扫描电镜生物样品制备步骤
扫描电镜制样

扫描电子显微镜(SEM)常规样品制备技术SEM常规制样方法(一)——试样的取材、固定、脱水和置换一、实验目的掌握扫描电镜制样过程:从取材、固定、脱水、置换、干燥、喷涂这一过程中样品怎样保持生活状态,从而得出接近生活状态的样品。
二、实验原理不论动物或植物组织,要求取材时操作必须快速,组织表面要清洁,必要时需超声波清洗,原理同TEM取材,但需强调的是SEM观察表面结构,所以应注意表面结构的清洁、完整和电镜下反应真实的形貌。
取材时动作要快、轻、准、大小在1mm-1cm之间,所用的器械要锋利、洁静,避免任何牵拉和挤揉样品表面的损伤,常用的固定剂有2-4%戊二醛和1%锇酸。
三、实验器材样品(动物或植物)、双面刀片、培养皿、l.5ml离心管、牙签、2-4%戊二醛、1%锇酸、0. 1M PBS缓冲液,乙醇、乙酸异戊酯。
四、实验步骤1、取材要求动作轻、迅速、准确,为了保持生活状态,应在固定前清洗掉表面杂质,即,迅速将标本放在PBS缓冲液中冲洗,也可超声波器中超10s-30s,使样品所带的污物除去(如:气管内壁上的粘液、植物叶上的灰尘等)。
2、固定(前固定)经过清洗的样品迅速投入2-4%戊二醛囤定液中,间歇振荡且室温固定约2-4小时即可。
样品固定的目的:使样品细胞的微细结构完整真实地保存下来。
如果样品没有很好地固定,那么样品在脱水时可能变形,破坏了样品的生活状态,也就是说,固定不好的材料,电镜下不能反映真实结构,所以这一步很重要。
3、冲洗0. 1M PH7.2 PBS缓冲液洗:30分钟中间换3-4次,因戊二醛与锇酸反应生成细微的沉淀,所以在后固定之前,用0. IM PBS缓冲液洗去多余的戊二醛之后,样品才可能进入锇酸固定液。
4、后固定:1%四氧化锇后固定1-2小时。
5、冲洗:重蒸水冲洗30分钟中间换3-4次,因四氧化锇与乙醇反应,所以在脱水前充分洗去残留的四氧化锇,样品才能进行脱水。
6、脱水脱水剂为乙醇,室温进行为了减少人工损伤,需要梯度脱水:30%、50%、70%、80%、90%、95%、100%,每级15-20分钟,如果是动物样品,脱水时间可5-10分钟,脱水要充分完全地进行直到除尽样品中的水份为止,最后100%乙醇要重复2-3次,保证样品绝对无水。
扫描电镜SEM制样步骤

扫描电镜S E M制样步骤-CAL-FENGHAI-(2020YEAR-YICAI)_JINGBIAN扫描电镜观察制样步骤固定:1、用灭菌镊子挑出少量的的样品(碳粒/碳毡),放入 5ml 的离心管中,2、加入2.5%戊二醛, 加量为淹没碳粒/碳毡样品为宜,室温固定1小时3、置于 4℃冰箱中固定12小时。
冲洗:用 0.2mol pH 7.4的磷酸缓冲溶液冲洗 3 次,每次 10 分钟。
每次冲洗时先用注射器缓慢吸走上一步骤的冲洗液。
Or 离心脱水:分别用浓度为30%, 50%,75%,90%, 95%, 100% v/v 的乙醇进行脱水,每次10分钟,干燥:将样品放在离心管里,置入干燥器中干燥 12 小时。
粘样:用双面胶将样品观察面向上粘贴在扫描电镜铜板上预处理好的样品放入干净离心管中待检。
SEM上机测样--测定条件参数设置分子克隆实验指南第三版,1568页:25度下0.1mol/L磷酸钾缓冲液的配制;先配0.1mol/L K2HPO4,0.1mol/L KH2PO4配PH7.4,100ml磷酸钾缓冲液需:0.1mol/L K2HPO4,80.2ml0.1mol/L KH2PO4,19.8ml混合即是,不用酸碱调PH。
参考文献:DOI:?10.1021/es902165yMicrobial fuel cell?based on Klebsiella pneumoniae biofilmSelecting?anode-respiring bacteria based on?anode?potential: phylogenetic, electrochemical, and?microscopic?characterizationA severe reduction in the cytochrome C content of?Geobacter sulfurreducens?eliminates its capacity for extracellular electron transfer2。
利用聚焦离子束双束扫描电镜制备透射样品的主要流程

利用聚焦离子束双束扫描电镜制备透射样品的主要流程一、引言透射电子显微镜是一种高分辨率的显微镜,能够观察到物质的原子结构,广泛应用于材料科学、生物学等领域。
制备透射样品是使用透射电子显微镜进行观察的前提,其中聚焦离子束双束扫描电镜是一种常用的制备工具。
本文将详细介绍利用聚焦离子束双束扫描电镜制备透射样品的主要流程。
二、实验步骤1. 样品准备首先需要准备待制备的样品,通常情况下需要将样品切割成薄片或者薄膜。
对于不易切割或者较硬的材料,可以使用机械切割或者离子切割等方法进行处理。
2. 预处理将待制备的样品进行表面清洗和抛光处理,以保证样品表面平整光滑,并且去除可能存在的污染物和氧化物等。
3. 聚焦离子束预处理将经过预处理后的样品放入聚焦离子束双束扫描电镜中,进行聚焦离子束预处理。
该步骤的目的是利用聚焦离子束对样品表面进行刻蚀和清洗,以去除表面污染物和氧化物等,并且形成平整的表面。
4. 制备透射样品在聚焦离子束预处理完成后,需要进行透射样品的制备。
该步骤通常使用聚焦离子束扫描电镜中的离子束切割技术,将样品切割成薄片或者薄膜。
在切割过程中需要控制切割深度和角度等参数,以保证切割出来的样品厚度均匀,并且不会出现断层或者裂纹等缺陷。
5. 透射样品清洗将制备好的透射样品进行清洗处理,以去除可能存在的污染物和氧化物等。
通常情况下可以使用乙醇、异丙醇、甲苯等有机溶剂进行清洗。
6. 透射样品检测制备好的透射样品需要进行检测,以确认其厚度和质量是否符合要求。
通常情况下可以使用扫描电镜或者原子力显微镜等技术进行检测。
7. 透射样品贴片将制备好的透射样品贴在透射电子显微镜的网格上,以便于进行观察。
在贴片过程中需要注意避免产生气泡和皱纹等缺陷。
8. 透射样品观察将贴好的透射样品放入透射电子显微镜中,进行观察。
在观察过程中需要控制电子束的强度和聚焦度等参数,以保证图像清晰度和分辨率。
同时需要避免对样品产生损伤或者烧毁等情况。
三、结论通过以上步骤可以制备出高质量的透射样品,并且利用透射电子显微镜进行高分辨率的观察。
场发射扫描电镜的样品制备和操作步骤

场发射扫描电镜的样品制备和操作步骤场发射扫描电镜(Field Emission Scanning Electron Microscopy)是一种高分辨率的电子显微镜技术,可用于观察和分析各种材料的表面形貌和微观结构。
为了获得清晰的显微图像,样品制备和操作步骤非常重要。
一、样品制备1. 样品的选择:场发射扫描电镜适用于不同种类的材料,如金属、陶瓷、聚合物等。
选择合适的样品很关键,它应具备研究对象的特性,并且能够承受电子束的辐照。
2. 样品的固定:为了保持样品的形状和结构不变,通常需要将其进行固定。
对于固态材料,可以使用金属夹片或导电胶进行固定。
对于液态材料,可以将其冷冻或凝胶化,以保持其形状。
3. 样品的切割和打磨:有时候,需要将样品切割成适当的尺寸,以便放入样品架中。
这可以通过使用金刚石切割机、电解或机械研磨仪器等设备来完成。
4. 样品的真空处理:在将样品放入场发射扫描电镜前,通常需要将其进行真空处理。
这可以通过将样品放入真空干燥器中、在低压下进行加热或冷冻干燥来完成。
真空处理有助于去除空气中的水分和气体,以减小背景干扰。
二、操作步骤1. 打开电镜系统:在开始操作前,需要将场发射扫描电镜系统打开并进行预热。
预热时间通常需要几十分钟,以保证系统内部达到稳定的工作温度。
2. 放置样品:将样品放置在样品架上,并确保其良好接触。
对于粉末状样品,可以使用导电胶将其固定在样品支架上。
对于固态样品,可以使用金属夹片固定在样品架上。
3. 调整显微镜参数:通过调整电子束能量、聚焦、工作距离等参数,来优化扫描电子显微镜的成像质量。
这些参数的选择取决于样品的特性和所需的分辨率。
4. 开始观察:一切准备就绪后,可以开始观察样品。
通过控制电子束的扫描和探测系统,可以获得样品的表面形貌和微观结构的信息。
在观察过程中,要注意避免样品表面的污染和损坏。
5. 数据分析:场发射扫描电镜获得的图像可以进一步进行数据分析。
可以通过对图像进行增强、测量尺寸和形状、进行结构分析等手段,来得到更详细的样品信息。
(完整)扫描电镜样品制备程序

(完整)扫描电镜样品制备程序扫描电镜样品制备程序一、固定:戊二醛-锇酸双固定法1.2.5%戊二醛(试剂1)固定4小时(或者过夜)2.0.1M 磷酸缓冲液(试剂2)清洗3次,每次15-30分钟3.1%锇酸(试剂3)固定2-4小时4.0。
1M 磷酸缓冲液(试剂2)清洗3次,每次15分钟二、脱水:乙醇系列1.30%乙醇 15-20分钟2.50%乙醇 15-20分钟3.70%乙醇 15-20分钟4.80%乙醇 15-20分钟5.90%乙醇 15-20分钟6.95%乙醇 15-20分钟7。
100%乙醇两次每次15-20分钟三、置换:乙酸异戊酯2次,每次15分钟(或过夜)。
四、干燥:临界点干燥五、离子溅射金六、扫描电镜观察附注:试剂配置试剂1:2.5%戊二醛取0.2M磷酸氢二钠40.5mL(A液),0.2M磷酸二氢钠9。
5mL(B液),混合均匀(即0。
2M磷酸盐缓冲液 pH7.4),加入10mL浓度为25%的戊二醛,用超纯水稀释至100mL。
试剂2:0。
1M 磷酸缓冲液(pH 7.4)A液:0。
2M磷酸氢二钠称取3。
561g Na2HPO4.2H2O(或者5。
365g Na2HPO4.7H2O); 或7.164g Na2HPO4.12H2O),溶于100mL双蒸水中.B液:0.2M磷酸二氢钠称取2。
760g NaH2PO4。
H2O(或者3.121g NaH2PO4。
2H2O),溶于100mL双蒸水中。
量取A液36.0mL, B液14。
0mL,混合均匀后用双蒸水稀释至100mL,得0。
1M 磷酸缓冲液(pH 7.4)。
试剂3:1%锇酸将2%的锇酸溶液与0。
1M磷酸盐缓冲溶液(pH 7.4)等体积混合,得1%锇酸。
注意:该操作在通风橱中进行。
11.第六章 扫描电镜样品制备技术

(2)、冷冻干燥法:本方法是将新鲜的样品或经固 定、脱水的样品迅速冷冻后,放入真空环境中,使 玻璃态的冰直接升华跑掉,最终样品干燥。在样品 的干燥过程中不存在液体的挥发,也就消除了液体 表面张力的作用了,从理论上讲可以最大程度的保 存样品的原始形貌。但是本法的干燥速度太慢,有 人做过试验一块0.5平方毫米生物样品,在-80度中 干燥需要24小时。,如果样品块再大一些干燥需要 的时间会更长。所以本法在扫描样品制备时也不常 用。 (3)、莰烯低真空干燥法:莰烯是一种具有樟脑味, 无色透明的结晶。能溶于醚、环己烷、氯仿和丙酮 中,它在室温下为固态,遇空气很易升华,升华的 速度与温度成正比。
D.样品筐的底部和顶部要盖一层滤纸,防止样品 的污染。 E.严格控制操作温度和压力,严守操作规程。 F.保证所用二氧化碳的纯度,不纯会使干燥失败。
5、粘托
样品干燥后,需要用胶粘物质将干燥的样品粘 到样品托上。 1)、粘托时所选用的胶粘物质应具备以下条件: (1)、有一定的粘度,在室温下易干燥。 (2)、具有较低的电阻率,导电性能好,颗粒细。 (3)、干燥后收缩率小,胶膜平滑。 (4)、化学性质稳定,受电子束轰击不分解。
1)、取材的方法
动物和植物组织的取材:方法与超薄切片的取材 基本相同,只是因为扫描电镜主要是观察组织的游离 表面形态结构,因此在取材时一定要保护好所需要的 游离表面的部位,不能造成任何损伤;另外所取样品 块可稍大一些,一般观察面大小可在长X宽大约为 3X5毫米(可根据样品的性质变化取材的大小)。 离体培养的细胞取材:可在接种时把处理好的盖 玻片放在培养瓶内,让细胞长在盖片上,把带有细胞 的盖片直接进行制样处理。 细菌的取材:平板和斜面培养的,可用牙签取菌 落涂到干净的盖片上,进行制样。 悬液培养的细胞或细菌要离心收集细胞或细菌, 然后再进行制样。
扫描电镜样品制备

扫描电镜样品制备扫描电子显微镜生物样品制备技术无论是透射电镜或是扫描电镜,样品均处于电镜镜筒的真空之中。
而大多数的生物样品都是柔软而且含大量水分的。
因此,也和透射电镜的样品一样,在进行扫描电镜观察前,必须对生物样品作相应的处理。
扫描电镜的功能很多,不同的功能对样品的要求不同。
例如二次电子像与背散射电子像和吸收电子像对样品的要求基本相同,而与X射线微区分析对样品的要求相差较远。
我们首先介绍二次电子像的生物样品制备技术。
此外,由于样品的性质不同,其处理方法和程序也有不同。
主要分两大类,一类为含水量少的硬组织,如毛发、牙齿及植物的花粉、孢子、种子等。
此类样品一般含硅质、钙质,角质,砝琅质和纤维素等成份,所以通常只经过表面清洁、装台(粘胶)、导电处理等简单过程即可进行观察。
如要观察其断面或内部结构时,经断裂、解剖或酶消化、蚀刻等再装台、镀膜处理,即可进行观察拍照。
另-类为含水分较多的软组织,如大多数的动植物器官、组织及细菌等均属此类。
对于此类样品,在金属镀膜前,一般都需经过固定、脱水、干燥等处理,如不经处理或处理不当,就会造成样品损伤和变形,出现各种假像,因此对每一处理步骤都应给予重视。
但是,不管是那一类样品的制备,都应达到以下要求:∙尽可能保持样品活体时的形貌和结构,以便如实地反映样品本来面目。
∙在样品的干燥过程尽可能减少样品变形。
∙样品表面应有良好导电性能和二次电子发射率,以防止和减少样品的荷电效应。
样品的前期处理扫描电镜样品的前期处理主要包括表面清洁、固定、漂洗和脱水等过程。
而每一过程的处理方法基本上都是沿用透射电镜样品的处理方法的,所以,这里不一一再作详述。
但是,由于两种电镜观察的要求不同,因此,在处理中也有不同之处:1. 透射电镜主要研究样品的内部结构要求内部结构保存好,因而样品宜尽可能小使固定液能迅时渗入固定。
扫描电镜观察表面形貌,而且为了操作方便选取较大样品。
一般在8~10mm2左右,高度可达5mm。
扫描电镜细胞样品制备步骤

扫描电镜细胞样品制备步骤嘿,咱今儿就来讲讲扫描电镜细胞样品制备那些事儿哈!
你想想看,细胞那么小的玩意儿,咱要想好好观察研究它们,可得下一番功夫呢!就像咱要给一个小娃娃打扮得漂漂亮亮去参加重要活动一样。
首先呢,得把细胞好好地收集起来。
这就好比去果园摘果子,得小心翼翼地把果子从树上摘下来,不能弄伤了它们。
咱得用合适的方法把细胞从它们生长的地方轻轻地取出来,可不能太粗鲁啦!
然后呢,就是给细胞洗个澡啦!把它们身上那些不需要的杂质啥的都洗掉,让它们干干净净的。
这就像是咱自己洗澡一样,把身上的脏东西都洗掉,清清爽爽的。
接下来,就是固定啦!这可重要得很呢!就好像给细胞穿上了一件坚固的铠甲,让它们能保持住自己的形态,不会东倒西歪的。
不然等会儿咱观察的时候,它们都变形了,那可咋整呀!
再之后,就是脱水啦!把细胞里面多余的水分都去掉,就像咱把湿漉漉的衣服晾干一样。
这一步可得仔细着点儿,不能让细胞受损哦!
接着呢,是干燥啦!让细胞处在一个干燥舒适的环境里,这样它们才能好好地被我们观察呀!
再往下,就是镀膜啦!这就好像给细胞披上了一层神秘的外衣,让它们在电镜下能更好地显现出来。
最后,就可以把制备好的细胞样品放到扫描电镜里面去观察啦!哇塞,你能想象到吗,通过电镜看到细胞的那一刻,就好像打开了一个微观世界的大门,里面有着无数的奥秘等着我们去探索呢!
你说这是不是很神奇呀?咱通过这一步步的操作,就能看到细胞的各种奇妙之处啦!所以呀,可别小瞧了这扫描电镜细胞样品制备的步骤哦,每一步都马虎不得呢!咱得像对待宝贝一样精心地去处理这些细胞,这样才能得到最准确、最有价值的观察结果呀!这可不是闹着玩的事儿呢!大家可得认真对待哟!。
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扫描电镜样品制备方法
一、取材
组织块小于3立方毫米(单细胞培养或收集展片于盖玻片或滤膜上)。
二、固定
前固定:2.5%戊二醛(磷酸缓冲液配制)固定2小时或更长时间。
用0.1M pH7.4磷酸盐缓冲液漂洗三次,每次10分钟。
后固定:1% 锇酸固定液,固定1-2小时。
用0.1M pH7.4磷酸盐缓冲液漂洗三次,每次10分钟。
三、脱水
*脱水在4度冰箱内进行,所有脱水步骤建议在专用的冷冻干燥杯中进行,冷冻干燥杯请于实验前一天到电镜室领取。
*整个过程,样品不要暴露于空气。
1.乙醇脱水,每一级10-20分钟:
30%乙醇—50%乙醇—70%乙醇—90%乙醇—95%乙醇—100%乙醇;
2.然后从乙醇逐步过渡到叔丁醇,纯叔丁醇每次10分钟,3次以上;
此系列操作均在25度环境中进行;
3.纯叔丁醇4度冰箱过夜,样品结晶。
四、冷冻干燥
*需事先预约冷冻干燥时间;
第二天上午八点半讲冷冻结冰的样品用冰盒送至电镜室进行冷冻干燥。
五、喷金
附件1:
细菌类样品的前处理方法
1.盖玻片泡酸,清洗,烘干。
用剪刀剪碎,挑出5mm*5mm大小玻片备用。
玻
片过大或者过厚影响观察效果。
2.菌液或样品悬液离心,需要可进行清洗,加入固定液,吹散固定,于4度冰
箱固定2小时左右。
3.固定结束后,去固定液,加入PBS浸泡清洗,10分钟。
离心去PBS,固体沉
淀根据量多少,加入适量PBS,制成浓度较高的悬液(目测较混浊)。
样品浓度对后期吸附有较大影响,浓度过低可能吸附量会很少。
4.取鸡蛋清,稀释3-5倍(一定要稀释!蛋清过浓会包裹样品),之前准备好的
玻片放入液体内蘸一下,取出晾干至触摸感觉有点黏的状态(快干的状态)。
将第3步取得的悬液滴在玻片上,吸附30秒到1分钟,用滤纸吸去多余液体。
(样品悬液在玻片上停留时间过长将导致样品被蛋清完全包裹而无法观察)。
5.在玻片上滴加固定液,固定10分钟,固定后用PBS浸泡清洗10分钟,放入
干燥杯开始进行脱水。