最新临床检验标本采集
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程临床检验标本采集、运输和保存操作规程第一章体液标本的采集、运输和保存操作规程一、尿液标本的采集、运输和保存尿液标本的采集、运输和保存是临床检验中非常重要的一环。
尿液干化学测定的检查项目包括尿液比重、pH值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖和抗坏血酸等。
同时也需要检测尿液有形成份，如红细胞和白细胞形态等。
此外，还需要检测24小时尿总蛋白、尿肌酐和尿尿酸等。
二、脑脊液标本的采集、运输和保存脑脊液标本的采集、运输和保存也是非常重要的。
在采集脑脊液标本时，需要注意消毒和无菌操作。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
三、浆膜腔积液标本的采集、运输和保存浆膜腔积液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
四、分泌物标本的采集、运输分泌物标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温。
五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输分泌物革兰阴性双球菌检测标本的采集、运输需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温。
六、标本的采集、运输和保存标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
七、前列腺液标本的采集、运输和保存前列腺液标本的采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
八、粪便采集、运输和保存粪便采集、运输和保存需要注意消毒和无菌操作。
采集时需要避免污染和空气污染。
运输时需要保持标本的低温，保存时需要在低温环境下保存。
第二章血液一般检验的标本采集、运输和保存操作规程一、未梢血标本采集未梢血标本采集需要注意消毒和无菌操作。
临床检验标本采集要求
临床检验标本采集要求临床检验标本采集是指在医学实验室进行各类检验之前，对患者身体内的生物物质进行采集，并进行适当处理和保存。
标本采集的质量和准确性对于医学诊断、治疗和监测起到至关重要的作用。
以下是临床检验标本采集的一些要求：1.术前准备：患者在进行标本采集前需要进行必要的术前准备，如饮食、药物使用等，以确保采集到的样本准确可靠。
2.采集者要求：采集者必须经过专业培训，熟悉标本采集的技术要求和操作规范，具备良好的职业道德和责任心。
3.标本容器：采集时应选择适当的标本容器，确保容器干净、无菌、无残留物，并标明患者的姓名、性别、年龄、标本采集时间等必要信息。
4.采集部位：标本采集的部位应根据不同检验项目的要求进行选择，确保获得准确的结果。
采集前应进行适当的部位清洁。
5.采集方法：标本采集的方法应根据不同采集部位和要求进行选择。
常见的采集方法包括静脉采血、动脉采血、尿液采集、呼气采集等。
6.采集量、时间：采集的标本量应符合检验项目的要求，确保能够完成所需的各项检测。
采集时间应尽量遵循标本采集的时间规定，以保证结果的准确性。
7.标本处理：采集后的标本应根据不同的检验要求进行处理，如离心、分离、保存等。
处理时需要注意标本的稳定性和保存条件，以避免引起误差。
8.标本运输：采集后的标本应迅速送至实验室，以避免标本的变质和损坏。
运输过程中需要保证标本的温度、湿度等条件，以确保结果的准确性。
9.采集记录：采集者应在记录表上准确记录患者的信息和采集过程的相关细节，以便实验室对标本进行处理和分析时进行参考。
总结起来，临床检验标本采集的要求主要包括术前准备、采集者要求、标本容器、采集部位、采集方法、采集量、时间、标本处理、标本运输和采集记录等方面。
采集者需要具备专业知识和技能，并遵循相应的操作规范，以确保采集到的标本质量可靠，从而为临床诊断和治疗提供有力支持。
各种临床检验标本正确采集方法
各种临床检验标本正确采集方法临床检验是医学诊断中至关重要的环节，而标本的正确采集是确保检验结果准确可靠的关键。
下面将介绍各种临床检验常用标本的正确采集方法。
一、血液标本的正确采集方法：1.静脉血：选择合适的静脉，用无菌消毒剂消毒皮肤，插入针头，顺利穿透血管后抽取血液。
采血时应注意采样管的填充量、采血顺序和采血管的顺序等。
2.动脉血：选择患者无血栓形成和其他并发症的动脉，同样消毒后，插入一个直径较小的针头，采集血液样本。
3.安静点血：消毒后，选择合适位置，安静静脉点压五秒以上，使用无菌采血毛细管收集点压时采集的静脉血液。
4.撕膜法：适用于幼儿或顽固肿块的患者，先使用消毒剂消毒皮肤，撕去无菌的凝胶填充管顶部的膜，直接将针头插入以采集血液。
二、尿液标本的正确采集方法：1.早晨第一次排尿：由于此时尿液浓缩，能够准确反映第一次排尿样本的特征。
2.中段尿：首先将外阴清洗干净，随后采用无菌容器收集尿液，避免污染。
3.取尿管尿：适用于无法排尿或无尿点尿的患者，通过尿管引流尿液。
三、粪便标本的正确采集方法：1.早晨第一次排便：用无菌容器收集早晨第一次排便的粪便标本。
2.新鲜粪便：及时收集新鲜排便的粪便标本，避免长时间暴露。
3.液便标本：用无菌容器收集液体状的粪便标本，避免与尿液等混合。
四、唾液标本的正确采集方法：1.情绪稳定时采集：避免在情绪激动、食后、用药等影响唾液分泌的情况下采集。
2.收集全天的唾液：采集各个时间段的唾液，通过混合后采样使分析结果更准确。
3.吸入早晨第一次唾液：利用无菌吸管吸入早晨第一次唾液。
五、组织标本的正确采集方法：1.找准位置：确定标本采集的位置，消毒皮肤。
2.高速摇杆法：用缝合针或刮匙迅速刮取病变组织标本，放入无菌容器中。
3.空心针刺吸法：用无菌空心针横向刺穿病灶并迅速射入无菌容器中。
六、其他标本的正确采集方法：1.腹水标本：用注射器或无菌容器采集腹水标本。
2.胸腔积液标本：用无菌容器采集胸腔积液标本。
临床检验标本采集手册
临床检验标本采集手册芜湖县中医院检验科临床检验标本采集指南及注意事项临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。
芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心的室间质评活动，并取得较好成绩。
为做到临床检验质量保证，必须做到对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。
这里包括：实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制，其中实验前质量控制尤其重要。
分析前质量管理是一个最薄弱的环节，试验误差中60〜70%来自实验前，而且实验前误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。
实验前质量控制主要包括：⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存和运送⑷标本处理等。
一、病人准备1．患者的状态：一般需在安静状态下采集标本，如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时，可使血红蛋白、白细胞增高。
运动后，由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸，可造成许多检验结果的变化，如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高，还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分的变化。
2. 患者的饮食：2.1多数试验要求空腹采血（空腹12小时左右），最好是早晨空腹采血。
研究表明，餐后血液中GLU TG ALT ALP BUN Na等均可升高。
进食高蛋白或高核酸食物，可引起血中尿素（Urea）及尿酸（UA）的增高；进食高脂肪食物，可引起TG的大幅度增高。
餐后采集的血液样本，其血清常出现乳糜状，影响到许多检验测定的正确性。
一些饮料如咖啡，也可使淀粉酶（AMY）促甲状腺素（TSH）等升高。
2.2禁食过久也会影响检测结果。
通常血糖浓度呈下降趋势；胆红素清除速率降低，引起血清胆红素浓度上升。
绝食状态下脂肪酸和酮酸成为肌肉能量来源，因此血清中酮体脂肪酸和甘油的浓度会显着增加。
禁食48 小时后，血清甘油三酯增加20％，此后又会下降。
绝食使血清尿酸盐浓度显着上升。
身体饥饿时醛固酮分泌增加，尿排钾增加引起血清钾降低。
2.3 素食者：长期素食者低密度脂蛋白（LDL）和极低密度脂蛋白（VLDL）浓度都会偏低，总脂质和磷脂浓度也会减少，胆固醇和三酸甘油脂浓度可能只有杂食个体的三分之__ . o2.4咖啡因：咖啡、可乐、茶、以及多种药物都含有咖啡因，它是一种温和的刺激物和微弱的利尿剂。
临床检验标本采集规范
临床检验标本采集规范一血常规检验标本1 用EDTA-2K~ml抗凝EDTA抗凝管、紫色帽采血;2 注意事项：A 按抗凝管刻度准确采血至2ml;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血;C 采血后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;二红细胞沉降率血沉、ESR检验标本1 静脉采集枸橼酸钠109mmol/L,即L抗凝血枸橼酸钠抗凝管、黑色帽;2 注意事项：A 单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml抗凝剂:全血=:;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡;C 采血后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;三凝血检测PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体标本1 静脉采集枸橼酸钠109mmol/L,即L；抗凝剂:全血=:抗凝血枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽; 注意事项：A 单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可有凝块;C 采血后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;D 空腹采血餐后脂血会影响检验结果;四血型与交叉配合标本1用EDTA-2K~ml抗凝EDTA抗凝管、蓝色帽采血;2注意事项：A 按抗凝管刻度采血至2~3ml;最好单独采血,便于标本保存;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血; 五血流变检查标本1 用肝素钠抗凝管肝素钠、绿色帽2 注意事项：A 按抗凝管刻度采血至4~5ml;B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血; 六尿液常规检查标本1 住院病人尽量留取晨尿安静状态下留取清晨第一次尿;2 门急诊病人可留取随机尿,但结果受多种因素影响;3 尿液采集于洁净尿杯中,不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等;标本留取后尽快送检为保证结果准确,必须在2h内完成检测;七尿液特殊检查标本1 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂;A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛40%,5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为5：30-8：30和20：00-次日8：00;B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯,5~20ml/L尿液;C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸,10ml/L尿液;2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐,上午8点排尿弃去,没隔2h留尿一次,至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿,收集于一个容器中,分别标记时间后送检; 八粪便常规检查标本1一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g,必要时可肛试子取出,但需注明;2样品置于洁净容器中,最好用带盖塑料盒;3 粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查;4做隐血试验时,应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物;九浆膜腔积液检查标本1标本一般由临床医师无菌穿刺采取;2送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本,结核菌检查留取10ml;3标本采集后必须立即送检,否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确;4用于细胞学检查时,可在标本中加适量EDTA抗凝,但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性;十临床化学检验标本1一般生化检查肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等留取不抗凝血红色帽、真空负压管,采血量视检查项目多少而定,一般为4~5ml;2糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管,操作规程同血常规标本;3血钾检测标本须立即送检,2h内完成检测;4空腹采血;如为餐后标本,应在申请单上注明;十一临床免疫检验及化学发光检验标本1一般免疫学检验乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等和化学发光检验各种激素、肿瘤标志物等留取不抗凝血红色帽、真空负压管,采血量视检查项目多少而定,一般为4~5ml;2严格按生物安全有关规定采血;3空腹采血;如为餐后标本,应在申请单上注明;十二微生物学检验标本1标本采集、运送、验收和处理注意事项①标本采集A 申请单标记必须清楚姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等,以便实验室合理选用培养基;B 尽量在抗生素应用前采集标本;C 标本采集应严格执行无菌操作;D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器;②标本运送A 标本采集后尽快送微生物室;B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室,视为不合格标本;③标本验收A 实验室只能接受和处理合格标本;B 实验室对不合格标本退回时,须注明原因,并及时与临床联系;2 微生物检验标本采集和处理①尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次尿液,及时送检,并保证2h内接种；不能及时送检时,标本应置冰箱保存,并于8h内送检;怀疑沙门氏菌感染时,应于发病2周左右采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时,应于发病后2周左右采集标本;常用的标本采集方法如下：A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用灭菌水冲洗尿道口,然后排尿弃去前段尿液,于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml;B 导尿法：用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿管留尿；留置导尿时,用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口,用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检,不可采集尿液收集袋中的尿液送检;C 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集;②粪便标本采集和处理A 采集时间：腹泻患者处于急性期,尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应立即采集粪便送检;B 采集方法：一般患者,取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml,盛无菌容器内送检；难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿,可用直肠试子采集标本,再插入灭菌试管中送检;③痰及下呼吸道标本采集和处理A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口,清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理;B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌,将试子深入咽部,小儿因压舌板刺激引起咳嗽,喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检;C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施;④血液及骨髓培养标本A 抗生素治疗前,严格无菌静脉采血8~10ml儿童1~4ml；骨髓1~2ml;B 无菌注入专用培养瓶中送检;C 如已用抗生素不能停用时,可在48h内分别于下次抗生素使用前,多次采集血液标本送检;D 疑为心内膜炎时,为提高阳性检出率,可酌情不同部位、不同时间多次采血送检;⑤脑脊液培养标本A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液,最好在抗生素使用前采集;B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml,立即送检;⑥穿刺液培养标本A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等;B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集;C 无菌穿刺采集,标本量不少于1ml;D 为防标本凝固,可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素;⑦胃液及胆汁培养A 采集方法：抽取空腹胃液5ml,置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml,置无菌管内送检;B 标本采集后必须立即送检;⑧脓汁和病灶分泌物培养A 标本采集前,先对病灶周围消毒,然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织;B 标本采集后立即置无菌管内送检;⑨眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本A 用无菌试子常规采集标本;B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染;C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检;⑩泌尿生殖道培养标本A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物,或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出,置无菌试管中立即送检;B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器,用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物,置无菌试管中送检;C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中,立即送检;D 精液：受检者应5天以上未派精,清洗尿道后用手淫或体外排精法,射精于无菌试管中立即送检;E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处,用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物,置无菌试管中立即送检;⑾烧伤感染培养标本烧伤12h后用无菌棉试子采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症,创面取样的同时应采集血样送做血培养;⑿真菌感染培养标本A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤,从皮损边缘刮取鳞屑,置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；毛发则采集其根部折断处,至少5~6根送检；指趾甲：消毒指趾甲并去掉其表面部分,取可疑病变部分,用刀片修成小薄片5~6片,置无菌容器中送检;B 深部真菌感染标本采集：血液：无菌采血8~10ml,注入血培养瓶中,立即送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温,但不可超过8h;脑脊液：采样量不少于3ml,分别注入两支无菌试管中送检一支做真菌培养和墨汁染色,一支做普通培养;呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养;⒀厌氧菌感染培养标本A 标本采集：严格执行无菌操作,避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气;B 标本运送：标本采集后不得冰箱储存,必须尽快半小时内送检；标本运送可采用注射器已驱氧或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐;。
临床检验标本采集要求
临床检验标本采集要求2．样本不合要求2.1未使用合适的抗凝剂或样本类型不当；2.2送检样本容器破损、有渗漏或选择不当；2.3样本采集后保存不当；2.4患者准备状态不恰当，影响实验结果，如未空腹查血脂。
3．发生以下情况原则上拒收样本中度以上溶血；中度以上脂血；抗凝血中有凝块；量太少等。
但因情况特殊、取材困难或感染疾病的咨询等，本科将会应客房要求进行检测，并在报告单上注明样本状态供临床参考。
样本拒收后处理：在我科拒收的样本，应及时重新采集，否则将和检验申请单一起退回。
临床检验分析前要求一、临床检验单要求1．病人信息：申请者必需清楚写病人的姓名、性别、年龄或其它有效识别身份的信息；2．病人的病历信息申请者必须清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床样本类型、样本采集日期和时间、申请者姓名、申请检验日期；3．请的检验项目：申请者必须清楚填写检验项目名称，项目名称应规范、准确，特别是申请组合项目时，一定要与本科<检测目录>的组合内容一致，否则需填写组合项目的具体单项；二、标本采集前患者准备须知1．患者状态原则上患者应在平静、休息状态下采集样本，特别是血液样本。
激动、兴奋或恐惧时，可使血红蛋白、白细胞等增高；剧烈运动、能量消耗、体液丢失、呼吸剧烈可以造成体内多项指标变化，如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一过性升高，还可引起血钾、钠、钙、白蛋白、血糖等的变化。
2．患者饮食对检验结果的影响2.1进食后一定时间内可使血液中许多成份发生变化。
因人们饮食的多样性，生理状况差异也大，而且大多数项目的参考范围是以空腹血液测定值为基础的。
故建议，原则上要求早晨空腹采血(空腹12小时左右)，对进食有特殊要求的项目除外。
一顿标准餐：可使甘油三酯增高40%以上，血糖增高15%以上，进食高蛋白食物可使尿素氮、尿酸等增高，高碳水化合物食物可使血糖增高；高脂肪食物：可使甘油三酯大幅增高，并使血液出现乳糜现象影响许多检验结果；进食咖啡：淀粉酶、促甲状腺激素、碱性磷酸酶增高。
临床检验标本采集规范
临床检验标本采集规范1. 引言临床检验是医生诊断和治疗疾病的重要工具之一，而标本的采集过程和质量直接影响到检验结果的准确性和可靠性。
为了确保标本采集的规范性，提高临床检验的质量和准确度，本文将介绍临床检验中常见标本的采集规范。
2. 血液标本的采集规范2.1 静脉血采集规范•患者应保持安静，并在采集前至少休息15分钟。
•采用专业护士或技术人员进行采集，必须消毒皮肤。
•选择适当的静脉穿刺部位，并确保穿刺点干燥。
•使用无菌注射器和采血针采血，遵循穿刺技术和穿刺角度要求。
•采血时要逐渐放开缚带，以防止血液淤积。
•采血管要避免细菌污染和血栓形成，不得抽血过多。
•血液采集完成后，立即停止采血，并正确处理采血设备。
2.2 动脉血采集规范•动脉血的采集通常由经验丰富的医生或专业技术人员进行。
•应仔细选择采集部位，并确保部位皮肤无明显感染或瘢痕。
•采用无菌采血针和注射器采集动脉血。
•术前与患者说明术前准备和可能的疼痛感。
•采集动脉血时要注意采血针的角度和深度，避免损伤周围组织。
3. 尿液标本的采集规范3.1 一般尿液采集规范•使用干净的尿杯进行尿液采集。
•慎重选择采集时间和采集方式。
•严禁将外界杂质或水分进入尿液标本。
•采集前要进行适当的局部清洁，女性要避免采集期间的经期。
3.2 尿液分析标本的采集规范•采集首末尿，即排尿前尿与排尿后尿。
•采集的尿样应在2小时内送达实验室进行检测。
•采集时尽量收集尿液中段部分，以避免采集过多的表皮细胞或残留尿液。
4. 粪便标本的采集规范4.1 粪便标本的采集方法•采用无菌容器收集粪便标本。
•采集前要确保患者肛门及周围清洁，避免尿液和外用药物污染。
•采集粪便时要避免掉落和外界污染。
•采集的粪便标本应尽快送达实验室进行检测。
5. 结论临床检验标本的采集规范对于确保检验结果的准确性和可靠性至关重要。
本文介绍了常见标本（血液、尿液、粪便）的采集规范，并提供了一些基本的操作指导。
作为临床医生或检验人员，必须严格按照标本采集规范来进行操作，以确保检验结果的可靠性和准确性。
临床检验标本采集
颈静脉采血法
（三）动脉采血法
1．主要器材 ：2ml或5ml注射器（准备l000U/ml无菌肝素生理盐水溶液，以湿润注射器内腔、橡皮塞），或一次性动脉采血针、消毒用品等。2．采血部位 多选用桡动脉（最方便） 股动脉、肱动脉。3．简要操作
血液样本采集顺序
血培养
血 清
全 血
（三）送检标本容器错误
（四）标本采集量不规范
（五）送检标本条码不规范
（六）送检标本重复
（七）两个患者的送检标本弄混
（八）送检标本采血管盖子混盖
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项目
送检时间
标本要求
血常规
< 2h
未及时送检2-8℃(6℃)保存 <2h
尿液
<1h
新鲜标本
便
<30分钟
新鲜标本
生化、免疫
< 2h
血气
<15 分钟
胸腹水、关节液
及时送检
生化检测，未及时送检离心去除RBC后保存，(红细胞内酶的释放而改变滑膜液成分，)
脑脊液培养奈瑟菌
35℃保温<30分钟
静脉采血法
静脉采血法临床应用广泛，所采集的静脉血能准确反映全身血液的真实情况，因其不易受气温和末梢循环变化的影响，更具有代表性。
普通采血法方法 。（1）主要器材： 注射器、 试管、消毒用品等。
普通采血法负压采血法
脑脊液常规（生化）
<1h 最迟<4h
脑脊液病毒检测
放置冰块4℃<2h
样本送检注意事项
血培养采集容器
注意事项：患者收费条码，勿压住试剂检测码
三、血液标本运送、保存与处理
运送
接收与拒收
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临床检验标本采集
分 门诊 析 病房 前 诊所
实验室 分 析 中
临床生物检验流程示意
不合格
临床标本
留取
SOP +
环节一
运送
环节二
合格
标本合格？ 环节三
SOP
IQ
标本合格 判定
直接检测 EQA箱、气体
检测
环节五
仪器设备、试剂
分 析 2021/后1/10
血
2021/1/10
临床检验标本采集手册
动脉血采集
• 评估病人呼吸和代谢状况的首选标本 • 全身各部位成分基本一致、恒定 • 动、静脉血区别：
O2、CO2、PH、乳酸、CL-、葡萄糖等
2021/1/10
物品准备
2021/1/10
病人准备
• 进食 • 体温 • 呼吸模式 • 吸氧浓度
如果氧浓度发生改变，至少等待20~30min后方可 采血
报告
环节六
对每个环节进行控制，构成质量保证体系
2021/1/10
采血部位选择
• 肘正中静脉-首选
•
• 头静脉-可选
• 手背静脉-可选
• 一般不选-贵要静脉
（易损伤动脉及神经）
• 动脉穿刺替代
静脉穿刺
2021/1/10
被忽略的细节
• 长时间扎紧止血带以充盈血管 • 止血带使用<1min,不得>2min
2021/1/10
临床检验标本采集手册
真空采血管注血顺序
• 1 血培养瓶：厌氧菌培养瓶、需氧菌培养瓶 • 2 凝血项目采集管（蓝） • 3 无添加物管/含促凝剂管/分离胶试管（红、黄） • 4 肝素管（绿） • 5 EDTA抗凝管（紫） • 6 糖酵解抑制剂管（灰）
2021/1/10
蓝 红黄 绿 紫 灰
进 入 夏 天 ，少 不了一 个热字 当头， 电扇空 调陆续 登场， 每逢此 时，总 会想起 那 一 把 蒲 扇 。蒲扇 ，是记 忆中的 农村， 夏季经 常用的 一件物 品。 记 忆 中 的故 乡 ， 每 逢 进 入夏天 ，集市 上最常 见的便 是蒲扇 、凉席 ，不论 男女老 少，个 个手持 一 把 ， 忽 闪 忽闪个 不停， 嘴里叨 叨着“ 怎么这 么热” ，于是 三五成 群，聚 在大树 下 ， 或 站 着 ，或随 即坐在 石头上 ，手持 那把扇 子，边 唠嗑边 乘凉。 孩子们 却在周 围 跑 跑 跳 跳 ，热得 满头大 汗，不 时听到 “强子 ，别跑 了，快 来我给 你扇扇 ”。孩 子 们 才 不 听 这一套 ，跑个 没完， 直到累 气喘吁 吁，这 才一跑 一踮地 围过了 ，这时 母 亲总是 ，好似 生气的 样子， 边扇边 训，“ 你看热 的，跑 什么？ ”此时 这把蒲 扇， 是 那 么 凉 快 ，那么 的温馨 幸福， 有母亲 的味道 ！ 蒲 扇 是 中 国传 统工艺 品，在 我 国 已 有 三 千年多 年的历 史。取 材于棕 榈树， 制作简 单，方 便携带 ，且蒲 扇的表 面 光 滑 ， 因 而，古 人常会 在上面 作画。 古有棕 扇、葵 扇、蒲 扇、蕉 扇诸名 ，实即 今 日 的 蒲 扇 ，江浙 称之为 芭蕉扇 。六七 十年代 ，人们 最常用 的就是 这种， 似圆非 圆 ， 轻 巧 又 便宜的 蒲扇。 蒲 扇 流 传 至今， 我的记 忆中， 它跨越 了半个 世纪， 也 走 过 了 我 们的半 个人生 的轨迹 ，携带 着特有 的念想 ，一年 年，一 天天， 流向长
束臂时间过长可至局部血液浓缩或激活凝血系统
• 使用血压计压力套，压力=40mmHg • 穿刺成功后立即释放对静脉的压力，2-5秒后再留
取标本。
使血液循环，消除止血带对局部血液质量的影响
2021/1/10
临床检验标本采集手册
被忽略的细节
• 采血过程中采血管底部应低于采血针前端 • 采集足量标本并立即使血液与试剂充分混合 • 避免剧烈摇晃 • 任何制剂的消毒液都需自然晾干方可穿刺 • 基于生物安全因素，不建议使用注射器采血
2021/1/10
穿刺部位的选择
• 良好的侧支循环*：改良ALLEN试验/B超 • 浅表易触及的动脉 • 动脉周围组织
桡动脉* 足背动脉 肱动脉 股动脉
2021/1/10
动脉采血危险因素
• 血管迷走神经反射 • 动脉痉挛 • 血肿 • 血栓形成或栓塞
2021/1/10
毛细血管血采集
• 局部温热（<42。3~5min）处理可增加7倍动脉血
2021/1/10
临床检验标本采集手册
尿标本采集
• 24h尿：尿肌酐、尿蛋白定量、尿电解质等 • 送检量50ml，充分混匀，标记总尿量 • 尿沉渣分析或结核杆菌检查可留取尿沉淀部分
• 12/3h尿：细胞、管型等有形成分计数、细胞排泄率
• 防腐剂：甲醛、甲苯、浓盐酸、麝香草酚
2021/1/10
临床检验标本采集手册
液流量。
• 避免过度挤压至组织液渗出
2021/1/10
体液标本采集 •尿液、粪便、浆膜腔积液、脑脊液、胃液等
2021/1/10
尿标本采集
• 晨尿：标本较浓缩，有形成分完整
尿常规、尿沉渣、hCG等
• 随机尿
晨尿在膀胱停留时间长，偏酸，不利 于检出酸性环境易变的物质（葡萄 糖、盐酸）
建议采集第二次晨尿代替首次晨尿
其他体液
2021/1/10
微生物学标本采集
• 血培养、痰培养、尿培养、鼻咽拭子、穿刺液、
分泌物、导管
2021/1/10
血培养标本采集
• 采血时机
最好在抗菌治疗前 ,以正在发冷发热时或 发冷 发热前半小时为宜。
• 采血部位
应从身体不同部位采血（双侧双瓶），以排除 皮肤菌丛污染的可能；要避免从动静脉导管内及 肝素帽穿刺取血；用来培养的血应该是静脉血
凝血试验注意事项
• 采血量与抗凝剂比例将影响血浆Ca2+浓度 • 蝶翼型采血针避免空气对采血量的影响 • 如允许范围内血量不足需正确及时释放负压、避
免CO2散失
2021/1/10
自动、静脉置管采集血标本
• 却保密封，避免空气混入导致溶血、凝血、血量
不足
• 考虑肝素化和样本稀释 • 管道需用5ml盐水冲洗，并弃去6倍无效腔体积的
粪便标本采集
• 异常粪便：取黏液、脓、血等病变部位 • 无异常粪便：取表面、深处多部位取样
2021/1/10
浆膜腔积液
• 胸、腹膜腔、心包积液：无菌技术穿刺取样 • 第一管：病理、微生物学检查 • 第二管：肝素抗凝作化学、细胞学检查 • 第三管：干燥试管作一般性状、凝固性检查
2021/1/10
• 脑脊液 • 胃液 • 引流液