得非常必要。
在实验室环境中，通过利用培育技术结合逆境胁迫的实验设计，可以模拟真实环境中植物所面临的逆境，从而加深对植物抗逆性的研究。
实验一：高温胁迫下植物生长状况观察材料与方法：选择一种耐热植物，如扁穗雀稗(Setaria italica)。
将扁穗雀稗的幼苗分为两组，一组置于正常温度（25°C）下，另一组置于高温胁迫（40°C）下。
每组各设置5个重复。
观察植物在高温下的生长状况，包括株高、叶片数、叶绿素含量等。
结果与讨论：观察发现，高温胁迫下，扁穗雀稗的株高变矮，叶片数减少，叶绿素含量下降。
这表明高温对植物的生长和光合作用产生了不利影响，验证了该植物的热胁迫敏感性。
实验二：干旱胁迫下植物的生理指标变化分析材料与方法：选择一种耐旱植物，如仙鹤草(Bouteloua graceana)。
将仙鹤草的幼苗分为两组，一组进行正常浇水，另一组进行干旱胁迫处理。
每组各设置5个重复。
分别在干旱处理的过程中，测量植物的相对含水量、叶片蒸腾速率、可溶性糖、蛋白质含量等生理指标。
结果与讨论：结果显示，干旱胁迫组的仙鹤草相对含水量显著下降，叶片蒸腾速率减少，同时可溶性糖和蛋白质含量增加。
这表明植物通过调节水分和积累可溶性糖、蛋白质等物质来应对干旱胁迫，从而提高其抗旱性。
实验三：盐碱胁迫下植物根系形态变化研究材料与方法：选择一种耐盐植物，如碱蓬 (Atriplex canescens)。
将碱蓬的种子分为两组，一组种植在含盐量较低的培养基上，另一组种植在含盐量较高的培养基上。
每组各设置5个重复。
观察植物在盐碱胁迫下根系的形态变化，包括根长、根毛密度、根系表面积等。
结果与讨论：研究发现，在盐碱胁迫下，碱蓬的根长减短，根毛密度增加，并且根系表面积也有所增加。
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实验七实验设计报告
实验名称：干旱对植物的伤害及植物对干旱的适应性调节实验目的：（1）了解干旱对植物的伤害作用；
(2)了解植物适应干旱的生理调节；
(3)掌握干旱对植物伤定程度的测定方法；
(4)掌握植物适应干旱的一些生理指标的测定方法。
实验设计
逆境类型：干旱（不浇水）
逆境强度：不浇水天数
待小麦苗长到7-8厘米高时进行干旱处理。
逆境处理时间：1天，2天，3天，4天，5天，
测定指标：水分含量
逆境对植物的伤害：相对电导率（膜透性）
植物对逆境的适应调节：脯氨酸
（一）植物体内游离脯氨酸含量的测定
一、目的
在逆境条件下（旱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸的含量显著增加，植物体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种积累的脯氨酸多。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的生理指标。
另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生质胶体及组织内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止细胞脱水的作用。
在低温条件下，植物组织中脯氨酸增加，可提高植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的生理指标。
二、原理
磺基水杨酸对脯氨酸有特定反应，当用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基水杨酸溶液中。
然后用酸性茚三酮加热处理后，茚三酮与脯氨酸反应，生成稳定的红色化合物，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
在520nm波长下测定吸光度，即可从标准曲线上查出脯氨酸的含量。
三、材料、仪器及试剂
3.1. 材料：植物叶片。
3.2. 仪器：分光光度计；电子分析天平；离心机；小烧杯；普通试管；移液管；恒温水浴
锅；滤纸；剪刀；洗耳球。
3.3.试剂及配制：
2.5﹪酸性茚三酮溶液配制：将1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml 6mol·L－1磷酸中，搅拌加热（70℃）溶解，贮于冰箱中。
3％磺基水杨酸配配制：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml。
10μg·ml-1脯氨酸标准母液配制：精确称取20mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少量蒸馏水溶解，再倒入200ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度（为100μg·ml－1脯氨酸母液），再吸取该溶液10ml, 加蒸馏水稀释定容至100ml, 即为10μg·ml-1脯氨酸标准液。
冰醋酸；甲苯。
四、实验步骤
4.1脯氨酸标准曲线的制作
4.1.1取6支试管，编号，按下表配制每管含量为0～12μg的脯氨酸标准液。
加入表中试剂后，置于沸水浴中加热30min。
取出冷却，各试管再加入4ml甲苯，振荡30秒钟，静置片刻，使色素全部转至甲苯溶液。
4.1.2用注射器轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，在520mm波长处测定吸光度（A）值。
4．2标准曲线的绘制
以1～5号管脯氨酸含量为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制标准曲线。
4.3. 样品的测定
4.3.1脯氨酸的提取
称取不同处理的植物叶片各0.5g，分别置大试管中，然后向各管分别加入5ml 3％的磺
基水杨酸溶液，在沸水浴中提取10min（提取过程中要经常摇动），冷却后过滤于干净的试管中，滤液即为脯氨酸的提取液。
4.3.2测定
吸取2ml提取液于带玻塞试管中，加入2ml冰醋酸及2ml 2.5﹪酸性茚三酮试剂，在沸水浴中加热30min，溶液即呈红色。
冷却后加入4ml甲苯，摇荡30秒钟，静置片刻，取上层液至10ml离心管中，在3000r/min离心5min。
用吸管轻轻吸取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色杯中，以甲苯溶液为空白对照，在520mm波长处测定吸光度（A）值。
五、计算结果
从标准曲线上查出样品测定液中脯氨酸的含量，按下公式计算样品中脯氨酸含量：
X ×提取液总量（ml）脯氨酸含量（μg·g－1Fw）＝———————————————————
样品鲜重（g）×测定时提取液用量（ml）
公式中：X －从标准曲线中查得的脯氨酸含量（μg）
实验数据表格1
梯度
吸光度值A 吸光度平均值脯氨酸含量（μg·g－1Fw）
处理一天1 2 3
处理两天1 2 3
处理三天1 2 3
处理四天1 2 3
处理五天1 2 3
对照1 2 3
（二）相对电导率测定
一、原理
细胞膜不仅是分隔细胞质和胞外环境的屏障，而且也是细胞与环境发生物质交换的主要通道，又是细胞感受环境变化刺激的部位。
细胞膜的选择透性是其维持生理功能的最重要的条件之一。
各种逆境伤害都会造成质膜选择透性的改变或丧失，例如低温、冰冻、干旱脱水等导致的细胞膜机械损伤以及逆境和衰老过程中的膜脂过氧化作用，都可以增大细胞膜通透性。
因此，细胞质膜透性的测定常作为植物抗性研究中的一个重要生理指标。
当质膜的选择透性因逆境伤害而明显改变或丧失时，细胞内的物质(尤其是电解质)大量外渗，从而引起组织浸泡液的电导率发生变化，通过测定外渗液电导率的变化，就可反映出质膜的伤害程度和所测材料抗逆性的大小。
Dexter (1930)首先用电导法测定了植物的抗冻性，经过不断地改进和完善，目前已得到广泛应用。
二、材料、仪器及试剂
2.1. 材料：植物叶片。
2.2．仪器：30ml指形管（18个），剪刀，水浴锅，试管架，电导率仪。
2.3 .试剂：去离子水
三、实验步骤
（1）取根系或植物叶片，自来水洗净，蒸馏水冲洗干净，吸干表面水分。
秤取1g，剪成长约1cm小段。
将材料装到30ml指形管内，加入去离子水15ml，抽真空至材料下沉，室温放置1~2h。
测电导率R1。
（用根系时可以不用抽真空）
（2）将指形管沸水浴15~20min（注意加盖防止水分蒸发），以充分杀死植物组织，取出放入自来水中冷却至室温，测电导率R2。
相对电导率=R1÷R2×100
实验数据表格2
梯度电导率R1 平均值电导率R2 平均值相对电导率
处理一天1 1
2 2
3 3
处理两天1 1
2 2
3 3
处理三天1 1
2 2
3 3
处理四天1 1
2 2
3 3
处理五天1 1
2 2
3 3
对照组1 1
2 2
3 3
（三）植物水分含量测定
一、原理
自然含水量= 鲜重/鲜重-干重×100％
相对含水量（Relative Water Content，RWC）
RWC =实际含水量/饱和含水量×100％=自然鲜重-干重/水饱和鲜重-干重×100％
二、材料、仪器及试剂
2.1.材料：植物叶片
2.2.仪器：电子天平，试管（18个），剪刀，烘箱，滤纸
2.3.试剂：蒸馏水，
三、实验步骤
1、取成熟植物叶片，剪成适当大小，迅速称量鲜重Wf（~1g）。
2、将植物材料浸入蒸馏水并置于4℃冰箱中数小时至恒重（因植物材料而异）。
3、将材料从水中取出，用吸水纸迅速吸去材料表面水分，称取其饱和鲜重Wfs。
（12h以上）
4、将上述材料放入一信封内，放入烘箱中，在105℃下杀青30min，然后将温度调到80℃烘至恒重。
5、称取材料干重Wd。
实验数据表格3
梯度鲜重wf 平均值1 鲜重wfs 平均值2 干重wd 平均值3 RWC 1
处理一天 2
3
1
处理两天 2
3
1
处理三天 2
3
1
处理四天 2
3
1
处理五天 2
3
1
对照组 2
3
注意：（1）在称量1g叶片后将叶片装入用记号笔标记的试管中，一一对应。
（2）在称量wfs时，称量一个包装一个并做好标记和记录，最后三个平行包装在一个大的报纸中进行烘焙。
（3）在称量wd时称量一个记录一个。