常用实验动物的给药途径和方法

常用实验动物的给药途径和方法

在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。

一经口给药法

(一)灌胃法

此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。

1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。灌胃量0.2～0.5ml/10g。

胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。

注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。

2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠

灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。灌胃量10～20ml/kg

3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。

4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。此种操作较为简便。

5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。不要象其它动物灌胃时插的太深，如动物不挣扎，插针头又很顺利，即可将药液经口或食管上端罐入胃内。罐入速度要慢。

(二)口服法

口服给药是把药物混入饲料或溶于饮水中让动物自由摄取。此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大。大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，便其自然吞咽。

二注射给药法

注射给药剂量准确、作用快，是动物实验中常用的给药方法，给药时应注意针头的选择 (鼠类：4～5号，兔、猫、犬、猪、猴：6～8号)。

(一)皮下注射法

注射一般选取皮下组织疏松的部位，大鼠、小鼠和豚鼠可在颈后肩肿间、腹部两侧作皮下注射；家兔可在背部或耳根部作皮下注射；猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。以小白鼠为例，将小白鼠放在笼盒盖上，用左手小指和无名指捏住鼠尾，轻轻向后拉，用拇指和食指捏起背部皮肤，再用右手持注射器，右手将注射器的针头水平刺入背部皮下。针头可用5号针头。推送药液使注射部位隆起。拔针时，以手指捏住针刺部位，可防止药液外漏。

注射量：大鼠为 1ml/100g、小鼠为 0.1～0.3ml/10g。

鸟类皮下注射通常选取翼下部位，可注射0.3ml～0.5ml药液。鸽类皮肤弹性差，注射液有时从针口流出。

(二)皮内注射法

固定动物的方法和注射部位与皮下相同。将注射部位脱毛、消毒，用左手拇指和食指压住皮肤并便之绷紧，在两指之间，用皮试针头紧贴皮肤表层刺入皮内，然后向上挑起并再稍刺入，当针头不能左右摆动时，即表明针头在皮内，回抽无回流后，即可缓慢注射，皮肤表面出现白色桔皮样隆起，若隆起可维持一定时间，则证明药液确实注射在皮内。注射量：小鼠为

0.1ml/次/穿刺部位。

(三)肌肉注射法

肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过的部位。大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁的肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬、猴等大型动物选臂部注射。注射时针头宜垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可注射。

小鼠：可二人合作，一人一手抓住小鼠头部皮肤，另一手抓住尾巴。另一人取连有4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。注射量：不超过0.1ml。

也可一人操作，方法是左手单手控制小鼠，并见将小鼠右脚趾拉放于左侧面，用左手无名指压住。将针头刺入右腿外侧肌肉。

家兔：将家兔用小动物手术台固定，注射部位可选择大腿肌肉。例如家兔股四头肌注射法：在家兔腿部两侧四头肌部位皮肤，用2%碘酒消毒，再用75%酒精擦去碘质，分别在股四头肌部位注射药液1 ml和 2 ml，作药物局部刺激性实验。

鸟类：禽鸟类肌肉注射常选取胸肌或腓肠肌肌肉注射，方法同大、小鼠。

(四)腹腔注射法

给大鼠、小鼠进行腹腔注射时，以左手固定动物，便腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量便动物头处于低位，便内脏移向上腹，右手持连有5号针头的注射器从下腹两侧向头部方向刺入，控制针头与腹部的角度不宜太小，否则易误入皮下。针头亦不宜刺入太深或太近上腹部，以避免损伤内脏。将注射器沿45°角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。

小鼠注射量为 0.2～0.4ml/10g

兔、犬等动物腹腔注射时，可由助手固定动物，便其腹部朝上，实验者即可进行操作。其位置:家兔下腹部近腹中线左右两侧 lcm处，犬脐后腹中线两侧边 1～2cm处进行腹腔注射。

(五)静脉注射法

1．小鼠：常采用尾静脉注射。注射时，先将小鼠固定在暴露尾部的固定器内，尾

部用40℃的温水浸润几分钟或用 75％酒精棉球反复擦拭使血管扩张充血。以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠尾，右手持带有4号针头的注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾巴近末端处刺入，注入药液，如无阻力，表示针头己进入静脉。注射量为 0.05～0.2ml/10g

2．大鼠: 将小鼠固定在暴露尾部的固定器内，露出尾巴，用10 ml试管盛45℃～50

℃的温水浸润1～2分钟或用 75％酒精棉球反复擦拭使血管扩张，并使表皮角质软化，可明显见到三根暗红色的尾静脉。选择较明显的一条，在尾下1/4处，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠尾，右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度（小于30度）进针，刺入，针头在尾静脉内平行推进少许，左手的三指捏住尾巴，并连针头和鼠尾一起捏住，以防大鼠活动将针头脱出。注入药液，如无阻力，表示针头己进入静脉。注射后把尾部向注射侧弯曲，或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。

注意：大小鼠尾静脉注射部位应尽量选在鼠尾下1/3处，此处皮薄，血管较易注入，常用鼠尾左右两侧两根尾静脉，因其位置较固定，容易注入。背侧尾静脉由于其位置容易动，固一般少用。腹侧面是动脉，不采用作静脉注射。

大鼠舌下静脉注射：