培养皿规格细胞计数
细胞培养实验步骤大全(精华版)
细胞培养实验步骤大全(精华版)细胞培养是生物学研究中常用的技术，在许多实验室中都扮演着重要角色。
下面是细胞培养的一般步骤，供参考。
材料准备1. 细胞培养基：根据实验需求选择适当的培养基，如DMEM、RPMI 1640等。
2. 细胞培养器具：培养皿、离心管、移液器等。
3. 细胞培养室：确保环境清洁、无菌。
细胞准备1. 细胞来源：选择要培养的细胞系或原代细胞。
2. 细胞传代：如果使用的是细胞系，根据需要进行传代，确保细胞状态良好。
细胞培养1. 细胞计数：使用显微镜和细胞计数仪等工具，准确计算细胞数目。
2. 细胞接种：按照实验要求，在含有培养基的培养皿中接种适量的细胞。
根据细胞类型的不同，可能需要预先涂覆培养皿。
3. 细胞培养条件：根据细胞类型的要求，提供适宜的培养条件，如温度、湿度和CO2浓度等。
4. 培养培养：定期更换培养基，保持细胞处于良好的生长状态。
5. 细胞观察：使用显微镜观察细胞形态和生长情况，检测是否存在异常。
细胞处理1. 细胞传代：根据细胞数量和状态，决定是否进行细胞传代。
传代可以延续细胞的寿命和维持细胞应答。
2. 细胞刺激：根据实验设计，给予细胞适当的刺激，如添加药物、因子或介质等。
3. 细胞采集：当需要获取细胞样本时，使用细胞剥离剂或胰蛋白酶等方法将细胞从培养皿中采集。
4. 细胞冻存：如果需要长期保存细胞，可以使用液氮冷冻保存的方法。
先加入冻存液，然后将细胞在适当条件下冷冻保存。
以上是细胞培养的一般步骤，根据具体实验和细胞类型，步骤可能会有所调整和细化。
在进行细胞培养实验时，请始终注意无菌操作和合理使用实验工具，以确保实验结果的准确性和可靠性。
海马细胞实验记录方案
实验记录一、实验名称：海马细胞培养二、实验目的：在细胞水平评估给药后是否能够提高突触可塑性三、实验时间：年月日四、实验地点：五、实验人：六、实验试剂：1.完全DMEM培养基：2.1×PBS：厂家：HyClone；3.0.25%胰酶消化液：4.硼酸盐缓冲液（poly-L-lysine)：5.Neurobasal全培+双抗：6.HBSS缓冲液：七、实验仪器：1.湘仪TD5A-WS台式低速离心机，转子号为853590，水平转子，容量为32×15 ml。
2.培养箱：Thermo SCIENTIFIC培养箱，HERACELL 150i CO2 Incubator。
3.倒置显微镜4.解剖镜八、实验过程：1.准备24孔板，每孔放入一个处理好的玻片，共24孔。
分别加poly-L-lysineBuffer 500μl/孔，放入37℃培养箱中包被2小时以上。
2.4小时后，准备3个10-cm无菌培养皿，分别加20ml的HBSS-buffer，放在冰袋上预冷。
3.用75% 乙醇喷洗剪刀一把、尖头镊子两把、称量勺一把、手术刀片一个；将新生E19小鼠的头和身体分离，把头放在其中一个预冷的平皿中。
4.取大脑：左手用一把尖头镊子压住小鼠头部的眼睛处，右手用手术刀片将头顶处划开，再用另一把尖头镊子扒开头部的皮和脑壳，（注意不要弄坏大脑）右手拿称量勺尾端轻轻插入需出的大脑的底部，轻挑出大脑，放入到另一个干净的平皿中。
5.用上述取大脑的方法将剩余的小鼠大脑取出。
6.取海马体：在解剖镜下，左手用尖头镊子压住小脑处，右手翻开大脑的半球，去除血网，分离血网下的海马体（带状深色，半透明，靠近大脑半球的边缘），将海马体移入最后一个干净的平皿中。
7.用上述取海马体的方法将剩余的海马体取出。
8.全部海马体取出出后，用1ml 枪把海马体轻吸到1个无菌的1.5 ml EP管中，等海马体沉淀后，吸出上清，用PBS清洗10次，1ml/次。
细胞培养
细胞培养
一、复苏
1、开启水浴锅温度设置37℃，预热DMEM。
2、从液氮中取出细胞37℃水浴加热速融。
3、配制培养基：45mL DMEM（HG）+5mL FBS+500ul双抗。
4、将细胞缓慢加入到15mL离心管中，加入5-6mL培养基。
5、800 rpm离心5min。
此时在每个细胞培养皿中加入10mL培养基。
6、吸去上清液，从培养皿中取1mL培养基加入离心管中重悬细胞。
7、将重悬后的细胞加入到培养皿中，放入培养箱中培养。
二、传代
1、开启水浴锅温度设置37℃，预热培养基、PBS、胰酶。
2、取出培养皿，吸去培养基。
3、加入10mL PBS清洗，吸去PBS。
4、加入1mL胰酶消化3min。
5、加入5mL培养基终止消化，吸出到15mL离心管中。
可适当吹打使细胞全部
被收集。
6、800rpm离心5min。
此时在每个细胞培养皿中加入10mL培养基。
7、离心后吸去上清，加1mL培养基重悬细胞，一般情况下一盘分成三盘，将重
悬后的细胞分成三份分别加入到培养基中。
三、细胞计数。
培养皿规格细胞计数
/item.htm?id=131********&ad_id=&am_id=&cm_id=&pm_id=培养器皿面积（cm2）培养液量（ml）细胞量96 孔培养板0.32 0.1 10524孔培养板 2 1.0 5×10512孔培养板 4.5 2.0 1066孔培养板9.6 2.5 2.5×1063.5 cm 培养皿8 3.0 2×1066 cm 培养皿21 5.0 5.2×10610 cm 培养皿55 10.0 13.7×10625cm2 培养瓶25 5.0 5×10675cm2 培养瓶75 15～30 2×107细胞计数（转载）来源：苌生科的日志实验原理：当待测细胞悬液中细胞均匀分布时，通过测定一定体积悬液中的细胞的数目，即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。
具体操作：一、准备工作：取一瓶传代的细胞，待长成单层后以备使用。
二、细胞悬液制备：细胞悬液的制备方法是用0.25％的胰蛋白酶液消化、PBS液洗涤后，加入培养液（或Hanks液或PBS等平衡盐溶液），吹打制成待测细胞悬液。
三、细胞计数：1.盖好盖玻片：取一套血球计数板，将特制的盖玻片盖在血球计数槽上。
2.制备计数用的细胞悬液：用吸管吸5滴细胞悬液到一离心管中，加入5滴台盼蓝染液（0.4％）或苯胺黑，活细胞不会被染色，加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。
3.将细胞悬液滴入计数板：将待测细胞悬液吹均匀，然后吸取少量悬液沿盖片边缘缓缓滴入，要保证盖片下充满悬液，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。
4.统计四个大格的细胞数：将血球计数板放于显微镜的低倍镜下观察，并移动计数板，当看到镜中出现计数方格后，数出四角的四个大格（每个大格含有16个中格）中没有被染液染上色的细胞数目。
5.计算原细胞悬液的细胞数L：按照下面公式计算细胞密度：（细胞悬液的细胞数）/ml＝（四个大格子细胞数/4)×2×104说明：公式中除以4因为计数了4个大格的细胞数。
细胞生长状况有关指标的检测方法
细胞生长状况有关指标的检测方法一、细胞计数这是细胞培养中常用的基本技术之一。
所用材料为细胞计数板。
巴氏吸管和显微镜。
步骤如下。
l 取清洁计数板和专用盖玻片，用丝绸布轻轻擦干。
l 取细胞悬液0.3ml，加入0.9结晶紫染液，混匀后滴半滴于细胞计数板内，以充满不外溢为宜。
也可直接将细胞悬液在一侧滴加到盖玻片中，不要溢出，也不要过少或出现气泡。
l 在显微镜下用10X物镜观察计数四角大方格中的细胞数。
代入下式得出细胞密度。
细胞数（ml）=（4大格细胞数之和/4）×104×稀释倍数台盼蓝染色法可计算出活细胞和死细胞数以测定细胞存活百分率。
一般0.5%-1.0%的台盼蓝染液可使死细胞染成蓝色，活细胞不着色。
此外还可用0.02%的藻红b染液将死细胞或受损细胞染成红色，或用0.05%的苯胺黑染液将死细胞染成黑丝。
细胞存活率=[4大格活细胞数/（4大格活细胞数+4大格死细胞数）]×100%在进行细胞计数操作时，必须把细胞悬液准备好，细胞应分散良好，并充分混匀，若出现较多细胞团或细胞数少于200个/10mm2或多于500个/100mm2时，需重制细胞悬液，重新计数。
二、细胞生长曲线和生长倍数细胞生长曲线是细胞培养实验中最基本的指标，是测定细胞绝对增值数值和生长繁殖基本规律常用的简便方法。
常用的方法为：在同一规格的培养瓶中，接种等量的同一代细胞，经培养后每隔24h取出几瓶细胞进行计数，以培养时间为横坐标，不同时刻的细胞数的对数为纵坐标，标出各点并连成线，即为该细胞的生长曲线，可反映出细胞生长的动态。
测定生长曲线的另一种方法是用96孔/24孔细胞培养板，分7组，每组3孔，培养1周（7天），期间逐日检测一组，计数，最后把7天中的细胞数值绘成图，即为细胞生长曲线。
也可采用MTT法来进行生长曲线测定。
标准的细胞生长曲线近似“S”形，一般在传代后第一天细胞数有所减少，经过一段时间的潜伏期，再进入对数生长期，达到平台期后生长稳定，最后衰老。
分子生物学与细胞生物学实验基本技术
分子生物学与细胞生物学实验基本技术2005-02实验一组织块培养法一、目的学习原代培养方法，从供体取得组织细胞后在体外进行的首次培养。
二、概述组织块培养法是常用的、简便易行和成功率较高的原代培养方法。
可以采用剪切法，即将组织块剪切成小块后，接种于培养瓶，组织小块贴壁24h或更长时间后，细胞就从组织四周游出。
但由于在反复剪切和接种过程中对组织块的损伤，并不是每个小块都能长出细胞。
用于组织块培养的培养瓶可根据不同细胞生长的需要作适当处理，如预先涂以胶原薄层，以利于上皮样细胞等的生长。
（本节以新生牛主动脉平滑肌培养为例）三、材料（一）仪器1.净化工作台2.恒温水浴箱3.冰箱（4℃、-20℃）4.倒臵相差显微镜5.培养箱（二）玻璃器皿1.培养皿（Φ100mm）2.吸管（弯头）3.烧杯（500ml、200ml、10ml）4.广口试剂瓶（500ml）5.玻璃瓶（250ml、100ml）6.培养瓶7.废液缸（三）塑料器皿1.吸头2.枪头3.胶塞4.EP管（四）其他物品1.微量加样枪2.眼科组织剪（直尖、弯）3.眼科组织镊（直、弯）4.12.5cm组织镊（无钩、1×2钩）5.25cm敷料镊（无钩）6.止血钳（18cm直纹式、12.5cm直纹式、弯纹式）7.解剖剪（五）试剂1.D-Hanks液2.小牛血清3.RPMI16404.双抗（青霉素、链霉素）5.1N HCl6.7.4%NaHCO3四、操作步骤1.取材：打开胸腔，无菌操作下取出主动脉胸段，浸到预先配制好的含双抗（500u/ml青、链酶素）的D-Hanks液中漂洗。
2.组织的冲洗、修剪：取出主动脉，用锋利的剪刀修剪除去周围组织，再用D-Hanks冲洗主动脉3次，除去血块及杂组织等。
3.平滑肌组织分离：纵向剖开主动脉，撕下主动脉内层，取主动脉中层的平滑肌组织，无血清RPMI1640漂洗3次。
4.剪切：将平滑肌组织用锋利的眼科剪反复剪切至剪成1mm3小块，在剪切过程中，可以适当向组织中滴加1～2滴培养液，以保持湿润。
慢病毒包装实验步骤
慢病毒包装实验的要点：1：良好的293FT细胞状态是转染成功的首要因素，细胞代数不宜超过30代；2：细胞铺板需均匀，避免细胞成团，影响转染效率；尽量多的细胞转入质粒，产生的病毒就越多；3：细胞换液和共转染时，动作要轻柔避免细胞漂浮。
尽量少的细胞死亡，产生的病毒就越多；实验前要准备的试剂、耗材和仪器；试剂准备：10%灭活胎牛血清+90%DMEM配好的完全培养基,0.25%胰酶，PBS,TRL 转染试剂，包装质粒，目的质粒，无血清培养基。
耗材准备：10cm细胞培养皿，6孔细胞培养板，吸头规格1ml、200ul、10ul，10ml移液管，离心管规格15ml、5ml、1.5ml，0.22um PVDF滤膜和10ml无菌注射器，试管架。
仪器准备：倒置荧光显微镜，普通光学倒置显微镜，电动移液器，吸引器，移液枪，二级生物安全柜，二氧化碳细胞培养箱。
第一天：上午（病毒包装质粒共转染前，293FT细胞复苏后至少让其传代两次以上，293FT 细胞能成倍的增长，确定细胞状态好）；实验前准备：安全柜开紫外灯照30分钟；把培养基和试剂放置常温；消化细胞：从37 5%的co2细胞培养箱拿出细胞状态良好的293FT细胞，吸出原培养基，加入PBS 1ml略洗之后吸出，加入1ml胰酶消化1-2min，轻轻拍打培养皿，再加入3ml新鲜培养基终止消化，将培养皿中的细胞转移至15ml离心管内离心1000r /5min,吸出上清液，加入10ml PBS吹打混匀后，离心1000r /5min, 吸出上清液。
细胞铺板：在10cm细胞培养皿上标记细胞名称、细胞代数、时间和操作人，将计数好大约2.5×106个293FT细胞吸入15ml离心管，再加入完全培养基至10ml充分混匀，然后把混匀的293FT细胞移入10cm培养皿）。
放置培养箱中培养48h。
插入铺板后图片刚铺板后铺板1天后第三天：上午细胞转染：细胞铺板48h后，从培养箱取出293FT细胞，倒置显微镜观察，细胞密度达90%左右；吸出原有培养基，沿皿壁缓慢加入8ml完全培养基，放置于培养箱中，待转染。
细胞培养的基本步骤
细胞培养的基本步骤细胞培养是一项重要的生物学技术，通过体外培养细胞系或原代培养细胞，可以研究细胞生物学特性、进行药物筛选和细胞治疗等。
以下是细胞培养的基本步骤：1. 培养皿或细胞瓶的准备：选择合适的细胞培养皿或细胞瓶，通常使用一次性塑料培养皿或细胞瓶，根据不同的细胞类型选择适当的大小和形状。
用肥皂水清洗，再用无菌水冲洗，最后在超净工作台中用无菌滤纸吸干。
2. 培养基的配制：准备含有营养物质和缓冲系统的培养基，常用的有DMEM、RPMI-1640、MEM等，将培养基加入无菌容器中，根据细胞类型和实验需求加入适量的胎牛血清、horse serum、氨基酸、葡萄糖等，最后用高压蒸汽灭菌。
3. 细胞的接种：将体外培养的细胞或原代培养的细胞从冻存管中取出，在超净工作台中用胰蛋白酶消化液消化，轻轻吹打成单细胞悬液，浓度约为1×10cells/mL。
将一定量的细胞悬液接种到培养皿或细胞瓶中，尽量分散均匀。
4. 细胞的饲养：将接种有细胞的的培养皿或细胞瓶放入二氧化碳培养箱中，在含有5%-10%的CO2、95%-90%的空气环境中培养。
培养过程中定期观察细胞生长情况，每天更换一次培养基，根据需要加入适量的胰蛋白酶消化液。
5. 细胞的观察：在显微镜下观察细胞形态和生长情况，记录细胞密度和活力等指标。
定期拍照记录细胞的生长过程。
6. 细胞的传代：当细胞密度达到一定范围时，需要将细胞进行传代培养。
在超净工作台中用胰蛋白酶消化液消化细胞，将培养皿或细胞瓶中的细胞尽量分散成单细胞悬液。
将适量的细胞悬液接种到新的培养皿或细胞瓶中，放入二氧化碳培养箱中培养。
7. 细胞的冻存：将需要长期保存的细胞进行冻存，冻存液通常含有保护剂、DMSO等成分。
将冻存管放入液氮罐中保存。
8. 细胞的计数：定期对细胞进行计数，用血球计数板或细胞计数仪进行计数，根据细胞密度和活力等指标评估细胞的生长状态和活力。
9. 细胞的活力检测：通过MTT比色法、台盼蓝染色法、流式细胞术等方法检测细胞的活力或死亡情况，进一步分析细胞生长特性和药物敏感性等。
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培养器皿面积（cm2）培养液量（ml）细胞量
96 孔培养板0.32 0.1 105
24孔培养板 2 1.0 5×105
12孔培养板 4.5 2.0 106
6孔培养板9.6 2.5 2.5×106
3.5 cm 培养皿8 3.0 2×106
6 cm 培养皿21 5.0 5.2×106
10 cm 培养皿55 10.0 13.7×106
25cm2 培养瓶25 5.0 5×106
75cm2 培养瓶75 15～30 2×107
细胞计数（转载）
来源：苌生科的日志
实验原理：当待测细胞悬液中细胞均匀分布时，通过测定一定体积悬液中的细胞的数目，即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。
具体操作：
一、准备工作：
取一瓶传代的细胞，待长成单层后以备使用。
二、细胞悬液制备：
细胞悬液的制备方法是用0.25％的胰蛋白酶液消化、PBS液洗涤后，加入培养液（或Hanks液或PBS等平衡盐溶液），吹打制成待测细胞悬液。
三、细胞计数：
1.盖好盖玻片：取一套血球计数板，将特制的盖玻片盖在血球计数槽上。
2.制备计数用的细胞悬液：用吸管吸5滴细胞悬液到一离心管中，加入5滴台盼蓝染液（0.4％）或苯胺黑，活细胞不会被染色，加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞。
3.将细胞悬液滴入计数板：将待测细胞悬液吹均匀，然后吸取少量悬液沿盖片边缘缓缓滴入，要保证盖片下充满悬液，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。
4.统计四个大格的细胞数：将血球计数板放于显微镜的低倍镜下观察，并移动计数板，当看到镜中出现计数方格后，数出四角的四个大格（每个大格含有16个中格）中没有被染液染上色的细胞数目。
5.计算原细胞悬液的细胞数L：按照下面公式计算细胞密度：
（细胞悬液的细胞数）/ml＝（四个大格子细胞数/4)×2×104
说明：公式中除以4因为计数了4个大格的细胞数。
公式中乘以2因为细胞悬液与染液是1：1稀释。
公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为1.0mm（长）×1.0mm（宽）
×0.1mm（高）＝0.1mm3 而 1ml＝1000mm3。
四、细胞计数要点：
1.进行细胞计数时，要求悬液中细胞数目不低于104个/ml，如果细胞数目很少要进行离心再悬浮于少量培养液中；
2.要求细胞悬液中的细胞分散良好，否则影响计数准确性。
3.取样计数前，应充分混匀细胞悬液，尤其是多次取样计数时更要注意每次取样都要混匀，以求计数准确；
4.数细胞的原则是只数完整的细胞，若细胞聚集成团时，只按照一个细胞计算。
如果细胞压在格线上时，则只计上线，不计下线，只计右线，不计左线。
5.操作时，注意盖片下不能有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中，否则要重新计数。
五、初学者易犯的错误：
1.计数前未将待测悬液吹打均匀。
2.滴入细胞悬液时盖玻片下出现气泡。
3.滴入悬液时的量太多，至使细胞悬液流入旁边的槽中。
六、本实验特殊试剂的配制：
4％台盼蓝母液：称取4克台盼蓝，加入少量蒸馏水研磨，加双蒸水至100毫升，用滤纸过滤，4℃保存。
使用液：使用时，用PBS稀释母液至0.4％即可。
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步骤：
（1）取50μl细胞悬浮液与50μl trypan blue(or Erythrosinbluish)等体积混合均匀于1.5ml小离心管中。
（2）取少许混合液(约15μl)自血球计数盘chamber上方凹槽加入，盖上盖玻片，于100倍倒立显微镜下观察，活细胞不染色，死细胞则为蓝色(或红色
-Erythrosin bluish)。
（3）计数四个大方格之细胞总数，再除4，乘以稀释倍数(至少乘以2，因与trypanblue等体积混合)，最后乘以104，即为每ml中细胞悬浮液之细胞数。
若细胞位于线上，只计上线与右线之细胞(或计下线与左线之细胞)。
注：4大格细胞总数×稀释倍数×104/4=细胞数/ml；每一大格的体积
=0.1cm×0.1cm×0.01cm=10-4ml
计数板计数时，最适浓度为5～10×105细胞/ml，此范围外计数误差偏大。
高浓度细胞悬液，可取出部分作稀释或连续稀释后计数。
T75 monolayer culture制成10ml细胞悬浮液，取0.1ml溶液与0.1ml trypan blue 混合均匀于试管中，取少许混合液加入血球计数盘，计数四大方格内之细胞数目。
活细胞数/方格：55，62，49，59；死细胞数/方格：5，3，4，6；细胞总数=243平均细胞数/方格=60.75；稀释倍数=2；
细胞数/ml：60.75×104×2（稀释倍数）=1.22×106；
细胞数/flask（10ml）：1.22×106×10ml=12.2×106
存活率：225/243﹦92.6%
~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ 最后再随便说说 ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~ ~
原理都是一样的，我大部分也是借鉴集体智慧的结晶
我个人在做的时候感觉最重要的就是悬液一定要摇均匀，否则对后续的计数影响很大
而实际上做起来也是挺简单的，多做几遍，主要的几点记住了就OK（笑）
最后，也是最重要的一点
一定要调好焦距，我们要计数的只是细胞，千万别计数其他的杂质（我最初很乌龙，汗；还好知道的人不多 = =+）。