链霉亲和素磁珠
链霉亲和素磁珠(Beads Streptavidin)
链霉亲和素磁珠（Beads Streptavidin）保存：2~8℃保存，有效期1年。
产品说明：链霉亲和素-生物素（SA-Biotin）系统具有极高的结合亲和力（Kd=10^-15），在生物领域具有广泛的应用。
Beads Streptavidin采用蛋白偶联技术将SA共价连接于固相载体表面，可高效结合生物素化抗体、核酸、蛋白等配体分子。
本产品采用超顺磁性微球，粒径均一、形貌规整，有利于方便、快捷地捕获目标分子以及实现磁性分离。
本产品可配套自动化设备进行高通量操作。
产品信息：产品信息SA磁珠（300nm）生物素化IgG结合性能5μg/mg磁珠磁珠浓度10mg/mL磁珠表面亲水基团保存溶液1×PBS(10mM PBS)PH7.4，含0.1%（v/v）Tween-20，0.1%（w/v）NaN3产品应用范围：适用于体外诊断体系磁微粒化学发光免疫诊断操作流程（本操作以两步法双抗体夹心ELISA为例）一、使用前准备1.检测试剂：包括捕获抗体、待测物标准品、酶标记抗体、底物液等，使用前平衡至室2.Wash buffer：用户根据需求优化洗液成分，使用时平衡至室温3.化学发光96孔平底微孔板4.96孔平底微孔板磁性分离器5.漩涡振荡器6.旋转混合仪7.移液器二、磁微粒化学发光免疫诊断操作流程1.确保磁珠已调整至合适浓度，将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20s，振荡重悬磁珠。
用移液器移取50μL合适浓度的磁珠至96孔板中，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔板。
2.加入100μL捕获抗体，充分震荡重悬磁珠，37℃恒温箱中孵育15min后，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔。
3.加入200μL的Wash buffer，充分震荡重悬磁珠，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔，该步骤再重复2次，共洗涤3次。
4.加入50μL待测物标准品，充分震荡重悬磁珠，37℃恒温箱中孵育15min后，磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下96孔。
链霉亲和素磁珠原理
链霉亲和素磁珠原理链霉菌素（Streptavidin）是一种来源于链霉菌（Streptomyces avidinii）的蛋白质，具有高度的亲和力和特异性结合生物素（Biotin）的能力。
而链霉亲和素磁珠则是将链霉菌素与磁珠结合，用于生物分离、纯化和检测等领域。
本文将介绍链霉亲和素磁珠的原理及其在生物科学领域中的应用。
链霉亲和素磁珠的原理主要基于链霉菌素与生物素的特异性结合。
生物素是一种小分子有机化合物，与链霉菌素结合后形成极为稳定的复合物，其结合力极强，不受pH、离子强度等因素的影响。
因此，链霉亲和素磁珠可通过链霉菌素与生物素的结合来实现对生物分子的特异性捕获和纯化。
在实际应用中，链霉亲和素磁珠通常被用于分离和富集含生物素标记的分子。
例如，研究人员可将生物素标记的抗体与链霉亲和素磁珠结合，然后利用磁场将目标分子特异性地富集到磁珠表面，再通过洗涤等步骤将非特异性结合的杂质去除，最终获得纯净的目标分子。
这种方法不仅操作简便、快速，而且能够避免对目标分子的损伤，因此在生物学实验中得到了广泛的应用。
除了在分离和富集生物素标记的分子方面，链霉亲和素磁珠还可用于生物分子的亲和纯化和检测。
例如，研究人员可将生物素标记的核酸与链霉亲和素磁珠结合，通过磁场将目标核酸富集到磁珠表面，然后进行亲和纯化和检测。
这种方法不仅能够高效地富集目标核酸，而且还能够避免对核酸的降解，因此在分子生物学和诊断领域具有重要的应用前景。
总之，链霉亲和素磁珠作为一种高效、特异性的生物分离和纯化工具，在生物科学领域具有广泛的应用前景。
通过充分利用链霉菌素与生物素的特异性结合原理，链霉亲和素磁珠能够实现对生物分子的特异性捕获、纯化和检测，为生命科学研究和生物医学诊断提供了重要的技术支持。
相信随着技术的不断进步和创新，链霉亲和素磁珠在生物科学领域中的应用将会越来越广泛，为人类健康和生命科学研究做出更大的贡献。
一种链霉亲和素磁珠及其制备方法和应用
一种链霉亲和素磁珠及其制备方法和应用
链霉亲和素磁珠是一种新型生物材料，它可以在蛋白质分离纯化、酶催化、基因检测等生物技术领域发挥非常重要的作用。
本文将从制
备方法、应用方向等几个方面来详细介绍链霉亲和素磁珠的相关知识。
制备方法：
1、选取高纯度的N-甲基二乙酸丙烯酰胺作为载体材料，通过化
学反应在其表面共价结合上羧甲基二亚胺链霉素分子。
2、通过反应后去除载体颗粒即可制得链霉亲和素磁珠。
3、链霉亲和素磁珠在实际使用中，可以通过磁性质来快速地对
其进行回收和重新利用。
应用方向：
1、蛋白质纯化领域：链霉亲和素磁珠可以通过对目标蛋白质的
亲和作用，快速地将其与混合物中的其他蛋白质分离开来，获得高纯
度的目标蛋白质。
2、酶催化领域：链霉亲和素磁珠作为酶载体，可以快速地将酶
与其它物质分离开来，提高催化反应的效率。
3、基因检测领域：链霉亲和素磁珠可以在DNA片段的末端与特
异性序列结合，快速地将目标DNA分离并进行检测。
总之，链霉亲和素磁珠是一种在生物技术领域中十分具有潜力的
生物材料，它可以在生物制药、医学科学等领域发挥其作用。
在未来
的发展中，链霉亲和素磁珠有望成为生物技术领域不可或缺的重要生
物材料之一。
链酶亲和素
链霉亲和素商品化应用简介一、链霉亲和素性质链霉亲和素（streptavidin，SA）是由链霉菌streptomyces avidinii分泌的一种蛋白质，分子量为65kD。
链霉亲和素分子由4条相同的肽链组成，其氨基酸组成中，甘氨酸和丙氨酸的含量较大，而且结合生物素的活性基团也是肽链中的色氨酸残基；链霉亲和素是一种稍偏酸性（pH6.0）的蛋白质，并且不带任何糖基。
链霉亲和素分子中每条肽链都能结合一个生物素，因此与亲和素一样，一个链霉亲和素分子也能结合4个生物素分子，二者亲和常数（K）亦为1015L／mol。
在蛋白水解酶作用下，链霉亲和素可在N端10～12和Ｃ端19-21间断裂，形成的核心链霉亲和素仍然保持完整的结合生物素的能力。
链霉亲和素的活性单位也是以结合1μg生物素所需的量来表示，１mg链霉亲和素的最高活性可达18U。
二、亲和素和链霉亲和素的比较相同点1、生物素结合能力：AV：13~15U，SA：14~18U2、活性中心依赖于色氨酸-懒氨酸：亲和素在氨基酸序列的70-70和110-111两个位点有色氨酸-懒氨酸，链霉亲和素在氨基酸序列的79-80和120-121两个位点含有色氨酸-懒氨酸。
不同点：1、分子量：AV=66KD, SA=54KD2、等电点：AV=10.5, SA=6.0, AV带正电较多，非特异性结合较强。
3、位阻效应：SA的生物素结合位点较AV深，位阻效应较强，长臂生物素更适合。
4、生物素的结合：AV随机结合，SA协同结合。
5、氨基酸序列：AV含二硫键和10%糖，SA含甘氨酸丙氨酸较多，无糖和二硫键。
三、链霉亲和素在ELISA中的应用酶联免疫吸附剂测定（enzyme linked immunosorbent assay，ELISA）可用于测定抗原，也可用于测定抗体。
在这种测定方法中有3种必要的试剂：①固相的抗原或抗体，②酶标记的抗原或抗体，③酶作用的底物。
根据试剂的来源和标本的性状以及检测的具备条件，可设计出各种不同类型的检测方法。
免疫磁珠链霉亲和素磁珠（免疫捕捉、纯化）100~500nm
免疫磁珠链霉亲和素磁珠（免疫捕捉、纯化）100~500nm免疫磁珠 |链霉亲和素磁珠(免疫捕捉、纯化) 100~500nm关键词：免疫磁珠、链霉亲和素磁珠(免疫捕捉、纯化) 100~500nm免疫磁珠、链霉亲和素磁珠 (免疫捕捉、纯化) 1umSera-Mag™ 链霉亲和素磁珠和 SpeedBeads链霉亲和素磁珠可用于捕获生物素化靶分子，进行快速和可靠的蛋白质组学分析。
Sera-Mag™ and Sera-mag SpeedBeads 链霉亲和素磁珠，对于生物素化靶分子显示出较高亲和力和灵敏度，具有快速反应动力学，从而可以提高基因组学和蛋白质组学应用的通量和精密度。
性质：具有较低（2500 至3500 pmol/mg）、中等（3500 至4500 pmol/mg）或较高（4500 至 5500 pmol/mg）生物素结合载量，优化测定开发较低解离常数确保紧密的配基结合较低非特异性结合可实现更高的精密度和准确度结合了大比表面积、高灵敏度、物理性能稳定性和快速反应动力学的特点均匀的链霉亲和素涂层可获得可靠结果粒径均一，1um 的粒径可提供较大比表面积和出色的批次间重现性。
Sera-Mag™ SpeedBeads 和Sera-Mag™ 链霉亲和素磁珠，不仅有快速反应动力学，而且有较低的非特异性结合，可提高免疫测定和分子生物学应用（如用于基因组学和蛋白质组学的样品制备和测定开发）中的通量和精密度。
【成分】亲和素包覆的磁性氧化铁纳米球，含1%BSA的硼酸缓冲液【性状】黑褐色悬液，长时间静置可分层【特点与用途】链霉亲和素磁珠由超顺磁性微球与高纯度链霉亲和素共价结合而成。
链霉亲和素-生物素（SA-Biotin）系统具有极高的结合亲和力（Kd=10^-15），在生物领域具有广泛的应用。
本产品采用超顺磁性微球，粒径均一、形貌规整，有利于方便、快捷地捕获目标分子以及实现磁性分离。
【基本使用方法】在室温条件下，将生物素化抗体与链酶亲和素磁性微球混合，反应时间30~40min，制备成磁性微球探针；将制备好的磁性微球探针与带检测分离的样品混合，再用磁力架进行磁性分离清洗。
链酶亲和素
链霉亲和素商品化应用简介一、链霉亲和素性质链霉亲和素（streptavidin，SA）是由链霉菌streptomyces avidinii分泌的一种蛋白质，分子量为65kD。
链霉亲和素分子由4条相同的肽链组成，其氨基酸组成中，甘氨酸和丙氨酸的含量较大，而且结合生物素的活性基团也是肽链中的色氨酸残基；链霉亲和素是一种稍偏酸性（pH6.0）的蛋白质，并且不带任何糖基。
链霉亲和素分子中每条肽链都能结合一个生物素，因此与亲和素一样，一个链霉亲和素分子也能结合4个生物素分子，二者亲和常数（K）亦为1015L／mol。
在蛋白水解酶作用下，链霉亲和素可在N端10～12和Ｃ端19-21间断裂，形成的核心链霉亲和素仍然保持完整的结合生物素的能力。
链霉亲和素的活性单位也是以结合1μg生物素所需的量来表示，１mg链霉亲和素的最高活性可达18U。
二、亲和素和链霉亲和素的比较相同点1、生物素结合能力：AV：13~15U，SA：14~18U2、活性中心依赖于色氨酸-懒氨酸：亲和素在氨基酸序列的70-70和110-111两个位点有色氨酸-懒氨酸，链霉亲和素在氨基酸序列的79-80和120-121两个位点含有色氨酸-懒氨酸。
不同点：1、分子量：AV=66KD, SA=54KD2、等电点：AV=10.5, SA=6.0, AV带正电较多，非特异性结合较强。
3、位阻效应：SA的生物素结合位点较AV深，位阻效应较强，长臂生物素更适合。
4、生物素的结合：AV随机结合，SA协同结合。
5、氨基酸序列：AV含二硫键和10%糖，SA含甘氨酸丙氨酸较多，无糖和二硫键。
三、链霉亲和素在ELISA中的应用酶联免疫吸附剂测定（enzyme linked immunosorbent assay，ELISA）可用于测定抗原，也可用于测定抗体。
在这种测定方法中有3种必要的试剂：①固相的抗原或抗体，②酶标记的抗原或抗体，③酶作用的底物。
根据试剂的来源和标本的性状以及检测的具备条件，可设计出各种不同类型的检测方法。
一种从链霉亲和素磁珠上洗脱生物素标记核酸的方法与流程
一种从链霉亲和素磁珠上洗脱生物素标记核酸的方法与流程生物素标记核酸与链霉亲和素磁珠的巧妙分离之旅在分子生物学的魔法世界中，有一种神秘而又精准的“拆CP”技术——从链霉亲和素磁珠上洗脱生物素标记核酸。
这场微观世界的舞蹈，犹如解开精密锁链的艺术，充满了科学的魅力与挑战。
首先，让我们揭开这奇妙舞台的序幕。
生物素标记核酸，这位身披“生”字光环的主角，通过生物素与链霉亲和素这对“黄金搭档”的强力牵手，被牢牢吸附在磁性舞台上——链霉亲和素磁珠。
这种紧密结合如同“天作之合”，稳定且特异，是无数实验操作中的关键一环，例如核酸纯化、测序以及杂交等。
然而，天下没有不散的筵席，科学研究的需求往往需要我们巧妙地将这对紧密拥抱的“伴侣”分开。
这个过程就像是一场精心策划的“和平分手”，我们需要温和且高效地让生物素标记核酸从链霉亲和素磁珠的怀抱中解脱出来。
首当其冲的是选择适宜的“调解剂”，也就是洗脱液。
它犹如一把无形的钥匙，能打破生物素与链霉亲和素间稳定的非共价键结合。
常用的洗脱液包括高浓度生物素、巯基化合物或者低pH环境下的溶液，它们各具特色，根据实验需求灵活选用，仿佛是科学家手中的魔杖，轻轻一点，便能触动那微妙的化学反应。
随后，便是耐心而细致的操作环节。
把负载有生物素标记核酸的链霉亲和素磁珠置于选定的洗脱液中，像是给这对“情侣”提供了一个缓冲的空间，让他们逐渐松开紧握的手。
在适当的时间（通常为几分钟至十几分钟）后，借助外加磁场的力量，磁珠被吸附，而那曾经紧紧依附的生物素标记核酸则得以优雅地游离于溶液之中，实现了期待已久的“解脱”。
此过程中，“洗脱”二字真可谓道出了其中精髓，既有力量的适度施加，又有时间的悠然等待，更兼有科学智慧的巧妙运用。
每当看到清澈溶液中释放出的生物素标记核酸时，科学家们心中不禁涌起一阵欣喜：“瞧！我们的努力终见成效！”总结起来，从链霉亲和素磁珠上洗脱生物素标记核酸这一方法流程，无疑是一场微观尺度上的艺术表演，充分展现了科学的精确与巧妙。
化学发光链霉亲和素磁珠
化学发光链霉亲和素磁珠
化学发光链霉亲和素磁珠是一种用于生物分子检测和分析的技术。
它结合了链霉亲和素和磁珠的特性，用于对生物分子进行高灵敏度和高特异性的检测。
链霉亲和素是一种蛋白质，具有高亲和力和高特异性，可以与生物素结合。
生物素是一种非必需的维生素B，可以与链霉亲和素结合，形成生物素-链霉亲和素复合物。
这种复合物具有很高的稳定性，可以用于各种生物分子检测和分析。
磁珠是一种具有磁响应性的微小颗粒，通常用于分离和纯化生物分子。
它们具有较高的比表面积和良好的表面性能，可以吸附各种生物分子，如蛋白质、核酸和糖类等。
化学发光链霉亲和素磁珠结合了这两种技术，将链霉亲和素与磁珠结合在一起。
这种结合使得磁珠可以与生物分子结合，并通过链霉亲和素的化学发光反应进行检测。
这种技术具有高灵敏度、高特异性和高效率等优点，被广泛应用于各种生物分子检测和分析，如蛋白质组学、基因组学和糖组学等。
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链霉亲和素磁珠
保存：2~8℃保存，有效期1年。
产品说明：
链霉亲和素-生物素（SA-Biotin）系统具有极高的结合亲和力（Kd=10^-15），在生物领域具有广泛的应用。
Streptavidin采用蛋白偶联技术将SA共价连接于固相载体表面，可高效结合生物素化抗体、核酸、蛋白等配体分子。
本产品采用超顺磁性微球，粒径均一、形貌规整，有利于方便、快捷地捕获目标分子以及实现磁性分离。
本产品可配套自动化设备进行高通量操作。
产品信息：
产品信息SA磁珠（1μm）SA磁珠（2μm）
游离生物素1100pmol/mg磁珠1000pmol/mg磁珠
生物素化单链寡核苷酸(24nt)500pmol/mg磁珠400pmol/mg磁珠
生物素化IgG20μg/mg磁珠20μg/mg磁珠
磁珠浓度10mg/mL
磁珠表面亲水基团
保存溶液1×PBS，含0.1%（v/v）Tween-20，0.1%（w/v）
NaN3
产品应用范围：
（1）免疫检测、分离蛋白、细胞分选等。
Streptavidin可特异性地结合生物素化抗体或抗原，作为免疫检测、ELISA等固相反应载体，或用于分选细胞等。
（2）分离核酸、制备核酸探针等。
Streptavidin可特异性地结合生物素化的核酸探针，广泛应用于DNA、RNA的杂交实验。
（3）DNA-蛋白质相互作用研究。
Streptavidin可特异性地结合生物素化的靶点DNA或RNA片段，可用于蛋白质与核酸相互作用研究。
结合生物素化分子操作流程（本操作以适用于链霉亲和素磁珠系列所有产品）
1.使用前准备
1.1缓冲液：以下为常用的缓冲液成分，用户可根据需要调整缓冲液的盐浓度及pH
1.2Buffer I（适用于结合生物素化核酸）：10mM Tris-HCl（pH7.5），1mM EDTA，1M NaCl，0.01%~0.1% Tween-20
1.3Buffer II（适用于结合生物素化抗体/蛋白）：PBS，pH7.4，含0.05%Tween-20，可根据需要添加
0.01%~0.1%BSA
1.4磁性分离器：可选用海狸磁性分离器，适用于1.5mL、2mL或15mL离心管
1.5漩涡振荡器
1.6旋转混合仪
1.7移液器及吸头
1.8合适的离心管
2.结合生物素化核酸
2.1.将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20s，振荡重悬磁珠。
用移液器移取100μL磁珠到新的离心管中。
将离心管置于磁性分离器上，静置1min（此操作后续简称为磁性分离），用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。
备注：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品信息表中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。
建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。
2.2.加入1mL Buffer I到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。
磁性分离，移去上清液。
备注：当步骤2.1取用磁珠体积大于1mL时，加入与磁珠体积相同的Buffer I。
2.3.重复“步骤2.2”一次。
2.4.加入500μL的用Buffer I稀释的生物素化核酸（使磁珠浓度为2mg/mL），充分振荡重悬磁珠。
将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合30min。
2.5.磁性分离，将上清液转移至新的离心管。
2.6.按“步骤 2.2”的方法洗涤磁珠三次。
2.7.根据后续实验的要求，加入合适的低盐缓冲液，重悬磁珠。
至此结合生物素化核酸步骤完成。
磁珠可用于后续操作。
2.8.用户可以通过测定反应前后核酸的浓度，计算结合到磁珠上的核酸量﹝（反应前浓度-反应后浓度）
×反应溶液体积﹞。
3.结合生物素化抗体/蛋白操作流程
3.1将磁珠瓶置于漩涡振荡器上20s，振荡重悬磁珠。
用移液器移取100μL磁珠到新的离心管中。
磁性分离，用移液器吸去上清液，从磁性分离器上取下离心管。
备注：用户可根据生物素化分子的多少，参考产品信息表中磁珠的载量，计算需要取用的磁珠量。
建议生物素化分子的加入量为磁珠载量的1~2倍，使磁珠饱和。
3.2加入1mL Buffer II到离心管中，盖上离心管盖，充分振荡重悬磁珠。
磁性分离，移去上清液。
备注：当步骤3.1取用磁珠体积大于1mL时，加入与磁珠体积相同的Buffer II。
3.3重复“步骤3.2”两次，共洗涤三次。
3.4加入1mL用Buffer II稀释的生物素化抗体/蛋白（使磁珠浓度为1mg/mL），充分振荡重悬磁珠。
将离心管置于旋转混合仪上，室温旋转混合60min。
3.5磁性分离，将上清液转移至新的离心管。
3.6按“步骤3.2”的方法洗涤磁珠五次。
3.7根据后续实验的要求，加入Buffer II或其他合适的缓冲液，重悬磁珠。
至此结合生物素化抗体/蛋白步骤完成。
磁珠可用于后续操作。
注意事项：
1.应避免对磁珠进行冷冻等操作。
2.为减少磁珠损失，每次磁性分离的时间应不少于1min。
3.从磁珠保存管中移取磁珠前应充分震荡重悬均匀。
操作过程中应避免产生气泡。
4.建议使用质量好的移液器吸头和反应管，避免因粘附磁珠及溶液而造成损失。
5.生物素化分子的大小会影响磁珠的载量。
用户需要根据实验确定磁珠对特定生物素化分子的载量。
6.生物素化分子的加入量应为磁珠载量的1~2倍，以使磁珠饱和。
7.本产品仅供研究使用。